Морфологические изменения кости нижней челюсти в условиях местного воздействия на ее регенерацию при моделировании экспериментального дефекта

Изменения строения костей скелета в результате использования клеточных технологий. Структурная организация костной ткани при естественной регенерации ее дефекта. Морфология костной ткани после воздействия различными способами на репарацию ее дефекта.

Рубрика Медицина
Вид диссертация
Язык русский
Дата добавления 10.03.2018
Размер файла 11,3 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

При естественном ходе заживления в цитограмме мякотных тяжей практически всегда присутствовали эритроциты, но достоверных различий между всеми сроками эксперимента не было. Однако, через 1 неделю после операции с последующим введением АМСККП процент и абсолютное содержание форменных элементов красной крови уже достоверно отличались от исходного состояния (табл. 8, 27).

Численная плотность фигур митозов на 1 неделе при спонтанной репарации была достоверно больше, чем в контроле, но на фоне использования АМСККП величины значений этих показателей достоверно не различались (табл. 8, 27).

Относительное и абсолютное число клеточных элементов с признаками деструктивных изменений возросло в первые сроки при спонтанном заживлении более значительно и отличалось от контроля на 1 и 2 неделях. После введения АМСККП достоверных отличий между контролем и состоянием на 2 неделе не было. Кроме того, более выраженный рост величин значений этих показателей в ранние сроки после операции с естественным ходом репарации привел к достоверным отличиям между 1-2 неделями и более поздними сроками, после использования АМСККП различий на указанные точки эксперимента не найдено (табл. 8, 27).

5.2.8 Изменения численности клеток в просвете мозговых синусов

Численная плотность всех клеток в просвете мозговых синусов лимфатических узлов через 1 неделю после начала эксперимента была выше контроля, но далее достоверно от него не отличалась. Спустя 1 неделю величина значения этого показателя была больше в 3,5, 3,1, 3,2 и 2,9 раза, соответственно, относительно состояния в контроле и на 3, 4 и 5 неделе (рис. 79-81) (табл. 28).

Процент лимфоцитов через 1 неделю после начала эксперимента был ниже на 95,8%, 84,2%, 74,6% и 71,8%, соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 3, 4 и 5 неделях. Кроме того, спустя 2 недели величина значения этого показателя была меньше на 45,2% и 36,6%, также соответственно, относительно состояния в контроле и спустя 3 недели (рис. 79-81) (табл. 28).

Относительное содержание иммуно- и плазмобластов возросло к 1 неделе, но далее достоверно не отличалось от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 5,6 раза, чем в контроле (табл. 28).

Точно также, но еще более выражено, менялась численная плотность иммуно- и плазмобластов. Этих клеток спустя 1 неделю было больше в 15,6, 31,2, 10,4 и 17,3 раза, соответственно, относительно контроля и состояния на 3, 4 и 5 неделе (табл. 28).

Абсолютное содержание плазматических клеток спустя 1 неделю после операции стало больше контроля в 3,3 раза, но на остальные временные точки достоверных отличий обнаружено не было (табл. 28).

Относительное число ретикулярных клеток постепенно возрастало и на 4 и 5 неделях стало больше на 36,9% и 44,2%, соответственно, относительно состояния спустя 1 неделю (табл. 28).

Процент моноцитов был больше на 77,9%, 90% и 97,9%, соответственно, чем в контроле, на 4 и 5 неделях, только по истечении 1 недели после начала эксперимента (табл. 28).

Численность этих лейкоцитов на единицу площади среза была выше исходной также только на 1 неделе. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 6,1, 5,5, 5,8 и 5,8 раза относительно контроля и уровня на 3, 4 и 5 неделях после начала эксперимента (табл. 28).

Через 1 неделю относительное количество макрофагов было больше в 4, 2,7, 3,3 и 3,4 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе. Спустя 2 недели этих клеток стало больше в 3,3, 2,2, 2,7 и 2,8 раза, также соответственно, и также относительно контроля и состояния на 3, 4 и 5 неделе (рис. 79-81) (табл. 28).

Величина значения абсолютной численности макрофагов через 1 неделю была выше в 14, 8,3, 9,7 и 10,6 раза, также соответственно, и также относительно контроля и на 3, 4 и 5 неделях после начала эксперимента (рис. 79-81) (табл. 28).

Спустя 1 неделю процент нейтрофилов был больше в 3,6, 3, 3,5 и 3,2 раза, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделе (табл. 28).

Численная плотность нейтрофильных лейкоцитов через 1 неделю была выше в 12,7, 9,2, 11,8 и 10,5 раза, также соответственно, по сравнению с контролем и состоянием на 3, 4 и 5 неделях после начала эксперимента (табл. 28).

Относительное количество эритроцитов через 1 неделю было больше в 8,3 раза, чем в контроле (табл. 28).

Абсолютная численность форменных элементов красной крови через 1 неделю была выше в 29,7, 2,3 и 12,4 раза, также соответственно, и также относительно контроля и на 3 и 4 неделях после начала эксперимента (табл. 28).

Процент клеток с признаками деструктивных изменений резко увеличился к 1 неделе, но далее это показатель постепенно уменьшался и достоверно не отличался от исходного. Величина значения этого показателя через 1 неделю была выше в 2,2, 3 и 2,7 раза, соответственно, чем в контроле, на 3 и 5 неделях (табл. 28).

Аналогично менялось абсолютное число клеток с явлениями деструкции. Спустя 1 неделю величина значения этого показателя была выше в 8,1, 10, 8,3 и 7,6 раз, соответственно, чем в контроле и на 3, 4 и 5 неделях (табл. 28).

Отличия в цитограмме содержимого мозговых синусов между животными со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования АМСККП были найдены в изменениях общей численности клеток и, в частности, лимфоцитов, иммуно- и плазмобластов, плазматических и ретикулярных клеток, моноцитов, макрофагов, нейтрофилов, эритроцитов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений (табл. 9, 28).

Численная плотность всех клеток и отдельно макрофагов, моноцитов и нейтрофилов при самостоятельной регенерации была выше контроля на 1 и 2 неделях, тогда как после введения АМСККП уже на 2 неделе величины значений указанных показателей достоверно не отличались от исходных (табл. 9, 28).

При спонтанном заживлении нижней челюсти процент иммуно- и плазмобластов в мозговых синусах субмандибулярных лимфатических узлов возрос более выражено, чем после использования АМСККП, в связи с этим при последующей нормализации этого показателя у животных без АМСККП были найдены достоверные отличия между состоянием на указанный срок и точки в конце наблюдения (табл. 9, 28).

Относительное содержание плазматических клеток на фоне спонтанного заживления возросло к концу наблюдения статистически достоверно, тогда как после применения АМСККП достоверные отличия отсутствовали между всеми временными точками. Численная плотность плазмоцитов при естественном ходе регенерации отличалась от контроля на 3 неделе, а после введения АМСККП - только на 2 (табл. 9, 28).

Показатели относительного содержания ретикулярных клеток при спонтанной регенерации в конце наблюдения были достоверно выше контроля. Абсолютное количество клеток стромы при самостоятельном заживлении на 1 неделе было больше исходного. После использования АМСККП достоверные отличия от контроля процента и численной плотности этих клеточных элементов отсутствовали на все точки наблюдения (табл. 9, 28).

Относительное число эритроцитов при спонтанной регенерации было значительно выше исходного на 1 неделе, соответственно, на последующее сроки было найдено резкое и достоверное снижение показателей количества эритроцитов. После использования АМСККП подъем величины этого показателя был не такой выраженный и далее, при нормализации, достоверных отличий не было (табл. 9, 28).

Численная плотность и относительное количество клеточных элементов с признаками деструктивных изменений достоверно увеличились на 1 и 2 неделях при спонтанном заживлении, в связи с этим затем возвращение к норме происходило более выражено и были найдены достоверные отличия между состоянием на 2 и 4 неделях. После применения АМСККП эти показатели уже на 2 неделе статистически достоверно не отличались от контроля и также не было различий между состоянием на 2 неделе и на последующие сроки (табл. 9, 28).

РЕЗЮМЕ

На 1, 2 и 3 неделях после создания дефекта нижней челюсти и применения АМСККП корковое плато субмандибулярных лимфатических становится шире по сравнению с контролем. Относительная площадь паракортикальной зоны резко уменьшилась уже к 1 неделе, потом этот показатель постепенно увеличивался, но еще в течение 2 и 3 недель был меньше исходного. Объемная плотность лимфоидных фолликулов без центров размножения и площадь мантийной зоны в фолликулах с герминативными центрами были больше контрольных в течение 1-2 недель. Начиная с первой недели площадь мякотных тяжей постепенно расширялась и на 4-5 неделях была достоверно больше исходной. Процент мозговых синусов на срезе лимфатических узлов только на 1 неделе был статистически достоверно больше контроля и состояния на 4 неделе.

Различия в строении субмандибулярных лимфатических узлов крыс со спонтанным заживлением дефекта нижней челюсти и после введения в отверстие АМСККП были отмечены в объемной плотности коркового плато, которая после применения клеток была меньше, чем при спонтанной регенерации. При этом на 2, 3 и 4 неделях спонтанной репарации объем коркового плато еще достоверно отличался от контроля, тогда как после использования АМСККП - нет. Кроме того, при спонтанном заживлении объем паракортекса на 4 и 5 неделях после операции оставался достоверно меньше исходного, тогда как после применения АМСККП величина значения этого показателя находилась в пределах нормы. Объем мозговых синусов на 3 неделе естественной регенерации отличался от состояния через 1 неделю, а после введения АМСККП таких различий не было.

Процент лимфоцитов во всех зонах лимфатических узлов на первой и второй неделе после операции с применением АМСККП был меньше, чем в контроле. Относительное содержание иммуно- и плазмобластов в корковом плато, узелках без центров размножения мантийной зоне, герминативных центрах и мякотных тяжах резко возросло на 1 и 2 неделе. Процент и абсолютное содержание макрофагов в паркортикальной зоне на все сроки наблюдения были выше, чем в контроле. Количество макрофагов в фолликулах без светлых центров, мантийной зоне и мозговых синусах превосходило исходный уровень только на 1 неделе, в мякотных тяжах - только на 3 неделе, а в центрах размножения - в течение первых 3 недель. Относительное число делящихся клеток в корковом плато, паракортексе, фолликулах без герминативных центров и самих центрах было больше контроля только на 1 неделе. В мякотных тяжах лимфатических узлов интактных животных митотическая активность отсутствовала, фигуры митозов появились практически во всех наблюдениях только на 1 неделе. Процент клеточных элементов с признаками деструктивных изменений в корковом плато, паракортикальной зоне, узелках без светлых центров, мякотных тяжах и мозговых синусах превосходил контрольный уровень через 1 неделю. Процент и число на 105 мкм2 площади среза герминативных центров клеток с признаками деструктивных изменений на 1 и 2 неделях превосходило контрольный уровень. На 1 и 2 неделях в цитограмме фолликулов без герминативных центров, мякотных тяжей и мозговых синусов, в мантийной зоне - на 1-3 неделях, в центрах размножения - на 1-4 неделях, присутствовали эритроциты.

Различия в цитограмме всех зон лимфатических узлов между крысами со спонтанным заживлением дефекта кости нижней челюсти и репаративными процессами на фоне использования АМСККП были найдены в изменениях численности макрофагов, фигур митозов и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений. После введения АМСККП величины значений указанных показателей этих клеточных элементов изменялись не так выражено и раньше возвращались к контрольному уровню. Следует отметить, что в паракортексе после введения АМСККП изменения величин значений показателей лимфоцитов и макрофагов были более выражены. Эритроциты в мантии фолликулов после введения АМСККП присутствовали в течение более длительного срока, чем при спонтанном заживлении. На фоне введения АМСККП через 1 неделю после операции процент и абсолютное содержание форменных элементов красной крови достоверно отличалось от исходного состояния, чего не было при спонтанном ходе репарации.

Таблица 19.

Появление и развитие красного костного мозга при регенерации дефекта кости нижней челюсти после введения АМСККП

Срок

после операции

Репаративный процесс

Естественное течение

После применения АМСККП

Количество животных с восстановлением красного костного мозга (n(%))

Размер полости с восстановленным красным костным мозгом (мм2, M±m)

Количество животных с восстановлением красного костного мозга (n(%))

Размер полости с восстановленным красным костным мозгом (мм2, M±m)

1

2

3

4

5

1 неделя

-

-*

-

-*

2 недели

-

-*5

8(66,7)

0,203±0,013*3

3 недели

3(25)

0,225±0,035*

12(100)

0,287±0,032

4 недели

11(91,7)

0,269±0,024

11(91,7)

0,34±0,0316

5 недель

10(100)

0,323±0,04

10(100)

0,355±0,037

Примечание: * - величины, достоверно отличающиеся от интактной кости (0,339±0,04 мм2; р<0,05); 2, 3, 4, 5 - величины, достоверно различающиеся между собой в данных колонках (р<0,05).

Таблица 20.

Плотность кости в дефекте нижней челюсти относительно окружающих неповрежденных тканей при регенерации дефекта кости нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Срок после операции

Репаративный процесс

Разность плотности (АМСККП -контроль) в дефекте

Естественное

течение

После применения АМСККП

1

2

3

4

1 неделя

0,892±0,053*

0,928±0,044

0,043±0,102

2 недели

0,901±0,035*

0,903±0,046*

0,002±0,042

3 недели

0,905±0,02*

0,96±0,086

0,059±0,067

4 недели

0,912±0,059

0,932±0,052

-0,012±0,055

5 недель

0,915±0,016*

0,856±0,028*

-0,058±0,015

Примечание: * - величины, достоверно отличающиеся от интактной кости на контралатеральной стороне (р<0,05); 2, 3 - величины, достоверно различающиеся между собой в данных колонках (р<0,05).

Таблица 21.

Структура субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Структуры

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Капсула (АА)

2,67±0,778

2,5±0,798

2,58±0,793

2,92±1,08

3,2±1,03

3,8±1,14

Соединительная ткань в корковом веществе (АА)

0,75±0,754

0,667±0,778

0,583±0,669

1,5±1,09

2±0,816

1,8±0,919

Соединительная ткань в мозговом веществе (АА)

0,917±0,669

0,5±0,798

0,833±1,03

1,25±1,06

2,1±0,876

1,8±0,919

Краевой синус (АА)

0,417±0,515

1±1,04

1,08±0,996

0,75±0,866

0,5±0,85

0,7±0,823

Корковое плато (АА)

13,6±0,9963, 4

19,2±1,472, 6, 7*

18,3±1,662, 6, 7*

16,3±1,147

13,3±1,063, 4*

12,9±1,23, 4, 5*

Паракортикальная зона (АА)

46±1,913, 4, 5

33,3±1,542, 6, 7

34,7±3,342

38±3,072

41,5±2,463

41,5±2,513

Узелки без центра размножения (АА)

4,83±0,7183, 4

7±0,7392, 7

6,83±0,5772, 7

5,83±0,937

4,9±1,101

4±0,6673, 4

Узелки с центром размножения (АА)

6,17±0,937

7,25±0,866

7,75±1,14

6,92±1,08

5,1±1,52

5,6±1,51

Центры размножения (АА)

2,5±0,674

1,67±0,778

2,08±0,793

2,42±0,9

2,7±1,16

2,8±1,4

Мантийная зона (АА)

3,67±0,6513, 4

5,58±0,6692, 6, 7

5,67±0,6512, 6, 7

4,5±1,09

2,4±0,6993, 4

2,8±0,7893, 4

Мякотные тяжи (АА)

15,1±0,7936, 7

16±1,35

16,7±1,23

16,6±1,73

17,7±0,9492

18,1±0,8762

Мозговые синусы (АА)

9,58±0,6693

12,7±0,7782, 6

10,8±0,866

10±1,13

9,7±1,063

9,8±1,4

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); АА - относительная площадь структур на поперечном срезе (%).

Таблица 22.

Цитоархитектоника коркового плато субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

925±114

742±116

733±123

808±90

890±110

930±116

Лимфоциты (%)

(NA)

79,5±1,783, 4

736±98,5

69,8±1,952, 6

519±90,3

70,8±2,422

520±93,9

75,1±2,11

607±65,8

75,2±1,553

669±79,9

74,8±1,81

695±83,6

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

1,42±0,5153, 4

13,3±5,79

3,5±0,7982

25,7±5,84

3,33±0,6512, 7

24,4±6,54

2,08±0,793

16,8±6,72

1,5±0,85

14±9,74

1,4±0,6994

13,3±7,56

Плазмоциты (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Клетки Мотта (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Ретикулярные (%)

(NA)

9,75±0,866

89,8±10,7

8,5±17

62,5±9,046, 7

8,58±1,24

63,3±15,6

9,58±0,996

77,7±13,5

11,3±1,06

101±15,33

11,5±1,083

107±19,53

Моноциты (%)

(NA)

1,83±0,718

16,8±6,21

3±0,739

22±5,43

3,25±0,754

23,8±6,77

1,5±0,674

12±5,06

1,6±0,699

14,4±7,12

1,7±0,823

16,4±9,45

Макрофаги (%)

(NA)

3,08±0,793

28,4±7,49

4,08±0,793

30,5±8,76

4,17±1,19

30,2±8,57

4,92±0,9

39,9±9,57

5±0,816

44,5±9,11

4,7±0,823

43,4±7,38

Нейтрофилы (%)

(NA)

0,583±0,515

5,42±4,89

1,33±0,651

9,75±4,27

0,917±1,16

6,17±7,27

0,5±0,522

3,83±4,02

0,6±0,699

5,2±5,9

0,4±0,516

3,7±4,85

Эозинофилы (%)

(NA)

1,33±0,492

12,4±5,12

1,42±0,515

10,6±4,34

1,42±0,515

10,2±3,35

1,25±0,452

10±3,36

1,7±0,675

15,3±6,67

1,9±0,739

17,7±7,51

Тканевые (%)

базофилы (NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Эритроциты (%)

(NA)

0,583±0,669

4,92±5,53

2,08±0,793

15,2±5,78

2,17±0,835

16,1±7,7

1,75±0,866

14,3±7,64

1,1±0,994

9,2±7,97

1,3±1,25

11,8±11,3

Митозы (%)

(NA)

1,25±0,4523

11,7±4,83

3,42±0,7932

25,2±6,59

3,25±1,14

23,5±8,13

2,08±0,9

16,9±7,86

1,5±0,707

13,6±7,03

1,7±0,949

15,8±9,14

С признаками (%)

деструкции (NA)

0,667±0,6513

6,08±5,96

2,83±0,7182, 6, 7

21,2±6,63

2,17±0,718

15,9±6,17

1,25±0,866

10,3±7,39

0,5±0,7073

4,4±6,31

0,6±0,8433

5,4±7,37

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 23.

Цитоархитектоника паракортикальной зоны субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

800±73,9

667±107

675±106

692±124

830±67,5

820±91,9

Лимфоциты (%)

(NA)

72,9±3,063, 4

583±58,53

61,3±3,492

408±63,62

64±1,812

433±73,2

66,2±2,12

457±76,9

66,1±2,92

549±53,7

66,5±2,95

546±65,1

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

2,67±0,651

21,5±6,16

4±0,739

27±8,12

3,92±0,996

26,5±7,86

3,08±0,793

21,5±8,17

3±1,05

24,8±8,66

2,9±0,876

23,6±7,06

Плазмоциты (%)

(NA)

0,333±0,492

2,67±3,96

0,75±0,866

5,08±5,48

0,667±0,778

4,42±4,93

0,75±0,965

5,25±6,68

0,4±0,699

3,4±5,8

0,8±0,789

6,5±6,36

Клетки Мотта (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Ретикулярные (%)

(NA)

12,8±0,965

102±5,813

10,8±0,835

71,8±9,742, 6, 7

11,8±1,36

79,2±14,6

12,9±1,38

89,6±19,7

13,1±1,1

108±11,33

13,2±1,14

108±14,63

Моноциты (%)

(NA)

1,5±0,522

12,1±4,64

2,67±0,888

17,5±5,27

2,83±0,718

19±5,03

2,33±0,985

15,8±6,28

1,6±0,699

13,5±6,57

1,8±0,789

14,7±6,24

Макрофаги (%)

(NA)

1,83±0,7183, 4, 5, 6, 7

14,4±4,984, 5, 6, 7

4,5±0,5222

30,3±7,44

5±0,8532

33,7±7,092

5,08±0,92

34,8±6,882

5,5±0,9722

45,7±9,072

5,4±0,6992

44,1±6,262

Нейтрофилы (%)

(NA)

0,833±0,718

6,92±5,82

2±0,603

13,5±5,05

1,5±0,522

9,83±2,79

0,917±1,08

6,42±8,35

1,2±1,14

10±9,64

1,1±1,1

9,3±9,86

Эозинофилы (%)

(NA)

2,83±0,835

22,8±7,61

2,75±0,965

18,7±8,46

2,58±0,793

17,8±7,41

2,92±0,669

20,7±8,11

2,8±0,789

23±5,98

3,1±0,876

25,6±8,53

Тканевые (%)

базофилы (NA)

1±0,739

8,17±6,21

0,833±0,937

6±6,98

1,25±1,06

8,42±7,43

1,08±1,16

6,75±7

1,7±0,823

13,9±6,33

1,5±1,08

11,9±8,41

Эритроциты (%)

(NA)

0,583±0,793

4,67±6,4

2,17±0,577

14,6±5,12

1,92±0,9

12,8±6,7

1,25±1,06

9,5±9,45

1,3±0,949

10,9±7,92

0,7±0,823

6±7,38

Митозы (%)

(NA)

1,42±0,5153

11,3±4

3,33±0,7782

21,8±4,78

1,92±0,996

13,2±7,44

1,58±0,793

10,9±5,79

1,7±0,823

14,3±7,65

1,6±0,699

13±5,42

С признаками (%)

деструкции (NA)

1,33±0,4923

10,7±4,083

4,92±0,92, 4, 5, 6, 7

32,8±7,882, 6, 7

2,67±0,6513

17,8±3,96

1,92±1,083

13,8±9,44

1,6±0,6993

13±4,883

1,4±0,5163

11,7±5,143

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 24.

Цитоархитектоника лимфоидных фолликулов без центра размножения субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

1150±109

1208±79,3

1217±83,5

1175±114

1090±110

1070±106

Лимфоциты (%)

(NA)

86,3±1,33, 4

993±91,4

76,6±1,732, 5, 6, 7

925±64,2

79,3±2,342, 7

965±83,9

84,7±1,833

994±92,1

84,2±2,153

918±97,9

86±1,893, 4

922±109

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

1,25±0,4523

14,4±5,63

3±0,7392, 5

36±7,952, 5

2,58±0,793

31,3±8,96

1,17±0,3893

13,8±4,923

1,7±0,675

18,8±8,19

1,6±0,699

17±7,15

Плазмоциты (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Клетки Мотта (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Ретикулярные (%)

(NA)

7,17±0,577

82,8±12,8

5,75±0,754

69,3±8,01

5,67±0,888

69,1±12,8

6,83±1,03

80,6±15,6

7±0,943

75,8±9,26

6,7±0,823

71,2±7,36

Моноциты (%)

(NA)

1,42±0,515

16,3±6

2,42±0,793

29,4±10,9

2,58±0,9

31,4±11,1

1,5±0,674

17,8±8,67

1,6±0,516

17,1±4,72

1,4±0,516

14,8±5,03

Макрофаги (%)

(NA)

1,42±0,5153

16,3±6,233, 4

3,5±0,6742

42,7±10,22

3±0,603

36,3±7,12

2,83±0,835

33,5±11,1

2,9±0,876

31,9±11,2

2,5±0,527

26,4±4,09

Нейтрофилы (%)

(NA)

-

-

0,583±0,669

7±7,78

0,667±0,778

7,75±8,79

-

-

-

-

-

-

Эозинофилы (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Тканевые (%)

базофилы (NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Эритроциты (%)

(NA)

-3

-3

1,58±0,6692, 5, 6, 7

19,2±8,222, 5, 6, 7

1,08±0,9

13,3±11

-3

-3

-3

-3

-3

-3

Митозы (%)

(NA)

1,58±0,5153

18,3±6,313

4±0,7392, 7

48,3±9,742, 7

3,42±0,9

41,4±10,4

1,83±0,835

21,5±10,4

2,1±0,876

22,9±9,86

1,4±0,6993

14,7±6,623

С признаками (%)

деструкции (NA)

0,833±0,5773

9,5±7,173

2,58±0,5152

31,1±5,932, 7

1,75±0,754

21,1±8,8

1,17±0,937

13,6±10,9

0,5±1,08

5,6±12,4

0,4±0,966

4,3±9,913

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 25.

Цитоархитектоника мантийной зоны лимфоидных фолликулов субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

1183±119

1200±73,9

1175±129

1167±98,5

1120±123

1100±105

Лимфоциты (%)

(NA)

85,2±1,643, 4

1008±106

72,7±2,772, 5, 6, 7

872±66,1

74,1±2,232, 5, 6, 7

871±105

83,3±2,93, 4

972±86,4

84,9±2,563, 4

952±118

85,1±1,973, 4

936±86,3

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

1,5±0,5223

17,8±6,483

3,92±0,7932, 5, 6, 7

47,1±10,62, 5, 6, 7

3,42±0,996

40,3±12,8

1,58±0,6693

18,4±7,893

1,4±0,5163

15,5±5,383

1,3±0,4833

14,1±4,653

Плазмоциты (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Клетки Мотта (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Ретикулярные (%)

(NA)

8,08±0,669

95,4±10,6

7,08±0,669

85±9,42

6,58±0,793

77±9,7

7,17±1,03

83,8±15,5

7,8±1,14

86,9±12,8

7,9±1,1

87,1±15,7

Моноциты (%)

(NA)

1,33±0,4923

15,8±5,91

3±0,6032, 6, 7

36,2±8,46, 7

2,83±0,718

33,1±8,47

1,67±0,888

19,8±11,8

1,3±0,4833

14,5±5,383

1,2±0,4223

13,4±5,723

Макрофаги (%)

(NA)

1,83±0,7183, 4

21,8±8,693, 4

4,17±0,7182

50,1±9,492, 7

4,25±0,7542

49,5±8,192, 7

3,5±0,522

40,7±5,79

2,7±0,823

30,1±9,22

2,4±0,699

26,2±7,213, 4

Нейтрофилы (%)

(NA)

-

-

0,5±0,674

5,75±7,64

0,667±0,778

7,92±9,59

-

-

-

-

-

-

Эозинофилы (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Тканевые (%)

базофилы (NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Эритроциты (%)

(NA)

-3, 4

-3, 4

1,92±0,7932, 6, 7

22,8±9,012, 6, 7

1,75±0,7542, 6, 7

20,4±8,842, 6, 7

0,25±0,622

3±7,46

-3, 4

-3, 4

-3, 4

-3, 4

Митозы (%)

(NA)

1,5±0,5223, 4

17,8±6,443, 4

4±0,7392, 5, 6, 7

48,2±10,22, 6, 7

3,67±0,7782

43,3±112

1,83±0,7183

21,4±8,77

1,6±0,6993

18±8,423

1,7±0,8233

19±10,13

С признаками (%)

деструкции (NA)

0,583±0,669

6,83±8,26

2,75±1,06

32,8±12,46

2,75±0,9656

32,4±12,5

0,667±0,985

7,58±10,6

0,3±0,6754

3,4±7,893

0,4±0,966

4,6±11,5

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 26.

Цитоархитектоника центров размножения лимфоидных фолликулов субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

658±90

775±75,4

792±79,3

700±113

690±87,6

650±70,7

Лимфоциты (%)

(NA)

56,5±2,353, 4, 5

373±58,1

41±1,812, 6, 7

318±40,8

38±4,632, 6, 7

301±51,1

44,6±4,522, 7

313±63,5

53,8±3,083, 4

371±50,1

57,5±2,223, 4, 5

374±43,8

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

20,6±3,263, 4

135±273, 4

30,3±1,962, 6, 7

234±22,62, 6, 7

32,3±3,142, 6, 7

255±35,92, 6, 7

27,5±2,357

192±27,97

22±1,833, 4

152±25,43, 4

19,1±1,913, 4, 5

124±13,93, 4, 5

Плазмоциты (%)

(NA)

-

-

0,667±0,888

5±6,98

0,583±0,793

4,5±6,26

0,75±0,754

5,58±6,22

0,3±0,483

1,9±3,07

-

-

Клетки Мотта (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Ретикулярные (%)

(NA)

14,6±1,563, 4

95,5±13,5

9,42±0,6692, 7

73,2±10,4

9,83±1,192, 7

77,9±12,8

10,8±1,54

75,5±17,6

11,3±1,16

77,9±11,7

13,8±1,43, 4

89,8±14,3

Моноциты (%)

(NA)

0,667±0,778

4,5±5,18

1,5±0,798

11,8±6,9

1,17±0,577

9,5±5,27

0,583±1,08

4,17±8,02

0,6±0,843

4,3±6,4

0,5±0,707

3,2±4,42

Макрофаги (%)

(NA)

3,67±0,7783, 4, 5

24,3±7,333, 4, 5

6,5±0,7982

50,6±9,522

7,75±0,9652, 7

61,3±9,422, 7

8±0,8532, 7

55,5±7,322, 7

5,9±0,876

40,6±7,07

4,8±1,034, 5

31,2±7,634, 5

Нейтрофилы (%)

(NA)

-

-

0,5±0,798

3,58±5,65

0,417±0,793

3,33±6,4

-

-

-

-

-

-

Эозинофилы (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Тканевые (%)

базофилы (NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

Эритроциты (%)

(NA)

-3, 4

-3, 4

1,83±0,7182, 7

13,9±4,812, 7

2±0,7392, 7

15,6±5,212, 7

1,17±0,835

8,42±6,01

0,6±0,699

4±4,78

-3, 4

-3, 4

Митозы (%)

(NA)

2,67±0,7783

17,5±5,473, 4

4,83±0,7182, 7

37,6±7,592

4,67±0,778

36,9±6,992

3,58±0,669

25,2±6,49

2,8±0,789

19,4±6,28

2,6±0,843

17,2±7,19

С признаками (%)

деструкции (NA)

1,33±0,4923, 4

8,75±3,33, 4

3,5±0,6742

27±5,052, 7

3,33±0,7782

26,1±5,092

3,08±0,996

21,6±7,67

2,7±0,823

18,8±6,7

1,7±0,823

11,1±5,553

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 27.

Цитоархитектоника мякотных тяжей субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

692±79,3

750±117

683±119

667±123

660±84,3

640±69,9

Лимфоциты (%)

(NA)

52±3,053, 4, 5, 6

360±51,2

40±4,132

301±61,1

35,8±2,892

244±39,1

41,9±3,292

280±57,2

41,7±3,772

277±54,5

44,3±4,24

284±42,3

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

4,92±0,7933

33,8±5,03

7,5±0,9052, 7

56,2±10,87

7,25±1,22

49,3±11

6,33±1,07

43,1±14,7

5±1,05

33,3±9,57

4,7±0,8233

30,1±6,263

Плазмоциты (%)

(NA)

28,2±2,79

195±29,2

29,2±3,13

218±34,9

33±3,79

227±53,3

31,8±2,59

211±35,7

34,7±2,63

228±20,1

33,1±3,03

212±27,2

Клетки Мотта (%)

(NA)

0,333±0,651

2,58±5,12

0,583±0,793

4,42±6,11

0,75±0,866

4,58±5,09

0,917±0,793

5,67±4,81

0,4±0,699

2,4±4,2

0,5±0,707

3,2±4,42

Ретикулярные (%)

(NA)

7,17±0,577

49,6±7,17

5,5±0,674

41,3±8,11

5,67±0,778

38,7±8,38

6,42±1,08

42,6±9,67

6,4±1,17

42±8,07

5,9±1,1

37,8±8,2

Моноциты (%)

(NA)

1,83±0,718

12,6±5

3,75±0,7547

28,2±7,127

3,42±0,9

23,3±7,81

1,92±0,669

12,6±4,27

1,6±0,843

10,5±5,32

1,5±0,7073

9,7±4,813

Макрофаги (%)

(NA)

3±0,7395

20,8±5,4

3,33±0,7785

25,3±7,63

4,25±0,754

29,5±9,05

5,58±0,7932, 3

37,7±10,9

5,1±0,994

33,7±7,6

5±1,15

32,1±8,62

Нейтрофилы (%)

(NA)

0,333±0,651

2,33±4,58

1,33±0,651

10,4±6,54

1,5±0,674

10,3±5,42

0,917±0,9

6±5,58

0,8±0,919

5,6±6,79

1±1,05

6,3±6,36

Эозинофилы (%)

(NA)

0,583±0,9

3,83±5,81

0,833±0,937

6,08±7,24

0,75±0,754

5,25±5,4

0,667±0,778

4,67±5,12

0,7±0,675

4,9±5,13

0,6±0,699

3,8±4,34

Тканевые (%)

базофилы (NA)

-3

-3

1,25±0,4522*

9,33±3,452*

1,17±0,937

7,83±6,28

1,08±0,996

6,92±6,02

1,4±1,17

8,7±6,96

1,2±1,23

7,5±7,35

Эритроциты (%)

(NA)

0,25±0,4523

1,58±2,873

2,08±0,7932

15,3±5,772

2,08±0,9

14,5±7,3

1,17±1,19

8±8,71

0,7±0,949

4,4±5,8

0,6±0,699

3,9±4,43

Митозы (%)

(NA)

-3

-

1,25±0,6222, 5, 6, 7

9,17±4,67

0,833±0,835

5,83±6,18

-3

-

-3

-

-3

-

С признаками (%)

деструкции (NA)

1,42±0,5153

9,67±3,26

3,42±0,7932

25,7±7,44

3,5±1

23,8±7,64

1,25±0,754

8,58±5,66

1,5±0,707

10±5,19

1,6±0,699

10,3±4,67

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Таблица 28.

Цитограмма клеток в просвете мозговых синусов субмандибулярных лимфатических узлов крыс при регенерации дефекта нижней челюсти после введения АМСККП (M±m)

Клетки

Интактные

животные

Срок после операции

1 неделя

2 недели

3 недели

4 недели

5 недель

1

2

3

4

5

6

7

Численная плотность (NA)

125±4523

442±1082, 5, 6, 7

300±148

142±903

140±69,93

150±853

Лимфоциты (%)

(NA)

55,6±3,23, 4

69,4±25,1

28,4±4,962, 5, 6, 7

124±34

38,3±4,752, 5

114±55,9

52,3±5,123, 4

76±53,8

49,6±3,633

69±33,9

48,8±4,693

73,3±42,2

Иммуно- и (%)

плазмобласты (NA)

0,417±0,6693

0,667±1,233

2,33±0,6512

10,4±4,192, 5, 6, 7

1,33±0,888

4,33±4,62

0,333±0,778

0,333±0,7783

0,7±0,823

1±1,333

0,5±0,707

0,6±0,8433

Плазмоциты (%)

(NA)

4±0,739

5±1,953

3,75±0,754

16,6±5,322

4,17±0,937

12,3±6,51

4,58±1,31

6,83±6,74

5,3±1,49

7,3±4,19

5,1±0,876

7,2±2,97

Клетки Мотта (%)

(NA)

0,083±0,289

0,083±0,289

0,667±0,985

3±4,18

0,75±0,754

1,83±1,85

0,583±0,669

0,667±0,778

0,7±0,823

0,8±0,919

0,6±0,699

0,6±0,699

Ретикулярные (%)

(NA)

24,8±2,7

30,6±10,1

20,6±2,916, 7

91,8±29,4

20,5±2,78

63,4±34,5

24,7±3,03

33,5±16,9

28,2±1,693

39,8±20,9

29,7±2,313

45,2±27,8

Моноциты (%)

(NA)

2,67±0,6513

3,42±1,833

4,75±0,7542, 6, 7

20,8±5,572, 5, 6, 7

3,75±0,866

10,9±4,94

2,75±0,754

3,75±1,963

2,5±0,7073

3,6±2,223

2,4±0,6993

3,6±2,323

Макрофаги (%)

(NA)

6,33±1,073, 4

7,92±3,263

25,2±3,12, 5, 6, 7

111±30,62, 5, 6, 7

20,6±3,032, 5, 6, 7

61,5±33

9,17±1,033, 4

13,3±8,813

7,7±1,423, 4

11,5±8,033

7,3±1,253, 4

10,5±5,083

Нейтрофилы (%)

(NA)

1,25±0,4523

1,58±0,93

4,5±1,092, 5, 6, 7

20±7,42, 5, 6, 7

3,17±0,937

9,5±5,45

1,5±0,7983

2,17±1,993

1,3±0,4833

1,7±0,6753

1,4±0,6993

1,9±0,8763

Эозинофилы (%)

(NA)

1,42±0,515

1,92±1,31

1,17±0,937

5,42±4,54

0,917±0,669

3,08±2,35

0,75±0,754

1,08±1,24

0,4±0,699

0,6±1,26

0,9±0,738

1,4±1,17

Тканевые (%)

базофилы (NA)

1,25±0,622

1,75±1,6

1,67±0,778

7,33±3,8

1,33±0,651

3,83±2,44

1,17±0,718

1,5±1,09

1,1±1,1

1,5±1,84

0,8±1,14

1,4±2,07

Эритроциты (%)

(NA)

0,333±0,6513

0,417±0,7933

2,75±0,8662

12,4±5,42, 5, 6

1,83±0,577

5,33±3,26

0,75±0,866

0,75±0,8663

0,8±0,789

1±1,053

0,9±0,994

1,9±2,85

Митозы (%)

(NA)

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

-

С признаками (%)

деструкции (NA)

1,92±0,6693

2,25±0,7543

4,25±0,8662, 5, 7

18,3±4,292, 5, 6, 7

3,33±0,985

10,2±5,8

1,42±0,6693

1,83±0,9373

1,7±0,949

2,2±1,143

1,6±0,8433

2,4±1,713

Примечание: 2, 3, 4, 5, 6, 7 - величины, достоверно отличающиеся от соответствующих в данных колонках (р<0,05); * - величины после введения АМСККП, достоверно отличающиеся от соответствующих при спонтанном заживлении (р<0,05); NA - численная плотность клеток на 105 мкм2 площади среза.

Рис. 59 Дефект кости нижней челюсти через 1 неделю после операции и введения АМСККП. Окраска гематоксилином и эозином. а, б - Дефект кости заполнен кровью, между кровяным сгустком и краем дефекта присутствуют типичные грануляции с многочисленными широкими кровеносными сосудами. в, г, д, е - Формирование отдельных островков молодой кости и хряща среди грануляций и в кровяном сгустке в центре отверстия.

Рис. 60. Результаты применения АМСККП спустя 2 недели после операции. Отверстие нижней челюсти полностью замещено слившимися островками молодой костной ткани со сформированными структурами красного костного мозга между ними. На некоторых участках присутствуют большие многоядерные клетки - мегакариоциты (фрагменты д, е). Окраска гематоксилином и эозином.

Рис. 61. Дефект кости нижней челюсти через 3 недели после операции и введения АМСККП. Окраска гематоксилином и эозином. а, б - Развитие структур красного костного мозга в центре отверстия. в, г, д, е - Формирование костной ткани на периферии дефекта, где присутствует соединительная ткань с многочисленными кровеносными сосудами (грануляции).

Рис. 62. Результаты применения АМСККП спустя 4 недели после операции. Практически вся кость в области угла нижней челюсти представлена обширными слившимися островками молодой костной ткани с большим числом широких полнокровных сосудов между ними. Окраска гематоксилином и эозином.

Рис. 63. Дефект кости нижней челюсти через 5 недель после операции и введения АМСККП. Вся ткань кости угла нижней челюсти, в том числе и ростовая область центрального резца, представляет собой обширные участки костной мозоли перемежающиеся с очагами деструкции. Стрелками указаны структуры корня центрального резца. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение: а, в - 50 Х, б - 180 Х, г - 150 Х.

Рис. 64. Дефект кости нижней челюсти через 1 неделю после операции по данным радиовизиографического исследования. Искусственно созданное отверстие (указано стрелками) круглое, с четкими краями. Плотность тканей в дефекте при спонтанном заживлении и после применения АМСККП практически одинакова. а - Естественный ход регенерации. б - После применения АМСККП.

Рис. 65. Радиовизиографическое исследование дефекта кости нижней челюсти спустя 2 недели после операции. Искусственно созданное отверстие (указано стрелками) сохраняется. Плотность тканей в дефекте меньше, чем на предыдущий срок и практически одинакова в сравниваемых группах. а - Естественный ход регенерации. б - После применения АМСККП.

Рис. 66. Дефект кости нижней челюсти через 3 недели после операции по данным радиовизиографического исследования. Искусственно созданное отверстие (указано стрелками) сохраняется. Плотность тканей в дефекте при спонтанном заживлении и после применения АМСККП практически одинакова. а - Естественный ход регенерации. б - После применения АМСККП.

Рис. 67. Радиовизиографическое исследование дефекта кости нижней челюсти спустя 4 недели после операции. Искусственно созданное отверстие (указано стрелками) сохраняется. Плотность тканей в дефекте меньше, чем на предыдущий срок и практически одинакова в сравниваемых группах. а - Естественный ход регенерации. б - После применения АМСККП.

Рис. 68. Дефект кости нижней челюсти через 5 недель после операции по данным радиовизиографического исследования. Искусственно созданное отверстие (указано стрелками) сохраняется. Плотность тканей при спонтанном заживлении приближается к таковой на соседних участках. На фоне использования АМСККП плотность тканей меньше, по сравнением с состоянием при естественной репарации и после применения клеток на предыдущий срок, само отверстие в кости шире. а - Естественный ход регенерации. б - После применения АМСККП.

Рис. 69. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 1 неделю после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. Окраска гематоксилином и эозином. а - Расширение коркового плато, увеличение численности лимфоидных фолликулов. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула много макрофагов и клеток с деструктивными изменениями. в - Возрастание количества макрофагов в паракортексе.

Рис. 70. Субмандибулярный лимфатический узел крысы через 1 неделю после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - Фрагмент рис. 69б, макрофаги, клетки с признаками деструктивных изменений, иммуно- и плазмобласты в цитограмме центра размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 69в, клетки с явлениями деструкции и макрофаги среди лимфоцитов в паракортикальной зоне.

Рис. 71. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 2 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. Окраска гематоксилином и эозином. а - Расширение коркового плато, где присутствуют единичные очень крупные лимфоидные фолликулы. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула расположены макрофаги и клетки с деструктивными изменениями. в - Макрофаги в паракортексе.

Рис. 72. Субмандибулярный лимфатический узел крысы через 2 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - Фрагмент рис. 71б, единичные макрофаги и клетки с признаками деструктивных изменений в цитограмме центра размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 71в, небольшое число макрофагов в паракортикальной зоне.

кость скелет ткань клеточный

Рис. 73. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 3 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. Окраска гематоксилином и эозином. а - Расширение коркового плато, где присутствует небольшое число лимфоидных фолликулов. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула много лимфоцитов и присутствуют единичные макрофаги и клетки с деструктивными изменениями. в - В паракортексе расположены единичные макрофаги.

Рис. 74. Субмандибулярный лимфатический узел крысы через 3 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - Фрагмент рис. 73б, единичные клетки с явлениями деструкции в центре размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 73в, единичные макрофаги в паракортексе.

Рис. 75. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 4 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. Окраска гематоксилином и эозином. а - Нормализация размеров коркового плато, где расположено небольшое число лимфоидных фолликулов. б - В цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула присутствуют единичные макрофаги и клетки с деструктивными изменениями. в - Единичные макрофаги в цитограмме паракортекса.

Рис. 76. Субмандибулярный лимфатический узел крысы через 4 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - Фрагмент рис. 75б, единичные клетки с признаками деструктивных изменений в центре размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 75в, единичные макрофаги в паракортикальной зоне.

Рис. 77. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 5 недель после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. Окраска гематоксилином и эозином. а - Лимфоидные фолликулы практически без клеточных элементов с явлениями деструкции. б - Отсутствие клеток с деструктивными изменениями в цитограмме герминативного центра лимфоидного фолликула. в - Основное место в цитограмме паракортекса занимают лимфоциты.

Рис. 78. Субмандибулярный лимфатический узел крысы через 5 недель после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - Фрагмент рис. 77б, отсутствие клеток с признаками деструктивных изменений в центре размножения лимфоидного фолликула. б - Фрагмент рис. 77в, единичные макрофаги в цитограмме паракортекса.

Рис. 79. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 1 неделю после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - В просвете мозговых синусов увеличена численная плотность всех клеток. б - Большое количество макрофагов в просвете мозговых синусов.

Рис. 80. Субмандибулярный лимфатический узел через 3 недели после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. Окраска гематоксилином и эозином. а - В просвете мозговых синусов сохраняется высокая численная плотность клеток. б - В цитограмме содержимого мозговых синусов становится больше лимфоцитов и меньше макрофагов.

Рис. 81. Субмандибулярный лимфатический узел животного спустя 5 недель после введения АМСККП в дефект кости нижней челюсти. а - Нормализация численной плотности клеток в просвете мозговых синусов. б - В клеточном составе содержимого мозговых синусов преобладают лимфоциты и расположено небольшое число макрофагов.

ГЛАВА 6. КОСТЬ НИЖНЕЙ ЧЕЛЮСТИ ПОСЛЕ ИМПЛАНТАЦИИ В ЕЕ ДЕФЕКТ БИОДЕГРАДИРУЕМОГО ПОЛИМЕРА

6.1 Влияние имплантации полигидроксиалканоата на регенерацию дефекта нижней челюсти

6.1.1 Микроскопическое строение кости нижней челюсти после имплантации полигидроксиалканоата в ее дефект

Следует отметить, что практически во всех наблюдениях матрикс из ПГА сохранялся в дефекте кости нижней челюсти без изменений и выпадал из отверстия во время подготовки материала (удаление жевательных мышц после фиксирования формалином) к изучению методами морфологического и рентгенологического анализа (рис. 82).

После применения матриксов из биодеградируемого полимера на основе ПГА через 1 неделю сохранялось неизменным отверстие в кости, где находился сам матрикс. Так как создавался дефект несколько больше по размерам, то отмечено активное образование островков костной ткани между краем дефекта и матриксом. Сам матрикс на этот срок был окружен фиброзной тканью с большим числом клеточных элементов (фиброциты, фибробласты и макрофаги). Свидетельств деградации искусственного материала на этот срок не получено, также не обнаружено признаков формирования гигантских клеток инородных тел (гранулематозной воспалительной реакции) по краю матрикса (рис. 83).

Спустя 2 недели после заполнения дефекта кости матриксом из ПГА по-прежнему сохранялось отверстие, где находился матрикс без признаков деградации и без клеточной реакции в окружающих тканях на присутствие инородного тела. Матрикс был окружен тонкой фиброзной капсулой с большим числом макрофагов, далее между стенкой отверстия в кости и этой капсулой располагалась молодая костная ткань (рис. 84).

После введения ПГА спустя 3 недели сохранялось неизменным отверстие в кости, матрикс был отграничен тонкой фиброзной капсулой, между капсулой и самим краем дефекта была расположена молодая костная ткань с большим число кровеносных сосудов и формированием полостей со структурами красного костного мозга. Можно отметить формирование грубой костной мозоли с хаотичным расположением структур кости, видимо, обусловленное длительным раздражением или постоянным разрушением и восстановлением костной ткани по краю инородного тела (рис. 85).

В одном случае на указанный срок матрикс был обнаружен в жевательных мышцах, куда он, по-видимому, самопроизвольно сместился. Этот полимер был отграничен от окружающих тканей фиброзной капсулой с большим числом макрофагов, фибробластов и фиброцитов. На некоторых участках присутствовали небольшие единичные гигантские клетки инородных тел. Признаков воспалительной реакции и деградации матрикса практически не было (рис. 86). В данном наблюдении в отверстии нижней челюсти было найдено формирование грубой костной мозоли, на этот срок исследования там присутствовали слившиеся островки молодой костной ткани с большим числом крупных кровеносных сосудов (рис. 87).

После использования ПГА через 4 недели, как и на все предыдущие сроки, отверстие в кости сохранялось неизменным и соответствовало размерам матрикса. По краю это отверстие было окружено молодой костной тканью с сосудами, далее следовала фиброзная ткань с большим числом макрофагов, по месту границы фиброзной и костной тканей было расположено множество очень широких полнокровных кровеносных сосудов (рис. 88).

Через 5 недель после использования матриксов по-прежнему сохранялось отверстие в кости. По краю костного дефекта развивалась молодая костная ткань, между ней и матриксом присутствовала тонкая фиброзная капсула с макрофагальной инфильтрацией.

6.1.2 Рентгеноанатомические результаты исследования строения кости нижней челюсти после имплантации полигидроксиалканоата в ее дефект

В результате денситометрии дефекта кости нижней челюсти после заполнения его матриксом из ПГА было найдено, что плотность тканей в искусственно созданном отверстии практически всегда (за исключением срока в 4 недели) была статистически достоверно меньше, относительно состояния интактной кости: эта разница составляла 11,9%, 8,9%, 8,6% и 2,5%, соответственно, через 1, 2, 3 и 5 недель после операции. Следует еще раз отметить, что при естественной регенерации, также на большинство точек наблюдения были получены практически аналогичные данные: плотность тканей в дефекте была достоверно меньше на 12,1%, 11%, 10,5% и 9,3%, чем в норме, на 1, 2, 3 и 5 неделях эксперимента, также соответственно. При этом через 5 недель после применения ПГА плотность кости в дефекте была достоверно меньше на 6,7% (рис. 89-93) (табл. 29).

То есть после имплантации полимера происходила точно такая же динамика изменения плотности тканей, как и при естественном заживлении, а несколько большая плотность, скорее всего, обусловлена присутствием твердого инородного тела в дефекте, которое препятствует формированию грануляций и островков костной ткани, а при смещении (например, при жевании) повреждает образующиеся структуры.

РЕЗЮМЕ

После применения полимерных матриксов на все сроки наблюдения сохранялось неизменным отверстие в кости, где находился сам матрикс. Признаков консолидации полимера с краем дефекта кости ни в одном случае не было. На все сроки наблюдения было отмечено активное образование костной ткани между краем дефекта и матриксом. Непосредственно сам матрикс был окружен фиброзной тканью с большим числом клеточных элементов (фиброциты, фибробласты и макрофаги), толщина этой капсулы со временем постепенно уменьшалась. В некоторых случаях, начиная с 3 недели наблюдения, была отмечено образование полостей с красным костным мозгом в молодой костной ткани по краю дефекта.

Свидетельств деградации искусственного материала на все сроки эксперимента не получено, также не обнаружено признаков формирования гигантских клеток инородных тел по краю матрикса, расположенного в дефекте кости, но не сместившегося в мягкие ткани, что, вместе с отсутствием деградации и формированием фиброзной капсулы, указывает не на биодеградируемость, а на выраженную биоинертность используемого полимера.

По результатам денситометрии дефекта кости нижней челюсти крыс после применения ПГА было обнаружено, что плотность тканей в дефекте практически на все сроки наблюдения была достоверно меньше, чем на интактных участках кости на контралатеральной стороне.

6.2 Результаты изучения строения субмандибулярных лимфатических узлов после внедрения полигидроксиалканоата в дефект кости

6.2.1 Изменения структуры лимфатических узлов

После применения ПГА для заполнения дефекта кости нижней челюсти к 5 неделе стал больше объем капсулы на 87,3%, относительно состояния у интактных животных (табл. 30).

Объемная плотность соединительной ткани в корковом веществе лимфатических узлов спустя 4 недели после операции была больше в 3,8 раза, чем в интактном контроле. На 5 неделе величина значения данного показателя была больше в 4,7, 3,5 и 3,8 раза, соответственно, по сравнению с состоянием у интакных крыс, через 1 и 2 недели после моделирования дефекта нижней челюсти (рис. 94-98) (табл. 30).

Площадь соединительнотканных прослоек в мозговом веществе на 4 и 5 неделях после операции стала больше в 3,7 и 4 раза, соответственно, относительно интактных животных (рис. 99) (табл. 30).

Через 1 и 2 недели объемная плотность коркового плато превосходила исходный уровень на 49,3% и 43,4%, соответственно, однако, на 4 и 5 неделях величина значения этого показателя уже была меньше, чем в интактном контроле на 25,9% и 32%, также соответственно. На 3, 4 и 5 неделе корковое плато было статистически достоверно меньше на 48,2%, 88%, и 97,1%, соответственно, относительно значения на 1 неделе, также меньше на 42,3%, 80,6% и 89,3%, и также соответственно, по сравнению с состоянием спустя 2 недели (рис. 94-98) (табл. 30).

Относительная площадь паракортикальной зоны резко уменьшилась уже к 1 неделе, потом этот показатель постепенно увеличивался, но до 4 недели наблюдения был меньше контроля. Через 1, 2 и 3 недели объем паракортекса был меньше исходного на 57%, 62% и 26%, соответственно. На 4 и 5 неделе паракортекс был статистически достоверно шире на 42% и 38,2%, соответственно, относительно значения на 1 неделе, и шире на 46,5% и 42,6%, также соответственно, по сравнению с состоянием спустя 2 недели (табл. 30).

Объемная плотность лимфоидных фолликулов без центров размножения была больше контрольной в течение 1-2 недель, на следующие точки наблюдения величина значения этого показателя не отличалась от исходного. Спустя 1 и 2 недели площадь таких фолликулов на срезе была выше исходного состояния на 51,8% и 50,1%, соответственно. На 4 неделе узелки были статистически достоверно уже в 3,3 и 3,2 раза, соответственно, по сравнению с состоянием спустя 1 и 2 недели. К 5 неделе размер этих структур был меньше в 4,4 и 4,3 раза, также соответственно, и также относительно показателей через 1 и 2 недели (рис. 94-98) (табл. 30).

Площадь центров размножения в узелках со светлыми центрами на 5 неделе после операции стала больше на 66,8% и в 2,1 раза, соответственно, относительно интактных животных и через 2 недели после применения ПГА (табл. 30).

Относительный объем мантийной зоны был больше контроля на 1 и 2 неделе, потом этот показатель постепенно снижался и на 4-5 неделях был даже ниже контрольного. Через 1 и 2 недели объемная плотность мантия превосходила контрольный уровень на 61,3% и 65,7%, соответственно. При этом на 3 неделе величина значения данного показателя была меньше, чем на 1 и 2 неделях, на 65,4% и 69,8%, соответственно. На 4 неделе объем мантия был меньше в 2,1, 3,4, 3,5 и 2 раза, соответственно, а к 5 неделе - в 2,4, 3,9, 4,1 и 2,4 раза, также соответственно, относительно интактного контроля и состояния на 1, 2 и 3 неделе (табл. 30).

Начиная с первой недели площадь мякотных тяжей постепенно расширялась и на 3-5 неделях была достоверно больше исходной. Спустя 3, 4 и 5 недель объемная плотность мякотных тяжей статистически достоверно превосходила исходный уровень на 27,2%, 33,1% и 37,1%, соответственно. Кроме того, на 5 неделе величина значения данного показателя была больше, чем на 1 и 2 неделях после операции на 27% и 21,1%, соответственно (табл. 30).

Процент мозговых синусов на срезе лимфатических узлов на 1 неделе был статистически достоверно больше состояния на 3, 4 и 5 неделях, на 35,3%, 49,8% и 53,4%, соответственно, на 2 неделе также был выше, чем через 3, 4 и 5 недель, и также соответственно, на 36,3%, 50,9% и 54,6% (табл. 30).

Статистически достоверные различия в строении субмандибулярных лимфатических узлов крыс со спонтанным заживлением дефекта нижней челюсти и после заполнения отверстия ПГА были отмечены в объемной плотности коркового плато. Величина значения этого показателя на 2, 3, 4 и 5 неделях после применения полимера была статистически достоверно меньше на 27,2%, 34,3%, 57,4% и 70,9%, соответственно, чем при спонтанной регенерации (табл. 2, 30).

6.2.2 Изменения цитограммы коркового плато

Процент лимфоцитов в корковом плато лимфатических узлов на все сроки наблюдения после операции с применением ПГА был статистически достоверно меньше, чем в контроле. Через 1, 2, 3, 4 и 5 недель после начала эксперимента этот показатель был статистически достоверно меньше контрольного на 13,9%, 13,9%, 13,7%, 15,6% и 20,8%, соответственно (табл.31).

Относительное содержание иммуно- и плазмобластов резко возросло уже на 1 и 2 неделе, потом этот показатель находился на уровне контроля. Через 1 и 2 недели этих клеток было больше, чем в контроле, в 2,3 раза. На 3, 4 и 5 неделях бластов было меньше в 2,1, 6,7 и 6,7 раза, соответственно, по сравнению с состоянием на 1 неделе, и в 2,1, 6,5 и 6,5 раза, также соответственно, относительно показателей на 2 неделе (рис. 94-98) (табл. 31).

Численная плотность иммуно- и плазмобластов на 4 и 5 неделях была ниже интактного контроля в 2,5 и 2,6 раза, соответственно (рис. 94-98) (табл. 31).

Процент ретикулярных клеток постепенно возрастал и на 4 и 5 неделях был больше на 29,2% и 38,5%, соответственно, чем в контроле. Кроме того, спустя 1 неделю величина значения этого показателя была ниже на 40%, 57,5% и 68,6%, соответственно, относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях. Через 2 недели клеток стромы было также меньше на 37,1%, 54,2% и 65,2%, также соответственно, и также относительно состояния на 3, 4 и 5 неделях (табл. 31).


Подобные документы

  • Огнестрельные переломы длинных костей конечностей: статистические данные, классификация. Регенерация огнестрельных переломов. Структурная организация и регенерация костной ткани. Методика проведения эксперимента на биообъектах и результаты исследований.

    диссертация [12,7 M], добавлен 29.03.2012

  • Особенности репаративной регенерации костной ткани после изолированного перелома кости и при комбинированных радиационно-механических поражениях. Способы оптимизации остеорепарации. Репаративная регенерация костной ткани. Методы лечения переломов.

    курсовая работа [1,1 M], добавлен 11.04.2012

  • Возрастные особенности скелета туловища: формирование черепа новорождённого, позвонков, рёбер и грудины, скелета верхних и нижних конечностей. Особенности роста и физического развития ребёнка. Инволютивные процессы в костной ткани вследствие старения.

    контрольная работа [142,0 K], добавлен 14.09.2015

  • Характеристика костной ткани - специализированного типа соединительной ткани с высокой минерализацией межклеточного органического вещества, содержащего около 70% неорганических соединений, главным образом, фосфатов кальция. Развитие костей после рождения.

    презентация [746,7 K], добавлен 12.05.2015

  • Отличительные особенности костной ткани, химический состав. Защитная, метаболическая и регуляторная функции. Физиологические изгибы позвоночника. Процесс минерализации и деминерализации кости и их регуляция. Возрастные особенности скелета человека.

    презентация [1,6 M], добавлен 27.01.2016

  • Понятие и особенности формирования костной ткани, построение ее клеток. Перестройка кости и факторы, влияющие на ее структуру. Формирование костной мозоли и ее состав. Сроки заживления переломов ребер, основные критерии, определяющие скорость срастания.

    контрольная работа [2,1 M], добавлен 25.01.2015

  • Строение хрящевой ткани человека, ее изменение в процессе старения. Образование мышечной ткани ребенка в период его развития, инволютивные изменения мышечных волокон у пожилых людей. Структура костной ткани в детском возрасте и ее изменения с возрастом.

    презентация [337,3 K], добавлен 27.01.2015

  • Виды повреждений костей лицевого скелета. Переломы нижней и верхней челюсти. Помощь при переломах челюстей и методы временной иммобилизации. Ортопедические методы фиксации отломков нижней челюсти. Переломы скуловой кости и скуловой дуги, костей носа.

    реферат [29,2 K], добавлен 28.02.2009

  • Роль генетических и индивидуальных факторов риска на развитие остеопороза. Причины системного заболевания скелета, характеризующегося уменьшением костной массы и нарушением микроархитектоники костной ткани, ведущими к повышению хрупкости и перелому кости.

    презентация [2,8 M], добавлен 22.12.2015

  • Регенерация как восстановление структурных элементов ткани взамен погибших в результате их физиологической гибели. Основные виды регенерации: физиологическая, репаративная и патологическая. Особенности восстановления эпидермиса и костной ткани человека.

    презентация [2,5 M], добавлен 02.03.2015

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.