Морфологические изменения кости нижней челюсти в условиях местного воздействия на ее регенерацию при моделировании экспериментального дефекта
Изменения строения костей скелета в результате использования клеточных технологий. Структурная организация костной ткани при естественной регенерации ее дефекта. Морфология костной ткани после воздействия различными способами на репарацию ее дефекта.
Рубрика | Медицина |
Вид | диссертация |
Язык | русский |
Дата добавления | 10.03.2018 |
Размер файла | 11,3 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Абсолютная численность ретикулярных клеток к 1 неделе была меньше на 53,5%, чем в контроле. При этом на 1 неделе величина данного показателя была меньше на 69,9%, в 2,2 и 2,3 раза, соответственно, чем на 3, 4 и 5 неделях. К 2 неделе таких клеточных элементов было также меньше на 66,5%, в 2,1 и 2,3 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием на 3, 4 и 5 неделях (табл. 31).
Относительное количество моноцитов в корковом плато было больше контроля только на 5 неделе: в 2,3 раза (табл. 31).
Численная плотность моноцитов была больше, чем у интактных животных, через 4 и 5 недель, в 2,3 и 2,5 раза, соответственно (табл. 31).
Процент макрофагов был больше исходного состояния на 76%, 78,6% и 78,6%, соответственно, на 3, 4 и 5 неделях (рис. 94-98) (табл. 31).
Абсолютное количество макрофагов было больше на 97,2% и 93,7%, соответственно, чем у интактных животных, через 4 и 5 недель. Кроме того, на 5 неделе величина значения этого показателя была больше на 67,7%, по сравнению с данными на 2 неделе (рис. 94-98) (табл. 31).
Следует отметить, что тканевые базофилы (тучные клетки) отсутствовали в корковом плато всех интактных крыс и на 1 и 2 неделях после операции, на 3 и 4 неделях такие клеточные элементы присутствовали у отдельных особей, а к 5 неделе тканевые базофилы были найдены уже у всех животных (рис. 100-103) (табл. 31).
Относительное количество делящихся клеток было максимальным на 1-2 неделях после операции. Через 1 и 2 недели процент фигур митозов был выше в 2,6, 6,5 и 4,9 раза, соответственно, чем у интактных животных, спустя 4 и 5 недели после операции (табл. 31).
Процент клеточных элементов с признаками деструктивных изменений через 1, 4 и 5 недель превосходил контрольный уровень в 4,2, 4,3 и 4,8 раза, соответственно (табл. 31).
Число нежизнеспособных клеток на единицу площади среза коркового плато достоверно больше исходного стало только к 5 неделе после хирургического вмешательства: в 5,1 раза (табл. 31).
Различия в цитограмме коркового плато между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях численности лимфоцитов, моноцитов, тканевых базофилов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 3, 31).
При спонтанном заживлении нижней челюсти через 5 недель после операции были больше процент лимфоцитов на 13,7%, меньше относительное и абсолютное число моноцитов в 2,2 и 2,5 раза, соответственно, клеток с явлениями деструкции в 5,1 и 5,5 раза, также соответственно, относительно аналогичного срока после хирургического вмешательства с применением ПГА (табл. 3, 31).
Кроме того, после спонтанного заживления дефекта кости нижней челюсти в цитограмме коркового плато не были обнаружены тканевые базофилы, которые были найдены на 3 и 4 неделях у некоторых крыс, а на 5 неделе - уже у всех животных после операции с использованием ПГА (табл. 3, 31).
Также следует отметить появление большого числа незрелых и зрелых клеточных элементов соединительной ткани - фибробластов и фиброцитов по ходу соединительнотканных прослоек в корковом плато через 4-5 недель после операции с имплантацией ПГА (рис. 94-98).
6.2.3 Изменения цитограммы паракортикальной зоны
Относительное число лимфоцитов в паракортикальной зоне лимфатических узлов на 1, 2, 3, 4 и 5 неделях после использования ПГА статистически достоверно было на 13,7%, 12,8%, 21,3%, 29,5% и 33%, соответственно, меньше контроля. При этом на 4 неделе лимфоцитов было меньше на 13,9% и 14,7%, соответственно, чем через 1 и 2 недели после операции. К 5 неделе этих клеток стало меньше на 17% и 17,9, также соответственно, и также по сравнению с состоянием спустя 1 и 2 недели (табл. 32).
Абсолютное содержание лимфоцитов только на первой неделе эксперимента было меньше на 38,5%, чем в контроле (табл. 32).
Процент иммуно- и плазмобластов на 3, 4 и 5 неделях был на 62,2%, 73,4% и 74,9%, соответственно, меньше исходного (рис. 94-98) (табл. 32).
Численная плотность бластов спустя 4 и 5 недель стала меньше на 94,4% и в 2 раза, соответственно, чем у интакных крыс (рис. 94-98) (табл. 32).
Относительное число ретикулярных клеток резко уменьшилось на 1-2 неделях, но далее постепенно возрастало и к концу эксперимента превосходило исходный уровень. Клеток стромы на 1 и 2 неделях было меньше на 34,7% и 33,6%, соответственно, чем в контроле, а спустя 4 и 5 недель на 21,1% и 22,7%, также соответственно, уже превосходило исходный уровень. При этом через 1 неделю ретикулярных клеток было меньше на 41,1%, 63,2% и 65,3%, соответственно, чем спустя 3, 4 и 5 недель. К 2 неделе клеток стромы стало меньше на 39,9%, 61,8% и 63,9%, также соответственно, и также по сравнению с состоянием на 3, 4 и 5 неделях (табл. 32).
Количество ретикулярных клеток на единицу площади среза на 1 и 2 неделях было меньше на 62,9% и 59,9%, соответственно, чем у интактных крыс, а через 4 и 5 недель на 37,3% и 43,1%, также соответственно, превосходило контрольный уровень. Спустя 1 неделю ретикулярных клеток было меньше на 77,3%, в 2,2 и 2,3 раза, соответственно, чем через 3, 4 и 5 недель. На 2 неделе клеток число стромы стало ниже на 74%, в 2,2 и 2,3 раза, также соответственно, и также по относительно уровня спустя 3, 4 и 5 недель (табл. 32).
Процент моноцитов медленно возрастал в течение всего времени наблюдения и на 3, 4 и 5 неделях был в 2,3, 2,3 и 2,8 раза, соответственно, больше исходного (табл. 32).
Показатель численной плотности моноцитов также на 3, 4 и 5 неделях был выше в 2,3, 2,6 и 3,2 раза, также соответственно, и также по сравнению с контрольным уровнем (табл. 32).
Точно такая же динамика происходила в изменениях численности макрофагов. Относительное содержание макрофагов медленно возрастало в течение всего времени наблюдения и на 3, 4 и 5 неделях было в 2,8, 3,3 и 3,3 раза, соответственно, больше исходного. При этом на 4 и 5 неделях макрофагов было больше на 75,4% и 71,4%, соответственно, чем на 1 и 2 неделях (рис. 94-98) (табл. 32).
Численная плотность макрофагов через 3, 4 и 5 недель была в 3, 3,8 и 3,9 раза, соответственно, выше, по сравнению с контрольным уровнем. Кроме того на 1 неделе макрофагов было меньше на 91,5%, в 2,4 и 2,5 раза, соответственно, чем на 3, 4 и 5 неделях. Спустя 2 недели величина значения этого показателя была ниже на 84,1%, в 2,3 и 2,4 раза, также соответственно и также по сравнению с состоянием на 3, 4 и 5 неделях (рис. 94-98) (табл. 32).
Процент тканевых базофилов сначала недостоверно уменьшился, потом медленно возрастал и на 4 и 5 неделях был в 6,8 и 7,5 раза, соответственно, больше, чем на 1 неделе. При этом на 5 неделе базофилов было больше в 5 раз, относительно состояния через 2 недели после операции (рис. 100-103) (табл. 32).
Абсолютное количество тканевых базофилов также 4 и 5 неделях было выше в 7,5 и 8,8 раза, соответственно, по сравнению с уровнем на 1 неделе. Кроме того через 4 и 5 недель таких клеток было также больше в 6,3 и 7,4 раза, и также соответственно, чем на 2 неделе (табл. 32).
Относительное число эритроцитов к 5 неделе возросло в 5,1 раза, по сравнению с контролем (табл. 32).
Количество эритроцитов на 105 мкм2 площади среза через 4 недели было выше в 4,6 раза, чем у интактных животных (табл. 32).
Число фигур митозов было максимальным на 1 неделе. На этот срок их относительное количество было больше в 2,5, 2,6, 5,6 и 10,5 раза, соответственно, относительно контроля и состояния через 3, 4 и 5 недель. При этом спустя 4 и 5 недель содержание делящихся клеток было меньше в 4,7 и 8,8 раза, соответственно, чем на 2 неделе после операции (табл. 32).
Численная плотность митозов на 1 неделе было больше в 2, 4,3 и 8,6 раза, соответственно, по сравнению с состоянием у интактных животных, через 4 и 5 недель. Кроме того, на 5 неделе величина значения этого показателя была меньше в 7,3 раза, чем спустя 2 недели после хирургического вмешательства (табл. 32).
Процент клеток с признаками деструктивных изменений резко возрос к 1 неделе и оставался на этом уровне в течение всего времени наблюдения. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель число таких клеточных элементов было больше в 3,1, 2,9, 3,3, 3,1 и 3,1 раза, соответственно, по сравнению с состоянием в контроле (табл. 32).
В контроле абсолютное содержание клеток с явлениями деструкции было ниже в 3,4, 3,5 и 3,6 раза, соответственно, чем спустя 3, 4 и 5 недель (табл. 32).
Различия в цитограмме паракортикальной зоны между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях численности лимфоцитов, иммуно- и плазмобластов, ретикулярных клеток, моноцитов, тканевых базофилов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 4, 32).
При спонтанном заживлении нижней челюсти процент лимфоцитов на 4 и 5 неделях был больше на 20,6% и 26,8%, соответственно, чем на соответствующие сроки после применения ПГА (табл. 4, 32).
Относительное число иммуно- и плазмобластов на 4 неделе после операции было больше на 66,5% в случае использования полимера, относительно естественного хода репаративного процесса (табл. 4, 32).
Абсолютное число ретикулярных клеток к 5 неделе после спонтанного заживления дефекта кости нижней челюсти было меньше на 39%, по сравнению с состоянием на фоне применения полимера (табл. 4, 32).
Процент моноцитов был больше в 2,2 и 2,6 раза, соответственно, спустя 4 и 5 недель после хирургического вмешательства с установкой ПГА, чем при самостоятельной регенерации (табл. 4, 32).
Численная плотность моноцитов к 4 и 5 неделе после спонтанного заживления дефекта костной ткани была меньше в 2,4 и 2,9 раза, соответственно, по сравнению с состоянием на фоне применения полимера (табл. 4, 32).
Относительное число тканевых базофилов через 5 недель при спонтанном заживлении было достоверно меньше в 4 раза, чем после применения ПГА (табл. 4, 32).
Количество тканевых базофилов на единицу площади среза спустя 4 и 5 недель после использовании полимера было больше на 83,5% и в 4,8 раза, соответственно, по сравнению с состоянием при естественной репарации (табл. 4, 32).
Процент клеточных элементов с признаками деструктивных изменений на 3, 4 и 5 неделях при спонтанной регенерации был меньше на 96,4%, в 2,9 и 2,8 раза, относительно состояния на фоне внедрения ПГА (табл. 4, 32).
Относительное число клеток с явлениями деструкции через 4 и 5 недель при естественном ходе репаративных процессов было достоверно ниже в 3,1 и 3,2 раза, чем после использования полимера (табл. 4, 32).
В паракортексе в конце эксперимента (4-5 недель) у животных с использованием ПГА также присутствовало значительное количество фибробластов и фиброцитов (рис. 94-98).
6.2.4 Изменения цитограммы лимфоидных фолликулов без герминативных центров
Процент лимфоцитов в лимфоидных узелках без центров размножения на все сроки наблюдения был меньше, чем в контроле. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель величина значения этого показателя была статистически достоверно ниже на 11,6%, 10,2%, 10,6%, 10,6% и 10,6%, соответственно, чем в контроле (табл. 33).
Численная плотность лимфоцитов только на 5 неделе была достоверно меньше на 36,4%, по сравнению с контролем (табл. 33).
Относительное содержание иммуно- и плазмобластов резко возросло к 1 неделе, затем постепенно снижалось и достоверно не отличалось от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше в 2,7, 3,7, 3,4 и 10,2 раза, соответственно, чем в контроле, на 3, 4 и 5 неделях. При этом на 2 неделе бластов было больше в 9 раз, по сравнению с состоянием на 5 неделе (табл. 33).
Точно так же менялось и абсолютное число иммуно- и плазмобластов. Величина значения этого показателя спустя 1 неделю была выше в 2,7, 4, 3,6 и 12,9 раза, соответственно, относительно интактных крыс и состояния спустя 3, 4 и 5 недель. Кроме того на 2 неделе бластов было больше в 11,2 раза, по сравнению с состоянием на 5 неделе (табл. 33).
Процент ретикулярных клеток стал достоверно больше контроля к 4 неделе после операции. Через 3 недели величина значения этого показателя была статистически достоверно больше на 54,3% и 59,1%, соответственно, чем на 1 и 2 неделях. Спустя 4 недели клеток стромы было больше на 33,92%, 69,3% и 74,5%, соответственно, относительно контроля и состояния на 1 и 2 неделях. К 5 неделе число данных клеточных элементов также было больше на 30,1%, 64,6% и 69,6%, также соответственно, и также по сравнению с интактными крысами и состоянием на 1 и 2 неделях (табл. 33).
Относительное содержание макрофагов на 3, 4 и 5 неделях было выше исходного значения в 2,9, 3 и 2,8 раза, соответственно (табл. 33).
Численная плотность этих клеток только на 3 неделе был достоверно больше в 2,6 раза, по сравнению с контролем (табл. 33).
На все сроки эксперимента во всех наблюдениях в цитограмме фолликулов без герминативных центров лимфатических узлов присутствовали эритроциты, которых не было у интактных животных (табл. 33).
Процент митозов был высоким на 1 и 2 неделях, потом этот показатель постепенно снижался и достоверно не отличался от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше в 2,5, 3, 6,7 и 12 раз, соответственно, чем в контроле и спустя 3, 4 и 5 недель. На 2 неделе фигур митозов было больше в 2,6, 5,7 и 10,3 раза, также соответственно, относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях (табл. 33).
Аналогично менялось и абсолютное число делящихся клеток. Величина значения этого показателя спустя 1 неделю была выше в 2,5, 3,3, 8,5 и 15,2 раза, соответственно, по сравнению с контролем и данными спустя 3, 4 и 5 недель. На 2 неделе митозов было больше в 2,8, 7,2 и 12,9 раза, также соответственно, относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях (табл. 33).
Относительное содержание клеток с признаками деструктивных изменений резко возросло к 1 неделе, далее это показатель всегда был выше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель число таких клеточных элементов превосходило в 3, 3,1, 4,4, 4,6 и 5,2 раза, соответственно, контрольный уровень. При этом спустя 5 недель число нежизнеспособных клеток было достоверно больше на 73,2% и 67,8%, соответственно, чем через 1 и 2 недели (табл. 33).
Численная плотность клеток с явлениями деструкции была на 3, 4 и 5 неделях больше в 4, 4 и 4,2 раза, соответственно, по сравнению с состоянием у интактных крыс (табл. 33).
Различия в цитограмме лимфоидных узелков без центра размножения между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях численности лимфоцитов, ретикулярных клеток, эритроцитов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 5, 33).
При спонтанном заживлении нижней челюсти процент лимфоцитов в узелках без центров размножения субмандибулярных лимфатических узлов на 3, 4 и 5 неделях был статистически достоверно выше на 8,1%, 8,5% и 8,5%, соответственно, чем на аналогичные сроки на фоне использования ПГА. Абсолютное число лимфоцитов только на 5 неделе естественной репарации было больше на 35,2%, по сравнению с результатами применения полимера (табл. 5, 33).
Относительное содержание ретикулярных клеток на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА было больше на 33% и 30,9%, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 5, 33).
Эритроциты полностью отсутствовали через 3, 4 и 5 недель после операции и естественном заживлении в цитограмме фолликулов без герминативных центров, тогда как после использования полимера клетки красной крови на эти сроки были найдены в указанных структурах лимфатических узлов у всех особей (табл. 5, 33).
Процент клеточных элементов с признаками деструктивных изменений через 3, 4 и 5 недель после применения ПГА был больше в 4,9, 4,3 и 4,9 раза, соответственно, относительно аналогичных сроков спонтанной регенерации. Абсолютное число клеток с явлениями деструкции также спустя 3, 4 и 5 недель после внедрения полимера было также выше в 4,3, 3,5 и 4 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием при естественном заживлении (табл. 5, 33).
6.2.5 Изменения цитограммы мантийной зоны
Процент лимфоцитов в мантийной зоне лимфоидных фолликулов с центрами размножения на все сроки наблюдения был меньше, чем в контроле. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель величина значения этого показателя была статистически достоверно ниже на 13,4%, 12,8%, 13,9%, 15% и 15,9%, соответственно, чем в контроле (табл. 34).
Численная плотность лимфоцитов на 4 неделе была достоверно меньше на 36% и 18,2%, соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 1 неделе. На 5 неделе лимфоцитов было также меньше на 42% и 23,4%, также соответственно, и также чем в контроле и через 1 неделю после операции (табл. 34).
Относительное содержание иммуно- и плазмобластов резко возросло к 1 неделе, затем постепенно снижалось и достоверно не отличалось от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше в 2,2, 3,3 и 3,9 раза, соответственно, чем в контроле, на 4 и 5 неделях. При этом на 2 неделе бластов также было больше в 2,2, 3,3 и 4 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием в контроле, на 4 и 5 неделях (табл. 34).
Точно так же менялось и абсолютное число иммуно- и плазмобластов. Величина значения этого показателя спустя 1 неделю была выше в 2,1, 3,8 и 4,8 раза, соответственно, относительно интактных крыс и состояния спустя 4 и 5 недель. На 2 неделе бластов было больше в 2,2, 3,9 и 4,8 раза, также соответственно, по сравнению с состоянием в контроле, на 4 и 5 неделях (табл. 34).
Процент ретикулярных клеток стал возрастать, начиная с 3 недели после операции. Через 3 недели таких клеток было больше на 29,5% и 31,2%, соответственно, чем на 1 и 2 неделях. Спустя 4 недели клеток стромы было больше на 40,5% и 42,2%, соответственно, относительно состояния на 1 и 2 неделях. К 5 неделе число данных клеточных элементов также было больше на 48,8% и 50,6%, также соответственно, и также по сравнению с 1 и 2 неделями (табл. 34).
Относительное содержание моноцитов на 3, 4 и 5 неделях было выше исходного значения в 2,6, 2,8 и 2,9 раза, соответственно (табл. 34).
Численная плотность этих клеток только на 3 неделе была достоверно больше в 2,4 раза, по сравнению с контролем (табл. 34).
Процент макрофагов на 4 и 5 неделях был выше исходного значения в 2,3 и 2,5 раза, соответственно (табл. 34).
На все сроки эксперимента в цитограмме фолликулов без герминативных центров лимфатических узлов присутствовали нейтрофилы и эритроциты, которых не было у интактных животных. Причем, эритроциты всегда были во всех наблюдениях, а нейтрофилы сначала были у отдельных крыс, а с 4 недели - также у всех особей (табл. 34).
Процент митозов был высоким на 1 и 2 неделе, потом этот показатель постепенно снижался и достоверно не отличался от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше в 2,4, 2,5, 4,8 и 7,2 раза, соответственно, чем в контроле и спустя 3, 4 и 5 недель. На 2 неделе фигур митозов было больше в 2,2, 2,3, 4,3 и 6,5 раза, также соответственно, относительно состояния в контроле, на 3, 4 и 5 неделях (табл. 34).
Аналогично менялось и абсолютное число делящихся клеток. Величина значения этого показателя спустя 1 неделю была выше в 2,3, 2,7, 5,5 и 8,1 раза, соответственно, по сравнению с контролем и данными спустя 3, 4 и 5 недель. На 2 неделе митозов было больше в 2,4, 4,9 и 7,2 раза, также соответственно, относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях (табл. 34).
Относительное содержание клеток с признаками деструктивных изменений резко возросло к 1 неделе, далее это показатель всегда был выше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель число таких клеточных элементов превосходило в 5,3, 5,7, 5,9, 6,4 и 6,3 раза, соответственно, контрольный уровень (табл. 34).
Численная плотность клеток с явлениями деструкции также была на 1, 2, 3, 4 и 5 неделях больше в 5,3, 5,6, 5,3, 5,5 и 5,2 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием у интактных крыс (табл. 34).
Различия в цитограмме мантийной зоны лимфоидных узелков с герминативными центрами между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях численности лимфоцитов, моноцитов, нейтрофилов, эритроцитов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 6, 34).
При спонтанном заживлении нижней челюсти процент лимфоцитов на 3, 4 и 5 неделях был статистически достоверно выше на 8,7%, 12,4% и 14%, соответственно, чем на аналогичные сроки на фоне использования ПГА. Абсолютное число лимфоцитов на 4 и 5 неделях естественной репарации было больше на 38,7% и 40,1%, соответственно, по сравнению с результатами применения полимера (табл. 6, 34).
Относительное содержание моноцитов на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА было больше в 2,4 и 2,6 раза, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 6, 34).
Нейтрофилы полностью отсутствовали спустя 4 и 5 недель, а эритроциты - через 3, 4 и 5 недель после операции и естественном заживлении, однако после использования полимера данные лейкоциты и клетки красной крови на указанные сроки были найдены у всех особей (табл. 6, 34).
Процент клеточных элементов с признаками деструктивных изменений через 3, 4 и 5 недель после применения ПГА был больше в 6,8, 6,7 и 4,9 раза, соответственно, относительно аналогичных сроков спонтанной регенерации. Абсолютное число клеток с явлениями деструкции спустя 3 и 4 недели после внедрения полимера было выше в 6,1 и 5,6 раза, также соответственно, и также чем при естественном заживлении (табл. 6, 34).
6.2.6 Изменения цитограммы центров размножения
Процент лимфоцитов в герминативных центрах лимфоидных фолликулов на все сроки наблюдения был меньше, чем в контроле. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель величина значения этого показателя была статистически достоверно ниже на 47,5%, 61%, 33,6%, 33,6% и 32,3%, соответственно, чем в контроле (табл. 35).
Относительное содержание иммуно- и плазмобластов резко возросло к 1 неделе, затем постепенно снижалось и достоверно не отличалось от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше на 58,7%, 30,8%, в 2 и 2,5 раза, соответственно, чем в контроле, на 3, 4 и 5 неделях. При этом на 2 неделе бластов также было больше на 63,1%, 34,4%, в 2,1 и 2,5 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием в контроле, на 3, 4 и 5 неделях. Кроме того спустя 3 недели таких клеток было больше на 56,3% и 88%, соответственно, относительно содержания спустя 4 и 5 недель. К 5 неделе величина значения этого показателя стала уже меньше на 54,9%, чем у интактных животных (табл. 35).
Абсолютное число иммуно- и плазмобластов спустя 1 неделю было выше на 65,2%, 74,2% и в 2 раза, соответственно, относительно интактных крыс и состояния спустя 4 и 5 недель. На 2 неделе бластов было больше на 73,3%, 82,8% и в 2,1 раза, также соответственно, по сравнению с состоянием в контроле, на 4 и 5 неделях. К 5 неделе таких клеточных элементов было меньше на 67%, чем на 3 неделе (табл. 35).
На все сроки эксперимента в цитограмме фолликулов без герминативных центров лимфатических узлов присутствовали плазмоциты, нейтрофилы и эритроциты, которых не было у интактных животных. Причем, эритроциты всегда были практически во всех наблюдениях (за исключением 4 недели), плазматические клетки и нейтрофилы сначала были у отдельных крыс, а с 4 недели - также у всех особей (табл. 35).
Процент ретикулярных клеток сначала уменьшился, но стал возрастать, начиная с 4 недели после операции. Через 1 неделю ретикулярных клеток было меньше на 53,7%, 29,5%, в 2 и 2,2 раза, соответственно, чем в контроле, на 3, 4 и 5 неделях. Спустя 2 недели клеток стромы было меньше на 44,6%, 92,1% и в 2 раза, соответственно, относительно состояния в контроле, на 4 и 5 неделях. К 3 неделе число данных клеточных элементов также было меньше на 57,7% и 66,7%, также соответственно, по сравнению с состоянием на 4 и 5 неделях. Следует отметить, что на 4 и 5 неделях число ретикулярных клеток было выше на 32,9% и 40,4%, соответственно, чем в контроле (табл. 35).
Численная плотность ретикулярных клеток на 4 неделе была достоверно больше на 62,3%, в 2,4, 2,2 раза и на 74,9%, соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 1, 2, и 3 неделях. На 5 неделе клеток стромы было также больше на 74,9%, в 2,6, 2,4 раза и на 88,5%, также соответственно, и также чем в контроле и через 1, 2 и 3 недели после операции (табл. 35).
Относительное содержание моноцитов на 4 и 5 неделях было выше исходного значения в 4,5 и 4,2 раза, соответственно (табл. 35).
Абсолютное содержание этих клеток также на 4 и 5 неделях было достоверно больше в 5,3 и 5,1 раза, также соответственно, и также по сравнению с контролем (табл. 35).
Процент макрофагов на все сроки эксперимента был выше, чем в контроле. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель величина значения этого показателя была больше на 77,1%, в 2,1, 2,3, 2,5 и 2,7 раза, соответственно, чем в контроле. Кроме того, на 5 неделе макрофагов было больше на 51,2%, чем на 1 неделе после операции (рис. 94-98) (табл. 35).
Число макрофагов на единицу площади среза на 2, 3, 4 и 5 неделях было больше в 2,2, 2,6, 3 и 3,3 раза, соответственно, по сравнению с контролем. На 4 и 5 неделях макрофагов было также больше на 63,1% и 82,6%, также соответственно, чем через 1 неделю после хирургического вмешательства (рис. 94-98) (табл. 35).
Процент митозов был высоким на 1 и 2 неделе, потом этот показатель постепенно снижался и достоверно не отличался от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше на 96,6%, в 2,1, 4,2 и 4,5 раза, соответственно, чем в контроле и спустя 3, 4 и 5 недель. На 2 неделе фигур митозов было больше на 99,6%, в 2,1, 4,3 и 4,6 раза, также соответственно, относительно состояния в контроле, на 3, 4 и 5 неделях. Кроме того, через 5 недель делящихся клеток было меньше в 2,1 раза, чем на 3 неделе (рис. 94-98) (табл. 35).
Абсолютное число делящихся клеток спустя 1 неделю было выше в 3,6 и 3,8 раза, соответственно, по сравнению с данными спустя 4 и 5 недель. На 2 неделе митозов также было больше в 3,8 и 4 раза, также соответственно, и также относительно состояния на 4 и 5 неделях (рис. 94-98) (табл. 35).
Относительное содержание клеток с признаками деструктивных изменений резко возросло к 1 неделе, далее это показатель всегда был выше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель число таких клеточных элементов превосходило в 2,4, 2,5, 3, 3,2 и 3,3 раза, соответственно, контрольный уровень (рис. 94-98) (табл. 35).
Численная плотность клеток с явлениями деструкции также была на 1, 2, 3, 4 и 5 неделях больше в 2,4, 2,7, 3,3, 3,9 и 4 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием у интактных крыс (рис. 94-98) (табл. 35).
Различия в цитограмме герминативных центров между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях количества практически всех клеточных элементов: численности лимфоцитов, иммуно- и плазмобластов, плазмоцитов, ретикулярных клеток, моноцитов, макрофагов, нейтрофилов, эритроцитов и клеток с признаками деструктивных изменений (табл. 7, 35).
При спонтанном заживлении нижней челюсти процент лимфоцитов на 5 неделе был статистически достоверно выше на 23%, чем на этот срок на фоне использования ПГА (табл. 7, 35).
Относительное содержание иммуно- и плазмобластов на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА было ниже на 63,1% и 69,9%, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 7, 35).
Плазмоциты полностью отсутствовали спустя 5 недель, нейтрофилы - на 4 и 5 неделях, а эритроциты - через 3, 4 и 5 недель после операции и естественном заживлении, однако после использования полимера данные лейкоциты и клетки красной крови на указанные сроки были найдены у всех особей (табл. 7, 35).
Процент ретикулярных клеток на 4 и 5 неделях при спонтанном заживлении был статистически достоверно ниже на 70,2% и 53%, соответственно, чем на аналогичные сроки на фоне использования ПГА (табл. 7, 35).
Абсолютное содержание клеток стромы на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА также было больше в 2,1 раза и на 81,9%, и также соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 7, 35).
Численная плотность моноцитов на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА была выше в 4,4 и 3,9 раза, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 7, 35).
Процент макрофагов на 4 и 5 неделях при естественной репарации был статистически достоверно ниже на 50% и 63,8%, соответственно, чем на аналогичные сроки на фоне использования ПГА (табл. 7, 35).
Количество макрофагов на единицу площади среза на 4 и 5 неделях после операции с применением ПГА также было больше на 85,3% и 96,4%, и также соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 7, 35).
Относительное и абсолютное число клеточных элементов с признаками деструктивных изменений через 5 недель после применения ПГА были больше в 2,3 и 2,8 раза, соответственно, относительно аналогичного срока спонтанной регенерации (табл. 7, 35).
6.2.7 Изменения цитограммы мякотных тяжей
Относительное число лимфоцитов в мякотных тяжах лимфатических узлов на 2, 3, 4 и 5 неделях после использования ПГА статистически достоверно было на 49,4%, 44%, 45,3% и 56,2%, соответственно, меньше контроля (табл. 36).
Процент иммуно- и плазмобластов резко возрос к 1 неделе, затем постепенно снижался и к окончанию эксперимента уже достоверно был меньше исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была больше на 50,8%, в 2,1 и 3,2 раза, соответственно, чем в контроле, на 4 и 5 неделях. При этом на 2 неделе бластов также было больше на 49%, в 2,1 и 3,1 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием в контроле, на 4 и 5 неделях. Кроме того спустя 3 недели таких клеток было больше на 66,6% и в 2,5 раза, соответственно, относительно содержания через 4 и 5 недель. К 7 неделе величина значения этого показателя была уже меньше в 2,1 раза, чем у интактных животных (табл. 36).
Абсолютное число иммуно- и плазмобластов спустя 1 неделю было выше на 64,2%, 85% и в 3 раза, соответственно, относительно интактных крыс и состояния спустя 4 и 5 недель. К 7 неделе таких клеточных элементов было уже меньше на 79,8% и в 2,7 раза, соответственно, чем в контроле и на 3 неделе (табл. 36).
Процент ретикулярных клеток сначала уменьшился, но стал возрастать, начиная с 4 недели после операции. Через 4 недели ретикулярных клеток было больше на 27,3%, 56,6% и 48%, соответственно, чем в контроле, на 1 и 2 неделях. Спустя 5 недель клеток стромы также было меньше на 37,1%, 68,6% и 59,3%, также соответственно, и также относительно состояния в контроле, на 1 и 2 неделях (табл. 36).
Численная плотность ретикулярных клеток на 4 неделе была достоверно больше на 56,3% и 83,2%, соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 2 неделе. На 5 неделе клеток стромы было также больше на 58,39% и на 85,6%, также соответственно, и также чем в контроле и через 2 недели после операции (табл. 36).
Относительное содержание моноцитов на 1, 4 и 5 неделях было выше исходного значения в 2, 2,3 и 2,5 раза, соответственно (табл. 36).
Абсолютное содержание этих клеток на 1, 3, 4 и 5 неделях было достоверно больше в 2,2, 2,2, 2,8 и 2,9 раза, также соответственно, по сравнению с контролем. Кроме того спустя 4 недели таких клеток было больше на 56,8%, относительно содержания через 2 недели (табл. 36).
Через 3 недели процент макрофагов был больше в 2 и 2,1 раза, соответственно, чем в контроле и на 1 неделе. На 4 неделе макрофагов было больше в 2,3, 2,4 раза и на 72,2%, соответственно, по сравнению с контролем, 1 и 2 неделями. Спустя 5 недель таких клеток также было больше в 2,3, 2,4 раза и на 75%, также соответственно, и также относительно состояния в контроле, на 1 и 2 неделях (табл. 36).
Число макрофагов на единицу площади среза на 4 и 5 неделях было больше в 2,7, 2,7 и 2,1 раза, соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 1 и 2 неделях (табл. 36).
На все сроки эксперимента в цитограмме мякотных тяжей лимфатических узлов присутствовали тканевые базофилы, которых не было у интактных животных. Кроме того, на 1 и 2 неделях были найдены фигуры митозов, чего не было отмечено на другие точки наблюдения (табл. 36).
Абсолютное число эритроцитов спустя 4 недели было выше в 11,4 раза, по сравнению с исходными данными (табл. 36).
Относительное содержание клеток с признаками деструктивных изменений резко возросло к 1 неделе, далее это показатель всегда был выше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель число таких клеточных элементов превосходило в 2,4, 2,5, 2,6, 2,8 и 2,9 раза, соответственно, контрольный уровень (табл. 36).
Численная плотность клеток с явлениями деструкции также была на 1, 2, 4 и 5 неделях больше в 2,6, 2,5, 3,5 и 3,4 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием у интактных крыс (табл. 36).
Различия в цитограмме мякотных тяжей между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях численности иммуно- и плазмобластов, ретикулярных клеток, моноцитов, макрофагов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 8, 36).
Относительное содержание иммуно- и плазмобластов на 5 неделе после операции с внедрением ПГА было ниже в 2,1 раза, чем при самостоятельной репарации (табл. 8, 36).
Процент ретикулярных клеток на 5 неделе при спонтанном заживлении был статистически достоверно ниже на 37,9%, чем на тот же срок на фоне использования ПГА (табл. 8, 36).
Абсолютное содержание клеток стромы на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА было больше на 54,1% и 53,9%, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 8, 36).
Относительное количество моноцитов через 4 и 5 недель при естественной регенерации было ниже в 2,2 и 2,1 раза, соответственно, по сравнению с результатами на фоне использования ПГА (табл. 8, 36).
Численная плотность моноцитов на 3, 4 и 5 неделях после операции с применением ПГА была выше на 85,8%, в 2,7 и 2,4 раза, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 8, 36).
Количество макрофагов на единицу площади среза только на 4 неделе после операции с применением ПГА было больше на 57,5%, по сравнению с самостоятельной репарацией (табл. 8, 36).
Процент клеток с признаками деструктивных изменений на 4 и 5 неделях при спонтанном заживлении был статистически достоверно ниже в 3 раза, чем на фоне использования ПГА (табл. 8, 36).
Абсолютное содержание клеток с явлениями деструкции на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА было больше в 3,6 и 3,4 раза, соответственно, относительно состояния при самостоятельной репарации (табл. 8, 36).
6.2.8 Изменения численности клеток в просвете мозговых синусов
Численная плотность всех клеток в просвете мозговых синусов субмандибулярных лимфатических узлов после применения ПГА для воздействия на репаративную регенерацию дефекта кости нижней челюсти сначала возросла, но к концу наблюдения резко снизилась. На 1 неделе величина значения этого показателя была больше в 3,8, 5,4 и 5,7 раза, соответственно, относительно состояния у интактных животных, через 4 и 5 недель. Спустя 2 недели всех клеток было больше в 2,8 и 4 раза, также соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 4 неделе (рис. 99) (табл. 37).
Относительное число лимфоцитов на 1, 2, 3, 4 и 5 неделях после использования ПГА статистически достоверно было на 77,6%, 75,9%, в 3,1, 7,3 и 11,5 раза, соответственно, меньше контроля. Кроме того на 4 неделе величина значения этого показателя была ниже в 4,1 раза, чем через 1 и 2 недели. Спустя 5 недель лимфоцитов было также меньше в 6,5 раза, и также по сравнению с состоянием на 1 и 2 неделях (рис. 99) (табл. 37).
Абсолютное содержание лимфоцитов только на 4 и 5 неделях было меньше в 7,8 и 11,9 раза, соответственно, относительно исходных данных. Кроме того на 1 неделе величина значения этого показателя была больше в 4,6, 16,6 и 25,2 раза, соответственно, чем спустя 3, 4 и 5 недель. К 2 неделе лимфоцитов было также больше в 3,4, 12,3 и 18,7 раза, также соответственно, и также по сравнению с состоянием через 3, 4 и 5 недель (рис. 99) (табл. 37).
Количество иммуно- и плазмобластов резко возросло к 1 неделе, затем постепенно снижалось и к окончанию эксперимента бласты полностью исчезли из мозговых синусов. Процент этих клеток через 1 неделю был больше в 6,6, 11 и 5,5 раза, соответственно, чем в контроле, на 3 и 4 неделях (табл. 37).
Численная плотность иммуно- и плазмобластов спустя 1 неделю была также выше в 19,5, 17,3 и 104 (!) раза, также соответственно, и также относительно интактных крыс и состояния спустя 3 и 4 недели (табл. 37).
Относительное число плазматических клеток к 5 неделе стало в 2,7 раза меньше, чем у интактных крыс (табл. 37).
Абсолютное количество плазмоцитов на 5 неделе было меньше в 6 и 19 раз, по сравнению с состоянием на 1 и 2 неделях после операции (табл. 37).
Процентное содержание клеток Мотта к концу наблюдения (на 4 и 5 неделях) было больше в 15,1 и 14,1 раза, соответственно, относительно интактного контроля (табл. 37).
Относительное количество ретикулярных клеток стало быстро возрастать, начиная с 4 недели после операции. Через 4 недели ретикулярных клеток было выше на 45,6%, 77% и 80,5%, соответственно, чем в контроле, на 1 и 2 неделях. Спустя 5 недель клеток стромы было больше на 52,4%, 85,3%, 89% и 39,5%, также соответственно, относительно состояния в контроле, на 1, 2 и 3 неделях (табл. 37).
Число ретикулярных клеток на единицу площади среза только на 1 неделе было достоверно больше в 3,2 раза, чем в контроле (табл. 37).
Процент моноцитов на все сроки эксперимента был выше контрольных значений. На 1, 2, 3, 4 и 5 неделях их число было выше исходного значения на 74,9%, 71,5%, 80,9%, 96,6% и в 2,1 раза, соответственно (табл. 37).
Абсолютное содержание моноцитов на 1 неделе было достоверно больше в 6,5 и 4,9 раза, соответственно, по сравнению с контролем и показателями на 4 неделе. Спустя 2 недели таких клеток было также больше в 4,6 и 3,5 раза, также соответственно, и также относительно содержания у интактных крыс и через 4 недели (табл. 37).
На все сроки эксперимента относительное число макрофагов было больше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель величина значения этого показателя была выше в 3,7, 4,1, 5,3, 5,3 и 5,7 раза, соответственно, чем в контроле. Кроме того, на 2 неделе макрофагов было меньше на 40,9%, 41,4% и 52,7%, соответственно, по сравнению с состоянием на 3, 4 и 5 неделях (табл. 37).
Число макрофагов на единицу площади среза на 1 и 2 неделях было больше в 14,3 и 11,7 раза, соответственно, по сравнению с контролем. К 4 неделе макрофагов было уже меньше в 3,9 раза, относительно состояния через 1 неделю после хирургического вмешательства (табл. 37).
Процент нейтрофилов на все точки наблюдения был больше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель величина значения этого показателя была выше в 3,3, 3,1, 3,1, 3,1 и 2,8 раза, соответственно, чем у интактных крыс (табл. 37).
Абсолютное количество нейтрофильных лейкоцитов на 1 неделе было больше в 12,5, 6,1 и 7,4 раза, соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 4 и 5 неделях. К 2 неделе таких лейкоцитов также было больше в 8,4, 4,1 и 5 раз, также соответственно, и также относительно состояния в контроле, через 4 и 5 недель после хирургического вмешательства (табл. 37).
Процент эритроцитов спустя 1 неделю был выше в 7 раз, по сравнению с исходными данными (табл. 37).
Абсолютное число клеток красной крови через 1 неделю было выше в 26,6 и 9,8 раза, соответственно, чем в контроле и на 4 неделе (табл. 37).
Относительное содержание клеток с признаками деструктивных изменений резко возросло к 1 неделе, далее это показатель всегда был выше исходного. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель число таких клеточных элементов превосходило в 2,2, 2,2, 2,3, 2,1 и 2,3 раза, соответственно, контрольный уровень (табл. 37).
Численная плотность клеток с явлениями деструкции на 1 неделе была больше в 8,7, 5,6 и 6,5 раза, соответственно, по сравнению с состоянием у интактных крыс и через 4 и 5 недель. На 2 неделе величина значения этого показателя была также больше в 6,6, 4,3 и 5 раз, также соответственно, и также относительно контроля и спустя 4 и 5 недель (табл. 37).
Различия в цитограмме клеток в просвете мозговых синусов между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования ПГА были найдены в изменениях численности лимфоцитов, плазмоцитов, ретикулярных клеток, моноцитов, макрофагов и нейтрофилов (табл. 9, 37).
Процент лимфоцитов на 3, 4 и 5 неделях при спонтанном заживлении был статистически достоверно выше в 2,7, 6,4 и 9,2 раза, соответственно, чем на аналогичные сроки на фоне использования ПГА (табл. 9, 37).
Абсолютное содержание лимфоцитов только на 4 и 5 неделях после операции с внедрением ПГА было меньше в 9,2 и 13,4 раза, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 9, 37).
Относительное содержание плазматических клеток на 3, 4, и 5 неделях после операции с применением полимера было ниже в 2,1, 2,1 и 4,1 раза, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 9, 37).
Численная плотность плазмоцитов только на 5 неделе после операции с внедрением ПГА была меньше в 13 раз, чем при самостоятельной репарации (табл. 9, 37).
Процент ретикулярных клеток на 4 и 5 неделях при спонтанном заживлении был статистически достоверно ниже на 36,7% и 20,4%, соответственно, по сравнению с теми же сроками на фоне использования ПГА (табл. 9, 37).
Относительное количество моноцитов через 4 и 5 недель при естественной регенерации было ниже на 81,7% и 74,5%, соответственно, по сравнению с результатами на фоне использования ПГА (табл. 9, 37).
Процент макрофагов на 3, 4 и 5 неделях после операции с применением ПГА был выше в 3,7, 4,3 и 5,8 раза, соответственно, чем при самостоятельной репарации (табл. 9, 37).
Относительное содержание нейтрофилов на 4 и 5 неделях после операции с применением ПГА было больше в 2,5 и 2,1 раза, соответственно, по сравнению с самостоятельной репарацией (табл. 9, 37).
РЕЗЮМЕ
После применения ПГА для заполнения дефекта кости нижней челюсти с целью ускорения восстановления структуры костной ткани к 5 неделе стал больше объем капсулы, к 4 и 5 неделям возрос объем соединительной ткани в корковом и мозговом веществе. Через 1 и 2 недели объемная плотность коркового плато превосходила исходный уровень, однако, на 4 и 5 неделях величина значения этого показателя уже была меньше интактного контроля. Относительная площадь паракортикальной зоны резко уменьшилась уже к 1 неделе, потом этот показатель постепенно увеличивался, но до 4 недели наблюдения был меньше исходного. Объемная плотность лимфоидных фолликулов без центров размножения была больше контрольной в течение 1-2 недель, на следующие точки наблюдения величина значения этого показателя не отличалась от исходного. Площадь центров размножения в узелках со светлыми центрами на 5 неделе после операции стала больше относительно интактных животных и через 2 недели после применения ПГА. Относительный объем мантийной зоны был больше контроля на 1 и 2 неделе, потом этот показатель постепенно снижался и на 4-5 неделях был даже ниже контрольного. Начиная с первой недели площадь мякотных тяжей постепенно расширялась и на 3-5 неделях была достоверно больше исходной. Процент мозговых синусов на срезе лимфатических узлов на 1 и 2 неделях был больше состояния на 3, 4 и 5 неделях.
В качестве отличий структурной организации данных органов следует отметить, что, величина объемной плотности коркового плато на 2, 3, 4 и 5 неделях после применения полимера была статистически достоверно меньше, чем при спонтанной регенерации.
Процент лимфоцитов во всех структурах лимфатических узлов на все сроки наблюдения после операции с применением ПГА был меньше, чем в контроле. Относительное содержание в корковом плато, лимфоидных узелках без центров размножения, мантийной зоне, центрах размножения и в мякотных тяжах иммуно- и плазмобластов резко возросло уже на 1 и 2 неделе, потом эти показатели находились на уровне контроля, в паракортексе и мякотных тяжах - меньше, а в мозговых синусах эти клетки исчезли из цитограммы к окончанию наблюдения. Количество ретикулярных клеток и макрофагов в корковом плато, паракортексе, узелках без герминативных центров, мантии и мякотных тяжах на 4 и 5 неделях были больше, чем в контроле. В центрах размножения и мозговых синусах процент и число макрофагов на единицу площади среза на все сроки эксперимента были выше, чем в контроле, а клеток стромы - начиная с 4 недели. Число фигур митозов в корковом плато, паракортексе, лимфоидных узелках без центров размножения, мантийной зоне и герминативных центрах было максимальным на 1 неделе. В мякотных тяжах на 1 и 2 неделях были найдены фигуры митозов, чего не было отмечено на другие точки наблюдения. Процент клеток с признаками деструктивных изменений во всех зонах данных органов резко возрос к 1 неделе и оставался на этом уровне в течение всего времени наблюдения. Процент и количество эритроцитов на 105 мкм2 площади среза паракортекса и мякотных тяжей к окончанию эксперимента возросли по сравнению с контролем. В цитограмме фолликулов без герминативных центров, мантийной зоне и центрах размножения лимфатических узлов интактных животных не было эритроцитов, но эти клетки присутствовали у всех крыс после имплантации ПГА. Следует отметить, что тканевые базофилы отсутствовали в корковом плато всех интактных крыс и на 1 и 2 неделях после операции, на 3 и 4 неделях такие клеточные элементы присутствовали у отдельных особей, а к 5 неделе тканевые базофилы были найдены уже у всех животных, в паракортикальной зоне содержание таких клеточных элементов к концу эксперимента статистически достоверно превосходило исходный уровень. Эти клетки, которых не было у интактных животных присутствовали в цитограмме мякотных тяжей лимфатических узлов на все сроки эксперимента. Кроме того, на все точки наблюдения в цитограмме фолликулов без герминативных центров лимфатических узлов присутствовали плазмоциты, чего не было в контроле.
При спонтанном заживлении нижней челюсти через 4-5 недель после операции во всех зонах лимфатических узлов были больше содержание лимфоцитов, а меньше - ретикулярных клеток, макрофагов, тканевых базофилов, эритроцитов и клеток с явлениями деструкции, относительно аналогичного срока после хирургического вмешательства с применением ПГА.
Таблица 29.
Плотность кости в дефекте нижней челюсти относительно окружающих неповрежденных тканей (M±m)
Срок после операции |
Репаративный процесс |
Разность плотности (ПГА - контроль) в дефекте |
||
Естественное течение |
После применения ПГА |
|||
1 |
2 |
3 |
4 |
|
1 неделя |
0,892±0,053* |
0,894±0,045* |
0,002±0,036 |
|
2 недели |
0,901±0,035* |
0,918±0,019* |
0,017±0,027 |
|
3 недели |
0,905±0,02* |
0,921±0,027* |
0,016±0,031 |
|
4 недели |
0,912±0,059 |
0,917±0,044 |
0,005±0,037 |
|
5 недель |
0,915±0,016*3 |
0,976±0,011*2 |
0,061±0,014 |
Примечание: * - величины, достоверно отличающиеся от интактной кости на контралатеральной стороне (р<0,05); 2, 3 - величины, достоверно различающиеся между собой в данных колонках (р<0,05).
Таблица 30.
Структура субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти с применением ПГА (M±m)
Структуры |
Интактные животные |
Срок после операции |
|||||
1 неделя |
2 недели |
3 недели |
4 недели |
5 недель |
|||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
Капсула (АА) |
2,67±0,7787 |
3,08±0,9 |
3,25±0,866 |
3,83±1,19 |
4,38±0,916 |
5±0,6322 |
|
Соединительная ткань в корковом веществе (АА) |
0,75±0,7546, 7 |
1±0,8537 |
0,917±0,7937 |
2,25±0,965 |
2,88±0,6412 |
3,5±0,8372, 3, 4 |
|
Соединительная ткань в мозговом веществе (АА) |
0,917±0,6696, 7 |
1±0,853 |
1,25±0,965 |
2,42±0,793 |
3,38±0,9162 |
3,67±1,032 |
|
Краевой синус (АА) |
0,417±0,515 |
0,75±0,866 |
0,833±0,937 |
0,5±0,674 |
0,375±0,518 |
0,333±0,516 |
|
Корковое плато (АА) |
13,6±0,9963, 4, 5, 6, 7 |
20,3±1,662, 5, 6, 7 |
19,5±1,93*2, 5, 6, 7 |
13,7±1,83*3, 4 |
10,8±0,886*3, 4 |
10,3±1,03*2, 3, 4 |
|
Паракортикальная зона (АА) |
46±1,913, 4, 5 |
29,3±2,232, 6, 7 |
28,4±3,72, 6, 7 |
36,5±2,842 |
41,6±2,333, 4 |
40,5±2,883, 4 |
|
Узелки без центра размножения (АА) |
4,83±0,7183, 4 |
7,33±0,8882, 6, 7 |
7,25±0,8662, 6, 7 |
5,17±1,19 |
2,25±1,913, 4 |
1,67±1,863, 4 |
|
Узелки с центром размножения (АА) |
6,17±0,937 |
7,58±1,08 |
8,08±1,31 |
6,67±0,651 |
5,38±0,916 |
5,67±0,816 |
|
Центры размножения (АА) |
2,5±0,6747 |
1,67±0,778 |
2±0,8537 |
3,08±0,669 |
3,63±0,518 |
4,17±0,4082, 4 |
|
Мантийная зона (АА) |
3,67±0,6513, 4, 6, 7 |
5,92±0,7932, 5, 6, 7 |
6,08±0,7932, 5, 6, 7 |
3,58±0,5153, 4, 6, 7 |
1,75±0,4632, 3, 4, 5 |
1,5±0,5482, 3, 4,5 |
|
Мякотные тяжи (АА) |
15,1±0,7935, 6, 7 |
16,3±1,377 |
17,1±1,387 |
19,2±1,032 |
20,1±1,462 |
20,7±1,032, 3, 4 |
|
Мозговые синусы (АА) |
9,58±0,669 |
13,3±0,9855, 6, 7 |
13,4±1,085, 6, 7 |
9,83±0,8353, 4 |
8,88±0,6413, 4 |
8,67±0,8163, 4 |
Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины при использовании ПГА, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); АА - относительная площадь структур на поперечном срезе (%).
Таблица 31.
Цитоархитектоника коркового плато субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти с применением ПГА (M±m)
Клетки |
Интактные животные |
Срок после операции |
|||||
1 неделя |
2 недели |
3 недели |
4 недели |
5 недель |
|||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
Численная плотность (NA) |
925±114 |
733±107 |
725±122 |
892±79,3 |
1010±113 |
1000±126 |
|
Лимфоциты (%) (NA) |
79,5±1,783, 4, 5, 6, 7 736±98,5 |
69,8±2,442 512±74 |
69,8±2,082 507±86,9 |
69,9±2,782 622±47,4 |
68,8±3,062 695±70,5 |
65,8±3,31*2 659±95,4 |
|
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA) |
1,42±0,5153, 4 13,3±5,796, 7 |
3,33±0,6512, 5, 6, 7 24,5±6,33 |
3,25±0,6222, 5, 6, 7 23,4±5,58 |
1,58±0,5153, 4 14,3±5,37 |
0,5±0,5353, 4 5,38±5,762 |
0,5±0,5483, 4 5,17±5,712 |
|
Плазмоциты (%) (NA) |
- - |
- - |
- - |
- - |
0,375±0,744 4±8,07 |
0,5±0,837 5,33±9,09 |
|
Клетки Мотта (%) (NA) |
- - |
- - |
- - |
- - |
- - |
- - |
|
Ретикулярные (%) (NA) |
9,75±0,8666, 7 89,8±10,73 |
8±0,8535, 6, 7 58,5±9,652, 5, 6, 7 |
8,17±0,8355, 6, 7 59,7±145, 6, 7 |
11,2±1,033, 4 99,4±11,33, 4 |
12,6±1,062, 3, 4 128±16,73, 4 |
13,5±0,8372, 3, 4 136±23,63, 4 |
|
Моноциты (%) (NA) |
1,83±0,7187 16,8±6,216, 7 |
3,08±0,9 22,7±7,74 |
3,42±0,793 24,8±7,32 |
3,25±0,622 29±6,28 |
3,75±0,707 38±8,192 |
4,17±0,753*2 41,2±6,15*2 |
|
Макрофаги (%) (NA) |
3,08±0,7935, 6, 7 28,4±7,496, 7 |
4,5±0,798 33,3±9,24 |
4,58±0,9 32,8±6,567 |
5,42±0,7932 48,3±8,42 |
5,5±0,7562 56±10,82 |
5,5±0,5482 55±8,632, 4 |
|
Нейтрофилы (%) (NA) |
0,583±0,515 5,42±4,89 |
1,5±0,674 10,8±4,25 |
1,5±0,798 10,7±5,33 |
0,917±,289 8,17±2,69 |
1,13±0,354 11,5±4,38 |
1,33±0,816 13,7±9,54 |
|
Эозинофилы (%) (NA) |
1,33±0,492 12,4±5,12 |
1,58±0,669 11,7±5,47 |
1,42±0,515 10,3±4,22 |
0,833±0,835 7,5±7,57 |
0,875±0,991 8,63±9,75 |
1,5±1,38 14,8±14,5 |
|
Тканевые (%) Базофилы (NA) |
-7 -7 |
-7 -7 |
-7 -7 |
0,75±0,965 7,17±9,4 |
0,875±0,835 9±9,13 |
1,33±0,5162, 3, 4 12,8±3,31*2, 3, 4 |
|
Эритроциты (%) (NA) |
Подобные документы
Огнестрельные переломы длинных костей конечностей: статистические данные, классификация. Регенерация огнестрельных переломов. Структурная организация и регенерация костной ткани. Методика проведения эксперимента на биообъектах и результаты исследований.
диссертация [12,7 M], добавлен 29.03.2012Особенности репаративной регенерации костной ткани после изолированного перелома кости и при комбинированных радиационно-механических поражениях. Способы оптимизации остеорепарации. Репаративная регенерация костной ткани. Методы лечения переломов.
курсовая работа [1,1 M], добавлен 11.04.2012Возрастные особенности скелета туловища: формирование черепа новорождённого, позвонков, рёбер и грудины, скелета верхних и нижних конечностей. Особенности роста и физического развития ребёнка. Инволютивные процессы в костной ткани вследствие старения.
контрольная работа [142,0 K], добавлен 14.09.2015Характеристика костной ткани - специализированного типа соединительной ткани с высокой минерализацией межклеточного органического вещества, содержащего около 70% неорганических соединений, главным образом, фосфатов кальция. Развитие костей после рождения.
презентация [746,7 K], добавлен 12.05.2015Отличительные особенности костной ткани, химический состав. Защитная, метаболическая и регуляторная функции. Физиологические изгибы позвоночника. Процесс минерализации и деминерализации кости и их регуляция. Возрастные особенности скелета человека.
презентация [1,6 M], добавлен 27.01.2016Понятие и особенности формирования костной ткани, построение ее клеток. Перестройка кости и факторы, влияющие на ее структуру. Формирование костной мозоли и ее состав. Сроки заживления переломов ребер, основные критерии, определяющие скорость срастания.
контрольная работа [2,1 M], добавлен 25.01.2015Строение хрящевой ткани человека, ее изменение в процессе старения. Образование мышечной ткани ребенка в период его развития, инволютивные изменения мышечных волокон у пожилых людей. Структура костной ткани в детском возрасте и ее изменения с возрастом.
презентация [337,3 K], добавлен 27.01.2015Виды повреждений костей лицевого скелета. Переломы нижней и верхней челюсти. Помощь при переломах челюстей и методы временной иммобилизации. Ортопедические методы фиксации отломков нижней челюсти. Переломы скуловой кости и скуловой дуги, костей носа.
реферат [29,2 K], добавлен 28.02.2009Роль генетических и индивидуальных факторов риска на развитие остеопороза. Причины системного заболевания скелета, характеризующегося уменьшением костной массы и нарушением микроархитектоники костной ткани, ведущими к повышению хрупкости и перелому кости.
презентация [2,8 M], добавлен 22.12.2015Регенерация как восстановление структурных элементов ткани взамен погибших в результате их физиологической гибели. Основные виды регенерации: физиологическая, репаративная и патологическая. Особенности восстановления эпидермиса и костной ткани человека.
презентация [2,5 M], добавлен 02.03.2015