Нитрифицирующие микроорганизмы как индикаторы антропогенного воздействия на почвы
Процесс нитрификации и факторы, влияющие на него. Влияние загрязняющих веществ, серы. Объекты и методы исследований: отбор проб, стерилизация, постановка модельных систем, накопительных культур, техника посева. Изучение биологических свойств бактерий.
Рубрика | Биология и естествознание |
Вид | курсовая работа |
Язык | русский |
Дата добавления | 05.06.2009 |
Размер файла | 77,5 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
130
ФГОУ ВПО
«Астраханский Государственный Технический Университет»
Кафедра «Прикладная биология и микробиология»
Курсовая работа
по промышленной микробиологии
на тему:
«Нитрифицирующие микроорганизмы как индикаторы антропогенного воздействия на почвы»
Астрахань 2007
Содержание
Введение
Глава 1. Процесс нитрификации и факторы, влияющие на него
1.1 Нитрификация
1.2 Влияние загрязняющих веществ на почвенные микроорганизмы
1.2.1 Воздействие ПАВов на почвенные микроорганизмы
1.2.2 Воздействие серы на микроорганизмы почв
1.2.3 Влияние нефтяного загрязнения на почвенные микроорганизмы
Глава 2. Объекты и методы исследований
2.1 Объекты исследований
2.2 Методы исследований
2.2.1 Методы отбора проб
2.2.2 Методы стерилизации
2.2.3 Постановка модельных систем
2.2.4 Постановка накопительных культур
2.2.5 Техника посева
2.2.6 Изучение биологических свойств бактерий
Глава 3. Результаты исследований
Выводы
Литература
Введение
Актуальность данной работы. В последние годы значительно увеличилось антропогенное воздействие на различные биоценозы, в том числе и на микробиоценозы. Такое воздействие вызывает изменения в структуре и функциях биотических сообществ.
Главная опасность антропогенного воздействия нашего времени - внесение в круговорот веществ соединений, несвойственных природе, разрывающих замкнутый цикл или искажающих процесс круговорота. В настоящее время в связи с развитием химической и нефтегазовой промышленности особую опасность представляют загрязнения вод и почв нефтью и ее производными, загрязнение синтетическими поверхностно-активными веществами (СПАВами), тяжелыми металлами и другими ксенобиотиками. Все эти вещества оказывают негативное влияние на многие виды микроорганизмов, в том числе на осуществляющие важнейшие круговороты веществ. Примеси органического характера могут служить пищей гетеротрофным организмам и потому вызывать бурное развитие сапрофитов. Соединения, не растворимые в воде, могут значительно нарушать кислородный режим, вследствие чего одни виды организмов сменяются другими, более устойчивыми к недостатку кислорода. Химические примеси способны изменять реакцию среды и окислительно-восстановительный потенциал, оказывать стимулирующее или токсическое воздействие на организмы. Так или иначе, все загрязняющие вещества (ЗВ) изменяют качественный и количественный состав естественных сообществ (Чурбанова, 1987).
Характер воздействия зависит от концентрации вещества. Существует значительное количество организмов, рост и развитие которых прекращаются при очень низких концентрациях ЗВ и, наоборот, организмов, развитие которых стимулируется ксенобиотиками. Установлено, что даже при незначительных концентрациях подавляется рост таких групп микроорганизмов, как нитрификаторы или целлюлозоразрушающие микроорганизмы, что приводит к значительному сдвигу в естественном круговороте. Использование в биологическом мониторинге экосистем таких систематических и функциональных групп позволяет прогнозировать последствия воздействия ЗВ на естественные почвенные процессы.
Целью данной работы являлось изучение антропогенного воздействия на микроорганизмы, участвующие в процессе нитрификации с целью практического использования последних в качестве индикаторов негативного воздействия.
Задачами данного исследования было:
1. определить численность и родовой состав нитрифицирующих микроорганизмов в почвах, не подвергающихся прямому антропогенному воздействию;
2. выявить влияние ПАВ, нефти, серы на численность нитрифицирующих микроорганизмов в модельном эксперименте.
Глава 1. Процесс нитрификации и факторы, влияющие на него
По современным представлениям биоиндикаторы - организмы, присутствие, количество или особенности развития которых служат показателями естественных процессов, условий или антропогенных изменений среды обитания. Биоиндикация - метод, который позволяет судить о состоянии окружающей среды по факту встречи, отсутствия, особенностям развития организмов - биоиндикаторов.
Условия, определяемые с помощью биоиндикаторов, называются объектами биоиндикации. Ими могут быть как определенные типы природных объектов (почва, вода, воздух), так и различные свойства этих объектов (механический, химический состав и др.) и определенные процессы, протекающие в окружающей среде (эрозия, дефляция, заболачивание и т.п.), в том числе происходящие под влиянием человека (Экологический мониторинг, 2006).
Биоиндикационный метод исследования с успехом применяется для оценки состояния и функционирования почвы и последовательности биоценотических изменений в экосистеме, поскольку загрязняющие вещества влияют, прежде всего, на протекание жизненных процессов. Наибольший интерес в этом плане представляют почвенные животные (обладают повышенной чувствительностью к внешним факторам) - многочисленная группа животных, имеющая экологическое и экономическое значение.
Советскими авторами (Никитина, А. Мамитко, В. Мамитко, 1980) научно обоснована возможность использования микробиологических показателей для определения степени доступности техногенной нагрузки на экосистему.
Существуют специальные функциональные группы микроорганизмов, которые являются показателями загрязнения окружающей среды различными веществами. Так, например, некоторые авторы (Чегринец, Безбородько, Воронова, Никула, 1980) предлагают оценивать состояние биоценоза почвы, загрязненной медь - и хромсодержащими веществами, по жизнедеятельности наиболее важных групп микроорганизмов нитрификаторов, целюлозоразрушающих и по общему количеству микроорганизмов с учетом удельного веса споровых форм (Хотько, 1982).
В качестве индикаторов фенольного загрязнения используются евтрофные микроорганизмы, которые наиболее чувствительны к данному соединению. По мере увеличения концентрации фенола отмечено падение численности этой группы микроорганизмов (Никитина, 1978).
Некоторыми авторами отмечается тенденция преимущественного уменьшения численности отдельных групп микроорганизмов при внесении определенных пестицидов. Например, указывается, что каптан снижал преимущественно численность патогенных грибов, гептахлор - бактерий, цинеб - спорообразующих бактерий, эптам, дикват, атразин - грибов и т.д. (Хайниш и др., 1979). Однако не ясно, насколько это воздействие сохраняется в разных экологических условиях (Марфенина, 1991).
Нитрификаторы - индикаторы антропогенного воздействия.
Существуют определенные группы микроорганизмов, уменьшение численности которых свидетельствует об антропогенном воздействие на почву. Данные физиологические группы реагирует на изменение многих показателей. Это, как правило, облигатные аэробные организмы, негативно реагирующие на увеличение органики в среде. К таким группам относятся нитрификаторы и целлюлозоразрушающие микроорганизмы.
Нитрификация замедляется или прекращается в том случае, если почва является слишком холодной, слишком сухой или при загрязнении.
В загрязненных почвах бурно развиваются микроорганизмы, осуществляющие распад гнилостных продуктов, а нитрификация подавлена. При накоплении в почве аммиака, образующегося при распаде органических загрязнителей, начинается развитие нитрификаторов. Интенсивный процесс нитрификации говорит о завершении распада органических загрязнителей и активно идущем самоочищении почвы (Роль микроорганизмов в круговороте газов в природе, 1979; Асонов, 1989).
Численность микроорганизмов - нитрификаторов снижается при внесении в почву медь- и хромсодержащих веществ, при загрязнении почвы серой (Хотько, 1982), ПАВ (Орлов, 2002). Среди микроорганизмов цикла азота автотрофные нитрифицирующие бактерии наиболее чувствительны к действию нефти. Снижение их активности связано с наличием в почве легкодоступных органических соединений в виде углеводородов нефти и продуктов их частичного окисления. Поэтому снижение численности нитрификаторов, как и целлюлозоразрушающих микроорганизмов, может служить индикатором нефтяного загрязнения почв (Марфенина, 1991).
1.1 Нитрификация
Продукты гниения белков и разложения мочевины - аммиак и аммиачные соли - могут быть непосредственно усвоены растениями, но они обычно превращаются в нитраты - соли азотной кислоты.
Биологическая природа образования в почве нитратов была установлена во второй половине прошлого века (Уорингтон, 1878 г.). Первое предположение об участии микроорганизмов в этом процессе было высказано Л. Пастером. Биологическая сущность процесса нитрификации была доказана работами Т. Шлезинга и А. Мюнца в 1879 г (Асонов, 1989).
Однако выделить микроорганизмы, ответственные за процесс образования нитратов, долгое время никому не удавалось. С. Н. Виноградский применил для их выделения элективную среду, представляющую собой раствор чистых минеральных солей, в том числе и сернокислого аммония, которым он пропитал пластинки кремнекислого геля. Отсутствие органических соединений в такой среде исключало развитие банальных гетеротрофов. В 1891 г. ему удалось выделить микроорганизмы, названные нитрификаторами. Они были представлены двумя группами, каждая из которых проводила один из двух этапов окисления азота: сначала образовывались нитриты, а затем -- нитраты (Бабьева, Зенова, 1989).
Первую группу нитрозных бактерий составляют роды Nitrosomonas, Nitrosococcus, Nitrosospira, Nitrosolobus, Nitrosovibrio, вторую -- нитратных бактерий -- Nitrobacter, Nitrospina, Nitrococcus. Названия родов свидетельствуют о том, что микроорганизмы той и другой группы морфологически разнообразны -- это кокки, палочки, спирально изогнутые клетки. Все они -- грамотрицательные бактерии, в большинстве своем очень мелкие, часто подвижные, с полярными или перитрихиальными жгутиками. Многие имеют развитые системы внутрицитоплазматических мембран. В метаболическом отношении все нитрифицирующие бактерии -- хемолитоавтотрофы, использующие энергию окисления аммиака или азотистой кислоты для синтеза органических веществ из СО2, т. е. осуществляющие хемосинтез (Асонов, 1989).
Первое сообщение об образовании N2O нитрифицирующими микроорганизмами опубликовано Корбе в 1935 г. Автор обнаружил выделение N2O культурой микроорганизмов при окислении аммония или гидроксиламина в нитрит и предположил, что закись азота образовывалась либо при химическом разложении гипонитрита, либо при химическом взаимодействии гидроксиламина с нитритом.
Иошида и Александер в 1970 г. описали образование N2O суспензиями клеток Nitrosomonas europaea при окислении аммония и гидроксиламина; при этом до 95% окисленного азота гидроксиламина выделялось в форме N2O. Авторы сделали вывод, что N2O образуется из промежуточного продукта нитрификации, дальнейшее превращение которого в нитрит ингибируется аммонием, гидразином и температурой выше 35°С. Следует отметить, что такое значительное образование N2O было получено только в этой работе для клеток N.europaea, выдержанных в течение нескольких дней на холоду, и в дальнейшем не наблюдалось авторами, создававшими для клеток N.europaea физиологические условия.
Отмечено образование N2O культурой Nitrosospira briensis, растущей в присутствии аммония (Веденина, Заварзин, 1979).
Блэкмер с соавторами (1980) описали выделение N2O в аэробных условиях из стерильных почв после внесения в них аммония и инокулирования культурами Nitrosomonas, Nitrosospira и Nitrosolobus. В одинаковых условиях наибольшее количество N2O было получено из почв, инокулированных двумя штаммами Nitrosomonas, и значительно меньшее в случае Nitrosospira и двух штаммов Nitrosolobus. Однако судить о родовых различиях в способности образовывать N2O нельзя, так как третья из исследованных бактерий - Nitrosomonas sp.- образовывала ничтожные количества N2O.
В совместных работах лабораторий Ватсона и Мак-Элроя (1980-1981) показана способность к образованию N2O у представителей 4 родов хемоавтотрофных нитрификаторов - Nitrosomonas europaea, Nitrosococcus oceanus, Nitrosolobus multiformis и Nitrosospira briensis. В условиях низкой аэрации скорость образования NO2- жидкой культурой Nitrosomonas sp. значительно уменьшается, а выделение N2O увеличивается. Обнаружено, что суспензии клеток N.europaea наряду с NO2- и N2O образуют NO. С уменьшением концентрации О2 увеличивался выход обоих газов и росло отношение NO/N2O, составляя в среднем 1,5 моля NO - N на моль N2O - N. Следует отметить, что у всех исследованных организмов азот N2O составлял не более 0,5% от суммы окисленного азота, что более чем на порядок ниже продукции N2O у Nitrosomonas europaea, наблюдавшейся Иошида и Александером (1970).
Известно, что многие метилотрофы способны к окислению NH4+ в NO2-. Об образовании N2O метилотрофами при окислении аммония сообщает Ноулс, ссылаясь на неопубликованные данные.
У возбудителей второй фазы нитрификации и у гетеротрофных нитрификаторов способность к образованию N2O в процессе нитрификации не установлена (Веденина, Лебединский, 1984).
Нитрифицирующие бактерии имеют ряд общих свойств: все они не образуют спор, красятся по Грамму отрицательно, облигатные аэробы, оптимум развития лежит при температуре 25-30° и рН 7,5-8,0. Представители различных родов нитрифицирующих бактерий различаются морфологически (Горленко, 1977). Клетки палочковидные, эллипсоидальные, сферические, спиральные и дольчатые клетки без эндоспор. Жгутики субполярные или перитрихальные, часто отсутствуют. Клетки получают энергию от окисления аммиака и нитрита и удовлетворяют свои потребности в углероде путем фиксации CO2. Только немногие штаммы одного вида, Nitrobacter winogradskyi,- факультативные хемоорганотрофы. Не паразитические. Обычно встречаются в почве, пресной воде и морской воде. Все организмы, помещенные в семейство Nitrobacteraceae,- облигатные аэробы и не нуждаются в органических факторах роста. Клетки богаты цитохромами, но никаких других пигментов обнаружено не было (Чурбанова, 1987; Определитель бактерий Берджи, 1997).
Бактерии, окисляющие нитрит.
Род Nitrobacter. Клетки - короткие палочки, часто клиновидные или грушевидные. Размножаются почкованием. Клетки обладают полярной шапкой цитомембран. Обычно неподвижные. Стадии покоя неизвестны. Грамотрицательные. Клетки богаты цитохромами, придающими клеточным суспензиям желтоватый цвет; других пигментов нет. Содержат внутриплазматические мембраны в виде полярных уплощенных везикул в периферической части протоплазмы. По данным электронной микроскопии тонких срезов клеточная стенка отличатся от таковой большинства грамотрицательных бактерий. Она состоит из трех слоев (электроноплотный, электронопрозрачный, электроноплотный), причем внутренний слой более электроноплотный, чем наружный.
Некоторые штаммы - облигатные хемолитотрофы, они окисляют нитриты до нитратов и фиксируют СО2 для удовлетворения потребностей в энергии и углероде. Строгие аэробы, использующие кислород в качестве конечного акцептора электронов. Пределы pH для роста 6,5-8,5; температурные пределы 5-40 ?C. Место обитания: почвы, пресная вода, морская вода (Гусев, Минеева, 1992).
Род Nitrospina. Клетки - прямые, тонкие палочки; в стареющих культурах встречаются сферические формы. Развитой цитомембранной системы нет. Грамотрицательные. Неподвижные. Клетки содержат цитохромы, других пигментов нет.
Облигатные хемолитотрофы; окисляют нитриты до нитратов и фиксируют СО2 для получения энергии и углерода. Растут в морской воде, обогащенной нитритами и неорганическими солями; в органических факторах роста не нуждаются. Также, как и род Nitrobacter, являются строгими аэробами. Температурные пределы для роста 20-30 ?C, пределы pH 7,8-8,0. Оптимальный рост в 70-100%-ой морской воде; не растут в среде из дистиллированной воды с минеральными солями, даже при включении NaCl. Обитают в южной части Атлантического океана (Определитель бактерий Берджи, 1997).
Род Nitrococcus. Клетки сферические, 1,5 мкм или больше. Грамотрицательные. Движутся при помощи одного или двух субтерминально прикрепленных жгутиков. Клетки богаты цитохромами, придающими взвесям желтовато- красноватую окраску; других пигментов нет. Облигатные хемолитотрофы; окисляют нитриты до нитратов и фиксируют СО2 для получения энергии и углерода. Внутрицитоплазматические мембраны в виде трубочек расположены по всей цитоплазме. Растут в морской воде, обогащенной нитритами и неорганическими солями; в органических факторах роста не нуждаются, являются строгими аэробами.
Температурные пределы для роста 15-30 ?C, пределы pH 6,8-8,0. Обитают в южной части Тихого океана.
Род Nitrospira. Клетки от слабо закрученных спиральных до вибриоидных, шириной 0,3-0,4 мкм, с круглой амплитудой 0,8-1,0 мкм. Подвижности не наблюдается. Внутрицитоплазматические мембраны отсутствуют. Периплазматическое пространство необычно широко, в два раза шире, чем у других грамотрицательных бактерий. Хемолитоавтотрофы. Единственным источником энергии служит нитрит, но рост в миксотрофных условиях лучше, чем в литоавтотрофных. Для роста необходима морская вода. Оптимальная среда, содержащая 70-100% морскую воду плюс нитрит, пируват, глицерол, а также дрожжевой экстракт или пептон. Выделены из различных морских местообитаний, таких как океанические воды и морские осадки. В единственном случае описано выделение накопительной культуры из проб почвы, отобранных в Намибии. Типовой (и единственный) вид: Nitrospira marina (Определитель бактерий Берджи, 1997).
Бактерии, окисляющие аммиак.
Род Nitrosomonas. Клетки эллипсоидальные или короткие палочки, подвижные или неподвижные, одиночные, в парах или коротких цепочках. Грамотрицательные. Обладают цитомембранами, образующими уплощенные пузырьки в периферических областях цитоплазмы. Клетки растут свободно в среде или заключены в слизистую зооглею. Богаты цитохромами, которые придают клеточным взвесям окраску от желтоватой до красноватой; других пигментов нет.
Облигатные хемолитотрофы; окисляют аммиак до нитрита и фиксируют СО2 для получения энергии и углерода. Растут в пресной или морской воде, обогащенной аммиаком и неорганическими солями, не требуют органических факторов роста. Строгие аэробы. Температурные границы для роста 5-30 ?C, пределы pH 5,8-8,5. Обитают в почвах, пресной и морской воде (Чурбанова, 1987).
Род Nitrosococcus. Клетки от сферических до эллипсоидных. Подвижные или неподвижные. Клеточная стенка типичная для грамотрицательных бактерий, но у морских видов обнаружен дополнительный наружный слой клеточной стенки. Одиночные, в парах или в тетрадах, свободно взвешенных в жидкой среде, или заключены в слизь с образованием агрегатов, которые либо прикреплены к стенкам сосуда, либо находятся во взвешенном состоянии в жидкой среде.
Облигатные хемолитотрофы; окисляют аммиак до нитрита и фиксируют СО2 для удовлетворения потребностей в энергии и углероде. За исключением типового вида, выделенного из почвы, виды Nitrosococcus облигатно галофильные и их распространение ограничено морскими и солоноватоводными средами. Растут в пресной или морской воде, обогащенной аммиаком и неорганическими солями; не нуждаются в органических факторах роста. Строгие аэробы. Температурные границы для роста 2-30 ?C, пределы pH 6,0-8,0. Типовой вид: Nitrosococcus nitrosus (Мишустин, 1986).
Род Nitrosospira. Клетки в виде туго скрученных спиралей шириной 0,3-0,4 мкм, с 3-20 витками. Грамотрицательные. Развитой системой внутрицитоплазматических мембран не обладают, но часто наблюдаются инвагинации цитоплазматической мембраны в протоплазму. Неподвижные или движутся с помощью перитрихальных жгутиков. Растут свободно в жидкой среде. Клетки богаты цитохромами, которые придают суспензии окраску от желтой до красноватой; других пигментов нет. Облигатные хемолитотрофы; окисляют аммиак до нитрита и фиксируют СО2 для удовлетворения потребностей в энергии и углероде. Растут в пресной воде, обогащенной аммиаком и неорганическими солями; или почве. Строгие аэробы, использующие кислород в качестве конечного акцептора электронов. Температурные границы для роста 15-30 ?C, пределы pH 6,5-8,5. Выделены из почв Бри (Франция), острова Крит, вершины горы Пилат (Швейцария) и храма Парфенон в Афинах.
Род Nitrosospira С.Н.Виноградский разделил на два вида: Nitrosospira briensis и Nitrosospira arctica. Бактерии обоих видов имеют правильную спиральную форму. Наряду со спирально закрученными нитями у старых культур встречаются короткие палочки и кокки (Чурбанова, 1987, Определитель бактерий Берджи, 1997).
Род Nitrosolobus. Клетки плеоморфные и лопастные, 1,0-1,5 мкм в поперечнике; делятся перетяжкой. Грамотрицательные. Клетки внутри частично подразделены впячиваниями плазматической мембраны и других частей клеточной оболочки в цитоплазму с образованием везикулярных участков. Подвижные, движутся с помощью перитрихальных жгутиков. Растут в свободном состоянии в жидкой среде. Клетки богаты цитохромами, которые придают клеточной суспензии окраску от желтоватой до красноватой; других пигментов нет. Облигатные хемолитотрофы; окисляют аммиак до нитрита и фиксируют СО2 для удовлетворения потребностей в энергии и углероде. Выделены только из почв. Строгие аэробы. Температурные пределы для роста 15-30 ?C, пределы pH 6,0-8,2. Найдены в почвах Суринама (Южная Америка), Галапагосских островов, юго-восточной Африки, странах СНГ.
Род Nitrosovibrio. Изогнутые тонкие палочки. В начале стационарной фазы роста наблюдаются сферические формы. Подвижные клетки обладают 1-4 жгутиками, полярными и субполярными. Развитые внутрицитоплазматические мембраны отсутствуют, однако наблюдаются инвагинации мембраны в протоплазму. Все изоляты Nitrosovibrio выделены из почв или камней зданий.
Род Nitrococystis. Отличается тем, что бактерии этого рода способны образовывать зооглеи - кокковидные формы микробов, окруженные общей капсулой (Определитель бактерий Берджи, 1997).
Таблица 1.
Описание типовых культур нитрифицирующих бактерий (Горленко, 1977).
Бактерии |
Форма клетки |
Размер, мкм |
Способ деления |
Тип внутренних цитомембран |
жгутикование |
ОкислениеNO2--NO3- |
ОкислениеNH4+-NO2- |
|
Nitrosolobus multiformis |
лопастная |
1,0*1,5 |
Дробление |
В виде перегородок |
перитрих |
- |
+ |
|
Nitrosococcus oceanus |
Кокк |
1,8-2,2 |
Деление |
Пластинчатый |
» |
- |
+ |
|
Nitrosococcus mobilis |
» |
1,5-1,8 |
» |
То же + тубулярные |
2 субполярных |
+ |
- |
|
Nitrospina gracilis |
Тонкая палочка |
0,3-0,4*2,7-6,5 |
» |
Отсутствуют |
Нет |
+ |
- |
|
Nitrosovibrio tenuis |
Вибрион |
0,3-0,4*1,1-3,0 |
» |
Отсутствуют или тубулярные |
1-4 субполярных |
_ |
+ |
|
Nitrobacter winogradskii |
Грушевидная |
0,6-0,8*1,0-2,0 |
Почкование |
Периферические-Пластинчатые |
1 |
+ |
- |
|
Nitrosomonas europeus |
палочка |
0,8-0,9*1,0-2,0 |
деление |
То же |
1-2 |
- |
+ |
|
Nitrosospira briensis |
Спиральная |
0,2-0,4*1,0-5,0 |
» |
отсутствуют |
Перитрих |
- |
+ |
В кислых почвах автотрофная нитрификация подавлена, этот процесс замещается окислением аммиака или других восстановленных азотсодержащих веществ до нитритов и нитратов гетеротрофными микроорганизмами -- грибами и бактериями. Это явление получило название гетеротрофной нитрификации, так как образование нитратов сопровождается параллельно идущим окислением органических веществ (Бабьева, Зенова, 1989).
Условия, влияющие на процесс нитрификации.
Некоторые из условий, влияющих на рост нитрифицирующих бактерий, например необходимость углекислых солей кальция или магния, подавляющее действие многих органических соединений и солей аммония, были отмечены уже Виноградским и его школой. Впоследствии эти данные пополнил Мейергоф, подробно изучавший оба типа нитрифицирующих бактерий. Он считал, что влияние углекислых солей зависит от их буферного действия, и показал необходимость, установив чрезвычайную чувствительность этих микроорганизмов к изменениям концентрации водородных ионов (Стефенсон, 1951).
На процесс нитрификации положительно сказывается присутствие кислорода. В обрабатываемых почвах процесс нитрификации протекает более интенсивно.
Нитрификация замедляется или прекращается в том случае, если почва является слишком холодной, слишком сухой или при загрязнении.
В загрязненных почвах бурно развиваются микроорганизмы, осуществляющие распад гнилостных продуктов, а нитрификация подавлена. При накоплении в почве аммиака, образующегося при распаде органических загрязнителей, начинается развитие нитрификаторов. Интенсивный процесс нитрификации говорит о завершении распада органических загрязнителей и активно идущем самоочищении почвы.
В почвах азотистая кислота не накапливается, поскольку и Nitrosomonas и Nitrobacter встречаются в одной среде, находятся в своеобразном симбиозе. Нитрификаторы способны осуществлять хемосинтез, то есть создавать органическое вещество из углерода диоксида и воды за счет химической энергии окисления аммиака до азотистой кислоты и азотистой до азотной кислоты (Роль микроорганизмов в круговороте газов в природе, 1979; Асонов, 1989; Бабьева, Зенова, 1989).
Нитрификаторы чувствительны к кислой среде. Для окисления аммиака оптимальное течение рН лежит в пределах 8,5-8,7, а для окисления нитрита - в пределах 8,3-9,3. Для 0,2М раствора двууглекислого натрия рН равно 9,15; поэтому очевидно, что одновременное присутствие углекислого натрия и свободный доступ углекислоты обеспечивают поддержание кислотности, наиболее благоприятствующей развитию этих бактерий. С точки зрения почвенного режима важно отметить, что микроорганизмы, выделенные из торфяников (рН 4,6), оказываются более устойчивыми к кислотам и продолжают нитрифицировать до тех пор, пока рН не упадет ниже 4,1 (Стефенсон, 1951).
Высокая оптимальная щелочность и быстрое падение активности по обе стороны от этого оптимума заставляют предположить, что как в кислой, так и в щелочной области начинают действовать вторичные подавляющие факторы. Согласно предположению Мейергофа, быстрое падение в щелочной области, вероятно объясняется проникновением в клетку свободного аммиака.
Как и многие другие автотрофные бактерии, нитрифицирующие микроорганизмы строго специфичны в отношении окисляемого ими материала: кроме того, что Nitrobacter не оказывает никакого действия на аммиак, а Nitrosomonas - на нитрит, ни тот, ни другой не могут использовать в качестве источника энергии ни сульфиты, ни фосфиты, ни какие-либо углеродные соединения (Мишустин, 1972).
В результате жизнедеятельности нитрифицирующих бактерий на 1 га почвы может накапливаться за год до 300 кг азотной кислоты (Роль микроорганизмов в круговороте газов в природе, 1979; Асонов, 1989; Бабьева, Зенова, 1989).
1.2 Влияние загрязняющих веществ на почвенные микроорганизмы
Ксенобиотики - чужеродные для организмов соединения (пестициды, ПАВ, красители, лекарственные вещества и пр.), которые практически не включаются в элементарные циклы углерода, азота, серы или фосфора. Ксенобиотики временно или постоянно накапливаются в окружающей среде и вредно влияют на все живое (Волова, 1997).
Механизм действия антимикробных соединений неодинаков: одни (окислители, фенолы, ПАВ, ионы водорода) влияют на функцию пограничных структур клетки, иногда вызывая ее повреждение, другие (тяжелые металлы, цианиды, некоторые окислители, спирты) нарушают структуру и функции белков, в том числе и ферментов; третьи, проникая в клетку, способны реагировать с ДНК (азотистая кислота, некоторые антибиотики, окись этилена). Наконец, есть вещества, обладающие сходной структурой с важнейшими метаболитами клетки. Их называют антиметаболитами, поскольку они способны замещать метаболиты в ферментных реакциях, тем самым прекращая процесс (Чурбанова, 1987).
1.2.1 Воздействие ПАВов на почвенные микроорганизмы
Среди химических загрязнений специфическими свойствами обладают поверхностно-активные вещества (ПАВ), широкое применение которых в промышленности, сельском хозяйстве и в быту обусловило появление их в природной среде. ПАВ, выполняя роль эмульгаторов, вспенивателей, смачивателей, понижают поверхностное натяжение на границе вода-воздух, вода - твердые тела (Чурбанова, 1987). В подавляющем большинстве попадающие в воду и почву ПАВ являются синтетическими (СПАВ) (Экология города, 2000).
СПАВ представляют собой обширную группу соединений, различных по своей структуре, относящихся к разным классам (Бутовский, 2005). Несмотря на различную химическую структуру у всех СПАВ, в молекуле имеется гидрофильная и гидрофобная группы. Гидрофильная группа может быть представлена сульфонатом, сульфатом, карбоксилатом или фосфатом; гидрофобная группа представлена углеродным радикалом, который у большинства сурфактантов, производимых в промышленных масштабах, является неразветвленным. Радикал представляет собой насыщенный или ненасыщенный алифатический алкил или алифатическо-ароматический алкил (в молекуле алкилбензеновых сульфонатов (ЛАС)). В ароматических СПАВ, содержащих кольцо, положение этого кольца на углеродной цепочке (радикале) оказывает большое влияние на свойства, в т.ч. сорбцию, разложение и токсичность молекулы. Общая структура молекулы АСПАВ и особенно длина гидрофобной группы определяют физико-химические свойства и пути превращения соединения.
СПАВ более или менее легко водорастворимы благодаря наличию гидрофильной группы. Гидрофобная группа (углеродный радикал) отталкивается водой, приводя к концентрированию молекул на поверхностях или пограничных зонах (в т.ч. твердых веществ). Увеличение длины гидрофобной группы приводит к снижению водорастворимости. Поведение анионактивных сурфактантов зависит от величины рН, поскольку сурфактанты способны вступать в реакции и как кислоты и как основания (Бутовский, 2005). Даже при очень небольших концентрациях в водоёме, не превышающих десятых долей миллиграммов на 1 л, СПАВ приводят к обильному пенообразованию на большой площади поверхности воды, особенно в местах, где течение задерживается конфигурацией русла или какими-либо перегрождающими устройствами (Чурбанова, 1987).
СПАВ оказывают токсическое воздействие на гидробионты и человека, ухудшают газообмен водного объекта с атмосферой, снижают интенсивность внутриводоемных процессов, ухудшают органолептические свойства воды. СПАВ относятся к медленно разлагающимся веществам (Экология города, 2000).
ПАВ стали использоваться практически во всех отраслях промышленности и сельского хозяйства. Это послужило основанием для бурного роста промышленного производства синтетических ПАВ. С 1950 г. их мировое производство выросло с нескольких сотен тысяч тонн до примерно 10 млн. т.
В России в конце 1980-х годов ежегодные объемы производства ПАВ превышали 450 тыс. т, ассортимент насчитывал более 150 наименований (по химической структуре). На производство 1 млн. т синтетических моющих средств (примерно 4 кг на человека в год при гигиенической норме 10-12 кг) использовалось примерно 150 тыс. т ПАВ, остальные 300 тыс. т применялись в промышленности и сельском хозяйстве (Яблоков, 1983).
Для промышленного использования СПАВ получают из двух видов сырья: нефти, жиров и побочных продуктов. Кроме того, СПАВ синтезируют из углеводородов и спиртов в нефтяной промышленности. Конечный продукт имеет в основе природные жирные кислоты (животные и растительные масла и жиры, побочные продукты лигнина) и является продуктом нейтрализации натрием, калием или аминовыми солями (Бутовский, 2005).
Преобладающее большинство ПАВ (более 95%) относится к 3-му и 4-му классам опасности (умеренно- и малотоксичные). Пороговые концентрации их биологического действия, как правило, в 30-50 раз выше установленных ПДК (0,1-0,5мг/л), что обеспечивает надежную защиту человека и окружающей среды. Коммунальные стоки содержат в среднем от 2 до 5 мг/л ПАВ (в 4 - 50 раз выше ПДК). В промышленных стоках содержание ПАВ может достигать от 10 до 100мг/л.
В случае если уровни загрязнений ПАВ в воде превышают ПДК в 10-20 раз, это приводит к ухудшению, в первую очередь, органолептических качеств воды, не повышая существенно гигиенической опасности по ее токсичности для человека, животных и птиц. Однако при этом возможно появление на поверхности воды пены, в которой концентрируются и активно размножаются полезные и патогенные микроорганизмы.
Они распространяются течением и ветром на значительные расстояния, и тем самым стабильные молекулы ПАВ создают угрозу здоровью населения. Присутствие ПАВ повышает также степень опасности других вредных веществ, находящихся в воде и почве при последующих их перемещениях по пищевым цепочкам.
Известно отрицательное влияние ПАВ и на неорганическую среду - интенсивная эрозия почв, повышение коррозии металлов, ускорение процессов старения железобетонных конструкций и т. д. (Остроумов, 1998)
Бактерии и грибы способны производить так называемые био-СПАВ, многие из которых запатентованы и используются в коммерческих целях. Термин био-СПАВ применим только к биологически активным соединениям со СПАВ-свойствами, которые непосредственно получены биологическим способом. Цель производства био-СПАВ с помощью микроорганизмов, растущих на нерастворимом органическом субстрате, заключается в увеличении растворимости и усилении биодоступности субстрата.
Среди органических загрязнителей техногенного происхождения анионоактивные синтетические поверхностно-активные вещества (АСПАВ) занимают особое место.
АСПАВ известны прежде всего как загрязнители водной среды, куда поступают в значительных количествах с хозяйственно-бытовыми (использование синтетических моющих средств в быту) и промышленными сточными водами (текстильная, нефтяная, химическая промышленность, производство синтетических каучуков), а также со стоком с сельскохозяйственных угодий (в качестве эмульгаторов входят в состав инсектицидов, фунгицидов, гербицидов и дефолиантов).
Строго говоря, в состав анионактивных СПАВ входят мыла (карбоксилаты), которые составляют значительное потребление СПАВ (например, в Дании 20% от общего количества СПАВ в 1986-1989 гг.). Карбоксилаты, однако, легко разлагаются и не представляют угрозы для наземных экосистем.
АСПАВ после растворения в воде характеризуются как вещества с отрицательно заряженной углеродной цепочкой в молекуле.
АСПАВ (исключительно мыла) преобладают на рынке, составляя 72% от общего количества СПАВ, используемых в Дании. Современное мировое потребление СПАВ оценивается в 15 млн т/год. При этом 50%, т.е. 8,3 млн т/год составляют мыла. Расчетное потребление АСПАВ в США и Западной Европе в 1987 г. составляло 1319 тыс. т при ежегодном увеличении потребления на 2% (Бутовский, 2005).
В исследованиях, выполненных многими авторами, показано существенное влияние этих веществ практически на все виды живых организмов, растений и человека. В животном организме даже незначительные концентрации ПАВ изменяют проницаемость мембран, оказывают влияние на кумуляцию различных веществ, в том числе токсических, изменяют токсичность последних. Заслуживает внимание также влияние ПАВ на обмен в организме аминокислот, глюкозы и других веществ (Остроумов, 1986).
Многие СПАВ обладают антимикробными свойствами.
Известно, что антимикробное действие зависит, в первую очередь, от их химического строения вещества, а также строения клеток микроорганизмов. Первым барьером на пути взаимодействия микроорганизмов с антимикробными веществами являются клеточная стенка и цитоплазматическая мембрана, которые обеспечивают осмотический барьер и избирательное проникновение веществ в клетку. Клеточные стенки разных микроорганизмов имеют различное строение, благодаря чему избирательно взаимодействуют с различными антимикробными веществами и обладают неодинаковой устойчивостью к воздействию химических соединений разных классов. Так, для катионных ПАВ мишенями являются карбоксильные группы аминокислот и кислых полисахаридов бактерий, а для анионных ПАВ -- кетонные группы белков, аминогруппы соответствующих углеводов и липидов, а также фосфатные группы тейхоевых кислот (Остроумов, 2000). Конечным результатом действия ПАВ на микробную клетку является деструктуризация клеточной оболочки (Ставская, 1981).
В естественных условиях микробные клетки обладают общим отрицательным зарядом, поэтому наиболее широкое практическое применение нашли катионные ПАВ, которые губительно действуют на грамположительные и грамотрицательные бактерии, дрожжевые и нитчатые грибы. Но в клетке также имеются молекулы, несущие положительные заряды, поэтому и анионные ПАВ губительно действуют на микроорганизмы, но при более высоких концентрациях.
Имеются также различия и в действии ПАВ на грамположительные и грамотрицательные микроорганизмы, а также на прокариотические и эукариотические клетки. Это связано с особенностями структурно-химической организации стенок и мембран клетки, а также ее цитоплазматического содержимого.
Следует учитывать, что микроорганизмы имеют весьма эффективные механизмы защиты от антимикробных средств, причем естественные различия в устойчивости различных микроорганизмов к антибактериальным средствам могут достигать сотен и даже тысяч раз.
Эффективность действия различных антимикробных средств на микроорганизмы в первую очередь зависит от их способности снижать проницаемость клеточной стенки и проникать внутрь клетки. В связи с этим большой интерес представляют вещества, увеличивающие пассивный транспорт и проницаемость мембран. Сильное дестабилизирующее действие на мембраны клеток оказывают низкомолекулярные катионные ПАВ (цитилпиридиний хлорид, хлоргексидин, алкилди-метил бензил аммоний хлорид) (Остроумов, 2000).
Например, цетилпиридинийхлорид токсичен для сапрофитных бактерий в концентрации 0,05 мг/г. Анионоактивные и неионогенные вещества обладают гораздо менее выраженным действием на микрофлору. Алкилсульфаты даже в концентрациях 500-2000 мг/л не оказывают ни бактерицидного, ни бактериостатического действия на протеолитическую микрофлору, разрушающую азотистые вещества до более простых - полипептидов, диаминовых кислот и моноаминов, а затем до аммиака, углекислоты и воды (Орлов, 2002).
Анионные ПАВ влияют главным образом на Г «+» бактерии. Активность анионных веществ усиливается при снижении рН (Ставская, 1981).
Моющее средство «Новость» в концентрациях 1-50 мг/л стимулирует развитие сапрофитной микрофлоры. АБС в концентрациях 1000 мг/л оказывает сильное бактерицидное действие на S.aureus. Лаурилсульфат в концентрации 2000-10000 мг/л угнетает рост S.aureus и S.lutea в сточных водах (Орлов, 2002); в концентрации 2% действует литически на кишечную палочку (Ставская,1981).
По данным Корш и др. добавка алкилсульфата в концентрации 0,5 мг/л не влияет на число сапрофитных бактерий, при 5 мг/л через 48 ч оно повышается более чем в 2 раза. При концентрациях алкилсульфата 50 мг/л число бактерий через 144 ч возрастает до 250000, а при 500 мг/л - до 1500000. Следовательно, алкилсульфат стимулирует размножение микрофлоры, причем, тем сильнее, чем выше его концентрация и более длителен срок пребывания бактерий в растворе ПАВ.
Т.о., ПАВ практически не тормозят развития микрофлоры в испытанных концентрациях; при концентрациях 2-10 мг/л и выше они стимулируют размножение бактерий, причем различные вещества - в разной степени. Причиной такой стимуляции, очевидно, является утилизация ПАВ микрофлорой. Так, в частности биологически «мягкие» ПАВ (алкилсульфаты) стимулирую размножение бактерий в наибольшей степени. Кроме того, ПАВ, изменяя проницаемость мембран живых клеток, возможно, способствует лучшей усвояемости микробами пищевых веществ, содержащихся в воде (Орлов, 2002).
Механизм действия АСПАВ заключается в разрушении биологических мембран и денатурации белков. У ароматических АСПАВ, в т.ч. ЛАС, местоположение бензольного кольца влияет на токсичность. Терминальное положение кольца приводит к более высокой токсичности по сравнению с центральным положением. Для большинства АСПАВ токсичность возрастает с увеличением длины углеродной цепочки, в то же время растворимость сохраняется (Бутовский, 2005).
АСПАВ антропогенного происхождения попадают в почву вместе со сточными водами. Сточные воды могут использоваться для орошения сельскохозяйственных земель в регионах, испытывающих дефицит воды.
В европейских странах были рассчитаны концентрации ЛАС, содержащиеся в почвах. В Швейцарии сообщают о концентрации 0,15 мг/кг почвы. Berna сообщают о том, что концентрации ЛАС в Великобритании составляли менее 1 мг/кг почвы и 0,3-1,3 мг/кг - в Испании, Германии и Швейцарии после обработки почвы сточными водами.
Ряд факторов оказывает влияние на распределение и судьбу сурфактантов: фотолиз, гидролиз, ионизация, окисление/редукция, обмен лигандами, адсорбция и биоразложение. Однако только адсорбция и биоразложение имеют практическое значение.
ПДК ПАВ. В связи с незначительным количеством данных о действии СПАВ на почвообитающие организмы критерии качества почвы не были установлены. Данные тестов, проведенных в водной среде, выявили, что уровни токсичности СПАВ были того же порядка, что и в наземной среде. Поэтому с учетом существующих различий в токсичности соответствующих СПАВ в водной среде и почве рекомендуемый критерий качества почвы для отдельных соединений в Дании составляет 0,5 мг/кг (Бутовский, 2005).
Действие ПАВ на нитрификаторов.
Наиболее изучено влияние ПАВ на процесс нитрификации. Результаты изучения действия ПАВ на процессы нитрификации показали, что недействующие концентрации ПАВ лежат в пределах 0,1-15 мг/кг. Концентрации веществ, которые тормозят эти процессы, составляют 2-50 мг/кг. Так, например, сульфонол сланцевый подавляет нитрификацию в концентрации 2 мг/л (кг), алкилсульфонат - 5 мг/л (кг), а некаль - в концентрации 50 мг/л (кг).
С практической точки зрения важно отметить, что величина максимальных недействующих концентраций ПАВ по влиянию на нитрификацию не ниже величин, допустимых по влиянию этих веществ на органолептические свойства воды (Орлов, 2002).
1.2.2 Воздействие серы на микроорганизмы почв
В составе Земли содержится в целом до 2,74% серы. Элементарная сера составляет 0,026% всего количества элементов и 0,0885% элементов в морской воде (Бусев, 1975).
Самородная сера встречается в самой верхней части земной коры и на ее поверхности, где она осаждается в виде возгонов на стенках кратеров, в трещинах пород, иногда изливаясь в жидком виде, возникает в результате неполного окисления сероводорода или как продукт его реакции с оксидом серы (IV). Самородная сера также образуется при разложении сернистых соединений металлов, главным образом пирита. Месторождения самородной серы, образовавшейся осадочным путем, наиболее распространены в природе и имеют большое промышленное значение. Всего известно свыше 200 минералов серы (Добровольский, 1984).
Сера представляет собой один из так называемых циклических элементов, миграция которых происходит в системе суша -- океан -- атмосфера -- суша. Глобальный биогеохимический цикл серы представляет собой сложную и разветвленную сеть химических и биохимических реакций, в которых сера принимает участие в виде соединений, обладающих различным агрегатным состоянием. Глобальный цикл серы включает круговорот элемента в литосфере, почве, континентальных водоемах, атмосферный и океанический циклы (Волков, 1983).
Среднее массовое содержание серы в почвах составляет 0,05%, большая часть находится в виде органических соединений. Содержание серы в песчаниках 2800 мг/кг, в сланцевых глинах - 2600, в известняках--1100 мг/кг. Запасы серы в метровом слое составляют (в т/га): в подзолистых почвах 0,1--1,6, в серых лесных до 2,5, в черноземах 3--45, в торфянистых и торфяных до 10 (Чертов,1982). Основная часть органической серы попадает в почву из растительных, животных и микробиальных депо в белковой форме или в виде аминокислот, которые расщепляются и трансформируются в состояние, пригодное для реабсорбции растениями в виде сульфата сера может входить в почвенно-растительную систему непосредственно из атмосферы. В основном, растения формируют восстановленные серные соединения из сульфатов, животные формируют сульфаты из этих восстановленных соединений серы. Содержание серы в фитомассе планеты составляет 0,005 %, в зоомассе 0,16 %. Содержание серы в золе составляет (в %): для бактерий 1,2; для водорослей 12,7; для грибов 2,3; для лишайников 2,9; для мхов 2,3; для папоротников 2,4; для хвощей 2,2; для покрытосемянных однодольных и двудольных 2,4 и 1,7--5,0 соответственно (Добровольский, 1984).
Сера присутствует в земной коре главным образом в литосфере и морских донных осадках в составе пирита и гипса. Важный резервуар серы представляет собой морская вода, поскольку она содержит сульфат. Континентальные ресурсы серы значительно меньше; здесь наиболее важный пул серы содержится в почве и наземной биоте. Озера и реки имеют лишь небольшое значение как резервуары серы. В атмосфере также присутствуют соединения серы, главным образом карбонилсульфид, сульфат (в основном в аэрозолях, морских брызгах), диоксид серы, диметилсульфид и сероводород.
В общем цикле серы существенную роль играет антропогенный фактор, а именно сжигание угля и нефти, содержащих серу, а также термическое окисление компонентов сульфидных руд; эти процессы приводят к выделению серы в атмосферу в виде SО2. Более 50% общего выделения серы с поверхности суши обусловлено деятельностью человека (Волков, 1983).
С каждым годом в результате хозяйственной деятельности человека в атмосферу поступает все больше газообразных соединений серы. Основное количество этих загрязнений связано со сжиганием угля и нефтепродуктов, причем 80 % -- из топлива, потраченного в промышленности и в быту, 19%--в металлургической промышленности и при нефтеочистке и 1 % за счет автотранспорта. Большая часть (96 %) серы поступает в атмосферу в виде оксида S (IV), около 3 %--в виде сульфатов и около 1%--в виде различных восстановленных соединений: сероводорода, сероуглерода, оксидсульфида углерода, меркаптанов, диметилсульфида и некоторых других серусодержащих веществ. По приблизительным расчетам, общее количество выбросов SО2 из антропогенных источников в настоящее время достигает 120-106 т в год, причем на долю Северного полушария приходится 95 % этого количества. В связи с ежегодным ростом потребления топлива по ряду прогнозов эта величина к 2000 г. может достигнуть 275 -400* 106 т (Пастухов, 1982).
Загрязнение почвы серой снижает ее кислотность вследствие деятельности серобактерий, окисляющих серу в серную кислоту. Под действием серы увеличивается содержание активного алюминия и железа, уменьшается дыхательная активность почвы, количество активных бактерий и грибов, снижается способность разлагать целлюлозу и мочевину. К ней также чувствительны казеин- и крахмалразрушающие микроорганизмы (Хотько, 1982).
Сера и ее соединения оказывают серьезные негативные эффекты воздействия на почвы (закисление) и воды пресных водоемов, ускорение коррозионных процессов металлоконструкций, разрушение конструкций из известняка. Закисление почв и воды водоемов отрицательно влияет на растительный и животный мир. Так, в результате дальнего переноса соединений серы многие реки и озера Норвегии и Швеции к настоящему времени потеряли рыбопромысловое значение. Плодородие почв при закислении резко снижается. Особенно сильно эффект закисления проявляется в зонах кислых почв (например, в северо-западной и центральных зонах европейской территории России) (Никитин, 1986).
Атмосферная сера в виде, главным образом, оксида серы (IV) совместно с оксидами азота и другими ингредиентами при взаимодействии с водяными каплями облаков и выпадающего дождя образует кислоты, соли кислот, что приводит к образованию кислотных дождей с рН < 4,5. В связи с тем, что общее количество антропогенной серы в ежегодной эмиссии загрязняющих веществ в атмосферу все возрастает, а также вследствие трансграничного переноса на значительные расстояния.
Кислотные дожди оказывают как непосредственное вредное действие на биоту, осаждаясь на зеленой массе растений, так и косвенное, закисляя почвы и водоемы (Израэль, 1983).
При закислении почвы снижается количество доступных питательных веществ (кальций, магний, марганец) и, соответственно, плодородие. Закисление снижает скорость разложения органических остатков, поскольку большинству бактерий, грибков и водорослей необходима нейтральная среда, и уменьшает интенсивность круговорота органических веществ в системе почва -- растение. Снижается продуктивность азотофиксирующих бактерий: при рН < 5,0 азотобактер полностью погибает, что приводит к ограничению поступления связанного азота в организм растения и снижению скорости его роста (Израэль, 1983).
Изменение физической структуры почвы (снижение грануляции, слипание частиц, уплотнение почвы и резкое падение воздухопроницаемости) негативно сказывается на жизнедеятельности корневой системы. Снижение рН почвенного раствора приводит к высвобождению растворимой формы алюминия, который подавляет клеточное деление в корнях, повреждает разлагающие полисахариды ферменты, снижает клеточное дыхание, нарушает транспорт и возможность использования кальция, магния, воды; из-за связывания в труднорастворимую соль СaSО4 возникает дефицит доступного кальция. От недостатка кальция корни перестают расти, утолщаются и ослизняются (Израэль, 1983).
В то же время увеличивается подвижность тяжелых металлов, которые усваиваются растениями, а чрезмерное поступление в организм растения алюминия, железа и марганца блокирует поступление фосфора, что наиболее губительно сказывается на всходах и сеянцах древесных пород. Все эти изменения, вызванные повышением кислотности, приводят к снижению всхожести, ухудшению прорастания и, в конечном счете, к блокированию процессов лесовозобновления (Чертов, 1982).
Листья листопадных пород не обнаруживают внешних признаков повреждения при содержании в них 1 % серы (Кулагин). Хвоя сосны при общей концентрации серы 220--550 мкг/г сухой массы не обнаруживает признаков повреждения; при 660--850 верхушка хвои желтеет на 1 мм, при 900--1200 на 2,5 мм, при 1250--1550 на 15 мм (это начальные признаки отмирания); при 1600--1950 мкг/г вся хвоя желтая, кончик высыхает на 3--5 мм; при 2000--2500 мкг/г хвоя продолжает высыхать (некротизация) и отпадать. При нарастании содержания серы в хвое в первую очередь поражаются хлоропласты: упорядоченная структура их внутренних мембран (тилакоиды) разрушается (Ниомаркаи и др., 1982).
ПДК для сернистых соединений в почве разработаны Львовским НИИ эпидемиологии и микробиологии МЗ УССР (И.Н.Бескопыльный, А.А.Деканоидзе). ПДК для элементарной серы в почве с учетом фона составляет 160,0 мг/кг (СанПин 42-128-4433-87).
Подобные документы
Понятие и принципы классификации прокариот, их разновидности и отличительные признаки. Краткая характеристика и история исследований хемолитотрофных бактерий. Описание бактерий семейства Nitrobacteriaceae, значение в природе процесса нитрификации.
курсовая работа [249,1 K], добавлен 15.08.2015Приоритетные загрязнители окружающей среды и их влияние на почвенную биоту. Влияние пестицидов на микроорганизмы. Биоиндикация: понятие, методы и особенности. Определение влажности почвы. Учет микроорганизмов на различных средах. Среда Эшби и Гетчинсона.
курсовая работа [7,6 M], добавлен 12.11.2014Характеристика основных показателей микрофлоры почвы, воды, воздуха, тела человека и растительного сырья. Роль микроорганизмов в круговороте веществ в природе. Влияние факторов окружающей среды на микроорганизмы. Цели и задачи санитарной микробиологии.
реферат [35,7 K], добавлен 12.06.2011Санитарно-показательные микроорганизмы для почвы. Требования, предъявляемые к водопроводной воде. Микрофлора полости рта взрослого. Санитарно-гигиеническое состояние воздуха. Микроорганизмы промежности. Химические факторы, действующие на бактерии.
тест [29,4 K], добавлен 17.03.2017Состав и направления деятельности кафедры микробиологии и иммунологии. Принципы работы в микробиологической лаборатории. Подготовка посуды и инструментов. Техника отбора проб, посева и приготовления питательных сред. Методы идентификации микроорганизмов.
отчет по практике [28,8 K], добавлен 19.10.2015Изучение морфолого-физиологических свойств чистых культур целлюлозолитических микроорганизмов. Изучение усвоения углеводов: сорбита, сахарозы, маннита, лактозы, мальтазы, глюкозы. Посев на среду Гисса. Методы выделения культуры бактерий из короедов.
реферат [1012,3 K], добавлен 11.03.2012Характеристика силикатных бактерий, их морфологические признаки. Потребность в кремнии живыми организмами и растениями. Методы и материалы выделения. Исследование морфологических свойств колоний. Влияние температуры среды на жизнедеятельность колоний.
курсовая работа [1,1 M], добавлен 25.12.2012Биологическая характеристика культур Yersinia enterocolitica. Изучение биохимических особенностей и лизогенности у культур йерсиний выделенных в лечебных учреждениях Чеченской Республики. Изучение морфологии бактерий методом световой микроскопии.
контрольная работа [30,8 K], добавлен 20.11.2014Изучение морфологии, ультраструктуры, физиологических свойств и таксономического положения термофильных метанобразующих бактерий. Анализ особенностей дыхания, питания, размножения и энергетических процессов. Влияние температуры на активность бактерий.
реферат [215,6 K], добавлен 31.01.2015Маслянокислое брожение, процесс анаэробного разложения углеводов, пептонов, белков, жиров с образованием различных кислот, в том числе и масляной. Выделение маслянокислых бактерий садовой городской почвы г. Астрахани и изучение их морфологических свойств.
курсовая работа [72,4 K], добавлен 05.06.2009