Морфологические изменения кости нижней челюсти в условиях местного воздействия на ее регенерацию при моделировании экспериментального дефекта

Численная плотность иммуно- и плазмобластов была выше исходной на 81,7% только на 1 неделе (табл. 8).

Процент моноцитов был больше в 2,2 раза, чем в контроле, только по истечении 1 недели после начала эксперимента (табл. 8).

Относительное количество макрофагов медленно возрастало и на 3 неделе было больше на 75% и 79,8%, соответственно, чем в контроле и на 1 неделе. Через 4 недели этих клеток стало больше на 74% и 78,8%, соответственно, относительно контроля и состояния на 1 неделе. Спустя 5 недель величина значения этого показателя оставалась выше на 71% и 75,7%, также соответственно, и также по сравнению с исходным уровнем и показателем на 1 неделе (табл. 8).

Абсолютное число этих клеток также было выше контрольного уровня на 73,1%, 74% и 75%, соответственно, на 3, 4 и 5 неделе (табл. 8).

Митотическая активность отсутствовала в мякотных тяжах лимфатических узлов интактных животных, фигуры митозов появились практически во всех наблюдениях на 1 неделе. Через 2 недели после начала эксперимента делящиеся клетки присутствовали только в некоторых случаях, а в более поздние сроки снова найдены не были (табл. 8).

Относительное содержание клеток с признаками деструктивных изменений резко увеличилось к 1 неделе, далее это показатель постепенно уменьшался и на 3 неделе и позже достоверно не отличался от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 2,7, 2,4, 2,9 и 2,8 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. На 2 неделе нежизнеспособных клеток было больше в 2,6, 2,4, 2,8 и 2,7 раза, также соответственно, и также относительно контроля и состояния на 3, 4 и 5 неделе (табл. 8).

Аналогично менялось абсолютное число клеток с деструктивными изменениями. Спустя 1 неделю величина значения этого показателя была выше в 3, 2,6, 3,1 и 3 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. На 2 неделе клеточных форм с признаками деструкции было больше в 2,9, 3 и 2,8 раза, соответственно, относительно контроля и состояния на 4 и 5 неделе (табл. 8).

3.2.8 Цитограмма клеток в просвете мозговых синусов

Численная плотность всех клеток в просвете мозговых синусов лимфатических узлов через 1 и 2 недели после начала эксперимента была больше в 3,2 и 2,5 раза, соответственно, по сравнению с контролем. Кроме того, спустя 1 неделю величина значения этого показателя была больше в 2,5, 2,3 и 2,2 раза, соответственно, относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях (рис. 30-33) (табл. 9).

Процент лимфоцитов через 1, 2 и 5 недель после начала эксперимента был ниже на 89,8%, 39,7% и 24,7%, соответственно, по сравнению с контролем. Кроме того, спустя 1 неделю величина значения этого показателя была меньше на 68,3%, 65,9% и 52,2%, соответственно, относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях (рис. 30-33) (табл. 9).

Относительное содержание иммуно- и плазмобластов возросло к 1 неделе, но далее достоверно не отличалось от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 5,8, 7,3 и 6,5 раза, соответственно, чем в контроле и спустя 4 и 5 недель (табл. 9).

Точно также, но еще более выражено, менялась численная плотность иммуно- и плазмобластов. Этих клеток через 1 неделю было больше в 14,6, 17,5 и 15,6 раза, соответственно, по сравнению с состоянием в контроле и спустя 4 и 5 недель (табл. 9).

Процент плазматических клеток к 4 неделе стал статистически достоверно больше на 61% и 57,8%, соответственно, относительно контроля и аналогичного показателя на 1 неделе. Этот показатель на 5 неделе был больше на 53,3%, но только относительно контроля (табл. 9).

Абсолютное содержание плазмоцитов к 2 неделе было выше в 3 раза, по сравнению с исходными значениями (табл. 9).

Относительное число ретикулярных клеток постепенно возрастало и на 5 неделе стало больше на 26,6%, 48,8%, 51% и 34,2%, соответственно, относительно состояния в контроле и спустя 1, 2 и 3 недели (табл. 9).

Численная плотность клеточных элементов стромы к 2 неделе была выше в 2,7 раза, по сравнению с исходным значением (табл. 9).

Процент моноцитов был больше на 90,3%, чем в контроле, только по истечении 1 недели после начала эксперимента (табл. 9).

Численность этих лейкоцитов на единицу площади среза была выше исходной на 1 и 2 неделе, но на остальные сроки не отличалась от контроля. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 5,8, 4, 4,3 и 3,5 раза относительно контроля и состояния на 3, 4 и 5 неделях после начала эксперимента. Спустя 2 недели моноцитов было больше в 3,7, 2,5, 2,7 и 2,2 раза, также соответственно, и также по сравнению с контролем и состоянием спустя 3, 4 и 5 недель (табл. 9).

Через 1 неделю относительное количество макрофагов было больше в 3,9, 2,7, 3,2 и 3,9 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. Спустя 2 недели этих клеток стало больше в 2,9, 2, 2,4 и 3 раза, также соответственно, относительно контроля и состояния на 3, 4 и 5 неделе (рис. 30-33) (табл. 9).

Величина значения абсолютной численности макрофагов через 1 неделю была выше в 12,2, 6,6, 7,5 и 9 раз, относительно контроля и на 3, 4 и 5 неделях после начала эксперимента. На 2 неделе макрофагов было больше в 7,2, 3,8, 4,4 и 5,3 раза, также соответственно, и также по сравнению с контролем и состоянием спустя 3, 4 и 5 недель (рис. 30-33) (табл. 9).

К 1 неделе процент нейтрофилов был больше в 3,9, 2,6, 3,2 и 3 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. Через 2 недели таких лейкоцитов стало больше в 3, 2,4 и 2,3 раза, также соответственно, относительно контроля и состояния на 4 и 5 неделе (табл. 9).

Численная плотность нейтрофильных лейкоцитов через 1 неделю была выше в 12,2, 6,1, 7,2 и 6,7 раза относительно контроля и на 3, 4 и 5 неделях после начала эксперимента. Спустя 2 недели данных клеточных форм было больше в 7,3, 3,7, 4,3 и 4 раза, также соответственно, и также по сравнению с контролем и состоянием спустя 3, 4 и 5 недель (табл. 9).

Относительное число эритроцитов через 1 неделю после начала эксперимента было выше в 8, 5,3 и 4,3 раза, соответственно, чем в контроле и на 3 и 4 неделе (табл. 9).

Абсолютное количество эритроцитов через 1 неделю было больше в 2,5, 13,9, 10,4 и 10,4 раза относительно контроля и состояния на 3, 4 и 5 неделях (табл. 9).

Процент клеток с признаками деструктивных изменений резко увеличился к 1 неделе, оставался повышенным на 2 неделе, далее это показатель постепенно уменьшался и на 3 неделе и позже достоверно не отличался от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 2,4 раза, на 83,2%, в 2,3 раза и на 92,4%, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. На 2 неделе нежизнеспособных клеток было больше в 2,1 и 2 раза, также соответственно, относительно контроля и состояния на 4 неделе (табл. 9).

Аналогично менялось абсолютное число клеток с деструктивными изменениями. Спустя 1 неделю величина значения этого показателя была выше в 8, 4,5, 5,4 и 4,2 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. На 2 неделе клеточных форм с признаками деструкции было больше в 5,6 и 3,8 раза, также соответственно, и также относительно контроля и состояния на 4 неделе (табл. 9).

РЕЗЮМЕ

При спонтанной регенерации искусственно созданного дефекта нижней челюсти в регионарных лимфатических узлах корковое плато на первой неделе было шире, чем в контроле, этот показатель постепенно снижался до окончания времени наблюдения, но всегда был выше исходного. Относительная площадь паракортикальной зоны резко уменьшилась к 1 неделе, потом данный показатель медленно увеличивался, но все равно в течение всего времени наблюдения оставался ниже контрольного. Объемная плотность лимфоидных фолликулов без центров размножения была больше контрольной на 1 и 2 неделе, на следующие точки наблюдения величина значения этого показателя не отличалась от исходной. В фолликулах с центрами размножения площадь самих центров через 1 неделю была ниже, по сравнению с данными на 5 неделе. Относительная площадь мантийной зоны в таких фолликулах была больше контроля на 1 и 2 неделе, потом этот показатель постепенно снижался и уже не отличался от исходного. Объемная плотность мякотных тяжей постепенно возрастала и на 4 и 5 неделе была больше контрольной и по сравнению с состоянием спустя 1 неделю после начала эксперимента. Процент мозговых синусов на срезе лимфатических узлов резко возрос на 1 неделе, но далее достоверно не отличался от исходного.

Создание экспериментального дефекта в кости нижней челюсти ведет к уменьшению процента лимфоцитов во всех зонах регионарных лимфатических узлов на первой и второй неделе. Относительное содержание иммуно- и плазмобластов в корковом плато, фолликулах без светлых центров, мантийной зоне, мякотных тяжах и мозговых синусах резко возросло уже на 1 и 2 неделе. В герминативных центрах показатели количества иммуно- и плазмобластов оставались на высоком уровне до 4 недели. Относительное количество макрофагов медленно увеличивалось в течение всего времени наблюдения и в корковом плато к 5 неделе стало больше исходного. В паракортексе и центрах размножения число макрофагов медленно возрастало в течение всего времени наблюдения и на 2, 3, 4 и 5 неделе было больше исходного. Содержание макрофагов в фолликулах без герминативных центров, мантийной зоне и мозговых синусах увеличилось к 1 неделе. Относительная численность митозов в корковом плато, фолликулах без герминативных центров, мантийной зоне и мозговых синусах была выше контроля на 1 и 2 неделе. В центрах размножения относительное содержание и численная плотность митозов возрастали в течение 4 недель. Митотическая активность отсутствовала в мякотных тяжах лимфатических узлов интактных животных, фигуры митозов появились практически во всех наблюдениях на 1 неделе после операции. Относительное и абсолютное число клеточных элементов с признаками деструктивных изменений в корковом плато, паракортикальной зоне, узелках без центров размножения, мантийной зоне и мякотных тяжах возрастали до 2 недели. В герминативных центрах относительное содержание и численная плотность клеток с признаками деструктивных изменений были больше исходных в течение 4 недель. Следует отметить присутствие эритроцитов в фолликулах без герминативных центров и мантийной зоне через 1 и 2 недели после начала эксперимента, а в герминативных центрах - до 4 недель. В просвете мозговых синусов относительное число эритроцитов и их численная плотность через 1 неделю после начала эксперимента были выше, чем в контроле и на 3 и 4 неделе.

Таблица 2.

Структура субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Структуры	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Капсула (АА)	2,67±0,778	2,92±0,793	3±0,853	3,17±1,03	4,11±0,782	4,13±0,835
Соединительная ткань в корковом веществе (АА)	0,75±0,754	0,5±0,674	0,833±0,835	1,42±1,08	1,78±0,833	1,88±0,641
Соединительная ткань в мозговом веществе (АА)	0,917±0,669	0,833±0,835	1,08±0,996	1,67±0,888	2,11±0,928	2,13±0,835
Краевой синус (АА)	0,417±0,515	0,583±0,669	0,667±0,888	0,583±0,793	0,222±0,441	0,25±0,463
Корковое плато (АА)	13,6±0,9963, 4, 5, 6, 7	24,8±1,712, 5, 6, 7	24,8±1,342, 5, 6, 7	18,4±1,382, 3, 4	17±1,222, 3, 4	17,6±1,192, 3, 4
Паракортикальная зона (АА)	46±1,913, 4, 5, 6, 7	27,6±3,262	26,9±2,542, 5, 6	34,7±2,572, 4	35,7±2,552, 4	35,6±3,622
Узелки без центра размножения (АА)	4,83±0,7183, 4	7,33±0,6512, 6, 7	6,92±0,6692	6,58±0,9	5,11±0,7823	4,88±0,8353
Узелки с центром размножения (АА)	6,17±0,937	7,67±0,985	7,58±0,9	7±1,13	5,56±0,726	5,5±0,926
Центры Размножения (АА)	2,5±0,674	1,42±0,5157	1,58±0,515	2,42±0,515	3±0,866	3,13±0,6413
Мантийная зона (АА)	3,67±0,6513, 4	6,25±0,6222, 6, 7	6±0,8532, 6, 7	4,58±0,7936, 7	2,56±0,5273, 4, 5	2,38±0,5183, 4, 5
Мякотные тяжи (АА)	15,1±0,7936, 7	15,8±0,8356, 7	16,5±1,17	17±0,853	18,9±0,9282, 3	18,9±1,132, 3
Мозговые синусы (АА)	9,58±0,6693	12±0,6032, 5, 6, 7	11,7±0,888	9,5±1,093	9,56±1,013	9,13±0,9913

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); АА - относительная площадь структур на поперечном срезе (%).

Таблица 3.

Цитоархитектоника коркового плато субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	925±114	792±79,3	800±73,9	858±66,9	911±127	913±125
Лимфоциты (%) (NA)	79,5±1,783, 4 736±98,5	70,8±2,412 561±61,7	70,5±2,322 564±54	76,6±3,09 656±43,1	74,9±1,83 682±97,6	74,8±1,83 683±102
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	1,42±0,5153, 4 13,3±5,79	3,25±0,7542 25,5±5,62	3,42±0,7932, 7 27,6±7,66	2±0,739 17,3±6,96	1,89±0,601 17,1±5,64	1,5±0,5354 13,4±4,07
Плазмоциты (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Клетки Мотта (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Ретикулярные (%) (NA)	9,75±0,866 89,8±10,7	8,67±0,7786, 7 68,5±8,277	8,75±0,8667 69,9±8,517	9,17±1,27 79,1±15	11±0,8663 100±17,6	11,3±0,8863, 4 102±11,43, 4
Моноциты (%) (NA)	1,83±0,718 16,8±6,21	2,92±0,793 23±6,12	2,83±0,718 22,7±6,18	2±0,739 17,2±6,31	1,78±0,833 16,4±8,69	1,88±0,835 16,8±6,6
Макрофаги (%) (NA)	3,08±0,7937 28,4±7,49	4,42±1,08 35,1±9,72	4,58±0,996 36,5±8,38	4,67±0,888 40±7,95	5,11±0,782 46,8±10,3	5,25±0,7072 48,1±10,3
Нейтрофилы (%) (NA)	0,583±0,515 5,42±4,89	1,42±0,515 11,4±4,83	1,17±0,718 9,42±5,81	0,667±0,651 5,92±5,84	0,444±0,527 4,22±5,07	0,625±0,518 5,63±4,75
Эозинофилы (%) (NA)	1,33±0,492 12,4±5,12	1±0,853 7,67±6,5	1,08±0,793 8,58±6,63	0,917±0,793 8,08±7,18	1,56±0,726 14,2±6,94	1,75±0,886 15,8±7,63
Тканевые (%) базофилы (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Эритроциты (%) (NA)	0,583±0,669 4,92±5,53	1,58±0,515 12,8±4,86	1,42±0,515 11,3±4,25	0,917±0,9 8±7,71	1±1 9,11±9,17	0,75±0,886 7±8,82
Митозы (%) (NA)	1,25±0,4523, 4 11,7±4,83	3,17±0,7182 25±5,97	3±0,7392 24,2±7,26	1,75±0,754 15±6,48	1,56±0,726 13,8±5,49	1,63±0,744 15,3±7,87
С признаками (%) деструкции (NA)	0,667±0,6513, 4 6,08±5,964	2,75±0,7542, 7 21,7±6,12	3,25±0,6222, 5, 6, 7 26±5,312, 6, 7	1,33±0,6514 11,5±5,92	0,778±0,8334 6,67±7,144	0,625±0,7443, 4 5,63±6,764

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 4.

Цитоархитектоника паракортикальной зоны субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	800±73,9	733±77,8	683±83,5	783±83,5	833±70,7	813±641
Лимфоциты (%) (NA)	72,9±3,063, 4 583±58,5	64±2,592 470±56,3	62,6±3,372 428±54,4	66,4±3,26 520±53,7	67,9±3,72 566±58,7	69,5±2,73 565±57,8
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	2,67±0,651 21,5±6,16	4,17±0,718 31±7,98	3,83±0,718 25,8±3,64	3,75±0,866 29,6±8,05	2,78±0,667 23,2±6,42	2,88±0,835 23,3±6,61
Плазмоциты (%) (NA)	0,333±0,492 2,67±3,96	0,833±0,835 5,92±5,7	1,08±0,9 7,5±6,61	0,5±0,674 4,17±5,83	0,444±0,527 3,44±4,1	0,25±0,463 2,13±3,94
Клетки Мотта (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Ретикулярные (%) (NA)	12,8±0,965 102±5,81	11,1±0,793 81,2±9,546, 7	12,1±1,24 82,8±14,7	12,8±1,06 100±16,3	13,8±1,39 115±133	13±1,07 105±4,643
Моноциты (%) (NA)	1,5±0,522 12,1±4,64	2,92±0,793 21,5±6,71	3,17±0,718 21,8±6	2,42±0,669 18,8±5,5	1,56±0,726 13,1±6,74	1,63±0,518 13,4±4,81
Макрофаги (%) (NA)	1,83±0,7184, 5, 6, 7 14,4±4,984, 5, 6, 7	3,92±0,793 29±7,62	4,67±0,8882 31,5±4,932	4,75±0,9652 37,3±8,592	4,56±1,012 38,1±9,892	4,88±0,8352 39,8±8,462
Нейтрофилы (%) (NA)	0,833±0,718 6,92±5,82	1,75±0,866 12,7±6,11	1,58±1,16 10,6±7,82	1,08±0,793 8,25±5,99	0,889±0,782 7,22±6,3	0,75±0,886 6±7,11
Эозинофилы (%) (NA)	2,83±0,835 22,8±7,61	1,5±0,522 11,1±4,27	1,42±0,515 9,75±3,91	2,08±0,669 16,3±5,4	2,67±0,866 22,1±7,25	2,63±0,744 21,4±6,35
Тканевые (%) базофилы (NA)	1±0,739 8,17±6,21	0,25±0,452 1,67±3,066	0,417±0,515 3±3,74	1,17±0,389 9,25±3,72	1,33±0,5 10,9±3,413	0,625±0,744 4,88±5,54
Эритроциты (%) (NA)	0,583±0,793 4,67±6,4	2±0,853 14,3±5,21	1,833±0,835 12,9±6,82	0,75±0,754 6±6,32	0,667±0,707 5,78±6,26	0,875±0,835 6,88±6,66
Митозы (%) (NA)	1,42±0,5153, 4 11,3±4	3,67±0,9852 26,8±7,63	4±1,132, 7 27,7±9,23	2,08±0,669 16,2±4,91	2±0,707 16,9±6,47	1,5±0,5354 12,3±4,62
С признаками (%) деструкции (NA)	1,33±0,4923, 4 10,7±4,083	3,92±0,7932, 6, 7 28,8±6,812, 7	3,33±0,7782, 6 22,6±5,23	2,25±0,754 17,8±6,51	1,44±0,5273, 4 12,1±4,81	1,5±0,5353 12,1±4,293

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 5.

Цитоархитектоника лимфоидных фолликулов без центра размножения субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	1150±109	1183±83,5	1192±79,3	1200±85,3	1189±127	1163±106
Лимфоциты (%) (NA)	86,3±1,33, 4 993±91,4	76,8±2,052, 5, 6, 7 908±70	78,2±2,042, 5, 6, 7 932±70,2	84,3±1,223, 4 1011±79,6	84,6±1,513, 4 1005±107	84,6±1,33, 4 984±88,8
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	1,25±0,4523 14,4±5,63, 4	3,33±0,7782, 5, 6, 7 39,4±9,642	2,92±0,793 34,3±7,772	1,42±0,5153 16,9±6,02	1,33±0,53 16,2±7,4	1,38±0,5183 16,4±7,46
Плазмоциты (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Клетки Мотта (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Ретикулярные (%) (NA)	7,17±0,577 82,8±12,8	6±0,739 71±10,1	6,67±0,985 79,5±13,2	6,5±0,674 77,8±7,99	7,22±0,667 85,7±10,7	7,13±0,641 82,5±7,01
Моноциты (%) (NA)	1,42±0,515 16,3±6	2,75±0,754 32,5±8,69	2,67±0,778 31,7±9,13	2,25±0,754 27,3±9,95	1,33±0,5 15,7±5,48	1,63±0,518 19±6,65
Макрофаги (%) (NA)	1,42±0,5153 16,3±6,233, 5	3,42±0,7932 40,3±9,152	2,92±0,793 35±10,9	3,17±0,835 37,7±8,662	3,11±0,928 37±11,5	2,88±0,641 33,4±8
Нейтрофилы (%) (NA)	- -	0,25±0,622 2,92±7,08	0,5±0,905 5,83±10,6	- -	- -	- -
Эозинофилы (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Тканевые (%) базофилы (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Эритроциты (%) (NA)	-3 -3	1,17±0,3892, 5, 6, 7 13,8±4,412, 5, 6, 7	0,583±0,669 7±8,05	-3 -3	-3 -3	-3 -3
Митозы (%) (NA)	1,58±0,5153, 4 18,3±6,314	3,67±0,7782, 6, 7 43,7±11,4	3,58±0,6692, 5, 6, 7 42,9±9,792, 6, 7	1,67±0,6514 20±8,25	1,56±0,5273, 4 18,4±6,564	1,5±0,5353, 4 17,5±6,724
С признаками (%) деструкции (NA)	0,833±0,5773 9,5±7,173	2,67±0,6512, 5, 6 31,5±8,112, 5	2±0,739 23,7±8,26	0,75±0,6223 8,92±7,453	0,889±0,6013 10,8±7,73	0,875±0,835 10,1±10

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 6.

Цитоархитектоника мантийной зоны лимфоидных фолликулов субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	1183±119	1208±79,4	1225±75,4	1242±90	1233±112	1188±113
Лимфоциты (%) (NA)	85,2±1,643, 4 1008±106	72,5±2,842, 5, 6, 7 876±67,5	71,8±2,632, 5, 6, 7 879±64,6	81,3±2,023, 4 1010±82,3	83,3±1,663, 4 1028±98,6	83,8±2,123, 4 995±97,6
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	1,5±0,5223, 4 17,8±6,483, 4	4,17±0,7182, 5, 6, 7 50,3±8,962, 6, 7	4,25±0,7542, 5, 6, 7 52,2±10,32, 6, 7	2,08±0,6693, 4 25,9±8,53	1,78±0,4413, 4 21,9±5,753, 4	1,75±0,4633, 4 20,8±5,853, 4
Плазмоциты (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Клетки Мотта (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Ретикулярные (%) (NA)	8,08±0,669 95,4±10,6	7±0,739 84,3±7	7,67±0,888 93,9±12,3	8±0,603 99,6±12,6	8,22±0,667 101±8,23	7,88±0,835 93,5±12,8
Моноциты (%) (NA)	1,33±0,4923, 4 15,8±5,913, 4	3,08±0,6692 37,1±7,552	3,42±0,7932, 7 41,9±10,22	2,25±0,965 28±12,6	1,56±0,527 19±6,26	1,5±0,5354 17,9±6,83
Макрофаги (%) (NA)	1,83±0,7183, 4, 5 21,8±8,694, 5	4,08±0,7932 49,6±11,3	4±0,7392 48,8±8,672	3,92±0,6692 48,3±7,052	3,22±0,667 39,9±9,97	3,13±0,641 37,1±8,89
Нейтрофилы (%) (NA)	- -	0,417±0,669 4,92±7,69	0,583±0,9 7,25±11,2	- -	- -	- -
Эозинофилы (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Тканевые (%) базофилы (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Эритроциты (%) (NA)	-3 -3	1,58±0,5152, 5, 6, 7 19±5,982, 5, 6, 7	1,17±0,718 14,3±8,87	-3 -3	-3 -3	-3 -3
Митозы (%) (NA)	1,5±0,5223, 4 17,8±6,443, 4	3,92±0,7932, 6, 7 47,4±10,42, 6, 7	3,83±0,7182, 6, 7 47±9,532, 6, 7	1,92±0,669 23,6±7,93	1,33±0,53, 4 16,7±7,073, 4	1,25±0,4633, 4 14,8±5,393, 4
С признаками (%) деструкции (NA)	0,583±0,6693, 4 6,83±8,263, 4	3,25±1,062, 5, 6 39,7±13,72, 5	3,33±1,152, 5, 6 40,6±13,82, 5, 6	0,5±0,6743, 4 6±8,113, 4	0,556±0,7263, 4 6,78±9,194	0,75±1,04 9±12,5

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 7.

Цитоархитектоника центров размножения лимфоидных фолликулов субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	658±90	825±75,4	767±6,51	708±99,6	644±72,6	688±83,5
Лимфоциты (%) (NA)	56,5±2,353, 4, 5 373±58,1	39,8±3,162, 6, 7 330±47,3	35,8±3,62, 6, 7 275±40	41,3±3,572, 7 292±45	49,1±2,933, 4 318±50,1	52,5±2,273, 4, 5 362±54,4
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	20,6±3,263, 4, 5 135±273, 4	31,1±2,232, 7 256±23,92, 6, 7	34,3±2,342, 6, 7 262±27,32, 6, 7	31,3±2,672, 7 222±41,5	26,1±2,324 168±17,63, 4	22,6±1,63, 4, 5 156±22,83, 4
Плазмоциты (%) (NA)	- -	0,5±0,674 4,33±5,94	0,333±0,651 2,67±5,21	0,417±0,669 3,17±5,2	0,222±0,667 1,33±4	- -
Клетки Мотта (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Ретикулярные (%) (NA)	14,6±1,563, 4, 5 95,5±13,5	8,83±0,8352, 6, 7 72,8±9,19	8,67±0,6512, 6, 7 66,4±7,22	10,3±1,362 72,7±14,5	11,4±0,5273, 4 73,7±7,97	13,4±1,063, 4 91,8±11,5
Моноциты (%) (NA)	0,667±0,778 4,5±5,18	1,58±0,669 13,2±6,04	1,33±0,492 10,3±4,03	1,08±1,31 7,92±9,76	0,889±0,928 5,44±5,59	0,875±0,835 5,88±5,82
Макрофаги (%) (NA)	3,67±0,7783, 4, 5, 6, 7 24,3±7,333, 4, 5	7,17±0,8352 58,8±6,242, 6, 7	8,5±1,092 65,3±10,52, 6	7,83±1,112 55±7,522	6±0,7072 38,9±7,743, 4	6±0,7562 41,1±6,133
Нейтрофилы (%) (NA)	- -	0,25±0,622 1,92±4,87	0,333±0,778 2,5±5,85	- -	- -	- -
Эозинофилы (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Тканевые (%) базофилы (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
Эритроциты (%) (NA)	-3, 4 -3, 4	1,92±0,7932, 7 15,8±6,772, 7	1,5±0,5222, 7 11,5±4,12, 7	0,5±0,798 3,58±5,9	0,444±0,527 2,89±3,48	-3, 4 -3, 4
Митозы (%) (NA)	2,67±0,7783, 4 17,5±5,473, 4	5±0,8532 41±6,512, 6, 7	5,17±0,8352 39,3±5,472, 6, 7	3,83±0,718 27,2±6,39	2,89±0,782 18,3±4,123, 4	2,75±0,886 18,6±5,373, 4
С признаками (%) деструкции (NA)	1,33±0,4923, 4 8,75±3,33, 4, 5	3,83±0,7182 31,6±6,12, 7	4,17±0,5772, 7 31,8±4,372, 7	3,58±1,08 25,2±7,152	2,89±0,782 18,7±5,36	1,88±0,8354 12,6±5,293, 4

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 8.

Цитоархитектоника мякотных тяжей субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	692±79,3	758±116	733±98,5	692±79,3	700±86,6	7,13±83,5
Лимфоциты (%) (NA)	52±3,054, 6 360±51,2	40,3±5,14 305±61,2	39,1±4,762 284±27,3	42,1±4,6 290±41,2	41,3±4,212 289±45,6	42±4,14 298±31,2
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	4,92±0,7933, 4 33,8±5,033	8,08±0,6692, 6, 7 61,4±112	7,58±0,9962, 7 55,7±10,4	6,17±0,718 42,4±4,93	5,22±0,9723 36,9±9,35	5±0,5353, 4 35,9±7,16
Плазмоциты (%) (NA)	28,2±2,79 195±29,2	29,3±3,91 221±43	31,3±3,7 232±54,3	32,8±2,55 228±40	35,6±2,79 249±38,4	34,6±2,97 247±38,2
Клетки Мотта (%) (NA)	0,333±0,651 2,58±5,12	0,167±0,389 1,5±3,5	0,25±0,452 1,92±3,5	0,333±0,492 2,42±3,6	0,556±0,882 4,11±6,6	0,625±0,916 4,5±6,48
Ретикулярные (%) (NA)	7,17±0,577 49,6±7,17	6,08±0,793 46,3±10,5	6±0,739 43,8±6,87	7,25±0,622 50,1±6,61	7,22±0,833 50,3±7,14	7,13±0,641 51±9,37
Моноциты (%) (NA)	1,83±0,7183 12,6±5	4,08±0,7932 31,1±8,24	3,83±0,937 28±6,77	2,17±0,577 14,8±3,39	1,89±0,782 13±4,74	2,13±0,835 15,1±6,38
Макрофаги (%) (NA)	3±0,7395, 6, 7 20,8±5,45, 6, 7	2,92±0,6695, 6, 7 22,7±8,03	4±0,603 29,3±5,77	5,25±0,7542, 3 36±4,492	5,22±0,6672, 3 36,2±3,92	5,13±0,6412, 3 36,4±5,242
Нейтрофилы (%) (NA)	0,333±0,651 2,33±4,58	1,42±0,669 10,6±4,66	1,25±0,452 9,25±3,89	0,5±0,798 3,5±5,6	0,444±0,726 3,11±5,49	0,375±0,518 2,75±3,85
Эозинофилы (%) (NA)	0,583±0,9 3,83±5,81	0,417±0,669 3,25±5,05	0,333±0,651 2,5±4,78	0,5±0,798 3,5±5,4	0,444±0,726 3,11±5,49	0,625±0,744 4,75±5,82
Тканевые (%) базофилы (NA)	- -	- -	0,5±0,798 3,5±5,58	0,417±0,793 3±5,88	0,333±0,707 2,67±5,66	0,625±1,19 5±9,5
Эритроциты (%) (NA)	0,25±0,452 1,58±2,87	2±0,853 15,1±6,57	1,75±0,866 13,1±7,24	0,917±0,996 6,42±7,03	0,444±0,726 3,22±5,19	0,375±0,518 2,88±3,98
Митозы (%) (NA)	-3 -3	1,5±0,5222, 5, 6, 7 11,2±3,662, 5, 6, 7	0,333±0,651 2,67±5,55	-3 -3	-3 -3	-3 -3
С признаками (%) деструкции (NA)	1,42±0,5153, 4 9,67±3,263, 4	3,83±0,7182, 5, 6, 7 28,8±5,562, 5, 6, 7	3,75±0,6222, 5, 6, 7 27,6±6,52, 6, 7	1,58±0,7933, 4 11±5,563	1,33±0,53, 4 9,33±3,713, 4	1,38±0,5183, 4 9,75±3,733, 4

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 9.

Цитограмма клеток в просвете мозговых синусов субмандибулярных лимфатических узлов крыс при спонтанном заживлении дефекта нижней челюсти (M±m)

Клетки	Интактные животные	Срок после операции
		1 неделя	2 недели	3 недели	4 недели	5 недель
1	2	3	4	5	6	7
Численная плотность (NA)	125±4523, 4	392±79,32, 5, 6, 7	308±66,92	158±51,53	167±503	175±46,33
Лимфоциты (%) (NA)	55,6±3,23, 4, 7 69,4±25,1	29,3±3,932, 5, 6, 7 114±23	39,8±6,732 124±35,4	49,3±2,643 77,8±24,8	48,6±3,43 81,4±26,2	44,6±3,662, 3 78±21,1
Иммуно- и (%) плазмобласты (NA)	0,417±0,6693 0,667±1,233	2,42±0,6692, 6, 7 9,75±4,162, 6, 7	1,58±0,793 4,83±2,79	0,833±1,27 1,33±2,31	0,333±0,53 0,556±0,8823	0,375±0,5183 0,625±0,9163
Плазмоциты (%) (NA)	4±0,7396, 7 5±1,954	4,08±0,96 16,3±5,82	4,92±0,793 15,1±4,012	5,83±0,718 9,33±3,52	6,44±0,7262, 3 10,9±3,79	6,13±0,6412 10,8±3,06
Клетки Мотта (%) (NA)	0,083±0,289 0,083±0,289	0,167±0,389 0,583±1,38	0,25±0,622 0,917±2,39	0,333±0,492 0,417±0,669	0,222±0,441 0,333±0,707	0,375±0,744 0,75±1,49
Ретикулярные (%) (NA)	24,8±2,77 30,6±10,13	21,1±2,57 82,5±19,22	20,8±2,997 63,4±14,7	23,4±2,277 36,9±12,1	26,4±2,19 43,7±12,3	31,4±1,772, 3, 4, 5 55±15,1
Моноциты (%) (NA)	2,67±0,6513 3,42±1,833, 4	5,08±0,9962 20±6,162, 5, 6, 7	4,17±0,718 12,6±2,392, 5, 6, 7	3,17±0,718 5±1,953, 4	2,89±0,782 4,67±1,413, 4	3,25±0,707 5,75±1,983, 4
Макрофаги (%) (NA)	6,33±1,073, 4 7,92±3,263, 4	24,6±2,112, 5, 6, 7 97±25,22, 5, 6, 7	18,5±3,152, 5, 6, 7 56,8±14,92, 5, 6, 7	9,08±1,163, 4 14,8±6,023, 4	7,78±0,8333, 4 12,9±3,923, 4	6,25±0,8863, 4 10,8±2,63, 4
Нейтрофилы (%) (NA)	1,25±0,4523, 4 1,58±0,93, 4	4,92±0,7932, 5, 6, 7 19,2±4,322, 5, 6, 7	3,75±0,6222, 6, 7 11,6±3,152, 5, 6, 7	1,92±0,7933 3,17±1,953, 4	1,56±0,7263, 4 2,67±1,663, 4	1,63±0,5183, 4 2,88±1,253, 4
Эозинофилы (%) (NA)	1,42±0,515 1,92±1,31	0,583±0,793 2,33±3,03	0,333±0,492 0,917±1,38	1,5±0,522 2,42±1,24	1,44±0,527 2,33±1	1,38±0,518 2,38±1,06
Тканевые (%) базофилы (NA)	1,25±0,622 1,75±1,6	0,583±0,996 2,17±3,93	0,5±1 1,5±2,84	1,58±0,793 2,42±1,16	1,78±0,833 2,89±1,54	1,63±0,744 2,88±1,64
Эритроциты (%) (NA)	0,333±0,6513 0,417±0,7933	2,67±0,6512, 5, 6 10,4±3,152, 5, 6, 7	1,42±0,515 4,58±2,43	0,5±0,7983 0,75±1,293	0,556±0,7263 1±1,413	0,625±0,916 1±1,513
Митозы (%) (NA)	- -	- -	- -	- -	- -	- -
С признаками (%) деструкции (NA)	1,92±0,6693, 4 2,25±0,7543, 4	4,58±0,5152, 5, 6, 7 17,9±4,12, 5, 6, 7	4,08±0,6692, 6 12,7±4,012, 6	2,5±0,6743 4±1,863	2±0,7073, 4 3,33±1,53, 4	2,38±0,7443 4,25±1,983

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Рис. 5. Дефект кости нижней челюсти при самостоятельной регенерации через 1 неделю после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Отверстие частично заполнено кровью. б - По периферии кровяного сгустка присутствуют грануляции. в, г - Формирование отдельных островков костной ткани среди грануляций и в кровяном сгустке.



Рис. 6. Спонтанное заживление дефекта кости нижней челюсти спустя 1 неделю после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Дефект заполнен детритом. б - Лейкоцитарная инфильтрация детрита. в - Преобладание в цитограмме лейкоцитов нейтрофилов и макрофагов, начало формирования костной ткани. г - Начало образования кости на периферии отверстия.



Рис. 7. Дефект кости нижней челюсти при самостоятельной регенерации через 2 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Формирование хрящевой ткани в дефекте. б, в - Хрящевая ткань с большим числом кровеносных сосудов на периферии.



Рис. 8. Спонтанное заживление дефекта кости нижней челюсти спустя 3 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Дефект заполнен молодой костной тканью. б - В ткани на участке дефекта большое число кровеносных сосудов и четкая граница с окружающей костью. в - Четкая граница по периферии искусственно созданного отверстия. г - Начало формирования полостей с красным костным мозгом в молодой костной ткани.



Рис. 9. Дефект кости нижней челюсти при самостоятельной регенерации через 3 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Хаотично расположенные балки костной ткани в дефекте кости. б, в - Другие участки костной мозоли на большом увеличении.

Рис. 10. Спонтанное заживление дефекта кости нижней челюсти спустя 3 недели после операции. Дефект кости заполнен островками растущей костной ткани с широкими кровеносными сосудами. Частичное повреждение корня центрального резца (указано стрелками). Окраска гематоксилином и эозином.



Рис. 11. Дефект кости нижней челюсти при самостоятельной регенерации через 4 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а, б и в - Хаотично расположенные балки костной ткани в костной мозоли нижних челюстей различных животных.



Рис. 12. Спонтанное заживление дефекта кости нижней челюсти спустя 4 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Костная мозоль с четкими границами на месте искусственно созданного отверстия. б, в - Структуры границы костной мозоли на большом увеличении.



Рис. 13. Дефект кости нижней челюсти при самостоятельной регенерации через 4 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а, б, в - Хаотично расположенные балки костной ткани в костной мозоли нижних челюстей разных животных.



Рис. 14. Спонтанное заживление дефекта кости нижней челюсти спустя 4 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Костная мозоль с четкими границами и большой полостью с костным мозгом на месте искусственно созданного отверстия. б, в, г, д, е - Структуры костной мозоли и костного мозга на большом увеличении.



Рис. 15. Дефект кости нижней челюсти при самостоятельной регенерации через 4 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Дефект заполнен соединительной тканью с большим числом клеток. б - Соединительная ткань в искусственно созданном отверстии. в - Кровеносные капилляры и клетки в соединительной ткани на месте костного дефекта.



Рис. 16. Спонтанное заживление дефекта кости нижней челюсти спустя 5 недель после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Поврежденная ростовая зона центрального резца и тканевой детрит вокруг нее. б, в, г - Нежизнеспособные ткани в корне резца и окружающей кости на большом увеличении. Увеличение: а - 50 Х, б - 150 Х, в, г - 280 Х.



Рис. 17. Дефект кости нижней челюсти различных животных при самостоятельной регенерации через 5 недель после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а, б - Отверстие рядом с ростовой зоной центрального резца сохраняется, вокруг небольшая костная мозоль с хаотично расположенными балками и полостями с красным костным мозгом. в, г - Небольшие участки тканевого детрита присутствуют рядом с корнем центрального резца и вокруг дефекта кости. д, е - Участок тканевого детрита находится на месте дефекта рядом с корнем центрального резца. Стрелками указаны структуры корня центрального резца. Увеличение: а, в, д - 50 Х, б, г, е - 180 Х.



Рис. 18. Субмандибулярный лимфатический узел интактной крысы. Окраска гематоксилином и эозином. а - В корковом плато небольшое число лимфоидных фолликулов, увеличение 90 Х. б - В цитограмме лимфоидного фолликула без герминативного центра преобладают лимфоциты, увеличение 360 Х. в - Плотное расположение клеток, среди которых преобладают лимфоциты, в паракортексе, увеличение 360 Х.



Рис. 19. Субмандибулярный лимфатический узел интактной крысы. а - Фрагмент рис. 18б, единичные клетки с признаками деструкции и фигуры митозов среди лимфоцитов лимфоидного фолликула без светлого центра, увеличение 720 Х. б - Фрагмент рис. 18в, единичные делящиеся клетки в цитограмме паракортекса, увеличение 840 Х.



Рис. 20. Субмандибулярный лимфатический узел животного при спонтанном заживлении дефекта кости нижней челюсти спустя 1 неделю после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Расширение коркового плато, увеличение численности лимфоидных фолликулов. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула много макрофагов и клеток с деструктивными изменениями. в - Возрастание количества макрофагов в паракортексе.



Рис. 21. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 1 неделю после операции. а - Фрагмент рис. 20б, макрофаги, клетки с признаками деструкции, иммуно- и плазмобласты в цитограмме центра размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 20в, макрофаги среди лимфоцитов в паракортексе.



Рис. 22. Субмандибулярный лимфатический узел животного при спонтанном заживлении дефекта кости нижней челюсти спустя 2 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Гипертрофия коркового плато, увеличение числа лимфоидных фолликулов. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула много макрофагов и клеток с деструктивными изменениями. в - Возрастание количества макрофагов в мантийной зоне лимфоидных узелков.



Рис. 23. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 2 недели после операции. а, б - Фрагменты рис. 22б и 22в, соответственно, резкое возрастание числа макрофагов, клеток с явлениями деструктивных изменений, иммуно- и плазмобластов в цитограмме центров размножения различных лимфоидных фолликулов.



Рис. 24. Субмандибулярный лимфатический узел животного при спонтанном заживлении дефекта кости нижней челюсти спустя 3 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Расширение коркового плато в котором расположены крупные лимфоидные фолликулы. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула увеличено количество макрофагов и клеток с деструктивными изменениями. в - Возрастание содержания макрофагов в паракортексе.



Рис. 25. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 3 недели после операции. а - Фрагмент рис. 24б, большое число макрофагов, клеток с явлениями деструктивных изменений, иммуно- и плазмобластов в цитограмме центра размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 24в, высокое содержание макрофагов в паракортикальной зоне.



Рис. 26. Субмандибулярный лимфатический узел животного при спонтанном заживлении дефекта кости нижней челюсти спустя 4 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - В гипертрофированном корковом плато расположено небольшое число очень крупных лимфоидных фолликулов. б, в - В цитограмме центров размножения лимфоидных фолликулов большое число макрофагов и клеток с деструктивными изменениями.



Рис. 27. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 4 недели после операции. а, б - Фрагменты рис. 26б и 26в, соответственно, значительное число макрофагов и клеток с явлениями деструктивных изменений в цитограмме центров размножения лимфоидных фолликулов, появляются группы лимфоцитов.



Рис. 28. Субмандибулярный лимфатический узел животного при спонтанном заживлении дефекта кости нижней челюсти спустя 5 недель после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - Нормализация размеров коркового плато, где расположено небольшое число лимфоидных фолликулов. б - В цитограмме центра размножения лимфоидного фолликула присутствуют единичные макрофаги и клетки с деструктивными изменениями. в - Цитограмма паракортекса представлена, в основном, лимфоцитами.



Рис. 29. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 5 недель после операции. а - Фрагмент рис. 28б, единичные крупные макрофаги среди лимфоцитов в герминативном центре лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 28в, в цитограмме паракортикальной зоны основное место занимают лимфоциты.



Рис. 30. Субмандибулярный лимфатический узел интактной крысы. Окраска гематоксилином и эозином. а - Просвет мозговых синусов содержит небольшое число клеток. б - В цитограмме содержимого мозговых синусов преобладают лимфоциты.



Рис. 31. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 1 неделю после операции. а - Увеличение численной плотности клеток в просвете мозговых синусов. б - Возрастание численности макрофагов среди клеток в просвете мозговых синусов.



Рис. 32. Субмандибулярный лимфатический узел животного при спонтанном заживлении дефекта кости нижней челюсти спустя 3 недели после операции. Окраска гематоксилином и эозином. а - В просвете мозговых синусов сохраняется высокая численная плотность клеток. б - В цитограмме содержимого мозговых синусов преобладают лимфоциты, много макрофагов и ретикулярных клеток.



Рис. 33. Субмандибулярный лимфатический узел крысы при естественной регенерации дефекта кости нижней челюсти через 5 недель после операции. а - Нормализация численной плотности клеток в просвете мозговых синусов. б - В клеточном составе содержимого мозговых синусов преобладают лимфоциты и присутствуют единичные макрофаги.

ГЛАВА 4. МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ В ДЕФЕКТЕ КОСТНОЙ ТКАНИ В УСЛОВИЯХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ФИБРИНОВОГО СГУСТКА

4.1 Структура кости нижней челюсти при применении фибринового сгустка для воздействия на репарацию ее дефекта

4.1.1 Микроанатомическая организация кости нижней челюсти

Через 1 неделю после моделирования дефекта кости и заполнения его БТФС, в одном случае весь дефект был заполнен молодой грануляционной тканью с большим числом кровеносных сосудов (рис. 34). Не исключено, что у данного животного в месте операции был септический воспалительный процесс. У других крыс отверстие кости было полностью заполнено слившимися островками вновь сформированной кости. То есть регенерация кости после применения БТФС уже к 1 неделе привела к полному заполнению искусственного дефекта (рис. 35).

В большинстве случаев через 2 недели после создания дефекта в кости и заполнения его БТФС, отверстие так же, как и при спонтанной регенерации, было закрыто вновь образованной костной тканью с большим числом полнокровных кровеносных сосудов на периферии дефекта и хрящевой тканью в центре (рис. 36). В одном случае весь дефект костной ткани был заполнен рыхлой волокнистой соединительной тканью с очень широкими кровеносными сосудами с тонкими стенками (скорее всего, островки грануляций), следует отметить связь сосудов этого отверстия с сосудами корня нижнего центрального резца (рис. 37).

Спустя 3 недели после моделирования дефекта в кости нижней челюсти и применения БТФС, также как и без использования фибрина, отверстие было полностью закрыто вновь образованной костной тканью с хаотично расположенными костными балками сформированной костной мозоли и полостями с костным мозгом.

На 4 неделе после заполнения дефекта кости БТФС отверстие, так же как и при самостоятельном заживлении, было полностью заполнено костной тканью. Однако в одном случае, когда при производстве операции был поврежден корень нижнего центрального резца, дефект кости сохранялся. Края дефекта состояли из нежизнеспособных тканей, в самом дефекте и в окружающих тканях находились костный детрит и остатки тканей ростовой зоны поврежденного зуба. Признаков регенерации дефекта тканей не было даже на этот срок, не было формирования кровеносных сосудов и регенерации красного костного мозга. Фактически были морфологические признаки хронического остеомиелита кости нижней челюсти (рис. 38).

После применения БТФС на 5 неделе дефект кости был полностью заполнен вновь образованной костью. Если же в процесс создания дефекта костной ткани вовлечен корень резца, восстановления зуба не было отмечено, в тканях его корня и в кости нижней челюсти, непосредственно прилегающей к корню, присутствовало много костного детрита, нежизнеспособных костных тканей и были довольно выражены признаки воспаления. Но даже в таких случаях следует отметить наличие некоторых несомненных признаков начала регенерации (рис. 39, 40).

4.1.2 Радиовизиографическое исследование регенерации в дефекте кости нижней челюсти

После статистической обработки данных денситометрии процессов регенерации дефекта кости нижней челюсти крыс при естественном заживлении и после применения БТФС было обнаружено отсутствие достоверных различий плотности тканей в очаге между сравниваемыми группами животных на каждую точку исследования.

При естественном заживлении плотность кости в дефекте была меньше соответствующего здорового участка на контралатеральной стороне на 1, 2, 3 и 5 неделях на 12,1%, 11%, 10,5% и 9,3%, соответственно. На срок в 4 недели достоверных отличий с другой стороной не было. То есть при естественном ходе репаративной регенерации происходит медленное и постепенное возрастание плотности костной ткани в искусственно созданном отверстии, но даже к концу наблюдения (5 недель) не произошло нормализации плотности ткани в дефекте (рис. 41-45) (табл. 10).

После использования БТФС плотность кости в дефекте была меньше, относительно состояния на противоположной кости только на 1 и 2 неделях на 9,5% и 4,9%, соответственно. При этом произошло резкое увеличение плотности тканей в патологическом очаге на срок в 1-2 недели после операции, по сравнению с состоянием при спонтанной регенерации. А далее, начиная с 3 недели и вплоть до 5 недели, плотность тканей медленно уменьшалась, практически сравниваясь с величинами значений данных показателей при естественном ходе репаративной регенерации (рис. 41-45) (табл. 10).

При этом плотность тканей при естественном ходе репаративных процессов статистически значимо отличалась от здоровой кости на контралатеральной стороне в течение 3 первых недель и на 5 неделе, а на фоне использования БТФС - только на 1 и 2 неделях. То есть плотность тканей в дефекте после применения фибрина была выше и раньше происходила нормализация значения этого показателя (рис. 41-45) (табл. 10).

Кроме этого необходимо отметить, что на все сроки наблюдения плотность тканей в патологическом очаге после применения БТФС была несколько больше, чем при естественном ходе репарации, хотя такая разница и была недостоверна. Максимальные различия плотности тканей были отмечены в период со 2 по 4 неделю, к 5 неделе эти различия несколько сглаживаются (табл. 10). Следует обратить внимание, что и при морфологической оценке процессов репарации были также получены данные о нивелировании отличий к концу времени наблюдения.

РЕЗЮМЕ

Через 1 неделю после моделирования дефекта кости и заполнения его БТФС, отверстие было полностью заполнено слившимися островками вновь сформированной кости. То есть регенерация кости после применения БТФС уже к 1 неделе привела к полному заполнению искусственного дефекта. Ко второй неделе после применения БТФС происходило дальнейшее постепенное заполнение дефекта вновь образованной костной тканью с большим числом полнокровных кровеносных сосудов на периферии и формирование костной мозоли, которая полностью закрывала отверстие кости уже к 3 неделе, к этому же сроку было отмечено образование в месте хирургического вмешательства полостей с красным костным мозгом. Указанные изменения той или иной степени выраженности сохранялись и на последующие сроки наблюдения.

То есть начало репарационных процессов при моделировании дефекта кости нижней челюсти и применении БТФС проходит значительно интенсивнее, чем при спонтанном заживлении. Отверстие раньше и быстрее заполняется островками костной ткани. Костные островки раньше сливаются и формируют молодую костную ткань. Однако, эти различия практически нивелируются к 3 неделе после операции и далее регенерация идет более-менее одинаково.

По результатам денситометрии дефекта кости нижней челюсти крыс при естественном заживлении и после применения БТФС было обнаружено, что плотность тканей при естественном ходе репаративных процессов статистически значимо отличалась от здоровой кости на контралатеральной стороне в течение 3 недель, а на фоне использования БТФС - только на 1 и 2 неделях.

4.2 Строение регионарных лимфатических узлов при использовании фибринового сгустка для регенерации костной ткани

4.2.1 Структурная организация лимфатических узлов

С первой по третью неделю после заполнения искусственно созданного дефекта кости нижней челюсти БТФС корковое плато субмандибулярных лимфатических узлов было шире, чем в контроле, далее этот показатель постепенно снижался до окончания времени наблюдения. Через 1, 2 и 3 недели объемная плотность коркового плато превосходила исходный уровень на 43,4%, 38,2% и 22,1%, соответственно. На 4 и 5 неделе корковое плато было статистически достоверно меньше на 43,4%, и 58,5%, соответственно, относительно значения на 1 неделе, меньше на 38,2% и 52,8%, соответственно, по сравнению с состоянием спустя 2 недели, и также меньше на 22,1% и 35%, и также соответственно, чем через 3 недели после начала эксперимента (рис. 46-55) (табл. 11).

Относительная площадь паракортикальной зоны резко уменьшилась уже к 1 неделе, потом этот показатель постепенно увеличивался, но до 4 недели наблюдения был меньше исходного. Через 1, 2 и 3 недели объем паракортекса был меньше исходного на 42,9%, 38,1% и 23,7%, соответственно. На 4 и 5 неделе паракортекс был статистически достоверно шире на 28,3%, относительно значения на 1 неделе, и шире на 24%, по сравнению с состоянием спустя 2 недели (рис. 46-55) (табл. 11).

Объемная плотность лимфоидных фолликулов без центров размножения была больше контрольной в течение 1-2 недель, на следующие точки наблюдения величина значения этого показателя не отличалась от исходного. Спустя 1 и 2 недели площадь таких фолликулов на срезе была выше исходного состояния на 48,4% и 46,6%, соответственно. На 5 неделе величина узелков была статистически достоверно шире на 79,3% и 77%, соответственно, по сравнению с состоянием спустя 1 и 2 недели (табл. 11).

На фоне неизменной площади герминативных центров относительная площадь мантийной зоны в фолликулах с центрами размножения была больше контроля на 1 и 2 неделе, потом этот показатель постепенно снижался и на 4-5 неделях был даже ниже контрольного. Через 1 и 2 недели объемная плотность мантия превосходила контрольный уровень на 56,7% и 58,9%, соответственно. На 4 неделе объем мантия был меньше в 2,7, 2,7 и 2,2 раза, соответственно, а к 5 неделе - в 2,5, 2,5 и 2 раза, также соответственно, относительно состояния на 1, 2 и 3 неделе. При этом на 4 неделе величина значения данного показателя была меньше, чем в контроле, на 72,3% (рис. 46-55) (табл. 11).

Начиная с первой недели площадь мякотных тяжей постепенно расширялась и на 4-5 неделях была достоверно больше исходной. Спустя 4 и 5 недель объемная плотность мякотных тяжей статистически достоверно превосходила исходный уровень на 17,9% и 21,2%, соответственно (табл. 11).

Процент мозговых синусов на срезе лимфатических узлов только на 1 неделе был статистически достоверно больше контроля и состояния на 4 и 5 неделях на 33,6%, 29,6% и 24,3%, соответственно (рис. 56, 57) (табл. 11).

Различия в строении субмандибулярных лимфатических узлов крыс со спонтанным заживлением дефекта нижней челюсти и после заполнения отверстия БТФС были отмечены в объемной плотности коркового плато. Величина значения этого показателя на 1, 2, 4 и 5 неделях после применения БТФС была статистически достоверно меньше на 27,2%, 31,9%, 25% и 43,1%, соответственно, чем при спонтанной регенерации. При этом на 4 неделе спонтанной репарации объем коркового плато еще достоверно отличался от контроля, тогда как после использования фибрина - нет (табл. 2, 11).

Кроме того, примерно такая же картина была обнаружена в динамике изменения размеров паракортикальной зоны. При спонтанном заживлении объем паракортекса на 4 и 5 неделях после операции оставался меньше исходного, однако после применения БТФС величина значения этого показателя уже нормализовалась (табл. 2, 11).

4.2.2 Микроанатомическая структура коркового плато

Процент лимфоцитов в корковом плато лимфатических узлов на первой и второй неделе после операции с применением БТФС был меньше, чем в контроле, но на остальные сроки достоверно не отличался от исходного. Через 1 и 2 недели после начала эксперимента этот показатель был статистически достоверно меньше контрольного на 11,2% и 10,4%, соответственно (табл.12).

Относительное содержание иммуно- и плазмобластов резко возросло уже на 1 и 2 неделе, потом этот показатель находился на уровне контроля. Через 1 и 2 недели этих клеток было больше, чем в контроле, в 2,2 раза. На 5 неделе бластов было меньше в 2,7 и 2,6 раза, соответственно, по сравнению с состоянием на 1 и 2 неделях (табл. 12).

Процент ретикулярных клеток постепенно возрастал и на 4 и 5 неделях был больше на 36,9% и 38,1%, соответственно, чем спустя 1 неделю (табл. 12).

Относительное количество делящихся клеток в корковом плато было больше контроля только на 1 неделе: в 2,5 раза, потом этот показатель постепенно снижался и достоверно не отличался от исходного (табл. 12).

Процент клеточных элементов с признаками деструктивных изменений возрастал до 1 недели, далее величина значения этого показателя постепенно уменьшалась и достоверно не отличалась от контроля, даже на 2 неделе. Через 1 неделю число таких клеток превосходило контрольный уровень и состояние на 4 и 5 неделях в 3,9, 5,2 и 7,7 раза, соответственно (табл. 12).

Различия в цитограмме коркового плато между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования БТФС были найдены в изменениях численности ретикулярных клеток, макрофагов, фигур митозов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 3, 12).

При спонтанном заживлении нижней челюсти процент и абсолютное число ретикулярных клеток в корковом плато субмандибулярных лимфатических узлов на 2 неделе были достоверно больше, чем на 5 неделе. Кроме того, численная плотность таких клеток через 5 недель при самостоятельной регенерации достоверно была выше, относительно состояния на 1 неделе. Тогда как после применения БТФС величины значений указанных показателей между собой статистически достоверно не различались, то есть изменения числа клеток стромы не были обнаружены (табл. 3, 12).

Относительное число макрофагов через 5 недель при спонтанном заживлении было достоверно больше, а после использования БТФС не отличалось от исходного (табл. 3, 12).

Процент делящихся клеток на 2 неделе при спонтанной репарации был достоверно больше, но на фоне применения БТФС не отличался от состояния в контроле (табл. 3, 12).

Абсолютное и относительное число клеточных элементов с признаками деструктивных изменений через 2 недели при спонтанном заживлении были достоверно выше, чем в контроле и в конце наблюдения, однако после использования БТФС эти показатели на 2 неделе после операции достоверно не отличались от исходных и на последующие сроки (табл. 3, 12).