Антигипоксическое и нейропротекторное действие N-арахидоноилдофамина при моделировании острой гипоксии in vivo и in vintro

Ретроградная модуляция синаптической передачи эндоканнабиноидами. Культивирование первичных диссоциированных клеток гиппокампа. Влияние N-арахидоноилдофамина на спонтанную биоэлектрическую активность культивируемых клеток гиппокампа при гипоксии.

Рубрика Биология и естествознание
Вид диссертация
Язык русский
Дата добавления 21.06.2015
Размер файла 1,4 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Каинатные рецепторы нейронов быстро активируются и десенситизируются, проводят ионы Na+/K+ и проницаемы для Ca2+. Как и в случае АМРА-опосредованной медленной эксайтотоксичности, необходимо длительное (более 1 ч) воздействие каината, чтобы вызвать гибель нейронов (Won et al., 2002).

Чрезмерное повышение [Ca2+]i приводит к активации нескольких ферментативных систем, в том числе NO-синтазы, протеаз, фосфолипазы А2 (ФлА2) и эндонуклеаз, что приводит к окончательной гибели клеток (Kostandy, 2012). Концентрация свободного Ca2+ в цитоплазме нейрона крайне низка (приблизительно 100 нМ), тогда как его внеклеточная концентрация достигает 1-2 мМ. Уровень [Ca2+]i в нейронах поддерживается следующими механизмами: (1) поступление Ca2+ в клетку из внеклеточной среды через лиганд-зависимые рецепторы или потенциал-управляемые Ca2+ каналы; (2) высвобождение Ca2+ из эндоплазматического ретикулума посредством стимуляции IP3-рецепторов или из митохондрий через Na+/Ca2+ обменник; (3) выход Ca2+ из клетки через Ca2+-АТФазу или Na+/Ca2+ обменник в плазматической мембране; (4) связывание Ca2+ кальций- связывающими белками цитоплазмы; (5) депонирование Ca2+ в эндоплазматическом ретикулуме при участии Са2+-АТФазы или в митохондриях по градиенту электрического потенциала. Гипоксически-ишемическое воздействие вызывает накопление внутриклеточного свободного Ca2+ за счет усиления его поступления в клетку, прежде всего, через NMDA-рецепторы, и нарушения АТФ-зависимого удаления Ca2+ из клетки и его депонирования (Won et al., 2012). Длительное повышение [Ca2+]i приводит к запуску метаболических реакций и необратимой смерти нервныхклеток с участием множества механизмов, которые включают в себя активацию Са2+-зависимых эффекторных белков. Одним из таких белков является внутриклеточная протеаза кальпаин I. Активированный кальпаин расщепляет жизненно важные белки, такие как спектрин, фодрин, Ca2+- АТФазу и протеинкиназу С, транскрипционный фактор NF кВ. Это влечет за собой редукцию дендритов, разрушение плазмалеммы, модуляцию экспрессии генов и нейродегенерацию (Wang, 2000). Активация кальций- зависимого кальпаина-I приводит к превращению ксантиндегидрогеназы в ксантиноксидазу. При реперфузии, после поступлении О2 в ишемизированную ткань, происходят окисление ксантина и накопление большого количества супероксидного аниона. Активация фермента Сa2+/кальмодулин-зависимой NO-синтазы обусловливает избыточную продукцию радикала NO-. В результате создаются условия для образования пероксинитрита, что стимулирует генерацию гидроксильных радикалов и способствует нитрированию тирозиновых радикалов белков. Свободные радикалы индуцируют реакции белков с другими компонентами клетки, вызывая фрагментацию белковых молекул и нарушение их функций (Won et el., 2002).

В процесс эксайтотоксичности вовлекаются и другие протеазы, такие как катепсин D, а также эндонуклеазы и фосфолипазы. Чрезмерное накопление Ca2+ в нейронах приводит к транслокации фосфолипазы А2 в мембране. Активация ФлA2 может способствовать гибели нейронов при эксайтотоксичности и гипоксии/ишемии за счет продукции свободных жирных кислот (например, арахидоновой кислоты) из глицерофосфолипидов. Арахидоновая кислота далее используется для производства простагландинов и лейкотриенов и сопутствующей продукции супероксида. Также увеличение концентрации свободной арахидоновой кислоты дополнительно ингибирует митохондриальное дыхание и оказывает непосредственное цитотоксическое действие (Sapirstein и Bonventre, 2000).

Прерывание метаболических каскадов, приводящих к индуцированной глутаматом гибели клеток при ишемии, может предотвратить или уменьшить ишемическое повреждение мозга. Однако, несмотря на тот факт, что многочисленные исследования in vivo и in vitro показали нейропротекторное действие антагонистов различных глутаматных рецепторов при ишемии, последние клинические испытания не смогли доказать эффективность данных соединений. Кроме того, терапевтический потенциал блокаторов NMDA-рецепторов ограничивается побочными поведенческими эффектами, такими как психоз и гиперлокомоция (Won et al., 2002; Xiong, 2009; Chao, Sheng-Tian, 2013). Таким образом, представляется необходимым поиск новых, более результативных препаратов для предотвращения глутаматной токсичности при ишемическом повреждении, одним из которых являются соединения класса эндоканнабиноидов, которые за счет специфического механизма - ретроградной регуляции синаптической передачи - препятствуют избыточному выбросу нейромедиаторов (в том числе, глутамата) в синаптическую щель, защищая таким образом клетку от эксайтотоксичности (рис. 5) (Mechoulam R. et al., 2002; Генрихс с соавт., 2010).

Одной из первых работ, показавших нейропротекторный эффект эндоканнабиноидов, было исследование, обнаружившее, что синтетические агонисты CBR, WIN55,212-2 и CGS19755, уменьшают гибель клеток, вызванную низким содержанием магния в среде, причем нейропротекторный эффект блокировался римонабанотом (Shen, Thayer, 1998). При закрытой травмой головы у крыс 2-АГ уменьшал отек мозга и объем инфаркта, причем эффект блокировался SR141716А (Panikashvili et al., 2001). У CBR-1- нокаутных мышей 2-АГ не оказывал защитного эффекта, а восстановление животных после травмы шло медленнее, чем у контрольной группы (Panikashvili et al., 2005).

Рисунок 5 Механизмы нейропротекторного эффекта эндоканнабиноидов (Mechoulam R. et al., 2002). Пояснения в тексте

Молекулярные механизмы, лежащие в основе защитного действия каннабиноидов, изучены недостаточно. Показано, что активация CBR-1, вызванная эксайтотоксичностью, приводит к увеличению продукции нейротрофических факторов, таких как основной фактор роста фибробластов (bFGF) и нейротрофический фактор головного мозга (BDNF) (Marsiano et al., 2003; Khaspekov et al, 2004; Aguado et al., 2007), а также регулирует продукцию оксида азота (Kim et al., 2006) и провоспалительных цитокинов, прежде всего, фактора некроза опухолей ФНОб (Mechoulam et al., 2002; Panikashvili et al., 2006) и ингибирует экспрессию транскрипционного фактора NFkB (Panikashvili et al., 2005).

Показано, что защитное действие каннабидиола от бета-амилоид (Aв)- индуцированной токсичности в культуре клеток PC12 обусловлено его антиоксидантными и антиапоптотическими свойствами, независимыми от СВR (Harvey et al., 2012). Другие исследователи обнаружили, что Д9-ТГК через активацию CBR-1 защищает нейроны спинного мозга крыс от токсичности, вызванной каиновой кислотой (Van der Stelt et al., 2001;

Shouman et al., 2006). Cинтетический каннабиноид WIN55212-2, как и Д9- ТГК, с участием CBR-1 защищал культивируемые нейроны гиппокампа от эксайтотоксичности (Gilbert et al., 2007). Вероятно, защитный эффект каннабиноидов может быть связан с регулированием деятельности NMDA- рецепторов. Так, например, дексанабинол выступает в качестве стереоселективного ингибитора NMDA- рецепторов и препятствует NMDA- индуцированной нейротоксичности (Darlington, 2003), при которой степень нейропротекторного эффекта синтетических каннабиноидов WIN55212-2 и CP-55940 в культуре клеток гиппокампа прямо коррелирует с концентрацией каннабиноидов в среде и блокируется антагонистом CBR-1. Механизм защитного эффекта связан со снижением концетрации ионов Са2+ в клетке вследствие торможения активности ПКА с последующим ингибированием кальциевых каналов эндоплазматического ретикулума (ЭПР), сопряженных с рианодиновыми рецепторами (Хаспеков, Бобров, 2006; Zhang et al., 2007).

Большое число исследований подтверждает, что изменение уровня экспрессии CBR-1 ассоциировано с развитием различных нейродегенеративных заболеваний. Одним из факторов патогенеза болезни Хангтингтона является резкое снижение количества CBR-1, предшествующее развитию двигательных нарушений (Glass et al., 2000; Dowie et al., 2009). Плотность CBR-1 у пациентов с болезнью Альцгеймера может снижаться (Westlake et al., 1994). Также имеются данные об изменении экспрессии CBR-1 у трансгенных мышей с различными моделями болезни Альцгеймера (Fowler et al., 2010). Эксайтотоксичность, индуцированная каиновой кислотой, повышала уровень мРНК CBR-1 в гиппокампе крыс (Aguado et al., 2007).

Целый ряд работ демонстрирует нейропротекторный эффект эндоканнабиноидов, не связанный с активацией CBR-1. Marsiano с соавт. исследовали нейропротективное действие ряда эндогенных и синтетических каннабиноидов при оксидативном стрессе, вызванном воздействием пероксида водорода. На культурах клеток мозжечка мышей дикого типа и мышей, нокаутных по гену CBR-1, показано, что реализация нейропротекторного эффекта каннабиноидов не зависит от экспрессии клетками CBR-1. Д9-ТГК и синтетический каннабиноид СР55,940 повышали выживаемость клеток мозжечка при оксидативном стрессе, а WIN 55,212-2 и метанандамид не оказывали нейропротекторного эффекта как в культурах клеток дикого типа, так и нокаутных животных. Этот эффект авторы связывают с наличием в структуре молекулы Д9-ТГК и СР55940 фенольной группы, которая отсутствует у WIN 55,212-2 и метанандамида (Marsicano et al., 2002).

Появление сведений об иммунорегуляторной роли активации CBR-2 привело к увеличению интереса к этим рецепторам как терапевтическим мишеням, способным уменьшить воспалительные явления при травмах ЦНС и нейродегенеративных заболеваниях, так как и острые, и хронические поражения головного мозга всегда имеют в своем патогенезе воспалительную компоненту. Основным патогенетическим фактором воспаления является повышение уровней воспалительных цитокинов в головном мозге, активация микроглии и появление лейкоцитов в результате повреждения гематоэнцефалического барьера. Активированная микроглия и астроциты выделяют большое количество провоспалительных и нейротоксических соединений (Dirnagl еt al., 1999; Centonze et al., 2007; Kadhim et al.,2009). Наличие CBR-2 на активированных клетках микроглии и иммунной системы позволяют предположить, что агенты, модулирующие их функции, могут иметь потенциально полезные свойства в терапии нейродегенеративных расстройств, причем, поскольку психотропное действие каннабиноидов, как правило, связано с активацией CBR-1 на нейронах, CBR-2-опосредованное нейропротективное действие каннабиноидов представляется особенно интересным в связи с отсутствием их центральных побочных эффектов (Ashton, Glass, 2007).

Первые доказательства того, что селективная активация CBR-2 оказывает защитный эффект при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите (EAE), были получены при исследовании действия каннабиноида WIN55212-2 на прогрессирование ЕАЕ у мышей. Применение этого синтетического каннабиноида, который является агонистом как CBR-1, так и CBR-2, ослабляло прогрессирование EAE. Присутствие антагониста CBR-1, SR141716А, не влияло на защитный эффект, а антагониста CBR-2, SR144528, блокировало его. Был сделан вывод, что нейропротекторное действие WIN55212-2 опосредовано активацией CBR-2. Однако возможно, что активация CBR-1 играет нейропротекторную роль на более поздних стадиях заболевания (Baker et al., 2000; Maresz et al., 2007). В другом исследовании было показано, что трансгенные мыши с гиперэкспрессией CBR-2 более устойчивы к поведенческим и нейродегенеративным изменениям, вызванным интрацеребральным введением 6- гидроксидофамина. У трансгеных мышей были менее выражены реактивный астроглиоз, активация микроглии, изменения активности тирозингидроксилазы в черной субстанции и хвостатом ядре, моторные и эмоциональные изменения в поведении (Ternianov et al., 2012).

Таким образом, накоплен большой объем данных, свидетельствующих об эффективной защитной роли ЭКС при различных патологических состояниях нервной системы, однако многие эндоканнабиноиды, входящие в ее состав, пока остаются мало исследованными (Pertwee et al., 2010).

Одним из перспективных нейропротекторных соединений является N- арахидоноилдофамин (N-ADA). Ранее было показано, что N-ADA обладает антиоксидантными свойствами и оказывает защитное действие на культивируемые нейроны мозжечка крысы в моделях окислительного стресса, апопотоза и глутаматной токсичности (Bobrov et al., 2008). При моделировании NMDA-зависимой эксайтотоксичности in vitro N-ADA оказывал защитный эффект на клетки зубчатой извилины, причем его нейропротекторные свойства в низких (1 нмоль), но не высоких (10 ммоль) концентрациях блокировались антагонистом CBR-1, АМ251, и не проявлялись у CBR-1-нокаутных мышей. Антагонисты CBR-2 и TRPV1 не влияли на защитный эффект (Grabiec et al., 2012). Однако данные о механизмах нейропротекторного действия N-ADA на сегодняшний день остаются противоречивыми и являются предметом дальнейших исследований.

1.4 Роль эндоканнабиноидов в коррекции гипоксических/ ишемических состояний головного мозга

Гипоксия - широко распространенное состояние организма, возникающее как из-за дефицита кислорода во внешней среде, так и при самых различных патологиях, связанных с нарушениями кровообращения, дыхания и транспортной функции крови (Мухина, 2000). При гипоксии происходит снижение доставки кислорода к тканям до уровня, недостаточного для поддержания фунции, метаболизма и структуры клетки (Лукьянова, 1997). Кислородная недостаточность служит основой разнообразных патологических процессов, часто наблюдающихся в клинике, и является одной из центральных проблем медицины.

При любом виде гипоксии в основе всех характерных для нее изменений лежит нарушение системы окислительного фосфорилирования в митохондриях (Лукьянова с соавт., 2007). Энергодефицит при гипоксии способствует накоплению Са2+ в цитоплазме клеток, активации Cа2+- зависимых фосфолипаз, что ведет к распаду фосфолипидов клеточных мембран (Оковитый, Смирнов, 2001; Won et al., 2002).

Нарушение поступления кислорода к нервной ткани приводит к изменению процессов синаптической передачи, гибели клеток и разрушению нейронных сетей головного мозга. В постгипоксическом периоде наблюдаются также нарушения в системах вторичных мессенджеров, таких как аденилатциклазной и инозитолфосфотазной систем (Nagakura, 2002; Чеснокова, 2006), что может играть определенную роль в отсроченной гибели нейронов. Изменяется активность таких ферментов, как МАО и аминотрансфераза (Рубанова с соавт., 1991, Захарова, 1991). В совокупности все дегенеративные процессы приводят к избирательной гибели нейронов. Гипоксия может сопровождаться исчезновением целого слоя пирамидных нейронов гиппокампа (Проблемы гипоксии… под ред. Лукьяновой, Ушакова, 2004). Избирательно повреждается неокортекс, особенно сенсомоторный, а также гиппокамп (Netto et al., 1993; Hodges et al., 1996; Virley et al., 1999). В подкорковых структурах, в частности, в базальных ганглиях, также отмечаются значимые повреждения. Суммарно все эти изменения приводят к мнестическим и когнитивным патологиям (Netto et al., 1993; Yamamoto et al., 1993; Karasava et al., 1994; Tanaka et al., 1998; Nagakura, 2002).

В зависимости от причин и механизма развития различают следующие основные типы гипоксии:

1. Экзогенная гипоксия, которая возникает при действии на систему обеспечения кислородом внешних факторов, и, в свою очередь, подразделяется на несколько типов:

а) гипоксический тип (гипо- и нормобарический);

б) гипероксический тип (гипер- и нормобарический).

2. Респираторная (дыхательная) гипоксия.

3. Циркуляторная (сердечнососудистая) гипоксия/ишемия.

4. Гемическая гипоксия, возникающая при анемии и вследствие инактивации гемоглобина.

5. Цитологическая гипоксия, возникающая при нарушении способности тканей поглощать кислород или при разобщении окисления и фосфорилирования (гипоксия разобщения).

6. Субстратная гипоксия (развивается на фоне дефицита энергетических субстратов).

7. Перегрузочная гипоксия ("гипоксия нагрузки"), возникающая при увеличении нагрузки на систему обеспечения кислородом;

8. Смешанная гипоксия (возникает при сочетании нескольких форм гипоксии).

Независимо от этиологии гипоксических состояний, в развитии и исходе основного патологического процесса решающую роль играет насыщение тканей кислородом и его участие в метаболических процессах (Проблемы гипоксии..., 2004; Лукьянова с соавт., 2007).

Поиск способов коррекции повреждающего действия гипоксии является весьма актуальной задачей медицины и нейробиологии. В большинстве экспериментальных моделей гипоксии in vivo используют модель циркуляторной гипоксии (локальной ишемии) либо острой или хронической гипобарической гипоксии. Наиболее подходящим условием для изучения молекулярных и клеточных нейропротекторных механизмов служит моделирование гипоксической гипоксии in vitro. Как правило, для осуществления методики in vitro используются специальные инкубаторы, в которых можно вытеснять кислород при помощи вакуумного насоса.

В экспериментах по моделированию циркуляторной гипоксии in vivo было показано, что ЭК, в том числе и N-ADA, способствуют защите нейронов от повреждений. Так, было обнаружено нейропротекторное действие синтетического каннабиноида WIN55212-2 при ишемическом повреждении мозга, причем снижение объема очага инфаркта блокировалось антагонистом CBR-1 римонабантом (Nagayama et al., 1999). Также одними из наиболее убедительных свидетельств нейропротекторного действия каннабиноидов, реализующегося через СВR-1, являются исследования, показавшие, что у мышей, нокаутных по гену CB1-/-, больше площадь очага инфаркта, ниже кровоток в области пенумбры и более выражен неврологический дефицит при окклюзии средней мозговой артерии, чем у гетерозигот CB1-/+ и у мышей дикого типа (Parmentier-Batteur et al, 2002). Кроме того, нокаутные животные были более чувствительны к эксайтотоксичности, вызванной глутаматом, инъецировынным непосредственно в кору головного мозга, и к оксидативной травме при интрацеребральном введении FeCl2 (Parmentier-Batteur et al, 2002; Kim et al., 2005). При фокальном ишемическом повреждении, индуцированном фототромбозом кровеносных сосудов коры головного мозга крысы, N-ADA препятствовал увеличению объёма очага инфаркта (Бобров с соавт., 2011; Генрихс, 2012). Такое же нейропротекторное действие оказывали и N- ацилэтаноламины, в частности, пальмитоилэтаноламин. Интересным представляется тот факт, что блокада СВR-1 и TRPV1 не препятствовала способности пальмитоилэтаноламина снижать объем очага инфаркта и неврологический дефицит у животных, подвергшихся воздействию ишемии/реперфузии. Применение пальмитоилэтаноламина существенно уменьшало развитие апоптоза и предотвращало вызванное ишемией увеличение экспрессии ряда белков, в том числе индуцибельной NО синтазы и фактора транскрипции NFkB (Garq et al., 2010).

Исследования in vitro, проведенные Grabiec с коллегами, выявили, что аппликация N-ADA при моделировании NMDA-эксайтотоксичности на органотипических срезах гиппокампа предотвращает дегенерацию и гибель клеток-зерен зубчатой извилины и снижает количество клеток микроглии. Применение антагониста CBR-1 АМ630 полностью блокировало нейропротекторный эффект, оказываемый малыми дозами N-ADA, но эффект высоких доз сохранялся. Антагонисты CBR-2 и TRPV1 не оказывали влияния на нейропротекторный эффект N-ADA. У CBR-1-нокаутных мышей N-ADA протективного действия не оказывал (Grabiec et al., 2012). При индукции апоптоза и цитотоксическом действии глутамата в культуре клеток мозжечка и новой коры N-ацилдофамины оказывали дозозависимый нейропротекторный эффект, опосредуемый CBR-2 (Генрихс с соавт., 2010). Однако оценка воздействия N-ADA на сохранение когнитивных, мнестических и поведенческих функций при ишемических и гипоксических поражениях ЦНС на сегодняшний день не проводилась.

Показано, что активация CBR-2-cелективными агонистами уменьшает воспалительные реакции, сопровождающие различные повреждения ЦНС. Продемонстрирован нейропротекторный эффект синтетического селективного агониста CBR-2 О-1966 при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите и при моделировании церебральной ишемии/реперфузии у мышей. Было обнаружено снижение адгезии лейкоцитов к капиллярам мозга, уменьшение инвазии иммунных клеток в паренхиму мозга и улучшение неврологических функций после инсульта. Применение агонистов CBR-2 препятствовало увеличению объема очага инфаркта через 24 часа после реперфузии (Zhang et al., 2009), а в присутствии антагониста CBR-2 SR144528 очаг инфаркта увеличивался. Антагонист CBR-1 SR141716А также оказывал нейропротекторный эффект, снижая объем очага инфаркта. Совместное применение селективного агониста CBR-2 и антагониста CBR-1 вызвало усиление мозгового кровотока во время периода окклюзии сосудов (Zhang et al., 2008). Аналогичные данные, свидетельствующие о нейропротекторном действии антагонистов CBR-1 при ишемии головного мозга, приводят и другие авторы (Berger et al., 2004; Muthian et al, 2004). Существует несколько объяснений подобного расхождения результатов. Один из возможных вариантов может быть связан с температурным режимом. Существует большое число работ, в которых активация CBR-1 не оказывала защитного эффекта при поддержании нормальной температуры тела у животных. Предполагается, что протекторный эффект связан с гипотермией, вызываемой активацией CBR-1 (Leker et al., 2003; Hayakawa et al., 2004). У CBR-1-нокаутных животных возможны нарушения при развитии ЦНС, которые усиливают чувствительность к ишемии. При этом нейропротекторный эффект антагониста CBR-1 SR141716A связан со свойствами самой молекулы антагониста, а не с блокированием рецепторов.

В целом экспериментальные данные свидетельствуют о том, что каннабиноиды, и, в частности, N-ADA, могут обладать потенциальным терапевтическим потенциалом, предотвращая патологические изменения клеток, инициирующие нейродегенеративные процессы, и таким образом способствуя восстановлению нормальных функций мозга (Campbell et al., 2008). Однако в связи с неоднозначностью экспериментальных данных требуются дальнейшие исследования нейропротекторных и антигипоксических свойств эндоканнабиноидов, и, в том числе, N-ADA in vitro и in vivo для раскрытия механизмов их действия, что может явиться основой разработки новых лекарственных средств для коррекции ишемических и гипоксических повреждений нервной системы. Одним из адеватных методов оценки изменений функционального состояния нейронов при действии патогенетических факторов гипоксии/ишемии и фармакологической коррекции этих изменений является исследование биоэлектрической активности нейронных сетей, культивируемых на мультиэлектродной матрице.

1.5 Изучение сетевой активности нейронов

Нейронная сеть мозга является структурно-функциональной единицей, отвечающей за процессы обработки, хранения и воспроизведения информации. Одним из маркеров функционирования нейронной сети является ее спонтанная биоэлектрическая активность, имеющая свои закономерности развития в онтогенезе и под воздействием факторов окружающей среды. В настоящее время наиболее оптимальной методикой изучения нейрональной активности на сетевом уровне является мультиэлектродная система регистрации внеклеточных потенциалов действия (multielectrode arrays) (Мухина с соавт., 2009).

Нейроны гиппокампа после нескольких дней культивирования на мультиэлектродной матрице образуют между собой синаптические связи, о чем свидетельствует генерирование клетками случайных спайков (внеклеточных потенциалов действия) и типичных паттернов электрической активности в виде спайков (Gross and Kowalski, 1999). Спонтанная биоэлектрическая активность нейронов в культурах с высокой плотностью клеток отличается склонностью к синхронизации. В зависимости от возраста культуры, условий культивирования, фармакологических воздействий происходит изменение рисунка пачки (Boehler et al., 2007; Xiang et al., 2007; Ham et al., 2008).

Сетевая пачечная активность - это моментальная пространственно- временная последовательность внеклеточных потенциалов действия (спайков) одного или нескольких нейронов, детектируемая на внеклеточных электродах, с короткими межспайковыми интервалами (Li et al., 2007; Madhavan et. al., 2007).

Пачка (Burst) внеклеточно регистрируемых спайков характеризуется следующими признаками:

1. Количество спайков в пачке не менее 4.

2. Межспайковый интервал не более 100 мс (частота более 10 Гц).

3. Наличие пространственной и временной синхронизация пачечной активности в нейронной сети (Madhavan et. al., 2006; Pimashkin et al., 2011).

В отличие от традиционных электрофизиологических методов, применение данной методики имеет ряд преимуществ:

1. Клеточная неинвазивность, отсутствие необходимости помещать электроды вручную.

2. Возможность одновременной регистрации сигналов и стимуляции клеток.

3. Возможность проведения хронических экспериментов (месяцы).

4. Изучение нейрофизиологии сетей.

5. Возможность фармакологических манипуляций, в том числе, лекарственный скрининг.

Использование мультиэлектродных матриц дает уникальную возможность совмещения электрофизиологических методов с методами прижизненной визуализации (в частности, конфокальной лазерной микроскопии, КФЛМ) с использованием трансгенных флуоресцентных белков, ионных индикаторов. Совмещение культуры клеток с мультиэлектродной системой регистрации и стимуляции активности нейронов позволяет моделировать в динамике различные стадии развития нейронных сетей, а также может быть использовано для изучения на клеточном и сетевом уровне таких свойств нервной системы, как научение и память (Мухина с соавт., 2009).

2. Объект и методы исследования

2.1 Объект исследования

Объектом исследований in vitro служили первичные диссоциированные культуры клеток гиппокампа, полученные от 18-дневных мышиных эмбрионов линии CBA (вид Mus musculus). Всего в экспериментах была использована 361 культура.

В опытах in vivo использовано 116 4-х недельных самцов мышей линии C57BL/6. Основные правила содержания и ухода за экспериментальными животными соответствовали нормативам, указанным в Приказе Минздрава России № 708н от 23.08.10 «Об утверждении Правил лабораторной практики» и были согласованы с этическим комитетом при ГБОУ ВПО НижГМА Минздрава России.

2.2 Схема экспериментов

2.2.1 Схема экспериментов in vitro

Распределение экспериментальных групп представлено в табл.1. Культуры подвергали гипоксии на 21-й день in vitro (DIV). В интактной группе культур осуществлялась смена нормоксической культуральной среды. В культурах контрольной группы нормоксическую среду на 10 минут заменяли на гипоксическую, затем клетки возвращали нормоксическую среду, т.е. подвергали реоксигенации. В культуры других групп во время гипоксии, при реоксигенации и в течение суток после нее добавляли N-ADA 2,5 и 10 мкМ (синтезирован в лаборатории оксилипинов ИБХ РАН) и N-ADA в комбинации с антагонистом CBR-1, SR141716A (Sanofi), 1 мкМ, антагонистом CBR-2, SR144528 (Sanofi), 1 мкМ и антагонистом TRPV1, капсазепином (Tocris), 1 мкМ.

Таблица 1

Распределение экспериментальных групп in vitro

Серия

Название группы

DIV

Количество культур

Влияние N-ADA на

спонтанную биоэлектрическую активность диссоциированных культур гиппокампа при гипоксии

Интактные

21-28

5

Контрольные (гипоксия без

N-ADA)

5

N-ADA 2,5 мкМ

5

N-ADA 10 мкМ

5

N-ADA 10 мкМ +

SR141716A 1 мкМ

5

N-ADA 10 мкМ + SR144528

1 мкМ

5

N-ADA 10 мкМ +

капсазепин 1 мкМ

5

Влияние N-ADA на

спонтанную кальциевую активность клеток диссоциированных культур гиппокампа при гипоксии

Интактные

21, 28

15

Контроль (гипоксия без N-

ADA)

15

N-ADA 2,5 мкМ

10

N-ADA 6 мкМ

10

N-ADA 10 мкМ

15

Влияние N-ADA на

выживаемость нервных клеток в диссоциированных культурах гиппокампа при гипоксии

Интактные

21, 22,

24, 28,

31

40

Контроль (гипоксия без N-

ADA)

40

N-ADA 10 мкМ

40

N-ADA 10 мкМ +

SR141716A 1 мкМ

40

N-ADA 10 мкМ + SR144528

1 мкМ

40

N-ADA 10 мкМ +

капсазепин 1 мкМ

40

Влияние N-ADA на

экспрессию CBR при гипоксии

Интактные

28

21

Контрольные (гипоксия без

N-ADA)

N-ADA 10 мкМ

активность нейронной сети, регистрировали непосредственно до гипоксии, во время нее, после реоксигенации, через 2 часа и через каждые 24 часа в течение 7 дней после гипоксии.

Спонтанную кальциевую активность регистрировали при гипоксии и на 7 сутки постгипоксического периода. Оценка жизнеспособности культур осуществляли до гипоксии, на 1, 3, 7 и 10 сутки постгипоксического периода. Иммуноцитохимические исследования проводили на 7 сутки после гипоксии.

2.2.2 Схема экспериментов in vivo

Предварительно проводилась оценка двигательных и ориентировочно- исследовательских показателей у животных. На следующий день после теста начинались сеансы навигационного научения в "водном лабиринте" Морриса, с перерывом в 48 часов. Через 24 часа после окончания пятого сеанса обучения животных подвергали острой гипобарической гипоксии (ОГБГ). Предварительно за 45 мин до подъема на высоту внутрибрюшинно вводили N-ADA в различных дозах (2,5 мг/кг, 6 мг/кг и 10 мг/кг), а также в комбинациях с блокаторами CBR-1 (SR141716A 1 мг/кг), CBR-2 (SR144528 1 мг/кг) и TRPV1 (капсазепин 1мг/кг). Животным контрольных групп внутрибрюшинно вводили физиологический раствор и растворитель N-ADA без препарата, группе сравнения - внутрибрюшинно Реамберин (150 мг/кг) как антигипоксический препарат. Через 24 часа после ОГБГ у выживших животных определяли отсроченный коэффициент сохранения долговременной памяти, а также оценивали двигательные и ориентировочно- исследовательские показатели с повтором на 7 и 14 сутки после ОГБГ. Интактной группе проводили тестирование только двигательной активности по методике «открытое поле». Для контроля собственно действия N-ADA была протестирована группа животных, получивших внутрибрюшинную инъекцию N-ADA (6 мг/кг), но не подвергавшихся действию ОГБГ (табл. 2).

Таблица 2

Распределение групп животных и методик оценки антигипоксического действия N-ADA in vivo

Название группы

Тест

«Открытое поле»

Тест

«Водный лабиринт Морриса»

ОГБГ

Количество животных

Интактные

+

-

-

10

N-ADA, 6 мг/кг

+

+

-

10

Контроль

(физ.раствор)

+

+

+

10

Контроль 2

(растворитель)

+

+

+

10

Группа сравнения

(реамберин)

+

+

+

10

N-ADA, 2,5 мг/кг

+

+

+

13

N-ADA, 6 мг/кг

+

+

+

10

N-ADA, 10 мг/кг

+

+

+

13

N-ADA, 6 мг/кг +

SR141716A

+

+

+

10

N-ADA, 6 мг/кг +

SR144528

+

+

+

10

N-ADA, 6 мг/кг +

капсазепин

+

+

+

10

2.3 Культивирование первичных диссоциированных клеток гиппокампа

Диссоциированные клетки гиппокампа культивировали в течение 21-28 дней in vitro (DIV). Для исследования спонтанной биоэлектрической активности культуры выращивали на мультиэлектродных матрицах систем MEА60 (Multichannel Systems, Германия) и MED64 (AlfaMed Science, Япония). Для исследования кальциевой активности и проведения иммуноцитохимических исследований клетки культивировали на покровных стеклах размером 18х18 мм, для оценки жизнеспособности культур - на 48-луночных планшетах (Сostar).

Перед извлечением гиппокампа беременную мышь (Е18) эвтаназировали дислокацией шейных позвонков, извлекали матку с эмбрионами, из каждого эмбриона выделяли головной мозг, который помещали в стерильный раствор Хенкса. После извлечения гиппокампов их механически измельчали, измельченную ткань подвергали ферментативной обработке, помещая ее в 0,025% растворе трипсина на 20 мин в СО2-инкубатор при 35,5оС, затем тщательно промывали в фосфатном буфере, суспендировали пастеровской пипеткой в питательной среде: 92,5% нейробазальной среды NBM (Neurobasal medium, Invitrogen, США), 5% эмбриональной телячьей сыворотки FCS (ПанЭко, Россия), 2% биоактивной добавки B27 (Invitrogen, США) и 0,5% L-глутамина (Invitrogen, США), центрифугировали 1 мин при 1500 об/мин, удаляли супернатант, осажденную ткань промывали питательной средой и ресуспендировали. Полученную суспензию клеток использовали для культивирования на квадратных покровных стеклах (18х18 мм), помещенных в чашки Петри диаметром 30 мм, в 48-луночных планшетах или на мультиэлектродных матрицах, предварительно обработанных адгезивным субстратом (полиэтиленимином) в концентрации 0,5 мг/мл. В центр каждого стекла, лунки или матрицы наносили по 40 мкл суспензии и через 2 часа, после прикрепления клеток к субстату, к ним добавляли по 1 мл питательной среды. Культуры помещали в СО2-инкубатор (5% СО2 и 95% атмосферного воздуха) при температуре 35,5оС. Через день после посадки половину среды во всех культурах заменяли на среду с низким содержанием сыворотки (94,5% NBM, 4% B27, 1% L-glutamin, 0,5% FCS). Каждые 3 дня в культурах на стеклах, в планшетах и на матрицах объем питательной среды по мере необходимости доводили до исходного (Мухина с соавт., 2009).

2.4 Методы оценки сетевой активности нейронов in vitro

2.4.1 Спонтанная биоэлектрическая активность

2.4.1.1 Мультиэлектродные матрицы MED64 и MEA60

Мультиэлектродная система MED64, основанная на технологии плоских микроэлектродов, позволяет непрерывно и неинвазивно регистрировать от различных участков препарата спонтанную и вызванную биоэлектрическую активность нейронов в виде внеклеточных потенциалов. Благодаря низкому импедансу микроэлектродов, регистрация активности осуществляется с низким уровнем шума. Мультиэлектродная система состоит из четырех компонентов: усилитель, зонд, коннектор, и набор программного обеспечения Conductor™ для получения данных. Стеклянное основание зонда (50x50x0,7мм) содержит цилиндрическую камеру диаметром 22 мм и высотой 5 мм, в центре которой на площади 1 мм2 расположена 64-электродная матрица для регистрации спонтанной активности и электрической стимуляции нейронов. Квадратные микроэлектроды состоят из прозрачного оксида индия и олова (Indium Tin Oxide, ITO), покрытого черной платиной (рис. 6). Размер электродов - 50х50 мкм, межэлектродное расстояние - 100 мкм. Изолирующее покрытие - полиакриламид.

В возбужденном состоянии нейроны создают потоки ионов через мембраны, изменяя напряжение внутри и снаружи клетки. При регистрации активности нейронов электроды на MEA преобразовывают изменение напряжения окружающей среды (ионные потоки) в потоки, переносимые электронами (электрический ток).

Рисунок 6 Общий вид подложки с электродами, расположение электродов на мультиэлектродной матрице MED64 (Alfa Med Science, Япония) и их структура (пояснения в тексте)

При регистрации электрической активности амплитуда потенциала на электроде находится в обратной зависимости от расстояния от этого электрода до клетки, продуцирующей потенциал. Таким образом, клетки по возможности должны находиться к электроду как можно ближе, что в случае диссоциированных культур достигается применением опорного субстрата, усиливающего адгезию клеток, например, полиэтиленимина.

Второй использованной мультиэлектродной системой являлась MEA60 (Multichannel Systems, Германия) - аналог системы MED64, состоящий из 60 планарных круглых электродов, каждый диаметром 30 мкм, с межэлектродным расстоянием 200 мкм. Электроды сделаны из нитрида титана и изолированы нитридом кремния, что позволяет MEA60 подвергать стерилизации при высоких температурах перед посадкой культур и использовать их длительное время.

2.4.1.2 Регистрация и анализ спонтанной сетевой биоэлектрической активности нейронов

Спонтанную биоэлектрическую активность нейронов регистрировали с использованием мультиэлектродной системы MED64 и MEA60 при стандартных условиях окружающей среды: температура, содержание углекислого газа и кислорода, влажность. Для получения данных использовали набор программного обеспечения Conductor™ (Alpha Med Science, Япония) и MC RackTM (Multichannel Systems, Германия).

Анализ спонтанной активности нейронов производили с использованием программы MATLAB и оригинального пакета алгоритмов MEAMAN. Детектирование спайков (внеклеточных потенциалов действия) шло по следующему алгоритму: выбиралась граница равная 8у, где у - среднеквадратичное число. Если амплитуда спонтанной активности превышало это число, то считалось, что данное событие - спайк, если не превышало, активность распознавалась как шум и не учитывалась при анализе данных. Далее по определенным алгоритмам программа детектировала количество пачек спайков в записи, высчитывала средний межпачечных интервал, среднее количество спайков в пачке, среднюю длительность пачки. Для разделения различных этапов записи программа снабжена функцией удаления спайков за определенный промежуток времени.

2.4.2 Функциональный кальциевый имиджинг

Для имиджинговых исследований функциональной активности по параметру изменений [Ca2+]i, отражающих функциональное состояние кальциевого гомеостаза клеток, использовался лазерный сканирующий микроскоп LSM 510 (Zeiss, Германия). Методика позволяла визуализировать функциональную архитектуру нейрональной сети культуры на клеточном уровне. В качестве флуоресцентных зондов были выбраны специфический кальциевый краситель Oregon Green 488 BAPTA-1 АМ (OGB1) (Invitrogen) с константой диссоциации Кd=170 нМ, возбуждаемый линией излучения аргонового лазера 488 нм, и Са2+-нечувствительный краситель Sulforhodamine 101 (SR101) (Sigma), возбуждаемый излучением гелий- неонового лазера 543 нм, селективно маркирующий глиальные клетки (Nimmerjahn et al., 2004; Paredes et al., 2008). Эти длины волн близки к максимумам спектров поглощения соответствующих красителей. Излучение флуоресценции разделялось по каналам регистрации с помощью дихроичных зеркал и светофильтров с полосой пропускания 650-710 нм для выделения флуоресценции SR101 и 500-530 нм для выделения флуоресценции OGB1 (Митрошина с соавт., 2011).

Регистрировались временные серии изображений поля флуоресценции красителей Sulfophodamine 101 (SR101) как глиального маркера, и OGB1 как индикатора свободного кальция. Первичная обработка полученных изображений заключалась в разделении спектров этих красителей в разные каналы регистрации для идентификации нейрональных и глиальных клеток и записи функции F(t) средней интенсивности флуоресценции OGB1 выделенной области поля (совпадающей, как правило, с телом или частью отростка клетки) от времени. Интенсивность флуоресценции (усл. ед.) показывала зависимость [Ca2+]i от времени, свидетельствующую о метаболической активности клеток, связанных в сети определенной архитектуры. Выделение кальциевых осцилляций, полученных при помощи флуоресцентной конфокальной микроскопии, проводили с использованием оригинального программного пакета «Astroscanner». Анализировались записи функции F(t) средней интенсивности флуоресценции OGB1 выделенной области поля (совпадающей, как правило, с телом или частью отростка клетки) от времени. Для определения времени начала (Tstart) и конца (Tend) осцилляции был взят порог отклонения от среднего значения в размере стандартной квадратичной ошибки F(t). Отмечалось также время достижения максимальной интенсивности флуоресценции (Tmax) для каждой осцилляции. Учитывались следующие параметры: длительность достижения максимума (длительность «фронта» осцилляции), общая длительности осцилляции и интервалы между максимумами (Митрошина с соавт., 2011; Захаров с соавт., 2012; Zakharov et al., 2013).

Исследование влияния N-ADA на спонтанную кальциевую активность проводилось на 21-й DIV после 10-минутного гипоксического воздействия. Опытным группам при замене среды на гипоксическую, при реоксигенации и на следующие сутки проводилась аппликация N-ADA в разных концентрациях, а также аппликация N-ADA в сочетании с антагонистами CBR. К контрольной группе культур исследуемые вещества не добавлялись. В интактной группе осуществлялась полная смена нормоксической среды. Функциональный кальциевый имиджинг проводился во время моделирования гипоксии и на 7 сутки постгипоксического периода (табл. 1).

2.5 Иммуноцитохимические методы

Для характеристики состояния ЭКС при гипоксии в культуре клеток гиппокампа было проведено иммуноцитохимическое маркирование CBR-1 и CBR-2. Для маркирования CBR-1 использовались первичные кроличьи антитела (Аbcam) и вторичные козьи антитела, конъюгированные с Alexa 555 (Invitrogen), для маркирования CBR-2 - первичные козьи антитела (Sigma) и вторичные куриные антитела, конъюгированные с Alexa 555 (Invitrogen). Для идентификации глиальных клеток использовали первичные куриные антитела к глиальному фибриллярному кислому белку (GFAP) (Аbcam) и вторичные ослиные антитела, конъюгированные с Alexa 430 (Invitrogen). Нейроны маркировались мышиными антителами к белку цитоскелета MAP2 (Millipore) и вторичными ослиными антителами, когъюгированными с Alexa 647 (Invitrogen).

После 15-минутной фиксации в 4% параформальдегиде культуры трижды отмывали фосфатным буферным раствором (PBS) (Sigma), затем в течение 30 минут проводили демаскирование антигенов 0,03% раствором тритона Х100. После демаскировки культуры гиппокампа в течение 2 часов инкбировали во влажной камере с раствором первичных антител с 1% бычьим сывороточным альбумином при комнатной температуре. Затем после трехкратной промывки PBS культуры в течение 2 часов инкубировали с раствором вторичных антител с 5% бычьим сывороточным альбумином во влажной камере. После отмывки вторичных антител проводили визуализация полученных результатов.

Для визуализации использовали конфокальный микроскоп LSM 510 (Zeiss, Германия). Максимальное значение коэффициента поглощения флуоресцентного маркера Alexa 647, с помощью которого визуализовались нейроны, регистрировалось при длине волны 647 нм, излучения - 668 нм. Флуоресценция маркера возбуждалась излучением аргонового лазера 633 нм выделялась полосовым светофильтром 650 - 710 нм и отображалась на экране монитора красным цветом. Для Alexa 430 максимальное значение коэффициента поглощения регистрируется при длине волны 434 нм, излучения - 539 нм. Флуоресценция маркера возбуждалась излучением гелий-неонового лазера 543 нм, выделялась полосовым светофильтром 500- 530 нм и выводилась на экран синим цветом. Для Alexa 555 максимальное значение коэффициента поглощения регистрируется при длине волны 555 нм, излучения - 565 нм. Флуоресценция возбуждалась излучением аргонового лазера 488 нм, выделялась полосовым светофильтром 500-550 нм и выводилась на экран зеленым цветом.

Для исследования влияния N-ADA на экспрессию CBR при гипоксии, кульуры на покровных стеклах на 21-й DIV подвергали 10-минутному гипоксическому воздействию. В культуры опытных групп при замене среды на гипоксическую, при реоксигенации и на следующие сутки вводили N- ADA 10 мкМ. К культуры контрольной группы исследуемые вещества не добавлялись. В интактной группе осуществляли полную смену нормоксической среды. Иммунногистохимическое окрашивание проводили на 7 сутки постгипоксического периода (табл. 1). Для анализа полученных иммуноцитохимических результатов использовали программу ImageJ, для статистической обработки данных SigmaPlot 11.0.

2.6 Оценка жизнеспособности культивируемых клеток в диссоциированной культуре

Оценка жизнеспособности клеток, культивируемых в 48-луночных планшетах, проводилась в период нормоксии (21 DIV) и через 1, 3, 7 и 10 суток после гипоксического воздействия. В культуры опытных группа при замене среды на гипоксическую, при реоксигенации и на следующие сутки добавляли N-ADA в разных концентрациях, а также N-ADA в сочетании с антагонистами CBR. В культуры контрольной группы исследуемые вещества не добавлялись.

Для оценки жизнеспособности культур их окрашивали пропидий иодидом (Sigma) и бис-бензимидом (Sigma) с целью идентификации ядер погибших клеток и общего количества клеток в культуре, соответственно. С помощью флуоресцентного инвертированного микроскопа DMIL HC (Leica, Германия) осуществлялся подсчет числа клеточных ядер, окрашенных пропидий иодидом и бис-бензимидом. Максимальный коэффициент поглощения у пропидий иодида регистрировался при 488 нм, флуоресцирует данный краситель в красной области спектра, максимум эмиссии составляет 562-588 нм. Максимальный коэффициент поглощения бис-бензимида регистрировался при 350 нм, флуоресценция регистрировалась в диапазоне 510-540 нм.

Количество живых клеток рассчитывалось как разница между числом бис-бензимид-позитивных и пропидий иодид-позитивных клеток (Ведунова с соавт., 2012, 2013).

2.7 Моделирование нормобарической гипоксии in vitro

Гипоксию in vitro моделировали на 21-й DIV путем замены на 10 минут нормоксической культуральной среды на среду без кислорода. Для вытеснения кислорода из среды ее насыщали инертным газом аргоном, способным вытеснять кислород из жидкостей за счет большей растворимости по сравнению с кислородом. Химическая инертность аргона обеспечивает адекватные условия для проведения эксперимента. Аргон подавали из баллона по газоотводной трубке с иглой на конце, под давлением 1-1,5 МПа, течение 10 мин в среду, помещенную в герметичный сосуд. Для того, чтобы в сосуде не накапливалось избыточное давление, выше уровня жидкости находился конец второй иглы, соединенной с выводящей газоотводной трубкой.

Концентрация растворенного кислорода в среде определяли методом йодометрического титрования (метод Винклера) (Лурье, 1973). Данный метод основан на способности гидроксида марганца (II) окисляться в щелочной среде до гидроксида марганца (IV), количественно связывая при этом кислород. В кислой среде гидроксид марганца (IV) снова переходит в двухвалентное состояние, окисляя при этом эквивалентное связанному кислороду количество йода. Выделившийся йод оттитровывают раствором тиосульфата натрия в присутствии крахмала в качестве индикатора. При насыщении среды инертным газом содержание кислорода снижалось с 3,26 мл/л (нормоксия) до 0,37 мл/л (гипоксия). Для предотвращения насыщения среды кислородом воздуха, культуры помещали в гипоксическую камеру, представляющей собой пластиковую чашку Петри (Corning) диаметром 100мм с двумя вмонтированными пластиковыми штуцерами для подключения газовых шлангов. Для герметизации нижняя часть чашки Петри проклеена уплотнительной резиной. К первому штуцеру присоединен шланг, который через редуктор соединен с газовым баллоном. Ко второму штуцеру присоединен газоотводный шланг. После замены нормоксической среды на гипоксическую культуру помещали в камеру, после чего в течение 1 мин через камеру пропускали аргон при открытом газоотводном шланге. Затем перекрывали сначала газоотводный шланг, а потом шланг, по которому поступал аргон. В таком положении камера с помещенной в нее клеточной культурой оставалась еще на 9 минут. Суммарное время гипоксичекого заменяли гипоксическую среду на нормоксическую (Ведунова с соавт., 2012, 2013).

Исследуемые вещества добавляли в гипоксическую среду при гипоксии и в течение первых суток после нее. Параметры спонтанной биоэлектрической активности, характеризующие реакцию нейронов на гипоксию, регистрировали сразу после реоксигенации, через 2 часа и каждые 24 часа в течение 7 дней после гипоксии.

2.8 Моделирование острой гипобарической гипоксии in vivo

Для моделирования острой гипобарической гипоксии (ОГБГ) in vivo использовалась вакуумная проточная барокамера при внешней температуре 20-22оС. Мыши помещались в условия, соответствующие подъему на высоту 10000--10500 м со скоростью 183 м/с (Мет. рекомендации...... под ред. Лукьяновой, 1990).

Регистрируемыми параметрами являлись:

1. Время жизни (Тж, мин) на «смертельной площадке», отсчитывается от момента подъема на площадку до наступления летального исхода, либо появления второго агонального вдоха;

2. Время потери позы (Тпп, мин), период от начала подъема в барокамере до момента, когда животное принимает боковое положение и утрачивает способность поддерживать позу;

3. Время восстановления позы (Твп, мин), период времени от остановки дыхания до момента, когда животное при немедленном «спуске» на землю снова приобретает способность стоять на конечностях;

4. Коэффициент защиты (Кз), рассчитываемый по выживаемости животных, оценивается по количеству животных, которые выдержали пребывание на «смертельной площадке» в течение 10 мин

Кз = (а/б+1)/(в/д+1),

где а и б -- число выживших животных в опытной и контрольной группах, в и д -- общее число животных в опытной и контрольной группах соответственно (Методические рекомендации по экспериментальному изучению препаратов, предлагаемых для клинического изучения в качестве антигипоксических средств, 1990).

При моделировании ОГБГ в популяции животных встречались особи, низкоустойчивые к гипоксии (НУ) с Тж менее 3 мин, среднеустойчивые с Тж от 3 до 9 мин и высокоустойчивые, которые выживал на «высоте» более 10 мин без видимых проявлений гипоксического повреждения. Эффективность антигипоксически свойств оценивали по изменению времени жизни опытных животных на «смертельной площадке» относительно времени жизни контрольных животных.

2.9 Методы оценки антигипоксического и нейропротекторного действия исследуемого соединения при моделировании острой гипобарической гипоксии in vivo

2.9.1 ст «открытое поле»

Установка для теста «открытое поле» представляет собой круглую камеру диаметром 90 см с пластиковыми стенками высотой 28 см. Пол изготовлен из белого пластика, на нем черной краской нанесена решетка, делящая его на 25 равных квадратов со стороной 15 см. Лампы накаливания (4 лампы по 75 Вт) располагаются по кругу диаметром 60 см на высоте 80 см от поверхности поля. Освещенность площадки во время опыта 200 Лк.

Животное помещалось в центральный квадрат и за ним велось наблюдение. Визуально подсчитывалось количество отдельных поведенческих актов (Буреш с соавт., 1991).

С целью определения ориентировочно-исследовательской активности животных в «открытом поле» регистрировались следующие показатели поведенческой активности мышей: горизонтальная двигательная активность (ГДА) - число пересеченных квадратов в «открытом поле»; вертикальная двигательная активность (ВДА) - число стоек-подъемов на задние лапы. Также отмечались реакции принюхивания, замирания, верчения, пячения, акты груминга и дефекации.

2.9.2 Тест «Водный лабиринт Морриса»

Для оценки способностей животных к формированию и сохранению пространственной долговременной памяти применялось тестирование в водном лабиринте Морриса. Лабиринт представляет собой циркулярный бассейн (диаметром 90 см), заполненный непрозрачной водой, в которую погружена небольшая платформа (диаметром 10 см), не видимая животному. Протокол теста состоял из пяти сеансов обучения, по пять попыток в каждом. Сеансы проводились в одно и то же время суток через 48 часов. Помещение животных с края бассейна в течение всего эксперимента производилось в одном и том же секторе лабиринта, выбранного случайным образом. Максимальная длительность первого сеанса составляла 90с. В том случае, если животное не могло самостоятельно найти платформу, экспериментатор помогал ему. После обнаружения платформы животное находилось на ней 30с. Последующие 4 сеанса по продолжительности составляли 60с. В случае не обнаружения платформы животное вынималось из бассейна и находилась за границами лабиринта в течение 30 с. Расположение платформы за все время проведения теста не менялось и находилось в противоположном от запуска животного секторе на границе зоны тигмотаксиса (Morris, 1982;


Подобные документы

  • Общее описание и строение гиппокампа человека, его роль в пространственной памяти и при ориентации. Гиппокамп как когнитивная карта. Учёные из СССР, изучавшие данные явления. Важные направления когнитивной нейробиологии. Модульная организация клеток.

    курсовая работа [1,3 M], добавлен 10.11.2015

  • Метод пульс-электрофореза для разделения ДНК индивидуальных хромосом. Выделение ДНК из клеток, лишенных клеточной стенки и измерение конечной концентрации ДНК. Выделение ДНК из культивируемых клеток: лимфоцитов, прокариот, грибов и растительных клеток.

    контрольная работа [576,0 K], добавлен 11.08.2009

  • Дефицит кислорода как стрессовый фактор для растений. Энергетическое состояние клетки в условиях гипоксии. Проведение полимеразной цепной реакции в реальном времени. Динамика активности фумаратгидротазы в зеленых листья кукурузы в условиях гипоксии.

    курсовая работа [325,9 K], добавлен 09.08.2016

  • Основные функции бокаловидных клеток как клеток эпителия слизистой оболочки кишечника и других органов позвоночных животных и человека. Форма клеток и особенности их локализации. Секрет бокаловидных клеток. Участие бокаловидных клеток в секреции слизи.

    реферат [2,9 M], добавлен 23.12.2013

  • Методы трансгенеза в животноводстве. Использование половых клеток семенников. Факторы повышения экспрессии трансгенов в организме животных. Особенности пересадки ядер клеток, культивируемых in vitro. Перспективы генно-инженерных работ в животноводстве.

    реферат [38,6 K], добавлен 26.09.2009

  • Основные разновидности живых клеток и особенности их строения. Общий план строения эукариотических и прокариотических клеток. Особенности строения растительной и грибной клеток. Сравнительная таблица строения клеток растений, животных, грибов и бактерий.

    реферат [5,5 M], добавлен 01.12.2016

  • Клетка как единая система сопряженных функциональных единиц. Гомологичность клеток. Размножение прокариотических и эукариотических клеток. Роль отдельных клеток во многоклеточном организме. Разнообразие клеток в пределах одного многоклеточного организма.

    реферат [28,6 K], добавлен 28.06.2009

  • Строение и функции оболочки клетки. Химический состав клетки. Содержание химических элементов. Биология опухолевой клетки. Клонирование клеток животных. А была ли Долли? Клонирование - ключ к вечной молодости? Культивирование клеток растений.

    реферат [27,3 K], добавлен 16.01.2005

  • Химический состав клеток, функции внутриклеточных структур, функции клеток в организме животных и растений, размножение и развитие клеток, приспособления клеток к условиям окружающей среды. Положения клеточной теории по М. Шлейдену и Т. Шванну.

    презентация [1,3 M], добавлен 17.12.2013

  • Этиология, патогенез и клиника плацентарной недостаточности. Хроническая внутриутробная гипоксия плода. Гормоны плаценты при физиологически протекающей беременности и при хронической внутриутробной гипоксии плода. Катепсины - ферменты класса гидролаз.

    дипломная работа [121,1 K], добавлен 15.12.2008

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.