Размещено на http://www.allbest.ru/

ГНЦ «Институт иммунологии ФМБА России»

На правах рукописи

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук

Новые иммунобиотехнологические методы для профилактики и лечения вирус-ассоциированных заболеваний

14.00.36 - аллергология и иммунология

Хаитов Муса Рахимович

Москва, 2008

Работа выполнена в ГНЦ «Институт иммунологии ФМБА России»

Научный консультант: Академик РАН и РАМН Р.В. Петров

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук, профессор, академик РАМН А.Л. Гинцбург

доктор медицинских наук, профессор, академик РАМН В.И. Литвинов

доктор медицинских наук, профессор А.А. Ярилин

Ведущая организация: Российский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию.

Защита диссертации состоится « 24 » декабря 2008 г. в 14-00 часов на заседании Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 208.017.01 в ГНЦ «Институт иммунологии ФМБА России» по адресу: 115478, г. Москва, Каширское шоссе, дом 24, корпус 2. Тел/Факс: (495) 617-10-27

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНЦ «Институт иммунологии ФМБА России».

Автореферат разослан 2008 г.

Ученый секретарь

Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций доктор медицинских наук Л.С. Сеславина.

Общая характеристика работы

Актуальность проблемы

Несмотря на то, что за последние годы была разработана эффективная противовирусная терапия для многих вирусных инфекций, количество вирус-ассоциированных заболеваний остается высоким. Рак шейки матки, связанный с персистирующей инфекцией вирусом папилломы человека (HPV) - один из самых распространенных и опасных видов злокачественных новообразований у женщин во всем мире. По данным ВОЗ каждый год в мире диагностируется около 500 000 новых случаев рака шейки матки, который занимает второе место в мире как причина смерти от рака среди женщин. На сегодняшний день, по крайней мере, 700 миллионов человек являются носителями HPV-инфекции, а количество летальных исходов, связанных c HPV-инфекцией, достигает 280 тысяч в год (Waggoner S., 2003; Кулаков В.И.2000; Киселёв В.И, Киселёв О.И., 2003).

Наиболее частыми, до 90% всех случаев инфекционных заболеваний, являются острые респираторные вирусные инфекции (ОРВИ). В России ежегодно регистрируется от 27,3 до 41,2 млн. случаев этих заболеваний (Балаболкин И.И., 2003).

ОРВИ наносят огромный экономический ущерб за счет затраты больших средств на лечение как самого заболевания, так и вызванных им осложнений, кроме того эти вирусы поражают молодое трудоспособное население.

Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция (РСВ) - одна из главных причин тяжелых заболеваний верхних и нижних дыхательных путей у новорожденных и детей раннего возраста. Ежегодно в мире в результате заболеваний нижних дыхательных путей, связанных с РСВ, умирает несколько миллионов детей младше 5 лет. Кроме того, РСВ инфекция, перенесенная в детском возрасте, приводит к развитию гиперчувствительности дыхательных путей у детей и к развитию бронхиальной астмы в дальнейшей жизни (Johnston S.L., 2005).

Таким образом, цель настоящей работы и основные задачи исследования продиктованы повсеместной распространённостью вирусных инфекций, а также тяжестью заболеваний, ассоциированных с различными вирусами и очевидной необходимостью поиска принципиально новых подходов к конструированию лечебно-профилактических средств для профилактики и лечения вирус-ассоциированных заболеваний.

Цель исследования: разработать новые подходы для создания средств профилактики и лечения вирус-ассоциированных заболеваний.

Задачи исследования:

1. Получение дрожжевых репликативных плазмид, предназначенных для экспрессии белка L1 папилломавируса человека серотипов 16 и 18 в клетках дрожжей Saccharomyces cerevisiae. Отработка протоколов выделения вирусоподобных частиц (ВПЧ) в количестве, необходимом для исследования. Тестирование иммуногенности рекомбинантных белков L1 ВПЧ in vivo на мышах.

2. Идентификация консервативных иммунодоминантных эпитопов белков HPV L1 и E7 серотипов вируса 16, 18 и 31.Синтез и очистка пептидов, имитирующих иммунодоминантные эпитопы белков L1 и E7.Тестирование иммуногенности синтезированных пептидов в опытах на мышах.

3. Конъюгирование и комбинирование полученных пептидов с иммуномодуляторами. Определение уровня иммуногенности созданных комбинаций in vivo.

4. Изучение вирус-индуцированной экспрессии и продукции интерферонов первого и третьего типа in vitro. Выявление основного типа интерферонов, продуцируемых эпителиальными клетками при ОРВИ.

5. Изучение генома респираторного синцитиального вируса.

6. Дизайн siRNA против мРНК белка Р респираторного синцитиального вируса.

7. Оценка антивирусной активности siRNA против мРНК белка Р респираторно-синцитиального вируса in vitro в культуре клеток.

8. Оценка антивирусной активности siRNA против мРНК белка Р респираторно-синцитиального вируса in vivo на мышах.

9. Выявление наиболее эффективных siRNA против мРНК белка Р респираторно-синцитиального вируса.

Научная новизна

Впервые в мире показано, что интерфероны третьего типа являются основными интерферонами, продуцируемыми клетками респираторного эпителия при ОРВИ.

Впервые в Российской Федерации созданы дрожжевые штаммы-продуценты, способные экспрессировать рекомбинантные капсидные белки L1 HPV вирусных серотипов 16, 18 в виде ВПЧ. Впервые разработана технология выделения ВПЧ из дрожжевых экстрактов. Были получены пептиды длиной от 9 до 35 аминокислот, представляющие собой фрагменты трансформирующего белка E7 HPV cеротипов 16 и 31 (Т-эпитопы, как основа терапевтических композиций), а также фрагменты L1 HPV16 (иммунодоминантные В- и Т-эпитопы). Полученные данные свидетельствуют, что рекомбинантные ВПЧ индуцируют высокий уровень гуморального иммунного ответа. Свободные рекомбинантные ВПЧ и пептиды из белка Е7 в сочетании с иммуномодуляторами активировали клеточный иммунный ответ. Таким образом, впервые в Российской Федерации получены препараты имеющий профилактический и терапевтический потенциал в отношении HPV- инфекции.

Впервые в Российской Федерации экспериментально изучена возможность использования средств на основе siRNA против вирусов in vitro и in vivo.

Проведен дизайн siRNA против мРНК белка Р респираторно-синцитиального вируса, были сконструированы 6 уникальных экспериментальных образцов siRNA, получивших рабочие названия si01, si03, si05, si07, si09 и si11, нацеленных к различным участкам мРНК белка Р РСВ в пределах открытой рамки считывания.

На модели РС-инфекции в культуре клеток МА104 была проведена оценка противовирусного действия экспериментальных образцов siRNA. Подобранные специфические siRNA эффективно подавляли репродукцию респираторно-синцитиального вируса в культуре клеток.

Впервые в Российской Федерации экспериментальные образцы siRNA проявили противовирусную активность in vivo. Причём полученные в эксперименте на мышах данные подтвердили данные, полученные в культуре клеток. интерферон вирус синцитиальный

Таким образом, впервые в Российской Федерации проведенные исследования in vitro и in vivo продемонстрировали противовирусную активность испытанных экспериментальных образцов препаратов по снижению репликации респираторно-синцитиального вируса, одного из главных этиологических факторов вирус-индуцированной бронхиальной астмы, что делает возможным создание специфических противовирусных средств на основе механизма интерефернции РНК.

Практическая значимость

На сегодняшний день в мире не существует лекарственных средств для эффективной элиминации вирусов из организма человека и лечения социально-значимых вирус-ассоциированных заболеваний. Для решения этой проблемы в данной работе были показаны различные подходы к созданию лечебно-профилактических противовирусных средств.

Разработка предложенных в работе антивирусных препаратов имеет стратегическое значение для биобезопасности Российской Федерации. Так, в эпоху биотерроризма респираторные вирусы, ввиду своей способности быстро инфицировать большое количество людей и вызывать смертельно опасные заболевания, несут в себе огромную опасность для населения страны. Наличие высокоспецифичных и высокоэффективных противовирусных средств, основанных на миРНК, позволит оптимизировать профилактику и лечение состояний, ассоциированных с РСВ.

Кроме того, крайне перспективным представляется экономический эффект от коммерциализации противовирусных препаратов. По данным журнала “Forbes” в США продажи антивирусных препаратов за 2007 год составили 10,6 миллиарда долларов. По прогнозам экспертов из консалтингового агентства Business Communications рост продаж антивирусных препаратов в ближайшие 3 года должен составить около 40%.

По данным ЦМИ Фармэксперт за 2006 год в России объём продаж системных противовирусных препаратов составил 5,37% (4-ое место) от общего объёма продаж лекарственных средств, а по темпам прироста продаж по сравнению с 2005 годом - 62% занял первое место со значительным отрывом от группы препаратов сердечной терапии.

На сегодняшний день существует потребность в создании эффективной противовирусной терапии для предотвращения и лечения состояний и заболеваний, связанных с вирусной инфекцией. Возможность использования предложенных методик в качестве эффективных специфических противовирусных средств, безусловно, должна реализоваться в разработке надежных, безопасных и не дорогих противовирусных терапевтических препаратов.

Положения, выносимые на защиту:

1. Отработаны протоколы выделения ВПЧ. Препараты ВПЧ из белков L1 HPV cеротипов 16 и 18 наработаны в количестве, необходимом для анализа. Анализ препаратов методами визуализации в геле, иммуноферментным методом при помощи специфических антител, а также методом электронной микроскопии позволил сделать вывод о соответствии полученных частиц искомым вирусоподобным частицам.

2. Полученные препараты ВПЧ из белков L1 HPV cсеротипов 16 и 18 являются высокоиммуногенными антигенами.

3. Выбранные участки аминокислотных последовательностей внутреннего белка Е7 ВПЧ 16 и 31 соответствуют Т-клеточным эпитопам ВПЧ. Синтезированные пептиды обладают специфическими иммуногенными свойствами при использовании с иммуностимулирующими препаратами.

4. Комбинированное использование полученных вирусоподобных частиц, состоящих из белка L1 с пептидами, имитирующими Т-клеточные эпитопы белка Е7, перспективно в контексте создания лечебно-профилактической вакцины против вируса папилломы человека.

5. ИФН-л служит основным фактором противовирусной защиты респираторного эпителия.

6. Белок Р является успешной мишенью для эффективного подавления РСВ при помощи siRNA. siRNA к мРНК белка Р респираторно-синцитиального вируса эффективно снижает репликацию РСВ in vitro и in vivo.

7. siRNA может использоваться в качестве специфического противовирусного средства, не влияющего на нормально протекающие процессы в клетке.

8. siRNA может применяться в качестве противовирусного средства без специальных средств доставки в чистом виде при эндотрахеальном и ингаляционном введении, что может использоваться при создании лечебно-профилактических средств против респираторных вирусов.

9. Описана возможность создания эффективного лекарственного средства против РСВ, одного из основных этиологических факторов вирус-индуцированной бронхиальной астмы, с использованием механизма интерференции РНК.

Апробация работы

Результаты исследования докладывались: на XXII (Париж, Франция 7-11 июня 2003), XXVI (Гётеборг, Швеция, 9-13 июня 2007г.), XXVII (Барселона, Испания, 7-11 июня 2008г.) конгрессах Европейской Академии Аллергологии и Клинической Иммунологии; на XVIII Конгрессе Всемирной Аллергологической Организации (Ванкувер, Канада, 7-12 сентября 2003); на VIII конгрессе Российской ассоциации аллергологов и клинических иммунологов (РААКИ) «Современные проблемы аллергологии, иммунологии и иммунофармакологии» (Москва, Россия, 27-29 июня 2007г.); на 1-м на 2-м Международных конгрессах «Иммунитет и болезни: От теории к терапии» (Москва, Россия, 3-7 октября 2005г.; Москва, Россия, 10-14 сентября 2007г.); на конгрессах Американской Академии Аллергологии, Астмы и Иммунологии (Сан Диего, США, 23-27 февраля 2007 г. и Филадельфия, США, 14-18 марта 2008 г.); на ежегодном съезде Американского Колледжа Аллергологии, Астмы и Иммунологии (Даллас, США, 8-14 ноября 2007 г.).

Часть вошедших в диссертацию материалов представлена в работе, которой присуждена премия Правительства Российской Федерации за 2007 год в области науки и техники.

Основные результаты диссертационной работы отражены в 33 публикациях, в ведущих рецензируемых научных журналах, в том числе в 21 отечественном журнале и 12 зарубежных изданиях.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа построена по традиционному плану, изложена на 220 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, разделов, описывающих материалы и методы исследований, результаты, обсуждения полученных результатов и выводов. Диссертация иллюстрирована 16 таблицами, 39 рисунками, включая фотографии. Список использованной литературы включает 250 источников, из них 20 отечественных и 230 зарубежных.

Содержание работы

Материалы и методы исследований

Рекомбинантные ВПЧ HPV16 и 18. С целью клонирования генов белков L1 HPV проводили дизайн праймеров для амплификации целевых генов. На основе синтезированных праймеров и клинического материала (от HPV-инфицированных пациентов) синтезировали фрагменты ДНК размером около 1500 нуклеотидов, что соответствует размерам их генов, и затем эти фрагменты клонировали в вектор pUC19. Вектор pPDX2, предназначенный для экспрессии белка L1 в клетках дрожжей, конструировали на основе плазмиды pPDX1, после чего фрагменты, содержащие гены, кодирующие белок L1, переносили в этот вектор. В итоге получали плазмидные конструкции, содержащие соответствующие L1-гены (плазмиды pPDX2-L1-16, pPDX2-L1-18).

Трансформация дрожжей, продуцирование и выделение белков L1 в виде ВПЧ. В качестве дрожжевого штамма-продуцента использовали штамм Y618 дрожжей Saccharomyces cerevisiae, который трансформировали плазмидами pPDX2-L1-16/18. Для наработки ВПЧ дрожжевые клетки культивировали в питательной среде, затем наросшую клеточную массу отделяли центрифугированием и добавляли в нее протеазные ингибиторы. Клетки лизировали, лизат осветляли центрифугированием (5000g) и центрифугировали в градиенте сахарозы (100000g). Фракцию с частицами ВПЧ выделяли с границы раздела фаз 45/70%-растворов сахарозы и подвергали ультрафильтрации на мембране 10 кДа, осветляли центрифугированием и фильтровали через мембрану 100 кДа. Время достижения максимальной концентрации ВПЧ в дрожжевой клетке (40-80 часов) зависело от серотипа вируса и состава питательной среды. Для препаративного выделения ВПЧ клетки-продуценты выращивали в питательной среде со специфичным для каждого серотипа источником углерода.

Подтверждение структуры рекомбинантных ВПЧ. Полученные препараты L1 ВПЧ анализировали с помощью денатурирующего электрофореза в полиакриламидном геле (SDS-PAGE), твердофазным иммуноферментным анализом (ИФА) и иммуноблоте, используя специфические для L1 ВПЧ моноклональные антитела (МКА), полученные от US Biological, вируснейтрализующие МКА, любезно предоставленные проф. Neil. D. Christensen (Pennsylvania State University College of Medicine, Hershey, Pennsylvania, USA) и поликлональные антимышиные антитела к синтетическим пептидам из белков L1 HPV, соответствующие доминантным В-эпитопам. Морфологические доказательства правильности сборки белков L1 в структуру ВПЧ получали с помощью электронной микроскопии на приборе JEOL-100СХ при 80 кВ и увеличении 55000 и 350000; образцы контрастировали уранилацетатом. Микрофотографии приведены на рис. 1.

Пептиды. Синтез пептидов проводили стандартным твердофазным методом, используя Fmoc-химию. В синтезе использовали стартовые Fmoc-аминокислоты на полимере Wang фирмы NovaBiochem. Боковые карбоксильные и гидроксильные группы аминокислот защищались трет-бутильной группой (t-Bu), аминогруппа лизина - Boc, SH-группа цистеина - Acm и гуанидиновая функция аргинина - Mtr. Очистку сырых пептидов проводили гель-хроматографией на смоле Toypearl HW40 и ВЭЖХ (Zorbax ODS 0.94 x 25 cm). Анализ гомогенности пептидов проводили аналитической ВЭЖХ (Vydac 218ТР54, 4.6 x 250 mm), структуру подтверждали масс-спектрометрией (MALDI).

Конъюгаты пептидов c KLH. 6-10 мг пептида растворяли в 1000 мкл 0.1 М фосфатного буфера (ФБ, рН 9.0) и раствор смешивали с 800 мкл раствора 18 мг KLH (Sigma, H8283) в ФБ. Смесь перемешивали 30 мин. и охлаждали до 4^оС. Добавляли 1.5 мкл охлажденного до 4^оС раствора глутарового альдегида (Serva) в 250 мкл ФБ и реакционную смесь перемешивали 1 час и оставляли на 22 часа при 4 ^оС. Затем добавляли охлажденный свежеполученный раствор 10 мг NaBH₄ (Sigma) в 400 мкл дист. воды и оставляли 1 час при комн. т-ре. Все содержимое переносили в диализную трубку Servapore и проводили исчерпывающий диализ против дист. воды. Полученный диализат замораживали, лиофилизовывали и затем конъюгат очищали хроматографией на колонке с сефадексом G-25.

Конъюгаты пептидов с полиоксидонием (ПО). Этиленпиперазиний-бромидные звенья ПО превращали в реактивную, азидную, форму, и затем азидное производное вводили в реакцию с пептидами. Степень конденсации контролировали по убыли свободного пептида из реакционной смеси путем ВЭЖХ. Конъюгаты подвергали диализу и полученный диализат лиофильно высушивали. Содержание пептида в конъюгате определяли аминокислотным анализом (Biotronik LC5000) и спектрофотометрически по приросту поглощения при 275 нм. Исходное содержание карбоксильных групп в ПО ~36 остатков на одну цепь полимера (мол. масса ~50 kDa), что соответствует ~0.7 ммоля/г полимера. Продукты конденсации пептидов с ПО представляли собой бесцветные или слегка окрашенные порошки.

Иммунизация и ИФА. Мышей (самцы) линии CBAхBALB/c (F1) иммунизировали внутрибрюшинно 3-4 раза с интервалом в 2 недели. В каждой группе животных (5 в группе) использовали один из иммуногенов в дозе 50 мкг/мышь. Забор крови осуществляли через 2-недельные интервалы из ретроорбитального синуса каждой мыши контрольной и опытной групп. Полученные из крови образцы сывороток анализировали стандартным вариантом твердофазного ИФА, используя конъюгат анти-IgG мыши с полимеризованой пероксидазой (Amersham) и высокочувствительный субстрат ТМВ (Sigma) согласно инструкции производителя. Величину фонового поглощения (Cut off) оценивали как среднее значение величины оптической плотности для нормальных сывороток (n = 5) + 3 SD. Сыворотки титровали, используя двоичное разведение, начиная с 1:50. Их титр определяли как конечное разведение, при котором оптическая плотность (OD) превосходила OD нормальной сыворотки в 2 раза.

Сепарация популяций Т-клеток. Для анализа цитотоксической активности Т-клетки, выделенные из спленоцитов иммунных и контрольных мышей, обогащали популяцией CD8⁺-клеток путем удаления CD4⁺-клеток с помощью магнитных шариков Dynalbeads Mouse CD4 (L3T4) фирмы Dynal (Lake Success, USA), покрытых специфическими антителами, согласно протоколу производителя. Эффективность удаления CD4⁺-популяции, которую оценивали проточной цитофлуорометрией с FITC-мечеными анти-CD4-антителами, достигала 98%.

Анализ Т-клеточной активности методом ELISPOT. Спленоциты (суммарный пул Т-клеток) или CD8⁺-обогащенную фракцию клеток помещали в 96 луночные планшеты (~400 000 клеток/лунку), на дне которых были сорбированы антитела против IFN-г мыши, и инкубировали их в питательной среде вместе с пептидами (10, 5, 2.5 мкг/лунку), имитирующими Т-эпитопы, в течение 18 часов при 37 в 5% атмосфере СО₂ . По окончании инкубации клетки удаляли и вносили вторые антитела, против IFN-г, меченные биотином, после отмывки вносили стрептовидин-пероксидазу хрена, инкубировали, отмывали и вносили субстрат. Подсчет окрашенных клеток проводили на анализаторе Eli.Scan (AELVIS), все пробы ставились в трех параллелях.

Культивирование человеческих бронхоэпителиальных клеткок и респираторных вирусов

Человеческие бронхоэпителиальные клетки были приобретены в Cambrex, США. Клетки были помещены в среду BEBM (Cambrex, США), содержащую 2мл BPE, 0.5мл инсулина, HC 0.5 мл, GA-1000 0,5 мл, 0.5 мл ретиноевой кислоты, 0.5 мл трансферрина, 0.5 мл трийодтрионина, 0.5 мл эпинефрина, 0.5 мл hEGF (Cambrex, США). После первого пассажа клетки были посеяны на 12-луночный планшет и культивировались до 80% конфлюентности (Bucchieri F, 2002) , после чего были инфицированы РВ 16, 1В и вирусом гриппа.

Культура человеческих бронхоэпителиальных клеток BEAS-2B культивировалась в среде RPMI-1640 c добавлением 10% бычьей сыворотки (Invitrogen). РВ16 и 1В были выращены на клетках HeLa (Papi A, 1999). Вирусы были раститрованы на клетках HeLa для определения TCID₅₀/ml (Johnston SL, 1995). Риновирусы были идентифицированы в реакции нейтрализации с использованием серотип-специфических антител. Инактивация вирусов ультрафиолетом была проведена по ранее описанной методике (Johnston SL, 1998). Вирус гриппа А Victoria 75/3 был культивирован на клетках MDCK. После достижения 80% конфлюентности клетки были промыты два раза стерильным PBS, а затем культура клеток была помещена в среду ЕМЕМ (сыворотка в среде отсутствовала). 0,5мл стокового вируса гриппа было добавлено в среду, содержащую клетки, которая затем была помещена в СО₂ -инкубатор при 37С на 1 час. Клетки были промыты для удаления не прикрепившихся вирусных частиц, ресуспензированы в бессывороточной среде и инкубировались при 37C 5% CO₂ 48 часов. Спустя два дня после инфицирования, супернатанты были отобраны, разаликвотированы и помещены на хранение при -80С.

Клетки линии BEAS-2B были помещены в 12-луночные планшеты и инкубировались при 37C 5% CO₂ 24 часа. Затем клеточная среда была заменена средой RPMI с 2% содержанием сыворотки, и клетки инкубировались ещё 24 часа при 37C 5% CO_2. Клетки были инфицированы риновирусами, после чего инкубировались один час при комнатной температуре на шейкере. Спустя час среда была заменена средой RPMI с 2% содержанием сыворотки. Клеточные супернатанты и лизаты были собраны спустя 0, 4, 8 и 24 часа спустя инфицирования и помещены на хранение при -80С.

Выделение мононуклеарных клеток и инфицирование РВ 16

Мононуклеарные клетки были выделены из цельной крови методом градиентного центрифугирования (Sigma-Aldrich, Великобритания). Затем клетки в концентрации 4*10⁶ /2мл были инфицированы РВ 16. Спустя час клетки были отмыты и помещены в культуральную среду. Клеточные супернатанты и лизаты были собраны спустя 4, 8 и 24 часа спустя инфицирования и помещены на хранение при -80С.

Выделение РНК, обратная транскрипция и Taqman RT-ПЦР

РНК была выделена из клеток методом Rneasy в соответствии с инструкцией производителя. Процесс выделения РНК сопровождался дополнительной обработкой образца ДНКазами (Qiagen) для элиминации ДНК. кДНК была синтезирована при помощи набора Omniscript в соответствии с инструкцией производителя (Qiagen).

Праймеры для Taqman RT-ПЦР были приобретены в Invitrogen, зонды в Qiagen. Количественная оценка исследуемых мРНК производилась в соответствие с 18s рРНК. Анализ экспрессии мРНК производился на оборудовании ABI7000 Automated TaqMan (Applied Biosystems). Цикл амплификации включал в себя 50C 2 минуты, 94C 10 минут и 40 циклов - 94C по 15 секунд, 60C по 15 секунд.

Оценки продукции интерферонов и RANTES

Продукция белка была измерена в супернатантах инфицированных и неинфицированных клеток методом ИФА в соответствии с инструкцией производителя (Amersham Biosciences для ИФН-б, FUJIREBIO INC для ИФН-в, и Biosource для RANTES). ИФА ИФН-л был проведён в соответствии с опубликованными материалами (Contoli M, 2006).

Экспериментальные животные

Для получения модели инфекции использовали мышей линии BALB/C обоих полов весом 18-20 грамм. Животные поступали из питомника ГУ НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова РАМН, Москва. Работа и уход за животными проводились согласно нормам и правилам обращения с лабораторными животными в соответствии с «Положением об этическом отношении к лабораторным животным», согласно приказу директора ГНЦ Институт иммунологии от 07.07.2003 и приказа МЗ РФ от 19.06.2003 №267 «Правила лабораторной практики в Российской Федерации».

Культивирование клеток и вируса. РСВ штамм Long размножали в культуре клеток МА104, которые культивировали на питательной среде, состоящей из двух частей МЕМ и одной части DMEM с добавлением 4% фетальной сыворотки коров, L-глутамина (300 мкг/мл) и гентамицина (50 мкг/мл) в инкубаторе с 5% CO2 при 37?C. За 24 часа до заражения вирусом клетки пересевали на культуральные флаконы 162 см², чтобы к моменту заражения они образовали монослой с 50% конфлюентностью. Клетки дважды промывали средой без сыворотки и заражали 1 мл вируса, содержащего 2*10⁴ ТЦД50/мл. После 2 часов адсорбции вируса при 37?C, при периодическом покачивании флаконов, добавляли 60 мл поддерживающей среды. Поддерживающая среда отличается от питательной отсутствием фетальной сыворотки и повышенным содержанием L-глутамина (600 мкг/мл). Через 48 часов после заражения, наблюдали характерное для РСВ ЦПД в виде образования множества синцитиев, при этом основная часть монослоя оставалась прикрепленной.

Трансфекция клеток МА104 siRNA и заражение РСВ

За 24 часа до трансфекции клетки МА104 пересевали на 12-ти луночные планшеты с такой плотностью, чтобы к моменту трансфекции они образовали монослой с 50% конфлюентностью. Перед трансфекцией производили смену среды на бессывороточную Opti-MEM I. Трансфекцию siRNA производили с использованием реагента для трансфекции Lipofectamine2000 по рекомендованной производителем методике. Спустя 4 часа после трансфекции клетки заражали РСВ в дозе 10³ ТЦД₅₀/лунку. Через 4 часа после заражения проводили вторую трансфекцию siRNA.

Через 48, 72 и 96 часов после инфицирования из лунок отбирали культуральную жидкость для титрования по ЦПД и анализа методом количественной ПЦР.

Из лунок с клетками, зараженными РСВ и обработанными специфическими и неспецифическими siRNA, через 48, 72 и 92 ч после инфицирования переносили по 200 мкл культуральной жидкости в пробирки и осветляли низкоскоростным центрифугированием при 2000 об/мин в течение 5 мин. Осветление культуральной жидкости при подготовке материала для ПЦР делали для того, чтобы оценить количество РНК «отпочковавшихся» вирионов, т.е. полностью завершивших цикл репродукции. Часть надосадочной жидкости сразу использовали для титрования вируса, другую часть хранили при -70єС до исследования методом ПЦР. Таким образом, наряду с титрованием вируса по ЦПД, ПЦР выступает в роли метода дополнительного контроля уровня вирусной репродукции.

Контроль трансфекции siRNA

Контроль трансфекции производили использованием флюоресцентно-меченной siRNA к мРНК структурного клеточного белка ламина - siGLO Lamin A/C. Ламин предствляет собой белок, относящийся к филаментам, и являющийся одним из наиболее распространенных белков ядерной мембраны. Этот белок экспрессируется в большинстве клеток млекопитающих, причем сайленсинг его мРНК не влияет на жизнеспособность клетки. Трансфекция siGLO Lamin A/C позволяет оценивать эффективность проникновения в клетку siRNA по флюоресценциии клеточных ядер, интенсивность которой контролировалась под флюоресцентным микроскопом.

Титрование вируса в культуральной жидкости по ЦПД определением конечной точки

Титрование вируса производили путем пятикратных разведений вирусного материала в 96-луночных планшетах с подготовленным монослоем клеток МА104. Титр РСВ определяли на 8 день по последнему разведению, в котором наблюдалось развитие ЦПД с образованием специфических синцитиев. Титр вируса рассчитывали по методу Рида и Менча и выражали в ТЦД₅₀/мл, т.е. в количестве 50% тканевых цитопатических доз вируса, содержащихся в 1 мл.

Определение количества вирусной РНК в культуральной жидкости методом обратной транскрипции и ПЦР в реальном времени

В работе были использованы праймеры, направленные к F-гену, подобранные на основании анализа нуклеотидной последовательности генома РСВ штамм Long.

Прямой праймер - GTGTTGGATCTGCAATCG.

Обратный праймер - CTGTTGTTCTTTTGTTGGAACTC.

Размер ампликона - 258 пар оснований.

Суммарную нуклеиновую кислоту выделяли из 100 мкл образца, используя коммерческий набор реагентов «ИзоГен». кДНК получали в 30 мкл реакционной смеси, содержащей буфер для ОТ, 0,5 мМ каждого дНТФ, 12,5 пкмоль прямого праймера, 5 ед. ингибитора рибонуклеаз, 50 ед. ревертазы вируса лейкоза Молони, 8 мкл РНК, при 37єС в течение 30 минут. Фермент инактивировали прогреванием при 95єС в течение 5 минут.

Далее, образцы анализировали методом ПЦР с флюоресцентной детекцией в режиме реального времени (РВ) в присутствии интеркалирующего красителя SYBR Green-1. Амплификацию проводили в 25 мкл реакционной смеси, состоящей из реактивов набора для проведения ПЦР РВ “Синтол”, и 12,5 пмоль каждого праймера в термоциклере АНК-16.

Программа ПЦР:

95єС - 120 сек - 1 цикл;

55єС - 50 сек, 95єС - 20 сек - 45 циклов.

Для построения калибровочной кривой был использован калибратор - ПЦР-продукт, вырезанный из геля, очищенный, с известной концентрацией. Расчет пороговых циклов, построение калибровочных кривых, расчет числа копий кДНК проводили при помощи программного обеспечения к амплификатору АНК-16.

Специфичность ПЦР контролировали при помощи процедуры “плавления” продуктов реакции и методом электрофореза в 2% агарозном геле, содержащем бромистый этидий. Результаты выявляли и документировали в ультрафиолетовом свете (312 нм) при помощи гель-документирующей системы «Gel Imager».

Экспериментальная модель инфекции РСВ на мышах

Перед началом эксперимента животных распределили по группам и взвесили. В каждую группу входило 6 мышей - 4 самки и 2 самца. Всего было сформировано 6 групп: 1 группе вводили смесь РСВ и si01, 2 группе - РСВ и si03, 3 группе - РСВ и si05, 4 - РСВ и siHRV, 5 - смесь РСВ и фосфатно-солевого буфера, 6 - фосфатный солевой буфер. При учете результатов опыта 4 группа считалась контрольной.

Животные 1, 2, 3, 4 групп получили 60 мкл siRNA (1 мкг/мкл) и 40 мкл вируса с титром 2*10⁶ТЦД₅₀/мл, 5 группе вводили вирус, смешанный с фосфатно-солевым буфером в тех же пропорциях. Введение РСВ и siRNA осуществляли эндотрахеально при помощи катетера. Действия, связанные с эндотрахеальным введением вируса и препаратов siRNA, а также вынужденный убой мышей, сопровождались внутрибрюшинной инъекцией наркотизирующего средства диазепам в дозе 15 мг/кг.

Спустя 6 дней после заражения животных забивали и извлекали легкие вместе с трахеей. Перед убоем мышей взвешивали.

Титрование вируса в смывах из легких мышейЛегкие мышей помещали на стерильную чашку Петри и при помощи инсулинового шприца многократно промывали 1 мл поддерживающей среды. Полученный смыв осветляли центрифугированием (5 минут, 5000 об/мин) при 4?C. Титрование вируса в полученных смывах проводили путем последовательных трехкратных разведений вирусного материала в 96-луночных планшетах с подготовленным монослоем клеток. Титр РСВ учитывали на 10 день после заражения по последнему разведению, в котором наблюдалось характерное ЦПД.

Статистический анализ

Полученные данные представляли в виде среднего значения ± стандартная ошибка среднего значения. Оценивали достоверность отличия титра вируса и количества вирусной РНК в культуральной жидкости в лунках, обработанных исследуемыми siRNA, по сравнению с обработанными контрольной siRNA (siHRV) по t-критерию Стьюдента, считая различие достоверным при P<0,001. Статистическую значимость различий в количестве вирусной РНК в разных группах мышей оценивали в соответствии с критерием t Стьюдента, различие считали достоверным при P<0,05.

Результаты исследования и их обсуждение

Получение рекомбинантных ВПЧ серотипов 16 и 18. Требуемые последовательности генов длиной 1511 п.н. (HPV16) и 1521 п.н. (HPV18) были получены с помощью ПЦР на основе клинических проб HPV-инфицированных лиц. В амплификации генов каждого серотипа были задействованы две различные пробы с данным серотипом, реакцию повторяли четыре раза.

Фрагменты, полученные в результате ПЦР, были очищены и клонированы в вектор pUC19, взятый из коллекции лаборатории биотехнологии дрожжей ГОСНИИГенетика.

Вектор pPDX2, предназначенный для экспрессии белка L1 в клетках дрожжей, был сконструирован на основе плазмид pPDX1, и pUCGALatgXhoI. При этом первую плазмиду использовали в качестве вектора, а из второй плазмиды получали фрагмент, несущий промотор GAL1-10. Полученная конструкция, таким образом, несет фрагмент последовательности 2-микронной плазмиды дрожжей, позволяющий ей реплицироваться в клетках дрожжей, ген URA3, являющийся селективным маркером при трансформации клеток дрожжей, промотор гена GAL1-10, ген bla, являющийся селективным маркером при трансформации клеток E. coli и точку начала репликации для бактериальных клеток. Фрагменты, содержащие гены, кодирующие белки L1, были перенесены в вектор pPDX2. В качестве дрожжевого штамма-продуцента был выбран штамм Y618 Saccharomyces cerevisiae. Была произведена трансформация этого штамма плазмидами pPDX2-L1-16 и pPDX2-L1-18, а также вектором pPDX2. Последняя трансформация была сделана с целью получения отрицательного контроля.

Экспрессию белков L1 оценивали в трансформантах штамма по данным электрофореза. Белковые пробы были отобраны после первого центрифугирования в градиенте сахарозы и нанесены на полиакриламидный гель. Полоса около 100 кДа соответствует по размеру эндогенным Ti-частицам дрожжей. Белок L1 в виде ВПЧ выделяли из всех трансформантов штамма Y618. В рамках оптимизации протоколов продуцирования и выделения ВПЧ из дрожжевых клеток была выбрана наилучшая среда (варьирование источника углерода), длительность культивирования, а также условия разделения частиц в градиенте сахарозы.

По этим данным для штамма 618/pPDX2-L1-18 лучшей следует признать среду с 3% глюкозы, 3% глицерина (и добавлением 2% галактозы к концу логарифмической фазы), а для штамма 618/pPDX2-L1-16 лучшей является среда с 0,5%глюкозы, 3% глицерина и 1,5% этанола (и добавлением 2% галактозы к концу логарифмической фазы). Оптимальное время роста - 67 часов.

Пептиды и антипептидные антитела. Используя данные третичной структуры (софт от SWISS-MODEL protein modeling server/Swiss-Pdb Viewer 3.7, предсказаны участки, формирующие вероятные доминантные В- и Т-эпитопы белков L1 (типы 16 и18) и белка Е7 (тип 31) (таблица 1). Короткие пептиды длиной 9-14 аминокислот, имитирующие Т-эпитопы, предназначались для анализа Т-клеточной активности методом ELISPOT, длинные пептиды - для индукции В- и Т-клеточного ответа.

Таблица 1. Синтезированные пептиды белков HPV

Последовательность	Нумерация аминокислот	Код пептида
L1 HPV16 C-QPLGVGISGHPLLNKLDDTE-C C(Acm)-LNKLDDTENASAYAANAGVDNRE-C(Acm) C-LNKLDDTENASAYAANAGVDNRE-C AGVDNRECI FNRAGTVGENVPDDLYIKGSGS DWNFGLQPPPGGTL QPPGGTLEDTYRFVTQAIAC	97-116-бисСys 109-132 109-132 165-173 247-268 387-400 393-413	NC-724 NC-723-С/Acm NC-723 NC-732 C-12 C-13 C-14
L1 HPV18 NVFPIFLQM	54-62	NC-731
E7 HPV16 GQAEPDRAHYNIVTFCCK	43-60	NC-725
E7 HPV31 VLDLQPEATD GQAEPDTSNYNIVTFCCQ GQAEPDTSNYNIVTFCCQCKSTLRLCVQSTQVDIR DTSNYNIVTF TSNYNIVTF ELLMGSFGIVC(Acm)PN(A) ELLMGSFGIVCPN(A)	12-21 43-60 43-77 48-57 49-57 81-93A 81-93A	NC-727 P-1 P-236 NC-730 NC-729 NC-728 NC-728-F

Для повышения иммуногенности пептидов с целью получения высокотитражных сывороток, пригодных для ИФА и иммуноблота, были синтезированы конъюгаты пептидов с полиоксидонием (ПО) и KLH.

Одной из целей работы было сравнение эффективности различных форм подачи пептидных иммуногенов. Иммунизацию проводили: 1) свободными пептидами, эмульгироваными в ПАФ (пептид + ПАФ); 2) конъюгатами пептида с ПО (пептид-ПО); 3) конъюгатами пептида с KLH с ПАФ (пептид-KLH + ПАФ); 4) смесью пептида с адъювантом полимурамилом (пептид + ПМ) (см. таблицы 2, 3). Продукцию антител класса IgG анализировали твердофазным ИФА. В таблице 2 приведены титры сывороточных антител после двукратной иммунизации мышей F1 (интервал 2 недели) различной формами подачи пептидов, фрагментов L1 HPV16. Как видно из таблицы 2 свободные пептиды, эмульгированные в адъюванте Фрейнда (за исключением пептида С-14) не обладали иммуногенностью (титр 50, как для неиммунной сыворотки). Ковалентные конъюгаты пептидов с полиоксидонием имели более высокую иммуногенность. Так, свободный пептид C-12 не давал продукции антител, даже в присутствии ПАФ, в то время как его ПО-конъюгат (без ПАФ) после второй иммунизации индуцировал антитела с титром 1:800. Пептиды С-13 и NC-724 не давали продукцию антител в обоих вариантах, пептиды NC-723 имел умеренную активность в присутствии ПАФ. Интересно, что пептид С-14 обладал высокой иммуногенностью во всех формах подачи. Поливалентные конъюгаты пептидов с ПО были неиммуногенны (табл. 3).

Дальнейшие эксперименты показали, что конъюгаты тех же пептидов с KLH, индуцировали наибольшие титры антител (табл. 3). Анализ прямолинейных участков на кривой титрования позволяет выбирать оптимальные рабочие разведения сывороток для дальнейшего их использования в иммуноблоте и ИФА при оценке экспрессии и качества рекомбинантных ВПЧ.

Таблица 2. Титры антител при иммунизации мышей при различной форме подачи иммуногена.

Иммуноген	Антиген на подложке
	С-12	С-13	С-14	NC-723	NC-724
С-12 + ПАФ	50
С-12-ПО	800
С-12-KLH +ПАФ	6400
С-13 + ПАФ		50
С-13-ПО		50
C-13-KLH + ПАФ		102400
С-14 + ПАФ			>>6400
С-14-ПО			>>6400
NC-723 + ПАФ				800
NC-723-ПО				100
NC-723-KLH + ПАФ				51200
NC-724 + ПАФ					100
NC-724-ПО					50
NC-724-KLH + ПАФ					1600
N	50	50	50	50	50

N - неиммунная сыворотока (n=4)

Таблица 3. Иммуногенность ди- и тетравалентных конъюгатов ПО.

Иммуноген	Антиген на планшете	Титр сывороток
ПО-/С-12/P-236	C-12 P-236	50ч100 50ч100
ПО-/NC-723/P-236	NC-723 P-236	50ч100 50ч100
ПО-/NC-725/P-236	NC-725; P-236	50ч100 50ч100
ПО-/NC-725/NC-727/NC-728/P-236	NC-725; NC-727 NC-728 P-236	50ч100 50ч100 50ч100 50ч100

Адъювант полимурамил показал высокую эффективность при совместной подаче с пептидами, как с одиночными пептидами, так и смесью (тетравалентный иммуноген) (таблица 4). Отсутствие антительной продукции у пептидов NC-727 и NC-728F может быть связано с тем, что они моделируют Т-эпитопы.

Таблица 4. Титры антител в ответ на иммунизацию мышей HPV и пептидами в присутствии адъюванта полимурамила (ПМ)

Иммуноген	Антиген на планшете
	NC-725	P-236	NC-727*	NC-728F*
NC-725	1600
NC-725 + ПМ	12800
P-236		100
P-236 + ПМ		6400
P-236 +NC-725 +NC-727 + NC-728F + ПМ	6400	3200	200	200
N	50	50	50	50

* Короткие 10-14-членные пептиды, моделирующие Т-клеточные эпитопы.

В данном случае IgG-ответ был не столь существенен, поскольку эти пептиды предназначены для анализа индукции Т-клеточного ответа.

Анализ рекомбинантных L1-белков. Дальнейший этап работы был связан с подтверждением структуры рекомбинантных L1 белков с помощью полученных наборов поликлональных (ПКА) и моноклональных (МКА) антител. Выделенные в результате центрифугирования фракции L1-белков оценивали в ИФА, используя для этого специфичные для L1 конформационно-зависимые МКА (US Biological), в том числе и вируснейтрализующие (от проф. Neil Christensen, The Milton S. Hershey Medical Center, Hershy Pennsylvania), а также линейные антипептидные поликлональные антитела, моделирующие В-эпитопы. Следует отметить, что ни один из пептидов не реагировал с имеющимися в нашем распоряжении МКА. Как видно из таблицы 5, антипептидные антитела и соответствующие МКА хорошо реагировали с полученными рекомбинантными белками. Причем наблюдалось правильное соответствие - антисыворотка к пептиду NC-723, фрагменту L1 HPV16, лучше распознавала рекомбинантный L116. Конформационно-зависимые моноклональные антитела Р3105-08 и З105-32 также очень специфично реагировали с серотипами 16 и 18.

Таблица 5. ИФА препаратов L1 HPV серотипов 16 и 18. Показаны данные оптической плотности (450 нм) образцов в повторах.

Рекомб. Белки	Поликлональные антитела к синтетическим пептидам	Моноклональные антитела
	С12	С13	С14	NC723	NC724	P3105-08 ВПЧ16	P3105-32 ВПЧ18
PBS (контроль)	0,093	0,089	0,112	0,079	0,157	0,049	0,083
ВПЧ16	0,729	0,326	0,591	0,941	0,768	0,926	0,182
ВПЧ16	0,738	0,322	0,566	0,868	1,035	0,981	0,176
ВПЧ18	0,704	0,405	0,510	0,436	1,044	1,121	1,052
ВПЧ18	0,683	0,392	0,543	0,402	1,348	1,211	1,015

Моноклональные вирус-нейтрализующие антитела H16 U4 S/N 9 и H18 J4 S/N реагировали как с референс-препаратами ВПЧ16 и 18 (получены от Christensen), так и с рекомбинантными L1 16 и 18. Поскольку МКА специфичны только конформационным эпитопам ВПЧ, эти данные подтверждают правильность сборки полученных рекомбинантных белков в капсидную структуру, что является необходимым условием генерации вируснейтрализующих антител при вакцинации. Дальнейший анализ в иммуноблоте с помощью МКА P3105-08 и Р3105-32 показал присутствие специфически распознаваемой полосы с молекулярным весом 56 кДа, соответствующим полноразмерному белку L1, а также минорной полосы, соответствующей по размеру деградированному белку L1 (примерно 45 кДа). Эндогенные Ti-частицы дрожжей (около 100 кДа) не распознавалась в иммуноблоте этими антителами (фото не приведены).

Окончательное доказательство правильности сборки белков дала электронная микроскопия (рис. 1) Она подтвердила, что синтезированные в дрожжах белки собираются в правильные капсидные структуры, которые полностью аналогичны опубликованным ранее микрофотографиям L1 ВПЧ.

Рис. 1. Электронная микрофотография рекомбинантных ВПЧ L1 HPV16. a: x 55 000 b, c, d: x 350 000.

Иммуногенность рекомбинантных ВПЧ. Гибридных мышей F1 иммунизировали рекомбинантными ВПЧ 16 и 18 в присутствии или отсутствии адъювантов ПО или ПМ, тестируя гуморальный и Т-клеточный ответы. Протоколы иммунизации включали 3-х кратную иммунизацию мышей внутрибрюшинно с интервалами в 2 недели и отбором проб непосредственно перед каждой инъекцией. При тестировании антительного ответа (IgG) к ВПЧ в ИФА анализировали реактивность антител как с вводимым ВПЧ, так и с пептидом NC-723, который имитирует вируснейтрализующий эпитоп белка L1 HPV16. Оказалось, что антисыворотки к ВПЧ обладали заметной реакционной способностью с этим пептидом в отличие от других четырех пептидов из белка L1. Хотя пептид является фрагментом L1 HPV16, он хорошо реагировал и с анти-ВПЧ18-антителами. Причина этого, по-видимому, в том, что гомология между соответствующими участками L1 этих серотипов достигает 75%, а гомология для N-концевой части фрагмента - 100% . Причем, именно эта часть фрагмента была картирована как вирус-нейтрализующий эпитоп (нейтрализующее МКА H16.S1) [6]. Интересно, что и антитела к этому пептиду хорошо реагировали как с ВПЧ16, так и ВПЧ18 (табл. 6). Другие пептиды не показывали заметной реакции с ВПЧ-антителами.

Результаты иммунизации (рис. 2) продемонстрировали, что оба препарата ВПЧ обладают высокой иммуногенностью даже в отсутствии адъювантов, после 2-3-й иммунизации титр IgG-антител достигал 25-50 тыс. Уровень антител зависел от кратности иммунизации. Результаты иммунизации с ПМ были такие же, как и без адъюванта. Таким образом, адъювант ПМ проявлял активность только с пептидами (см. табл. 5).

Рис. 2 Динамика иммунного ответа мышей при иммунизации препаратами ВПЧ

Анализ Т-клеточного ответа. Основная концепция терапевтической вакцины основана на индукции HPV(E7/E6)-специфических цитотоксических CD8⁺ (ЦТЛ) лимфоцитов для киллинга опухолевых клеток, экспрессирующих E6/E7-антигены. Хотя основную роль в профилактической вакцине играет гуморальный ответ, активация Тh-клеток важна для индукции вируснейтрализующих антител класса IgG. Общим, и часто используемым, маркером активации ЦТЛ и Th/CD4⁺ лимфоцитов (ТХЛ) является секреция ими интерферона гамма (IFN-г).

В данном исследовании анализировали пролиферативный ответ спленоцитов иммунных мышей после вакцинации препаратами ВПЧ16 и синтетическими пептидами. Детекцию антиген-специфических IFN-г-продуцирующих клеток и подсчет их количества проводили на коммерческих наборах фирмы BD Biosciences для ELISPOT. Клетки отбирали у иммунных мышей после третьей иммунизации, а также контрольных неиммунных мышей. Их отмывали, переводили в среду с фетальной сывороткой и отделяли CD8⁺ - от CD4⁺- клеток, используя магнитные шарики с иммобилизованными анти-CD4-антителами (Dynalbeads Mouse CD4). Этот метод позволяет почти полностью отобрать нужные клетки (эффективность 98%).

Количество IFN-г-секретирующих клеток в лунках 96-луночной микропланшеты измеряли после 18-часовой инкубации с исследуемыми пептидами путем сканирования каждой лунки и анализа изображения (окрашенных клеток) ELISPOT-ридером Eli.Scan (Sanquin). Для активации клеток использовали пептиды с длиной цепи от 9 до 35 аминокислот при концентрациях 2.5, 5 и 10 мкг/мл, каждый опыт проводили в трех параллелях. На рис. 3 даны средние значения числа окрашенных пятен на лунку, содержащую около 400000 клеток. В качестве отрицательного контроля брали спонтанную пролиферацию (СП) клеток в отсутствии пептидов, а также пролиферацию клеток интактных мышей в присутствии пептидов. В качестве позитивного контроля брали показатели клеточной пролиферации в присутствии сильного митогена - фитогемагглютинина (ФГА).

Короткие 9-13-членные пептиды (NС-728, NC-729, NC-730 (все из E7 HPV31), NC-731 (L1 HPV18), NC-732 (L1 HPV16)), имитирующие потенциальные Т-эпитопы, были специально синтезированы для анализа Т-клеточной активности спленоцитов. Пептиды сами по себе не стимулировали пролиферацию клеток у интактных мышей за исключением пептида NC-729.

Из диаграммы на рис.3, где опыты проводились с суммарной популяцией клеток, видно, что иммунизация мышей рекомбинантным ВПЧ16 вызывает сильный Т-клеточный ответ, направленный, в частности, к эпитопу, моделируемому пептидом NC-732.

Рис. 3. Т-клеточная реактивность суммарной популяции спленоцитов после 3-х кратной иммунизации мышей рекомбинантным ВПЧ16.

С CD8⁺-обогащенной клеточной популяцией (анализ ЦТЛ) наиболее активная пролиферация клеток наблюдалась в ответ на пептид NC-732, а также несколько слабее на пептид NC-732, что свидетельствует о значительном цитотоксическом потенциале рекомбинантного ВПЧ16. Отсутствие ответа клеток к пептидам С-12, С-13 и С-14 вполне закономерно, поскольку они моделируют В-эпитопы белка L1. Иммунизация свободными пептидами, фрагментами белка Е7 HPV16 и HPV31, показала, что пептиды P-236 (35 аминокислот) и NC-725 (18 аминокислот) обладают высокой Т-клеточной активностью, но только в сочетании с адъювантом ПМ. Использование мультивалентного иммуногена в виде смеси 3 пептидов с адъювантом ПМ также продемонстрировало наличие у препарата Т-клеточной иммуногенности. Интересно, что и сам ПМ способен активировать Т-клетки, причем его активность увеличивается при обогащении популяции CD8-лимфоцитами, т .е. возможно, он активирует специфические киллеры.

Ранние исследования по иммуногенности рекомбинантных белков HPV, получаемых в бактериальной системе экспрессии (E.coli), показывали, что уровень вырабатываемых антител в результате иммунизации довольно низкий. Хорошие результаты получали при использовании клеток насекомых (бакуловирусная система), а также дрожжей. В этом случае экспрессируемый белок L1 агрегирует в капсидоподобный ВПЧ и способен индуцировать высокий уровень протективного иммунного ответа. Система экспрессии структурных белков в дрожжах Saccharomyces cerevisiae обладает рядом преимуществ -- она дает возможность синтезировать большие количества требуемого белка в нативной конформации, поскольку система посттранскрипционной модификации белка сходна с таковой в клетках млекопитающих, и кроме того, безопасность дрожжей признана на международном уровне (группа организмов GRAS: Generally Regarded As Save). Полученные белки, судя по всем доступным тестам, иммунореактивности с антитпептидными и моноклональными антителами, данными электрофореза и иммуноблота, электронной микроскопии, соответствуют по своим свойствам ВПЧ, полученным в других лабораториях мира и должны продуцировать вируснейтрализующие антитела. Иммунизация мышей созданным ВПЧ16 подтвердила его высокую иммуногенность на В- и Т-клеточном уровне.