Общий анализ крови (трактовка результатов исследований, выполненных на гематологических анализаторах)

Размещено на http://www.allbest.ru/

Общий анализ крови

(трактовка результатов исследований, выполненных на гематологических анализаторах)

Введение

Сравнительно недавно только единичные клинико-диагностические лаборатории (КДЛ) имели возможность проводить гематологические исследования на автоматических анализаторах. Исследования крови выполняемые «ручными» методами имели большие погрешности, не было лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ), в которых бы регулярно не высказывали претензий к качеству лабораторных исследований и, особенно, к исследованию крови. В настоящее время произошли кардинальные изменения. Многие крупные ЛПУ смогли оснастить КДЛ современными гематологическими анализаторами. В рамках приоритетного национального проекта «Здоровье» в КДЛ первичного звена здравоохранения поступили наборы лабораторного оборудования, включающие гематологические анализаторы. Таким образом, гематологические анализаторы появились - в городских, районных и детских поликлиниках, поликлинических отделениях центральных городских и районных больниц.

В настоящее время, рациональное использование лабораторного оборудования, поступающего в рамках Национального проекта, возможно, только при достаточной подготовленности врачей первичного звена здравоохранения и всех врачей клинических дисциплин к правильной трактовке получаемых результатов лабораторного исследования. Врачи должны ясно представлять себе:

· возможности нового оборудования

· трактовку результатов исследований,

· те погрешности, которые могут возникать в процессе проведения анализа,

· возмущающее влияние различных факторов (лекарственные препараты, лечебные процедуры, физические нагрузки, физиологические состояния и многие другие воздействия) на результаты лабораторных исследований.

Преимуществами автоматического анализа крови являются:

· высокая производительность (до 100 и более проб в час),

· небольшой объем крови (12-50 мкл),

· оценка более 20 показателей, вместо 10-12 при обычном анализе крови,

· внедрение в практику лабораторных исследований новых показателей, существенно расширяющих возможности диагностики,

· графическое представление распределения клеток (гистограммы, скетограммы),

· высокая точность исследования, так как подсчету подвергаются несколько тысяч клеток из одной пробы.

Оценивать результаты исследований крови, полученные на гематологическом анализаторе, необходимо в контексте с клиническими данными и состоянием больного. Следует помнить, что изменения клеточного состава могут наблюдаться, как при различных физиологических состояниях организма, так и вследствие проводимых лечебных и диагностических воздействий, оперативных вмешательств, лекарственного лечения, а также следует учитывать тяжесть процесса, реактивность больного, сопутствующие осложнения.

Контроль преаналитических факторов в гематологических исследованиях является ключевым для обеспечения качественных результатов тестов. Такие преаналитические характеристики, как взятие пробы, транспортировка и хранение образца, влияние лекарственных препаратов, а также факторы, связанные с подготовкой пациента, могут привести к неверным или неточным результатам анализов и, следовательно, к постановке ошибочного диагноза, что может повлечь за собой риск для здоровья пациента. Снижение числа ошибок на любой стадии преаналитического этапа может существенно улучшить качество гематологических анализов, снизить количество повторных проб и сократить расходы рабочего времени и средств, выделяемых на обследование пациентов. Одна из задач, стоящих перед врачом-клиницистом довести до сведения пациента правила подготовки к взятию крови и обеспечить правильность взятия крови процедурными медицинскими сестрами в отделениях.

При плановом назначении лабораторного теста кровь следует брать натощак (после примерно 12 ч голодания, воздержания от приема алкоголя и курения), между 7 и 9 ч утра, при минимальной физической активности непосредственно перед взятием (в течение 20--30 мин), в положении пациента лежа или сидя.

Лучшим материалом для клинического исследования крови является венозная кровь. Это обусловлено тем, что при известной стандартизации процессов взятия, хранения, транспортировки крови удается добиться минимальной травматизации и активации клеток, примеси других веществ (тканевой жидкости), при этом всегда имеется возможность повторить и/или расширить анализ (например, добавить исследование ретикулоцитов).

Взятие венозной крови облегчается применением закрытых вакуумных систем. Метод взятия крови с помощью закрытых вакуумных систем имеет ряд преимуществ, основными из которых являются обеспечение высокого качества пробы и предотвращение любого контакта с кровью пациента, а значит, обеспечение безопасности медицинского персонала и других пациентов.

Пункция кожи с целью получения капиллярной крови является процедурой выбора, если требуется взять небольшое количество крови. Для гематологических исследований капиллярную кровь рекомендуется брать в следующих случаях: при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента; при наличии у пациента мелких или труднодоступных вен; при выраженном ожирении пациента; при установленной склонности к венозному тромбозу; у новорожденных.

При трактовке результатов исследований проведенных на гематологическом анализаторе мы рекомендуем пользоваться принятыми в Российской Федерации нормами (табл. 1). Весьма желательно, чтобы во все гематологические анализаторы были введены именно эти показатели нормальной гемограммы.

Таблица 1. Нормальные показатели периферической крови у взрослых

Показатель	Нормальные значения
	мужчины	женщины
RBC, эритроциты х 1012/л	4,0-5,0	3,9-4,7
HGB, гемоглобин, г/л г/дл	130,0-160,0	120,0-140,0
	13,0-16,0	12,0-14,0
НСТ, гематокрит,%	40-48	36-42
MCV, средний объем эритроцита, фл, мкм3	80,0-100,0
MCH, cреднее содержание гемоглобина в эритроците, пг	27,0-31,0
MCHC, средняя концентрация % гемоглобина в эритроците, г/л	30,0-38,0 300 - 380
RDW, ширина распределения RBC по объему	11,5-14,5%
Ретикулоциты,‰	2,0-10,0
WBC, лейкоциты х 109/л	4,0-9,0
Нейтрофилы, %,(109/л): палочкоядерные сегментоядерные	1,0-6,0 (0,040-0,300) 47,0-72,0 (2,000-5,500)
Эозинофилы %,(109/л)	0,5-5,0 (0,020-0,300)
Базофилы %,(109/л)	0-1,0 (0-0,065)
Лимфоциты %,(109/л)	19,0-37,0 (1,200-3,000)
Моноциты %,(109/л)	3,0-11,0 (0,090-0,600)
Плазматические клетки	-
Тромбоциты х 109/л	180,0-320,0
СОЭ, мм/час	2,0-10,0	2,0-15,0

Само исследование крови в гематологических анализаторах имеет ряд особенностей. Так перед анализом вся кровь разделяется на две части.

Первая часть разводится дилюентом и происходит подсчет всех клеток содержащихся в растворе. Клетки объемом менее 30 фл подсчитываются и рассматриваются как тромбоциты, все остальные клетки - как эритроциты. Поскольку размеры лейкоцитов близки к размерам эритроцитов, разделить их не удается. При использовании кондуктометрических счетчиков в подсчет эритроцитов неизбежно будут входить лейкоциты. Таким образом, в анализе гематологического анализатора в графе эритроциты (RBC), практически оказывается сумма RBC и лейкоцитов (WBC). Однако, за исключением явных лейкоцитозов, их вклад будет чрезвычайно мал, так как в норме концентрация эритроцитов в крови на 3 порядка превышает концентрацию лейкоцитов.

Например, при содержании RBC 5 х1012/л и WBC 5х109л анализатор определит общее количество RBC - 5,005 х1012/л и ошибка составит всего 0,1%, что значительно ниже, чем ошибка самого прибора.

Только, при значительном увеличении числа WBC ошибка подсчета RBC прогрессивно нарастает, а при лейкоцитозе более 50*109/л может искажаться и показатель объема эритроцитов (MCV).

Ко второй части крови добавляется лизирующий реактив. Он вызывает полный гемолиз эритроцитов, после чего все подсчитанные клетки объемом более 35 фл идентифицируются, как лейкоциты. В этой же порции фотометрические определяется содержание гемоглобина (HGB).

Клиническое значение определения основных показателей эритроидного ростка

Клиническое значение определения основных показателей эритроидного ростка - эритроцитов (RGB), гемоглобина (HGB) и гематокрита (HCT) давно и подробно описано и хорошо известно врачам-клиницистам, и потому на этих показателях подробно останавливаться не будем. Отметим только, что при определении на гематологическом анализаторе RBC возможны ошибки измерения.

Ложнозавышенные результаты анализа RBC наблюдаются при наличии в крови:

* гигантских тромбоцитов (с объемом более 30 фл);

* криоглобулинов

Ложное занижение результатов определения RBC может быть следствием:

* агглютинации эритроцитов;

* выраженного микроцитоза эритроцитов (тогда они воспринимаются аналиазатором,как тромбоциты).

Завышение результатов при определении HGB наблюдается при:

· высоких лейкоцитозах (более 50х109/л);

· гиперлипидемии;

· гипербилирубинемии;

· присутствии нестабильных гемоглобинов (Hb S, НЬ С);

· криоглобулинемии.

Следует учитывать, что если нестабильные гемоглобины и криоглобулинемия встречается не слишком часто, то первые три пункта нередко могут существенно исказить результаты выполненного исследования.

Так в одну из больниц города Ставрополя в отделение интенсивной терапии поступила больная С-ва в тяжелом состоянии с выраженной гипергликемией и явлениями кетоацидоза. При исследовании гемограммы получен следующий результат:

Анализ ОИТАР-1 Время 10:16

Дата: 19/01/2007 С____ВА

Номер: 119

Т: 26.9 С

WBC : 22,1 H 103/mm3 ( 4,0 - 9,0) MCV : 89 мm3 (75 - 95)

RBC : 4,06 106/mm3 (3,9- 5,0) MCH : 52,2 H pg (24 - 34 )

HGB : 21,2 H g/dl (12,0-16,0) MCHC: 58,7 H g/dl (30,0-38,0)

HCT : 36,1 % (36,0 -48,0) RDW : 14,3 % (11,5-14,5)

PLT : 387 103/mm3 ( 150 - 400) MPV : 8 мm3 ( 7,4-10,4)

PCT : .311 % (.150- .400) PDW : 12,9 % (10,0-20,0)

WBC флаги : G1; G2

Диф. :

%LYM: 17,5 L % (19,0 - 37,0) #LYM: 3,8 H 103/mm3 (1,2-3,0)

%MON: 6,1 % (3,0 - 11,0) #MON: 1,3 H 103/mm3 (0,1-0,6)

%GRA: 76,4 H % (47,0-72,0) # GRA: 17,0 H 103/mm3 (2,0-5,5)

При оценке результатов обследования обращает на себя внимание не только чрезвычайное повышение HGB (до 212 г/л) и связанных с ним индексов MCH и MCHC (последний до невероятных величин), но и относительно нормальные показатели RBC и HCT. Все это бесспорно свидетельствовало об ошибке при определении HGB. Причиной ошибки явилась выраженная мутность («хилезность») сыворотки как следствие гипертриглицеридемии и повышения в сыворотке липопротеинов очень низкой плотности. Если бы в КДЛ не поступила кровь для биохимического исследования и не была бы получен сыворотка, вопрос о причинах ошибки мог бы остаться невыясненным. Аналогичные примеры можно привести и у больных с гипербилирубинемией - при желтухах различной этиологии.

НСТ в гематологических анализаторах не определяется, а рассчитывается, исходя из показателей RBC и MCV. Он представлен суммой прямо измеренных объемов эритроцитов в единице объема крови. Таким образом, не существует проблемы "остаточной" плазмы (плазмы оставшейся между эритроцитами при центрифугировании). Но именно поэтому результаты определения гематокрита методом центрифугирования (в гематокритной центрифуге, но не в пробирке - последнее запрещено!) и данные, полученные при исследовании гематологическим анализатором, будут отличаться. А, следовательно, для получения сравнимых результатов, желательно в процессе обследования пациента пользоваться каким-то одним из этих двух методов.

Кроме этого на результаты исследования HCT оказывает существенное влияние разведение крови изотоническим раствором, в котором эритроцит принимает оптимальный объем, отличающийся от того, который он имел в крови сосудистого русла. Существенные отличия будут в том случае, если у больного при взятии крови наблюдалось повышение или снижение осмотического давления плазмы (что нередко наблюдается у больных реанимационных отделений).

Возможные ошибки измерения.

Ложнозавышенные результаты HCT могут наблюдаться при:

· криоглобулинемии;

· присутствии гигантских тромбоцитов;

· гиперлейкоцитозе (>50х109/л);

· гипергликемии (> 33 ммоль/л или >600 мг/дл)

· диабетическом кетоацидозе.

В двух последних случаях имеется гиперосмолярность плазмы. При разведении крови в анализаторе изотоническим раствором происходит быстрое набухание эритроцитов, что и вызывает завышение HCT. В этих случаях определение гематокрита методом центрифугирования более надежно.

К ложному занижению результатов HCT приводят агглютинация эритроцитов и выраженный микроцитоз (< 36 фл) эритроцитов.

Эритроцитарные индексы

Широкое использование эритроцитарных индексов стало возможным только после выполнения исследований на гематологических анализаторах. Эритроцитарные индексы позволяют значительно повысить качество диагностики анемического синдрома.

MCV (mean corpuscular volume) - средний объем эритроцита, выражается в кубических микрометрах (мкм3) или в фемтолитрах (1фл = 1мкм3). MCV определяется большинством гематологических анализаторов. Вычисляется MCV делением суммы клеточных объемов на число эритроцитов.

MCV - это средний показатель объема всей популяции клеток. Поэтому необходимо иметь в виду, что MCV может иметь нормальное значение при наличии у пациента одновременно выраженного макро- и микроцитоза. В этом случае особую диагностическую важность приобретает анализ гистограмм.

MCV меняется в течение жизни: у новорожденных достигает 128 фл, в первую неделю снижается до 100-112 фл, к году составляет 77-79 фл, в возрасте 4-3 лет нижняя граница нормы (80 фл) стабилизируется. MCV у взрослых ниже 80 фл оценивается как микроцитоз, выше 100 фл, как макроцитоз.

Возможные ошибки измерения

Ложное завышение MCV может происходить в случаях:

* присутствия холодовых агглютининов. Агглютинаты эритроцитов воспринимаются прибором как одна большая клетка, если их размер меньше верхнего порога эритроцитарного канала. Сохранение in vitro и измерение таких проб при 37°С способствует получению правильных результатов.

* диабетического кетоацидоза вследствие гиперосмолярности плазмы и быстрого набухания эритроцитов (увеличения объема) при разведении изотоническим раствором.

Относительное снижение MCV может быть при повышенном содержании фрагментов эритроцитов в крови вследствие механического гемолиза, коагулопатии потребления и других причин.

Клиническое значение. С клинической точки зрения этот показатель является важным абсолютным показателем. Этот показатель является более чувствительным, чем визуальная оценка диаметра эритроцитов, зависящая от формы клетки. Так изменение диаметра клетки на 5%, приводит к изменению MCV на 15%.

При трактовке анализа, следует учитывать, что:

· ретикулоцитоз - увеличивает показатель MCV;

· микросфероциты имеют диаметр меньше нормы, но при этом MCV чаще остается в норме;

· MCV нельзя достоверно определить при большом количестве аномальных эритроцитов (например при серповидно-клеточной анемии; выраженном пойкилоцитозе);

· при выраженном анизоцитозе эритроцитов, когда в крови присутствуют микро- и макроциты, MCV являясь средним показателем объема всей популяции клеток, может иметь нормальные значения.

В связи с этим при диагностике анемий абсолютно необходимо параллельно с исследованием индексов эритроцитов изучать мазки периферической крови и подробно описывать морфологию клеток.

MCV увеличен при макро- и мегалоцитарных анемиях, при анемиях после кровопотери, хронической гемолитической анемии, а также при алкоголизме, диффузных поражениях печени, гипотиреозе, диссеминированных злокачественных новообразованиях (метастазирование опухоли). Особенно высоки значения MCV при В12-дефицитных анемиях.

Нормальные величины MCV при нормоцитарных анемиях - анемии при хронических заболеваниях, апластические, гемолитические анемии, анемии после кровотечений. Кроме этого нормоцитозом могут сопровождаться миелодиспластические синдромы.

Снижение MCV характерно для микроцитарных анемий: прежде всего железодефицитной анемии, талассемии. Могут сопровождаться микроцитозом гемолитические анемии, гемоглобинопатии, иногда при гипертиреозе.

МСН (mean corpuscular hemoglobin) - среднее содержание гемоглобина в эритроците (пг). Характеризует среднее содержание гемоглобина в отдельном эритроците в абсолютных единицах. МСН - более объективный параметр, чем устаревший цветовой показатель, который не отражает синтез гемоглобина и его содержание в эритроците.

Возможные ошибки измерения. Параметр МСН является расчетным, поэтому к ложнозавышенным результатам приводят все факторы, влияющие на завышение значений гемоглобина и занижение количества эритроцитов.

Ложнозаниженные результаты МСН получаются вследствие ошибок, связанных с неправильным определением числа эритроцитов (завышения их количества).

Клиническое значение. Изменения МСН лежат в основе разделения анемий на нормохромные (27-31 пг), гипохромные (< 27 пг) и гиперхромные (> 31 пг). Снижение наблюдается при железодефицитных анемиях, повышение - при макроцитарных и особенно мегалобластных анемиях.

МСНС (mean corpuscular hemoglobin concentration) - средняя концентрация гемоглобина в эритроците (г/дл; г/л; %). Показатель МСНС отражает степень насыщения гемоглобином эритроцита или соотношение содержания гемоглобина к объему клетки. Снижение значения МСНС наблюдается при заболеваниях, сопровождающихся нарушением синтеза гемоглобина. Увеличение же параметра МСНС выше нормальных значений свидетельствует об ошибках, допущенных при измерении данной пробы (погрешности определения гемоглобина или MCV), т.к. превышение концентрации гемоглобина выше определенного физиологического уровня привело бы к разрушению (гемолизу) эритроцитов, чего не наблюдалось в данной пробе. Таким образом, данный параметр может быть использован как индикатор ошибок, допущенных на аналитическом или преаналитическом этапах работы.

Возможные ошибки измерения. Поскольку параметр МСНС является расчетным, то к ложнозавышенным результатам приводит любая неточность, связанная с определением гемоглобина, эритроцитов, гематокрита, поэтому этот показатель может быть использован, как индикатор ошибки прибора (в т.ч. и гематологического анализатора) или подготовки пробы к исследованию. Уровень MCHC выше 38% является показателем необходимости повторения анализа или следствием грубой ошибки при его выполнении (см. пример с гипертриглицеридемией).

Нормальные величины колеблются от 30 до 38 % (г/дл) или 300-380 г/л. Повышение MCHC выше 38% встречается крайне редко (наследственный сфероцитоз).

Клиническое значение. В отличии от среднего содержания гемоглобина в эритроците, МСНС не зависит от среднего клеточного объема и является чувствительным тестом оценки нарушения синтеза гемоглобина.

Снижение показателя отражает абсолютную гипохромию и является характерным для железодефицитной анемии. Чувствительность MCHC при железодефицитных анемиях составляет около 85%.

Снижен показатель и при макроцитарных и особенно мегалоцитарных анемиях, т.к. увеличение объема эритроцита не соответствует увеличению в них концентрации Hb.

Низкие значения этого показателя при нормальном или слабо пониженном содержании гемоглобина в крови указывает на наличие гипотонии плазмы и увеличении объема эритроцита.

RDW (red cell distribution width) - показатель гетерогенности эритроцитов по объему, характеризует степень анизоцитоза. Этот показатель вычисляется большинством современных гематологических анализаторов, как коэффициент вариации объема эритроцитов: SD

RDW определяет величину колебания эритроцитов по объему. По этому параметру анизоцитоз улавливается прибором значительно быстрее и точнее, чем при визуальном просмотре мазка крови. Оценка степени анизоцитоза под микроскопом сопровождается целым рядом ошибок. При высыхании в мазках диаметр эритроцитов уменьшается на 10-20%. В толстых препаратах он меньше, чем в тонких. Полностью избавиться от артефактов позволяет только автоматизированный подсчет с использованием кондуктометрического метода, где сохраняется стабильность клеток и воспроизводимость результатов, а гистограмма графически отражает частоту встречаемости эритроцитов разного объема.

В то же время показатель RDW характеризует колебания объема клеток внутри популяции и не связан с абсолютной величиной объема эритроцитов. Поэтому при наличии в крови популяции эритроцитов с измененным, но достаточно однородным размером (например, микроциты), значения RDW могут быть в пределах нормы (11,5-14,5%).

Таблица 2. Использование величин RDW и MCV в дифференциальной диагностике анемий

	RDW нормальный	RDW выше нормы
MCV низкий	1.Талассемия 2.Гемотрансфузия 3.Химиотерапия 4.Злокачественные новообразования 5.Геморрагия 6.Посттравматическая спленэктомия	1.Дефицит железа 2.Бета-талассемия 3.Гемоглобин Н 4.Фрагментация эритроцитов
МСV норма	1.Норма 2.Апластическая анемия	1.Гемотрансфузия 2.Начальная стадия железодефицита, дефицита витамина В12 или фолиевой кислоты 3.Гомозиготная гемоглобинопатия 4.Миелофиброз 5.Сидеробластная анемия
MCV высокий	1.Заболевания печени	1.В12 дефицитная анемия 2.Холодовая агглютинация 3.Гемолитическая анемия 4.Химиотерапия

Клиническое значение

Повышение RDW, свидетельствует о гетерогенности популяции или наличии в пробе нескольких популяций эритроцитов (например, после переливания крови). Повышение RDW, характерно для анемий с выраженным анизоцитозом - железодефицитной, В12 - дефицитной. Увеличение RDW отмечается также при миелодиспластических синдромах, метастазах злокачественных новообразований в костный мозг.

Совместное определение RDW и MCV помогают в дифференциальной диагностике микроцитарных анемий. При MCV менее 80 фл и повышенных значениях RDW следует ожидать железодефицитные и сидеробластные анемии, при MCV менее 80 фл и нормальных величинах RDW: анемии хронических заболеваний, талассемию (Таблица 2).

В бланке анализа гематологического анализатора приводятся и гистограммы - графики распределения RBC и PLT по объему. Принцип построения гистограмм заключается в том, что по оси абсцисс откладывается объем клеток, а по оси ординат - процент клеток с соответствующим объемом.

Гистограммы гематологического анализатора

Когда распечатывается бланк анализа - окончательный результат гематологического исследования, выполненного на гематологическом анализаторе, имеется возможность наряду с цифровыми показателями выдавать гистограмму RBC, WBC и PLT (тромбоцитов). Анализ гистограмм позволяет клиницистам получить дополнительную ценную информацию, существенно расширяющую трактовку анализа. Главное, гистограмма значительно повышает качество диагностики анемического синдрома.

Гистограмма RBC по внешнему виду сходна с эритроцитометрической кривой Прайс-Джонса, давно и успешно использовавшейся в клинической лабораторной диагностике. Однако, имеются существенные отличия, как в самом графике, так и в его трактовке, что важно знать клиницисту.

Кривая Прайс-Джонса (эритроцитометрическая кривая) - гистограмма распределения RBC по диаметру. Для ее построения в окрашенном мазке крови визуально, при помощи окулярмикрометра, измеряли диаметр не менее 100 клеток. По результатам этих измерений строили график, в котором по оси абсцисс откладывают величины диаметра эритроцитов в микронах, а по оси ординат - процент клеток с соответствующим диаметром.

Эритроцитометрическая кривая у здоровых людей имеет правильную треугольную форму с высокой вершиной и узким основанием. Преобладают эритроциты с диаметром 6-8 мкм, которые составляют 70-75% всех эритроцитов. На долю микроцитов (клетки диаметром меньше 6 мкм) и макроцитов (диаметр более 8 мкм) приходится приблизительно одинаковое количество (12-15%), ширина кривой отражает степень анизоцитоза, а положение максимума - средний диаметр эритроцита.

В чем же отличия гистограммы распределения клеток по объему, выполняемая автоматическими анализаторами от гистограммы распределения клеток по диаметру?

Автоматический анализатор исследует неизмеримо больше клеток, чем это делал врач КЛД и полученный объем информации больше и точнее. Кроме того, RBC имеют значительно большее разнообразие по объему, чем по диаметру. Мы уже отмечали, что изменение диаметра клетки на 5%, приводит к изменению ее объема на 15% и поэтому различия клеток по объему существенно более выражены.

Обращают на себя внимание следующие особенности:

1. Так как клетки значительно сильнее отличаются друг от друга по объему, кривая распределения RBC по объему значительно шире, чем по диаметру.

2. Гистограмма распределения RBC по объему имеет выраженную правую асимметрию. Правая ассиметрия является артефактом и связана с турбулентным течением суспензии эритроцитов через апертуру, которое создает кувыркание эритроцитов. В современных приборах делается все для уменьшения и окончательного устранения данной погрешности.

3. Гистограмма гематологического анализатора наглядно иллюстрирует распределение клеток по размерам и позволяет выявить аномальные популяции макроцитов и микроцитов, охарактеризовать степень анизоцитоза.

Анализ гистограмм важен при выраженном анизоцитозе RBC, когда в крови присутствуют микро- и макроциты, и показатель MCV, являясь средним показателем объема всей популяции клеток, не будет адекватно отражать истинного положения вещей.

Анализ гистограмм позволяет уточнить наличие выраженного микроцитоза RBC и макроцитоза PLT (в последнем случае необходимо анализировать и гистограмму тромбоцитов) для решения вопроса о возможных причинах ошибок подсчета клеток.

Гистограмма RBC значительно сдвинута влево в сторону мелких клеток, на ней отсутствует четкая граница между PLT и RDW, что будет свидетельствовать об определенных погрешностях при подсчете этих элементов. Гистограмма значительно расширена, что подтверждается и высоким уровнем RDW.

Лабораторный диагноз - микроцитарная, гипохромная анемия, с выраженным микроанизоцитозом - картина с высокой степенью достоверности, характерная для железодефицитной анемии (ЖДА). Для установления окончательного диагноза требуется исследовать содержание железа и железосвязывающей способности плазмы, а в идеале трансферрина и ферритина.

В процессе лечения ЖДА препаратами железа показателем эффективности проводимой терапии будет не только «ретикулоцитарный криз» на 5-15 сутки (в среднем на 7 день терапии), но и изменения гистограммы RBC (Рис.4). На гистограмме нередко появляется второй пик (бимодальная гистограмма), свидетельствующий о выработке нового пула эритроцитов, с нормальным диаметром и нормальным насыщением гемоглобином. В данной ситуации очень высокие показатели RDW являются дополнительным критерием значительного разнообразия RBC по объему. Бимодальная гистограмма могут встречаться у пациентов с анемией после гемотрансфузий, на фоне лечения ЖДА и В12-дефицитной анемии.

При макроцитарной анемии гистограмма RBC, сдвинута вправо, в сторону крупных клеток (рис 5). На рисунке представлена гемограмма больного с установленным диагнозом В12 дефицитная анемия.

Если на гистограмме RBC присутствует плато слева от эритроцитарного пика - это свидетельствует о присутствии эритроцитарных фрагментов, что наблюдается при ожогах, травматическом повреждении клеток, при наличии протезов клапанов сердца, при кризе серповидно- клеточной анемии, тромбоцитопенической пурпуре, поздних стадиях мегалобластной анемии.

Псевдоувеличение MCV может происходить при хроническом лимфолейкозе с высоким лимфоцитозом и при высоком ретикулоцитозе.

Имеются сведения, что размер эритроцитов изменяют некоторые антикоагулянты. Использование цитрата и оксалата вызывают уменьшение объема эритроцитов на 5-10%; применение гепарина, не меняя среднего объема RBC, увеличивает дисперсию распределения клеток. Лучший антикоагулянт ЭДТА, однако, его избыток может привести к уменьшению диаметра эритроцитов. Таким образом, смена антикоагулянта, используемого при взятии крови, может привести к существенному изменению получаемых результатов. Потому принципиально важно, чтобы в КДЛ постоянно применяли ЭДТА для уменьшения погрешностей при определении RBC.\

Подводя итоги можно заключить, что эффективное использование гематологических анализаторов зависит и от качества работы самого анализатора и от квалифицированной трактовки всего объема лабораторных показателей определяемых современными лабораторными приборами.

Таблица 3. Перечень лекарственных препаратов, оказывающих влияние на лабораторные тесты

Лабораторный показатель	Лекарства, вызывающие физиологический эффект	Тип эффекта	Лекарства, вызывающие физиологический эффект	Тип эффекта
Эритроциты Гемоглобин	Азатиоприн		Карбамазепин
	Бисульфан		Фенитоин
	Циклофосфамид		Мепробамат
	Меркаптопурин		Хлорпромазин
	Метотрексат		Хинин, хинидин
	Винбластин		Антималярийные препараты
	Винкристин		Каптоприл
	Амфотерицин В		Прокаинамид
	Левомицетин		Карбутамид
	Пенициллины		Толбутамид
	Ристоцетин		Триамтерен
	Стрептомицин		Нитрофураны
	Сульфаниламиды		Инсулин
	Тетрациклины		Леводопа
	Цефалоридин		Индометацин
	Аспирин		Фенацетин
	Ибупрофен		Метиленовый синий
	Хлорамфеникол		Тиогуанин

Клиническое значение исследования лейкоцитов

Лейкоциты - высокоспециализированные клетки крови, отличающиеся характерной структурой, сложным внутриклеточным метаболизмом и обладающие различными функциями (фагоцитоз, участие в аллергических реакциях, противоопухолевом иммунитете, иммунном ответе, регуляции кроветворения, гемостазе). Исследование лейкоцитов является одним из важных диагностических показателей клинического анализа крови.

WBC (white blood cells) - количество лейкоцитов в крови. Определяется в количестве клеток х109/л (система Си, принятая в нашей стране) или х103/мкл (фабричные установки в большинстве импортных гематологических анализаторах). Подсчет лейкоцитов осуществляется после полного лизиса эритроцитов. Коэффициент вариации при их определении автоматическим анализатором составляет 1-3%, в то время как при визуальном подсчете он колеблется в зависимости от числа лейкоцитов от 6,5 % до 15%.

Возможные ошибки измерения:

Завышение результатов при автоматическом анализе возможно при наличии в крови:

Эритробластов (в современных анализаторах их появление сопровождается «сигналами тревоги» - NRBC), устойчивых к лизису эритроцитов, криоглобулинов и криофибриногена, агрегатов тромбоцитов.

Занижение результатов: наблюдается при разрушении WBC при длительном хранении крови (более 24 часов) или наличии менее устойчивых клеток, что отмечено в отдельных случаях при лейкозах. Занижение может быть следствием агрегации WBC, например, при аутоиммунных заболеваниях.

Нормальные значения приведены в таблице 1, возрастные нормы в таблице 4.

Таблица 4. Возрастные нормы содержания WBC

Возраст	Лейкоциты (х 109/л)
При рождении	9,0 - 30,0
24 часа	9,4 - 30,4
1 мес.	5,0 - 19,6
1 - 3 года	6,0 - 17,5
4 - 7 лет	5,5 - 15,5
Взрослые	4,0 - 9,0

Клиническое значение.

Основные причины лейкоцитоза и лейкопении приведены в таблице 5.

Таблица 5. Основные причины лейкопении и лейкоцитоза

Лейкоцитоз	Лейкопения
Инфекционные агенты и токсины бактериальные, грибковые, вирусные инфекции, дифтерия, скарлатина, менингит, сепсис, абсцесс, перитонит, остеомиелит, аппендицит, пневмония, пиелонефрит, ангина, отит и т.д.	Инфекции бактериальные: тифы, паратифы, вирусные: грипп, корь, ветряная оспа, краснуха, инфекционный гепатит, СПИД, риккетсиальные: сыпной тиф, протозойные:малярия, клещевой возвратный тиф. Генерализованные инфекции: милиарный туберкулез, сепсис (у ослабленных лиц с низкой резистентностью, возбудитель сепсиса - синегнойная палочка и грам+)
Воспаление, травмы и некроз тканей Эмпиема плевры, инфаркт органов, атака ревматизма, обширные ожоги и травмы, операция.	Повреждение костного мозга физическими и химическими факторами, лекарственными средствами, вызывающими аплазию и гипоплазию костного мозга
Злокачественные новообразования	Метастазы новообразований в костный мозг
Болезни крови: Острые и хронические лейкозы	Болезни крови: Острые лейкозы, миелодиспластические синдромы, плазмоцитома, волосатоклеточный лейкоз, В12 и фолиеводефицитная анемия,
Результат действия адреналина и стероидных гормонов	Анафилактический шок
	Коллагенозы
	Гиперспленизм
	Результат действия лекарственных препаратов (сульфаниламиды и некоторые антибиотики, нестероидные противовоспалительные препараты, тиреостатики, противоэпилептические препараты, антиспазматические пероральные препараты и др.).

Лейкоцитоз чаще всего бывает нейтрофильный, эозинофильный, моноцитарный, лимфоцитарный. Каждый из них имеет свои причины и сопровождает различные патологические состояния и заболевания. Поэтому изучение лейкоцитарного состава крови - определение процентного соотношения различных видов лейкоцитов (лейкограмма, лейкоцитарная формула) и подсчет их абсолютного содержания играют важную роль в диагностическом процессе, мониторинге состояния больного, оценке состояния лейкопоэза.

Подсчет лейкоцитарной формулы может быть произведен как методом визуальной микроскопии в окрашенных препаратах (мазках) крови, так и с помощью гематологических анализаторов с частичной или полной дифференцировкой лейкоцитов.

При использовании первого и второго метода лейкоцитарная формула подсчитывается в мазке с последующим расчетом абсолютного содержания лейкоцитов исходя из количества WBC. При использовании гематологических анализаторов напротив вначале определяется абсолютное содержание клеток, а их процент рассчитывается от общего количества WBC.

Определение лейкограммы гематологическими анализаторами

В настоящее время в лабораториях используются гематологические анализаторы, способные осуществлять дифференцированный счет лейкоцитов различных классов.

Самые простые анализаторы (анализаторы именно этого класса поставляются по Национальному проекту для укрепления материально-технической базы первичного звена) дифференцирует все WBC на три группы (популяции - 3-diff) и определяет относительное и абсолютное содержание:

· Лимфоциты, % - LYM% или LY%, 

· Лимфоциты, кл/мкл - LYM или LY#,

· Гранулоциты, % - GRN% или GR%,

· Гранулоциты, кл/мкл - GRN или GR#, 

· Моноциты, % - MON% или MO%,

· Моноциты, кл/мкл - MON или МО#, 

Гематологические анализаторы более высокого класса способны осуществлять дифференцированный счет лейкоцитов по 5-ти (5-diff) параметрам относительное (абсолютное) содержание:

NEU (%N) -нейтрофилы

EOS (% E) - эозинофилы

BASO (%B) - базофилы

MON (%M) - моноциты

LYM (%L) - лимфоциты

При подсчете лейкограммы с дифференциацией 3-diff, следует иметь в виду, что разделение клеток производится только по объему. Клетки объемом 35-90 фл расцениваются как лимфоциты, 90-120 фл - моноциты и 120-400 фл - гранулоциты.

На приведенных гистограммах WBC хорошо видно, что в области малых объемов от 35-90 фл имеется достаточно высокий пик - лимфоцитов, которые под действием гемолитика значительно уменьшаются в объеме. Гранулоциты (нейтрофилы, базофилы и эозинофилы) напротив, подвергаются лишь небольшому сжатию и расположены в области больших объемов (120-400 фл) в виде пологого пика с широким основанием.

Между двумя пиками имеется зона так называемых “средних лейкоцитов” (90-120 фл), их количество лучше всего коррелирует с моноцитами. По этой причине в большинстве анализаторов клетки в этой области указываются как «моноциты». Но в этой зоне отсутствует четко сформированный пик. Поэтому следует учитывать, что в области средних клеток могут находиться не только моноциты, сюда частично попадают крупные лимфоциты (верхняя гистограмма) могут попадать базофилы, эозинофилы и различные патологические клетки. В связи с этим более корректным является название данного параметра «средние лейкоциты» или «средние клетки» (MID).

При окончательной оценке лейкограммы выполненной анализатором следует учитывать, что одним из главных преимуществ автоматического подсчета лейкоцитарной формулы является повышение точности результатов за счет анализа очень большого количества клеток (вместо 100 при микроскопии).

Малое количество клеток, анализируемое при подсчете мазка крови, неравномерное распределение клеток различного размера на препарате являются главной причиной ошибок при микроскопии, так как вероятность ошибки зависит от количества подсчитанных лейкоцитов. С другой стороны при микроскопическом исследовании специалист клинической лабораторной диагностики дифференцирует лейкоциты не только по их размерам, но и оценивает морфологию клетки (ядерно-цитоплазматическое отношение, структуру ядра, наличие зернистости, особенности окраски ядра, цитоплазмы и зернистости цитоплазмы), что позволяет ему с гораздо большей точностью отнести клетку к тому или иному виду лейкоцитов.

Так как идеальный вариант - подсчет очень большого количества клеток с детальной дифференцировкой - пока затруднителен и дорог, оптимальным является обязательное сочетание исследования лейкогемограммы на гематологическом анализаторе с визуальной микроскопией мазка.

Для иллюстрации необходимости визуального подсчета лейкоцитов достаточно привести такой пример.

При подсчете на гематологическом анализаторе, дифференцирующем все WBC на три группы (3-diff) подсчитано:

LYM% - 25%, MON% - 5%, GRN% - 70%;

все показатели укладываются в нормальные величины, заложенные в «память» гематологического анализатора и он может не выдать никаких «сигналов тревоги». Но специалист, оценивающий это исследование должен прекрасно представлять, что при GRN% - 70% содержание эозинофилов у данного конкретного больного может быть и 4%, и 16% и даже 40%, что по данному исследованию нельзя ничего сказать о соотношении и количестве палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов и т.д. Только подсчитанная визуально лейкоцитарная формула может прояснить и уточнить истинное распределение гранулоцитов у данного пациента.

Как исключение из этого правила, может быть, использование гематологических анализаторов для динамического наблюдения (мониторирования) за состоянием лейкоцитарной формулы больного, у которого при первичном исследовании крови автоматизированный дифференцированный счет лейкоцитов совпал с визуальным анализом лейкограммы (С.А.Луговская и соавт. 2002).

Определение абсолютного количества лейкоцитов

Результаты, определенные при подсчете лейкоцитарной формулы в %% это относительные величины, изменения которых не всегда идут параллельно с изменением абсолютного количества клеток. Цифры, полученные при дифференциальном подсчете, дают только грубую оценку истинного их содержания. Во многих руководствах по клинической лабораторной диагностике подчеркивалось, что «…определив процентное соотношение между видами клеток, вычисляют также, в особенности в тех случаях, когда общее число лейкоцитов изменено, их абсолютное количество» (Предтеченский). В последние годы этот расчет при визуальном исследовании лейкоцитов практически не проводится. Тем не менее, определение абсолютной концентрации различных лейкоцитов дает более точную картину, чем представление лейкограммы в относительных (процентных) величинах.

Например, у пациента А-ва получены следующие результаты анализа крови:

2.11. - WBC - 12x109/л, GRN - 66%, LYM - 33%

5.11. - WBC - 6x109/л, GRN - 33%, LYM - 66% На первый взгляд, если принять во внимание только процентные величины, кажется, что 5.11. лимфоцитов стало в два раза больше, чем было 2.11. (66% и 33% соответственно). Однако в обоих случаях абсолютное количество лимфоцитов одинаково:

[(12x109/л * 33%)/100% = 3,96 x109/л; (6x109/л * 66%)/100% = 3,96 x109/л] и составляет 3,96x109/л, а основные сдвиги происходят с гранулоцитами, содержание которых уменьшилось не в 2 раза (66 и 33%), а в 4 раза.

Можно приводить и другие примеры, все они свидетельствуют о необходимости оценивать абсолютное количество различных видов лейкоцитов. В свое время Ш.Д. Мошковский даже предложил изображать абсолютное количество основных видов лейкоцитов в виде «лейкоцитарного профиля». Вероятно, широкое распространение оценки абсолютного количества различных лейкоцитов ограничила необходимость проведения дополнительных расчетов и невостребованность этих показателей клиницистами.

В настоящее время гематологические анализаторы определяют абсолютное количество всех дифференцируемых ими клеток, и эти показатели становятся доступными без каких-либо дополнительных расчетов или исследований. Необходимо только обращать внимание на результаты представленные в Бланке анализатора, желание и умение их анализировать. Нормальные значения приведены в таблице в 1-й части статьи. Следует также ориентироваться на те значения нормы, которые введены в гематологический анализатор и приводятся в распечатке анализа.

Трактовка изменений лейкоцитарной формулы

Нейтрофилы. Нормальные значения нейтрофилов: палочкоядерные - 1 - 6% или 0,04 - 0,3 х109/л; сегментоядерные - 47 -72% или 2,0 - 5,5 х109/л

Нейтрофильные гранулоциты образуются в костном мозге. Около 60% общего числа гранулоцитов находится в костном мозге, составляя костномозговой резерв, 40 % - в других тканях и лишь менее 1 % - в периферической крови. В норме в крови присутствуют сегментоядерные нейтрофилы и относительно небольшое количество палочкоядерных нейтрофилов (1-6 %). Основная функция нейтрофилов состоит в защите организма от инфекций, которая осуществляется главным образом с помощью фагоцитоза. Длительность полупериода циркуляции нейтрофильных гранулоцитов в крови равна 6,5 ч, затем они мигрируют в ткани. Время жизни гранулоцитов в тканях зависит от многих причин и может колебаться от нескольких минут до нескольких дней. Содержание нейтрофилов в крови в норме приведено в табл. 3.

Нейтрофилез (нейтрофилия) - увеличение содержания нейтрофилов выше 8,0 х109/л или 72%.

Степень выраженности нейтрофильного лейкоцитоза зависит от объема костномозгового и сосудистого резерва, активности костномозговой продукции клеток, интенсивности потребления гранулоцитов в тканях, вирулентности микроорганизмов, характера патологического процесса, состояния защитных систем организма.

Нейтрофильный лейкоцитоз (нейтрофилез) может быть следствием:

* усиленной продукции клеток в костном мозге,

* повышенной миграции нейтрофилов из костного мозга в кровь,

* перераспределения нейтрофилов из маргинального в циркулирующий пул (демаргинация),

* задержки миграции нейтрофилов из крови в ткани,

* сочетанного действия выше перечисленных причин.

Таблица 6. Содержание нейтрофилов у здоровых лиц разного возраста (Тиц.Н., 1997)

Возраст	Пределы колебаний нейтрофилов
	абсолютное содержание (х109/л)	относительное кол-во (%)
12 мес	1,5-8,5	30-50
4 года	1,5-8,5	35-55
10 лет	1,8-8,0	40-60
21 год	1,8-7,7	47-72
Взрослые	1,8-7,7	47-72

лабораторный исследование гематологический кровь

Время развития нейтрофилеза может исчисляться:

· минутами (перераспределительный нейтрофилез),

· часами (выброс нейтрофилов из костного мозга)

· сутками (повышение продукции клеток в костном мозге).

Реактивный нейтрофильный лейкоцитоз наблюдается вследствие перераспределения клеток в органах и крови и наблюдается после приема пищи, под действием лекарственных препаратов, физических и эмоциональных нагрузок, воздействие холода, тепла, наркоза и др. Реактивный нетрофилез может быть следствием повышенного выброса нейтрофилов из костного мозга в ответ на инфекционный, септический, гнойно-воспалительный и токсический процессы, отравление и т.д.

Перераспределительный нейтрофилез характеризуется переходом лейкоцитов из пристеночного пула в циркулирующий. Этому способствуют такие факторы, как повышенное давление крови в капиллярах, нарушение кровотока в мелких сосудах различных органов, подъем уровня адреналина и кортизола. Перераспределительный лейкоцитоз, как правило, незначительный и кратковременный.

Смешанный нейтрофильный лейкоцитоз наблюдается у новорожденных и беременных он может быть как перераспределительный, так и в результате активации костномозгового кроветворения. Повышенное количество лейкоцитов сопровождается увеличением в крови нейтрофилов, сдвигом лейкоцитарной формулы влево до мета- и миелоцитов, что отражает максимальную активность процессов пролиферации и элиминации гранулоцитов из костного мозга. Это не исключает развития нейтрофильной реакции при осложнениях.

Абсолютное увеличение числа циркулирующих нейтрофилов наблюдается в том случае, если повышенная продукция и выход в циркуляцию нейтрофилов стимулируется на уровне костного мозга. Нейтрофильный лейкоцитоз развивается при многих острых бактериальных инфекциях, локализованных воспалительных процессах (фурункул, карбункул, абсцесс, флегмона, тонзиллит, отит). Наиболее часто нейтрофилез сопровождает такие заболевания, как пневмония, холецистит, сальпингит, менингит, перитонит, сепсис, эндокардит, остеомиелит, пищевые токсикоинфекции, а также инфекционные заболевания (дифтерия, скарлатина, сибирская язва, чума).

Достаточно часто реакция нейтрофилов бывает выражена очень резко и сопровождается появлением в крови молодых элементов кроветворения. При многих тяжелых инфекциях, септических и гнойных процессах лейкоцитарная формула меняется за счет увеличения количества палочкоядерных, метамиелоцитов и миелоцитов. Такое изменение лейкограммы с увеличением процентного содержания молодых форм нейтрофилов называют сдвигом влево; увеличение же в основном за счет сегментоядерных и полисегментоядерных форм - сдвигом вправо.

Значительное увеличение числа нейтрофилов в крови со сдвигом влево и появлением токсической зернистости в нейтрофилах имеет место при тканевом повреждении, вызванном механической травмой, термическим ожогом, подагрой. При оперативных вмешательствах, как результат массивного повреждения тканей, нейтрофилез сохраняется от 12 до 36 ч. Введение колониестимулирующих факторов, вакцинация, воздействие различных ядов способствуют развитию нейтрофилеза.

Лейкоцитарный нейтрофилез развивается в течение 1-2 часов после начала острого кровотечения, гемотрансфузии несовместимой крови, остром гемолизе.

Высокий нейтрофильный лейкоцитоз (WBC до 50х109/л) с омоложением состава лейкоцитов (сдвиг влево разной степени вплоть до промиелоцитов) может возникать при острых бактериальных пневмониях (особенно крупозной) и других тяжелых инфекциях, остром гемолизе. Реакции нейтрофильного типа (с лейкоцитозом или без него) возможны при злокачественных опухолях (рак паренхимы почки, молочной и предстательной желез), особенно с множественными метастазами в костный мозг. Дифференциальный диагноз с болезнями крови проводят на основании данных биопсии костного мозга, исследования щелочной фосфатазы в лейкоцитах (при реактивных изменениях крови она высокая, при хроническом миелолейкозе низкая), динамики гемограммы.

Изменения лейкоцитарной формулы сопутствуют многим заболеваниям и нередко являются неспецифическими. Тем не менее, диагностическое значение этого исследования велико, так как оно дает представление о тяжести состояния пациента, эффективности проводимого лечения. При гемобластозах исследование лейкоцитарной формулы нередко позволяет установить клинический диагноз. Основные причины, приводящие к изменению лейкоцитарной формулы, отражены в табл. 7.

Таблица 7. Заболевания и состояния, сопровождающиеся сдвигом лейкоцитарной формулы

Сдвиг влево с омоложением	Сдвиг вправо
в крови присутствуют метамиелоциты, миелоциты	в крови присутствуют метамиелоциты, миелоциты, промиелоциты, миелобласты и эритробласты	уменьшение количества палочкоядерных нейтрофилов в сочетании с гиперсегментированными ядрами нейтрофилов
Острые воспалительные процессы Гнойные инфекции Интоксикации Острые геморрагии Ацидоз и коматозные состояния Физическое перенапряжение	Миелопролиферативные заболевания Эритромиелоз Метастазы злокачественных новообразований Острые лейкозы	Мегалобластная анемия Болезни почек и печени Состояния после переливания крови

Нейтрофилез является одним из основных объективных диагностических критериев любого нагноительного процесса, особенно сепсиса. Установлено, что чем выше лейкоцитоз, тем более выражена положительная реакция организма на инфекцию. Число лейкоцитов в периферической крови, особенно при стафилококковом сепсисе, может достигать 60- 70х109/л. Иногда динамика лейкоцитарной реакции имеет волнообразный характер: начальный лейкоцитоз сменяется лейкопенией, а затем вновь наблюдается быстрое нарастание лейкоцитоза. Сепсис, вызванный грамотрицательной флорой, протекает обычно при менее выраженной лейкоцитарной реакции. При грамотрицательном сепсисе нарастание лейкоцитов до 18х109/л значительно ухудшает прогноз заболевания.

Наряду с увеличением количества лейкоцитов при сепсисе возможно и их снижение до (3,0-4,0)х109/л, что чаще наблюдается при грамотрицательном сепсисе. Наиболее значительное угнетение лейкоцитарной реакции отмечается при септическом шоке (2,0х109/л).

Для тяжелых форм синегнойного сепсиса с развитием септического шока характерно развитие резчайшей лейкопении, доходящей до 1,6 х109/л. У больных с почечной недостаточностью довольно часто наблюдается нейтропения вплоть до агранулоцитоза. Прогностически при остром стафилококковом и стрептококковом сепсисе смертность при лейкоцитозе до 10,0 х109/л достигает 75-100 %, более 20,0 х109/л. - 50-60 %.

Таблица 8. Заболевания и состояния, сопровождающиеся изменением количества нейтрофилов

Нейтрофилез	Нейтропения
Острые бактериальные инфекции: - локализованные: абсцессы, остеомиелит, острый аппендицит, острый отит, пневмония, острый пиелонефрит, сальпингит, менингиты гнойные и туберкулезный, ангина, острый холецистит, тромбофлебит и др.; - генерализованные: сепсис, перитонит, эмпиема плевры, скарлатина, холера и пр. Воспаление или некроз тканей: - инфаркт миокарда, обширные ожоги, гангрена, быстро развивающаяся злокачественная опухоль с распадом, узелковый периартериит, острая атака ревматизма Интоксикации экзогенные: - свинец, змеиный яд, вакцины (чужеродный белок, бактериальные) Интоксикации эндогенные: - уремия, диабетический ацидоз, подагра, эклампсия, синдром Кушинга Лекарственные воздействия Миелопролиферативные заболевания: - хронический миелолейкоз, эритремия, идиопатический миелофиброз Острые геморрагии	Бактериальные инфекции - тиф, паратиф, туляремия, бруцеллез, подострый бактериальный эндокардит, милиарный туберкулез Вирусные инфекции: инфекционный гепатит, грипп, корь, краснуха Миелотоксические влияния и супрессия гранулоцитопоэза: - ионизирующая радиация; - химические агенты (бензол, анилин и др.); - противоопухолевые препараты (цитостатики и иммунодепрессанты); - дефицит витамина В12 и фолиевой кислоты; - острый лейкоз (начальная стадия) - апластическая анемия Иммунный агранулоцитоз: - гаптеновый гиперчувствительность к медикаментам; - аутоиммунный системная красная волчанка, ревматоидный артрит, хронический лимфолейкоз; - изоиммунный у новорожденных, посттрансфузионный Перераспределение и секвестрация в органах: - анафилактический шок; спленомегалия различного происхождения

Страница:

•  1 
•  2 

методичка "Общий анализ крови (трактовка результатов исследований, выполненных на гематологических анализаторах)" скачать

Подобные документы

• Ошибки гематологических исследований

  Автоматические методы анализа клеток крови. Основные источники ошибок при подсчете эритроцитов и лейкоцитов в камере. Особенности влияния различных факторов на результаты исследования крови. Информативность и достоверность гематологических тестов.
  
  реферат [44,1 K], добавлен 20.12.2012
  

• Техника обнаружения базовых гематологических симптомов и интерпретация общего анализа крови

  Исследование крови как один из важнейших диагностических методов, общая методика и этапы его проведения, особенности и значение. Параметры оценки красной и белой крови, тромбоцитов, нейтрофилов и эритроцитов, документальное оформление результатов.
  
  курсовая работа [65,4 K], добавлен 25.04.2009
  

• Изменение состава периферической крови под воздействием физических нагрузок

  Изучение различий в составе периферической крови до и после физических нагрузок. Оценка влияния интенсивности нагрузки и стажа тренировок на показатели периферической крови и адаптивные резервы организма человека. Техника проведения общего анализа крови.
  
  курсовая работа [1,3 M], добавлен 23.09.2016
  

• Патологические изменения картины крови у детей

  Значение общего анализа крови в педиатрической практике, высокая изменчивость результатов как его важная особенность. Место болезней крови в общей структуре детской заболеваемости. Анатомо-физиологические особенности крови и органов кроветворения у детей.
  
  презентация [188,0 K], добавлен 21.12.2016
  

• Исследование эффективности профессиональной деятельности фельдшера в профилактике и лечении гематологических проблем в педиатрии

  Роль фельдшера в клинико-лабораторной диагностике болезней крови. Анализ результатов исследования больных с гематологическими заболеваниями. Оценка эффективной профессиональной деятельности фельдшера в ранней диагностике онкологических болезней крови.
  
  дипломная работа [152,6 K], добавлен 06.01.2016
  

• Группы крови. Переливание крови

  История зарождения и развития науки о переливании крови, первые опыты и оценка полученных результатов. Открытие четырех групп крови и необходимость их совместимости у донора и реципиента. Антигены и антитела системы АВ0. Наследование групп крови.
  
  презентация [976,0 K], добавлен 26.01.2014
  

• Отбор крови по принципу холдер-вакутайнер

  Преимущества взятия крови с помощью закрытой вакуумной системы. Иглы, держатели и пробирки, применяемые при взятии крови. Основные этапы лабораторного анализа вне лаборатории и внутри лаборатории. Процедура взятия крови с помощью вакуумной системы.
  
  реферат [3,2 M], добавлен 04.05.2019
  

• Основы физиологии крови (функции крови, состав крови, плазма крови, форменные элементы крови)

  Общие функции крови: транспортная, гомеостатическая и регуляторная. Общее количество крови по отношению к массе тела у новорожденных и взрослых людей. Понятие гематокрита; физико-химические свойства крови. Белковые фракции плазмы крови и их значение.
  
  презентация [3,6 M], добавлен 08.01.2014
  

• Возрастные особенности периферической крови у детей

  Лабораторное исследование периферической крови у детей. Функции эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Качественные изменения нейтрофилов. Скорость оседания эритроцитов. Белковый состав плазмы крови. Нормальные показатели у детей различного возраста.
  
  презентация [3,2 M], добавлен 22.09.2016
  

• Оптические свойства гранулярных клеток крови: нейтрофилы

  Анализ нейтрофилов как клеток крови, случаи их патологического изменения. Методы изучения нейтрофилов. Экспериментальная апробация способа получения гематологических характеристик, которые могут быть использованы как признаки патологии нейтрофилов.
  
  курсовая работа [1,3 M], добавлен 29.02.2012
  

Другие документы, подобные "Общий анализ крови (трактовка результатов исследований, выполненных на гематологических анализаторах)"

• главная
• рубрики
• по алфавиту
• вернуться в начало страницы
• вернуться к началу текста
• вернуться к подобным работам