Проблема лечения имплант-ассоциированной инфекции позвоночника (обзор литературы)

Размещено на http://www.allbest.ru/

Проблема лечения имплант-ассоциированной инфекции позвоночника (обзор литературы)

Е.Я. Кочнев, И.А. Мещерягина, А.В. Бурцев, А.М. Ермаков



Аннотация

Проведенный анализ литературных данных показал отсутствие единого подхода к пониманию гнойно-воспалительных осложнений при стабилизирующих оперативных вмешательствах на позвоночнике. Существующие методики лечения направлены на купирование инфекционного процесса. При этом правильная оценка поражения является предопределяющим фактором в успешном лечении. Существуют различные подходы как по тактике, так и по технологиям применения. Однако недостаточная доказательность эффективности методик лечения свидетельствует о нерешенности данной проблемы. В будущем требуется проведение систематических обзоров и метаанализа для определения потенциальных методов выбора при лечении имплант-ассоциированных гнойных осложнений позвоночника с позиции доказательной медицины. Обзор литературы проводился из баз данных РИНЦ, Scopus, Web of Scince, PubMed с ретроспективой с 1991 по 2020 г.

Ключевые слова: позвоночник, инфекция, инфекция в области хирургического вмешательства, остеомиелит.



Abstract

E. Ya. Kochnev, I. A. Meshcheryagina, A. V. Burtsev, A. M. Ermakov

PROBLEMS OF IMPLANT-ASSOCIATED SPINE INFECTION TRWATMENT (LITERATURE REVIEW)

The analysis of the literature data showed the lack of a unified approach to understanding the pyoinflammatory complications during stabilizing surgical interventions on the spine. Existing treatment methods are designed to stop the infection process. In this case, the correct assessment of the lesion is decisive in successful treatment. There are various approaches both in tactics and in application technologies. However, insufficient evidence of the effectiveness of the treatment methods indicates the unresolved nature of this problem. In the future, systematic reviews and meta-analyzes are required to determine potential methods of choice in the treatment of implant-associated purulent complications of the spine from the standpoint of evidence-based medicine. A review of literature was conducted from the databases of the RSCI, Scopus, Web of Scince, PubMed with a retrospective from 1991 to 2020.

Keywords: spine, infection, surgical site infections, osteomyelitis.



Введение

Актуальность исследования

В настоящее время риск возникновения гнойных осложнений инструментальной хирургии позвоночника может достигать 20 % [1-3]. Лечение этих пациентов зачастую требует повторного хирургического вмешательства, так как в большинстве случаев (до 65 %) наблюдаются рецидивы [4], что обусловливает необходимость повторных оперативных вмешательств [5-7], существенно удорожающих лечение. Так, согласно пятилетней статистике в США стоимость лечения этих пациентов составляет 64,356-88,353 долл., в то время как лечение пациентов без осложнений - 47,366 долл. [1]. В большинстве случаев хирургические вмешательства при гнойно-воспалительных осложнениях носят неотложный характер. В связи с чем многократно увеличивается нагрузка на систему здравоохранения, что особенно ощутимо в ситуации пандемии [8].

Цель работы - проанализировать современное состояние проблемы имплант-ассоциированной инфекции позвоночника по данным литературы.



Понятие имплант-ассоциированной инфекции позвоночника. В настоящее время нет однозначного и общепризнанного понимания относительно имплант-ассоциированной инфекции. Так, существуют терминологические разновидности для обозначения неспецифического воспалительного процесса в области оперативного вмешательства: инфекция в области хирургического вмешательства, дисцит, спондилодисцит, псоас-абсцесс, паравертебральный абсцесс, эпидуральный абсцесс, эпидурит и др. [9-11]. Об этом же свидетельствует положение данного инфекционного поражения между инфекцией в области хирургического вмешательства и остеомиелитом позвоночника в зависимости от глубины поражения [4, 12].

Исторически первой принято считать классификацию Thalgott J. S. с соавт. 1991 г. В ее основе лежит дифференцирование по стадии тяжести инфекции и иммунного ответа организма [13]. Позже появились классификации, основанные на глубине и времени возникновения инфекции. По глубине выделяют поверхностную (поражается кожа и подкожно-жировая клетчатка) и глубокую (поражаются все слои тканей, располагающиеся глубже) инфекции. Наиболее благоприятна для лечения поверхностная инфекция [3, 6]. По времени возникновения выделяют раннюю инфекцию, когда развитие гнойного процесса отмечается менее трех месяцев с момента операции. Отсроченной называют инфекцию, возникшую от 3 месяцев до 24 месяцев после операции, поздняя же возникает спустя более 24 месяцев с момента операции [7]. От времени возникновения может меняться тактика лечения [4].

Клинические проявления инфекции в области хирургического вмешательства далеко не всегда специфичны, особенно если дело касается инфекции, возникающей после полного заживления операционной раны. Однако клинически выделяют локальную болезненность, отечность, гиперемию, расхождение краев раны, гнойное отделяемое из раны, появление свищей, повышение температуры тела как общей, так и локальной [3, 9, 14].

Послеоперационно возникшую ликворею необходимо обязательно дифференцировать с гнойным процессом. Большое значение имеют изменения лабораторных показателей крови: уровня белка, глюкозы и лейкоцитарной формулы. При подозрении на наличие гнойного процесса рекомендовано микробиологическое исследование отделяемого ликвора с окрашиванием по Граму и культуральный метод исследования [10, 11, 15].

Диагностика гнойных осложнений в хирургии позвоночника является отдельной темой для обсуждения. К самым ценным инструментальным методам диагностики относятся магнитно-резонансная и компьютерная томография и ее разновидности. Лабораторными методами, наиболее ценными для клинициста, являются: скорость оседания эритроцитов, С-реактивный белок, лейкоцитарная формула. На сегодня специфичных маркеров инфекции позвоночника не существует, проводятся исследования касательно диагностической ценности некоторых других маркеров [9, 11].

Принципы лечения. Лечение подразумевает применение нескольких направлений (или подходов, принципов), среди которых основное значение отводится: удалению пораженных гнойным процессом тканей; стабилизации при наличии признаков нестабильности, дренированию раны; антибиотико-терапии и восстановительному лечению.

Наиболее простой и дешевой является однократная процедура санации, применяемая в ранние сроки развития послеоперационных периимлантных инфекций. Благодаря чему обеспечивается удаление нежизнеспособных мягких тканей, микробиологическая идентификация патогена с последующей точно подобранной антибиотикотерапией [4, 11, 16]. Для поздних инфекций санационные мероприятия показали низкую эффективность, что связано с образованием стойких биопленок на элементах металлоконструкции [4, 10].

Удаление имплантов обеспечивает лучшие исходы в случаях, осложнившихся остеомиелитом или абсцессом. Сохранение имплантов приводит к высоким рискам повторных санационных операций, агрессивному течению с прогрессирующим разрушением кости и процентом несостоявшегося спондилодеза в 75 % случаев [17].

Замена металлоконструкции является альтернативным решением в подобного рода ситуациях. В случаях тяжелого течения (сепсис) после тщательной оценки прогностических рисков для жизни импланты оставляют [11]. Необходимость удаления фиксирующих устройств обычно является следствием неудачи санации и антибиотикотерапии. Таким образом, профиль риск/выгода в случаях ранних инфекций стоит против замены или удаления имплантов (6/13). Пациенты с имеющейся нестабильностью оперированных сегментов позвоночника, которым требуется удаление металлоконструкции, могут быть подвергнуты конверсии на новую инструментальную фиксацию после тщательного дебридмента и ирригации [4]. Данная тактика поможет удалить очаг инфекции со сформированными биопленками, предотвратить возникновение неврологических осложнений от нестабильности [3]. С межтеловыми имплантами при поздних инфекциях следует поступать аналогично. Однако при отсутствии клинико-рентгенологических признаков нестабильности, сдавления корешков и спинного мозга, а также при наличии технических сложностей удаления межтелового импланта - возможно сохранение металлоконструкции [4]. Если гнойный процесс не купируется - необходимо удаление либо конверсия после тщательной хирургической обработки на новый имплант [4, 11].

В случае удаления колонизированных микроорганизмами имплантов инфицированные ткани в межтеловом пространстве также следует подвергнуть дебридменту с последующей стабилизацией при необходимости [4, 18, 19].

Гнойные осложнения, возникшие после имплантации систем для хронической электростимуляции. Поверхностная инфекция может лечиться антибиотикотерапией и перевязками без удаления всей системы. При глубокой инфекции требуется удаление всей системы, санация и курс антибиоти- котерапии. Локальная инфекция в области имплантированного электрода заключается в удалении электрода и использовании антибиотиков [20].

Лечение отсроченной инфекции, возникшей в период от 3 до 24 месяцев после операции на позвоночнике. Общепринятым трендом является удаление имплантов [11, 21-24]. Попытки сохранения металлоконструкции приводят к высоким рискам рецидивов инфекции [25]. Существует прогностическая шкала оценки рецидива гнойного процесса после ревизии и санации гнойного очага. Эта система подсчета баллов идентифицирует тех пациентов, которые более подвержены риску многократных санационных хирургических операций [26].

Антибиотикотерапия. Общепринятым является использование внутривенной антибиотикотерапии в послеоперационном периоде с учетом чувствительности к микрофлоре. Курс лечения составляет 4-8 недель внутривенного применения и последующего длительного перорального приема антибиотиков от 6 недель до 3 месяцев [11, 27].

Местное использование антибиотиков во время операции в рану имеет противоречивые данные о целесообразности их применения, но в целом рекомендовано [11, 28-30].

Химические и физические методы воздействия на инфекцию. Авторы AOSpineMasterSeriesVolume 10 [4] описывают использование биоактивного стекла при ревизионных санационных операциях на позвоночнике на костную ткань, подвергавшуюся микробному воздействию. Биоактивное стекло подавляет рост бактерий осмотическим и кислотно-щелочным механизмом действия [31, 32].

Использование антисептиков с высоким бактерицидным эффектом предоставило успешную возможность для профилактики и лечения гнойных процессов, особенно во время растущего числа патогенов, устойчивых к нескольким препаратам [33, 34]. инфекция имплант позвоночник

Возможно использование цементной массы с антибиотиком для создания спейсера на металлоконструкции в случае невозможности удаления имплантов. В двух найденных нами исследованиях указаны отличные результаты применения в 100 % случаев. К показаниям для данной методики также относится безуспешное применение стандартного санирующего и антибактериального лечения [35, 36]. Описан положительный результат при использовании микросфер из различных субстратов с постепенным высвобождением антибиотика [37, 38]. Разрабатываются импланты, постепенно высвобождающие антибиотик, которые возможно применять в плановой хирургии у пациентов с высоким риском появления гнойных осложнений [39].

Одним из перспективных направлений является разработка имплантов, способных подавлять возникновение инфекции: транспедикулярные винты с антибиотиком на камертоне [40]; композитные импланты с защищенным пленкой антибиотиком, закрепляемые на балке, установленной металлоконструкции [41, 42]. Это позволяет без антибиотика снижать вероятность образования биопленок на 30-50 % [43]. Использование пористых имплантов из тантала с антибиотиком обеспечивает более долгий противомикробный эффект в сравнении с костным цементом [4, 18, 19, 44, 45]. Статический эффект на образование биопленки выявлен у нитрида кремния [46].

Отдельным направлением в лечении имплант-ассоциированной инфекции позвоночника является использование аппаратов наружной транспедикулярной фиксации как метода внеочагового спондилосинтеза [47]. В случаях, когда гнойный процесс значительно повредил переднюю колонну позвонков, может потребоваться двух- или трехэтапное оперативное лечение [8, 48-50].

Использование ультразвуковой обработки раны совместно с механическим дебридментом и ирригацией растворами антисептиков позволяет лучше удалять биопленки, индуцируя локальное проникновение антибиотиков или антисептиков в мягкие ткани [51].

Технологии непрерывной ирригации проточно-промывными системами сегодня не часто описываются в литературе, хотя имеются данные о положительных результатах. Применение этой методики сопряжено с риском возникновения катетер-ассоциированной инфекции [52].

Установка дренажа улучшает заживление раны, уменьшает количество раневого отделяемого и купирует последующий бактериальный рост. Сроки, на которые оставляют дренаж при вертебральной периимплантной инфекции, составляют 5-7 дней [53]. В «чистой» же хирургии позвоночника принято оставлять дренаж не более чем на 72 ч, в противном случае крайне высок риск возникновения вторичной инфекции [2].

Использование вакуумного закрытия раны направлено на снижение скопления раневого отделяемого, создается постоянное отрицательное давление, обеспечивающее дренирование отделяемого из раны [4]. Методика показала свою высокую эффективность при лечении гнойных вертебральных послеоперационных осложнений [54, 55]. Сравнение методов проточно-промывной системы и вакуум-ассистированных повязок показало схожие результаты [56].

Современные рекомендации послеоперационного ведения гнойных ран спины нацелены на первичное закрытие в абсолютном большинстве случаев. В случаях некроза кожи и подкожной клетчатки с образованием кожного дефекта может быть использована техника закрытия раны кожными и мышечными лоскутами [4, 11, 19].

Использование гипербарической оксигенации возможно как для профилактики, так и для лечения гнойно-воспалительных послеоперационных заболеваний позвоночника, усиливающих проводимую антибактериальную терапию [57, 58]. Использование повязок с серебром не имеет доказательной базы для профилактики гнойных осложнений [19].



Заключение

На сегодня отсутствует единый подход при оценке гнойно-воспалительных осложнений при стабилизирующих оперативных вмешательствах на позвоночнике. Как следствие, нет однозначного мнения специалистов о лечении этих пациентов. Недостаточно изученная доказательная база по эффективности методик лечения свидетельствует о нерешенности данной проблемы. В будущем требуется проведение систематических обзоров и метаанализа для определения потенциальных методов выбора при лечении имплант-ассоциированных осложнений позвоночника с позиции доказательной медицины.

Статья выполнена в рамках госзадания «Оптимизация лечебного процесса у больных с ортопедотравматологической патологией, осложненной и неосложненной гнойной инфекцией, разработка новых патогенетически обоснованных (целесообразных) способов хирургического лечения, направленных на комплексное восстановление анатомо-функционального состояния конечности, общего гомеостаза и стойкое подавление гнойно-воспалительных явлений».



Библиографический список

1. Cost and Hospital Resource Utilization of Staphylococcus aureus Infection Post Elective Posterior Instrumented Spinal Fusion Surgeries in U.S. Hospitals: A Retrospective Cohort Study / Ning A. Rosenthal, Kirstin H. Heinrich, Jessica Chung, Holly Yu // SPINE. - 2018. - Vol. 44, № 9. - P. 637-646. - DOI 10.1097/BRS.0000000000002898.

2. Факторы риска развития глубокой инфекции области хирургического вмешательства после операций на позвоночнике / О. А. Смекаленков, Д. А. Пташников, С. А. Божкова, Д. А. Михайлов, С. В. Масевнин, Н. С. Заборовский, О. А. Лапаева // Гений ортопедии. - 2019. - Т. 25, № 2. - С. 219-225. - DOI http://dx.doi.org/ 10.18019/1028-4427-2019-25-2-219-225.

3. Долотин, Д. Н. Гнойные осложнения в хирургии позвоночника с использованием металлоимлантатов: обзор литературы / Д. Н. Долотин, М. В. Михайловский, В. А. Суздалов // Хирургия позвоночника. - 2015. - Т. 12, № 2. - С. 33-39. - DOI 10.14531/ss2015.2.33-39.

4. AOSpine Masters Series / Vialle et. al. - Spinal Infections. - 2018. - Vol. 10. - P. 179.

5. Surgical site infections following instrumented stabilization of the spine / U. Dapunt, С. Burkle, F. Gunther, W. Pepke, S. Hemmer, M. Akbar // TherClin Risk Manag. - 2017. - Vol. 13. - P. 1239-1245. - DOI 10.2147/TCRM.S141082.

6. Maruo, K. Outcome and treatment of postoperative spine surgical site infections: predictors of treatment success and failure / K. Maruo, S. H. Berven // J. OrthopSci. - 2014. - Vol. 19 (3). - P. 398-404. - DOI 10.1007/s00776-014-0545-z.

7. Deep surgical siteinfectionfollowingthoracolumbarinstrumentedspinalsurgery. Tenyears of experience / B. de la Hera, F. Sanchez-Mariscal, A. Gomez-Rice, E. Ruano Soriano, І. Vazquez-Vecilla, L. Zuniga, R. Rubio-Quevedo // Rev Esp Cir OrtopTraumatol. - 2019. - Vol. 63 (4). - P. 300-306. - DOI 10.1016/j.recot.2018.11.003.

8. Sp alteholz, M. External transpedicular spine fixation in severe spondylodiscitis - salvage procedure / M. Spaltzenolz, R. H. Gahr // GMS Interdiscip Plast Reconstr Surg DGPW. - 2013. - Vol. 29 (2). - DOI 10.3205/iprs000038.

9. A kh add ar, A. Atlas of Infections in Neurosurgery and Spinal Surgery / Ali Akhaddar // Springer International Publishing AG, 2017. - 339 p.

10. Инфекционные поражения позвоночника: проект национальных клинических рекомендаций / А. Ю. Мушкин, А. А. Вишневский, Е. О. Перецманас, А. Ю. Базаров, И. В. Басанкин // Хирургия позвоночника. - 2019. - Т. 16, № 4. - С. 63-76. DOI: http://dx.doi.org/10.14531/ss2019.4.63-76.

11. Материалы Второй международной согласительной конференции по склетно- мышечной инфекции: пер. с англ. / под общ. ред. Р. М. Тихилова, С. А. Божковой, И. И. Шубняка - Санкт-Петербург: РНИИТО им. Вредена, 2019. - 314 с.

12. Management of spinal infection: a review of the literature/ Sara Lener, Sebastian Hartmann, Giuseppe M. V. Barbagallo, Francesco Certo, Claudius Thome, AnjaTschugg. - ActaNeurochirurgica. - 2018. - Vol. 160, iss. 3. - P. 487-496. - DOI 10.1007/s00701- 018-3467-2.

13. Postoperative infections in spinal implants. Classification and analysis-a multicenter study / J. S. Thalgott, H. B. Cotler, R. C. Sasso, H. LaRocca, V. Gardner // Spine (Phila Pa 1976). - 1991. - Vol. 16 (8). - P. 981-984. - DOI 10.1097/00007632-19910800000020.

14. Risk Factors and Prevention of Surgical Site Infections Following Spinal Procedures / Rani Nasser, Jennifer A. Kosty, Sanjit Shah, Jeffrey Wang, and Joseph Cheng // Global Spine Journal. - 2018. - Vol. 8 (4S). - P. 44S-48S. - DOI 10.1177/2192568218806275.

15. Management of late-onset deep surgicalsite infection after instrumented spinal surgery / Dong Yin, Bin Liu, Yunbing Chang, HonglinGu and Xiaoqing Zheng // BMC Surg. - 2018. - Vol. 18 (1). - P. 121. - DOI 10.1186/s12893-018-0458-4.

16. Ahmed, R. Preservation of spinal instrumentation after development of postoperative bacterial infections in patients undergoing spinal arthrodesis / R. Ahmed, J. D. Greenlee, V. C. Traynelis // J Spinal DisordTech. - 2012. - Vol. 25. - P. 299-302. - DOI 10.1097/BSD.0b013e31821fbf72.

17. MRI-based Decision Making of Implant Removal in Deep Wound Infection After Instrumented Lumbar Fusion / Masahiro Kanayama, Tomoyuki Hashimoto, Keiichi Shigenobu, Fumihiro Oha, Akira Iwata, Masaru Tanaka // Clin Spine Surg. - 2017. - Vol. 30 (2). - P. E99-E103. - DOI 10.1097/BSD.0b013e3182aa4c72.

18. A comparison of Staphylococcus aureus biofilm formation on cobalt-chrome and titanium-alloy spinal implants / Shalin S. Patel, Wilson Aruni, SerkanInceoglu, Yusuf T. Akpolat, Gary D. Botimer, Wayne K. Cheng, Olumide A. Danisa // Journal of Clinical Neuroscience. - 2016. - Vol. 31. - P. 219-223. - DOI 10.1016/j.jocn.2016.03.013.

19. Kasliwal, M. K. Infection with spinal instrumentation: Review of pathogenesis, diagnosis, prevention, and management / M. K. Kasliwal, L. A. Tan, V. C. Traynelis // SurgNeurol Int. - 2013. - Vol. 4 (Suppl 5). - P. S392-403. - DOI 10.4103/21527806.120783.

20. COVID-19 Response in the Global Epicenter: Converting a New York City Level 1 Orthopedic Trauma Service into a Hybrid Orthopedic and Medicine COVID-19 Management Team / John F. Dankert, David Merkow, Charles C. Lin, Daniel J. Kaplan, Jonathan D. Haskel, Omar Behery, Alexander Crespo, Abhishek Ganta // J Orthop Trauma. - 2020. - Vol. 29.

21. Hedequist, D. Failure of attempted implant retention in spinal deformity delayed surgical site infections / D. Hedequist, A. Haugen, T. Hresko, J. Emans // Spine. - 2009. - Vol. 34. - P. 60-64. - DOI 10.1097/BRS.0b013e31818ed75e.

22. H o, C. Management of infection after instrumented posterior spine fusion in pediatric scoliosis / C. Ho, D. L Skaggs, J. M. Weiss, V. T. Tolo // Spine. - 2007. - Vol. 32. - P. 2739-2744. - DOI 10.1097/BRS.0b013e31815a5a86.

23. Richards, B. R. Delayed infections after posterior TSRH spinal instrumentation for idiopathic scoliosis: revisited / B. R. Richards, K. M. Emara // Spine. - 2001. - Vol. 26. - P. 1990-1996. - DOI 10.1097/00007632-200109150-00009.

24. The management and outcome of spinal implant infections: contemporary retrospective cohort study / T. J. Kowalski, E. F. Berbari, P. M. Huddleston, J. M. Steckelberg, Н.N. Mandrekar, D. R. Osmon // Clin Infect Dis. - 2007. - Vol. 44. - P. 913-920. - DOI 10.1086/512194.

25. Risk factors for surgical site infection and urinary tract infection after spine surgery / Н. Tominaga, T. Setoguchi, Y. Ishidou, S. Nagano, T. Yamamoto, S. Komiya // EurSpine J. - 2016. - Vol. 25. - P. 3908-3915. - DOI: 10.1007/s00586-016-4674-2.

26. Postoperative infection treatment score for the spine (PITSS): construction and validation of a predictive model to define need for single versus multiple irrigation and debridement for spinal surgical site infection / C. P. DiPaola, D. D. Saravanja, L. Boriani, et al. // Spine J. - 2012. - Vol. 12. - P. 218-230. - DOI 10.1016/j.spinee.2012.02.004.

27. Role of suppressive oral antibiotics in orthopedic hardware infections for those not undergoing two-stage replacement surgery / S. C. Keller, S. E. Cosgrove, Y. Higgins, D. A. Piggott, G. Osgood, P. G. Auwaerter // Open Forum Infect Dis. - 2016. - Vol. 30 (4). - P. 176. - DOI 10.1093/ofid/ofw176.

28. Бывальцев, В. А. Нежелательные лекарственные реакции при местном применении ванкомицина у пациентов после задних декомпрессивно-стабилизирующих оперативных вмешательств на пояснично-крестцовом отделе позвоночника / В. А. Бывальцев, И. А. Степанов, В. Э. Борисов // Хирургия позвоночника. - 2018. - Т. 15, № 2. - С. 76-83. - DOI http://dx.doi.Org/10.14531/ss2018.2.76-83.

29. Mesa, B. S. Measures to reduce end-of-case wound contamination: the impact of intra-wound vancomycin powder and betadine irrigation on surgical site infections in posterior spinal fusion / B. C. Mesa, D. Talwar, J. M. Flynn // SpineDeform. - 2020. - Vol. 8 (1). - P. 45-50. - DOI 10.1007/s43390-020-00033-4.

30. Is intraoperative local vancomycin powder the answer to surgical site infections in spine surgery? / H. W. Hey, D. W. Thiam, Z. S. Koh, et al. // Spine. - 2017. - Vol. 42. - P. 267-274. - DOI 10.1097/BRS.0000000000001710.

31. Antibiofilm agents against MDR bacterial strains: is bioactive glass BAG-S53P4 also effective? / Monica Bortolin, Elena De Vecchi, Carlo Luca Romano, Marco Toscano, Roberto Mattina, Lorenzo Drago // JAntimicrobChemother. - 2016. - Vol. 71 (1). - P. 123-127. - DOI 10.1093/jac/dkv327.

32. In vitro antibacterial activity of bioactive glass S53P4 on multiresistant pathogens causing osteomyelitis and prosthetic joint infection / Mateus Trinconi Cunha, Maria Apare- cida Murca, Stanley Nigro, Giselle Burlamaqui Klautau, Mauro Jose Costa Salles // BMC Infect Dis. - 2018. - Vol. 3, № 18 (1). - P. 157. - DOI 10.1186/s12879-018- 3069-x.

33. Willy, C. Importance of wound irrigation solutions and fluids with antiseptic effects in therapy and prophylaxis: Update 2017 / C. Willy, C. Scheuermann-Poley, M. Stich- ling, T. von Stein, A. Kramer // Unfallchirurg. - 2017. - Vol. 120 (7). - P. 549-560. - DOI 10.1007/s00113-017-0375-5.

34. Edmiston, C. E. Jr. Antiseptic Irrigation as an Effective Interventional Strategy for Reducing the Risk of Surgical Site Infections / C. E. Jr. Edmiston, M. Spencer, В. Leaper // Surg Infect (Larchmt). - 2018. - Vol. 19 (8). - P. 774-780. - DOI 10.1089/sur.2018.156.

35. Permanent implantation of antibiotic cement over exposed instrumentation eradi- catesdeep spinal infection / Joseph L. Laratta, Joseph M. Lombardi, Jamal N. Shillingford, Hemant P. Reddy, Boiys V. Gvozdyev, Yong J. Kim // J Spine Surg. - 2018. - Vol. 4 (2). - P. 471-477. - DOI 10.21037/jss.2018.04.03.

36. Efficacy of Target Drug Delivery and Dead Space Reduction Using Antibiotic-loaded Bone Cement for the Treatment of Complex Spinal Infection / S. Masuda, S. Fu- jibayashi, B. Otsuki, H. Kimura, S. Matsuda // Clin Spine Surg. - 2017. - Vol. 30 (9). - P. E1246-E1250. - DOI 10.1097/BSD.0000000000000567.

37. Reduction of Postoperative Spinal Implant Infection Using Gentamicin Microspheres / Alec C. Stall, Ed Becker, Steven C. Ludwig, Daniel Gelb, Kornelis A. Poelstra // Spine (Phila Pa 1976). - 2009. - Vol. 1, № 34 (5). - Р. 479-483. - DOI 10.1097/ BRS.0b013e318197e96c.

38. Synthesis of chitosan-alginate microspheres with high antimicrobial and antibiofilm activity against multi-drug resistant microbial pathogens / Rajagopalan Thaya, Baskaralingam Vaseeharan, Jeyachandran Sivakamavalli, ArokiadhasIswarya, Marimu- thu Govindarajan, Naiyf S. Alharbi, Shine Kadaikunnan, Mohammed N. Al-anbr, Jamal M. Khaled, Giovanni Benelli // MicrobPathog. - 2018. - Vol. 114. - P. 17-24. - DOI 10.1016/j.micpath.2017.11.011.

39. Biomaterials in Spinal Implants: A Review / Andrew Warburton, Steven J. Girdler, Christopher M. Mikhail, Amy Ahn, Samuel K. Cho // Neurospine. - 2019. - Vol. 4. - DOI: 10.14245/ns.1938296.148.

40. Eltorai, A. E. M. On-demand antibiotic-eluting microchip for implanted spinal screws / A. E. M. Eltorai // J Orthop. - 2017. - Vol. 14 (4). - P. 565-570. - DOI 10.1016/j.jor.2017.07.012.

41. Ultrasound-triggered Antibiotic Release From PEEK Clips to Prevent Spinal Fusion Infection: Initial Evaluations / Lauren J. Delaney, Daniel MacDonald, Jay Leung, Keith Fitzgerald, Alex M. Sevit, John R. Eisenbrey, Neil Patel, Flemming Forsberg, Christopher K. Kepler, Taolin Fang, Steven M. Kurtz, Noreen J. Hickok // ActaBiomater. - 2019. - Vol. 93. - P. 12-24. - DOI 10.1016/j.actbio.2019.02.041.

42. Early adherence and biofilm formation of Cutibacterium / Dioscaris Garcia, Cory І. Mayfield, Jacqueline Leong, David G. Deckey, Alexandra Zega, Jillian Glasser, Alan H. Daniels, Craig Eberson, Andrew Green, Christopher Born // The Spine Journal. - 2020. - Vol. 20 (6). - DOI 10.1016/j.spinee.2020.01.001

43. Early adherence and biofilm formation of cutibacterium acnes (formerly Propionibacte- rium acnes) on spinal implant materials / Timothy R. Deer, David A. Provenzano, Michael Hanes, Jason E. Pope, Simon D. Thomson, Marc A. Russo, Tory McJunkin, MichaelSaulino, Louis J. Raso, Shivanand P. Lad, SamerNarouze, Steven M. Falowski, Robert M. Levy, GanesanBaranidharan, Stanley Golovac// Spine J. - 2020. - Vol. 20. - P. S1529-9430(20)30001-2. - DOI 10.1016/j.spinee.2020.01.001.

44. Antibacterial properties of PEKK for orthopedic applications / Wang Mian, Garima Bhardwaj, Thomas J Webster // Int J Nanomedicine. - 2017. - Vol. 12. - P. 64716476. - DOI 10.2147/IJN.S134983.

45. Harrison, P. L. Does tantalum exhibit any intrinsic antimicrobial or antibiofilm properties? / P. L. Harrison, T. Harrison, I. Stockley, T. J. Smith // Bone Joint J. - 2017. - Vol. 99-B (9). - P. 1153-1156. - DOI 10.1302/0301-620X.99B9.BJJ-2016- 1309.R1.

46. Antibiotic-loaded tantalum may serve as an antimicrobial delivery agent / P. Sautet, S. Paratte, T. Mecediche, M. P. Abdel, X. Flecher, J. N. Argenson, M. Ollivier // BoneJoint J. - 2019. - Vol. 101-B (7). - P. 848-851. - DOI 10.1302/0301-620X. 101B7.BJJ-2018-1206.R1.

47. Bacteriostatic behavior of surface modulated silicon nitride in comparison to polyetheretherketone and titanium / R. M. Bock, E. N. Jones, D. A. Ray, Sonny Bal B., G. Pez- zotti, B. J. McEntire // J Biomed Mater Res A. - 2017. - Vol. 105 (5). - P. 1521-1534. - DOI 10.1002/jbm.a.35987.

48. Spondylodiscitis: diagnosisand treatment options / C. Herren, N. Jung, M. Pishnamaz, M. Breuninger, J. Siewe, R. Sobottke // DtschArztebl Int. - 2017. - Vol. 114 (51-52). - P. 875-882. - DOI 10.3238/arztebl.2017.0875.

49. Базаров, А. Ю. Классификации неспецифического гематогенного остеомиелита позвоночника. Критический анализ и предложения по применению / А. Ю. Базаров // Травматология и ортопедия России. - 2019. - № 25 (1). - С. 146-155. - DOI 10.21823/2311-2905-2019-25-1-146-155.

50. Invasive Lateral Approach to Thoracic and Lumbar Spine / Yashar Javidan, M. A. J. Richard, K. Hurley // Jr. Minimally Discectomy and Corpectomy for Trauma, Tumor, Infection, and Deformity. Operative Techniques in Orthopaedics. - 2019. - Vol. 29, iss. 2. - P. 100-721. - URL: https://doi.org/10.1016/j.oto.2019.100721.

51. Sonobactericide: An Emerging Treatment Strategy for Bacterial Infections / K. R. Lattwein, H. Shekhar, J. J. P. Kouizer, W. J. B. van Wamel, C. K. Holland, K. Looiman // UltrasoundMedBiol. - 2020. - Vol. 46 (2). - P. 193-215. - DOI 10.1016/j.ultrasmedbio.2019.09.011.

52. Continuous irrigation and drainage for early postoperative deep wound infection after posterior instrumented spinal fusion / Xiao-Feng Lian, Jian-Guang Xu, Bing-Fang Zeng, Xiao-Kang Liu, Hao Li, Man-le Qiu, Er-Zhu Yang // J Spinal DisordTech. - 2014. - Vol. 27 (8). - P. E315-317. - DOI 10.1097/BSD.0000000000000122.

53. Implant Removal for the Management of Infection After Instrumented Spinal Fusion / Jeung Il Kim, KuenTak Suh, Seong-Jang Kim, Jung Sub Lee // J Spinal DisordTech. - 2010. - Vol. 23 (4). - P. 258-265. - DOI 10.1097/BSD.0b013e3181a9452c.

54. Recurrent Surgical Site Infections in the Spine After Treatment With the Vacuum- assisted Closure (VAC) System / C. Acala-Maquez, R. Torrelba, A. A. Mehbod, G.M. Dawson, T. D. Dressel, E. E. Transfeldt // ClinSpineSurg. - 2018. - Vol. 31 (8). - P. 351-355. - DOI 10.1097/BSD.0000000000000668.

55. Ridwan, S. Safety and Efficacy of Negative Pressure Wound Therapy for Deep Spinal Wound Infections After Dural Exposure, Durotomy, or Intradural Surgery / S. Rid- wan, A. Grote, M. Simon // World Neurosurg. - 2020. - Vol. 134. - P. e624-e630. - DOI 10.1016/j.wneu.2019.10.146.

56. Negative Pressure Wound Therapy Versus Closed Suction Irrigation System in the treatment of Deep Surgical Site Infection After Lumbar Surgery / Junkai Zeng, Xiaojiang Sun, Zhenyu Sun, Jie Guan, Chen Han, Xin Zhao, Pu Zhang, Youzhuan Xie, Jie Zhao // World Neurosurg. - 2019. - Vol. 127. - P. e389-e395. - URL: https://doi.org/ 10.1016/j.wneu.2019.03.130

57. Can hyperbaric oxygen be used to prevent deep infections in neuro-muscular scoliosis surgery? / M. E. Inanmaz, K. C. Kose, C. Isik, H. Atmaca, H. Basar // BMC Surg. - 2014. - Vol. 14. - P. 85. - DOI 10.1186/1471-2482-14-85.

58. Larsson, A. Hyperbaric oxygen in the treatment of postoperative infections in paediatric patients with neuromuscular spine deformity / A. Larsson, J. Uusijrvi, F. Lind, B. Gustavsson, H. Saraste // Eur Spine J. - 2011. - Vol. 20 (12). - P. 2217-2222. - DOI 10.1007/s00586-011-1797-3.



References

1. Rosenthal Ning A., Heinrich Kirstin H., Chung Jessica, Yu Holly SPINE. 2018, vol. 44, no. 9, pp. 637-646. DOI 10.1097/BRS.0000000000002898.

2. Smekalenkov O. A., Ptashnikov D. A., Bozhkova S. A., Mikhaylov D. A., Masevnin S. V., Zaborovskiy N. S., Lapaeva O. A. Geniy ortopedii [The genius of orthopedics]. 2019, vol. 25, no. 2, pp. 219-225. DOI http://dx.doi.org/10.18019/1028-4427-2019-25- 2-219-225. [In Russian]

3. Dolotin D. N., Mikhaylovskiy M. V., Suzdalov V. A. Khirurgiya pozvonochnika [Spine surgery]. 2015, vol. 12, no. 2, pp. 33-39. DOI 10.14531/ss2015.2.33-39. [In Russian]

4. Vialle et al. AOSpine Masters Series. Spinal Infections. 2018, vol. 10, p. 179.

5. Dapunt U., Burkle C., Gunther F., Pepke W., Hemmer S., Akbar M. TherClin Risk Manag. 2017, vol. 13, pp. 1239-1245. DOI 10.2147/TCRM.S141082.

6. Maruo K., Berven S. H. J. OrthopSci. 2014, vol. 19 (3), pp. 398-404. DOI 10.1007/s00776-014-0545-z.

7. de la Hera B., Sanchez-Mariscal F., Gomez-Rice A., E. Ruano Soriano, I. Vazquez- Vecilla, Zuniga L., Rubio-Quevedo R. Rev Esp Cir OrtopTraumatol. 2019, vol. 63 (4), pp. 300-306. DOI 10.1016/j.recot.2018.11.003.

8. Spalteholz M., Gahr R. H. GMSInterdiscip Plast Reconstr Surg DGPW. 2013, vol. 29 (2). DOI 10.3205/iprs000038.

9. Akhaddar A. Atlas of Infections in Neurosurgery and Spinal Surgery. Springer International Publishing AG, 2017, 339 p.

10. Mushkin A. Yu., Vishnevskiy A. A., Peretsmanas E. O., Bazarov A. Yu., Basankin I. V. Khirurgiya pozvonochnika [Spine surgery]. 2019, vol. 16, no. 4, pp. 63-76. DOI: http://dx.doi.org/10.14531/ss2019.4.63-76. [In Russian]

11. Materialy Vtoroy mezhdunarodnoy soglasitel'noy konferentsii po skletno-myshechnoy infektsii: per. s angl. [Proceedings of the 2^nd international consensus conference on musculoskeletal infection: translated from english]. Eds. R. M. Tikhilov, S. A. Bozhkova, I. I. Shubnyak. Saint-Petersburg: RNIITO im. Vredena, 2019, 314 p. [In Russian]

12. Lener Sara, Hartmann Sebastian, Barbagallo Giuseppe M. V., Certo Francesco, Thome Claudius, Tschugg Anja. ActaNeurochirurgica. 2018, vol. 160, iss. 3, pp. 487-496. DOI 10.1007/s00701-018-3467-2.

13. Thalgott J. S., Cotler H. B., Sasso R. C., LaRocca H., Gardner V. Spine (Phila Pa 1976). 1991, vol. 16 (8), P. 981-984. DOI 10.1097/00007632-199108000-00020.

14. Nasser Rani, Kosty Jennifer A., Shah Sanjit, Wang Jeffrey and Cheng Joseph Global Spine Journal. 2018, vol. 8 (4S), pp. 44S-48S. DOI 10.1177/2192568218806275.

15. Dong Yin, Bin Liu, Yunbing Chang, HonglinGu and Xiaoqing Zheng BMC Surg. 2018, vol. 18 (1), pp. 121. DOI: 10.1186/s12893-018-0458-4.

16. Ahmed R., Greenlee J. D., Traynelis V. C. J Spinal DisordTech. 2012, vol. 25, pp. 299302. DOI 10.1097/BSD.0b013e31821fbf72.

17. Masahiro Kanayama, Tomoyuki Hashimoto, Keiichi Shigenobu, Fumihiro Oha, Akira Iwata, Masaru Tanaka Clin Spine Surg. 2017, vol. 30 (2), pp. E99-E103. DOI 10.1097/BSD.0b013e3182aa4c72.

18. Shalin S. Patel, Wilson Aruni, SerkanInceoglu, Yusuf T. Akpolat, Gary D. Botimer, Wayne K. Cheng, Olumide A. Danisa Journal of Clinical Neuroscience. 2016, vol. 31, pp. 219-223. DOI: 10.1016/j.jocn.2016.03.013.

19. Kasliwal M. K., Tan L. A., Traynelis V. C. SurgNeurol Int. 2013, vol. 4 (suppl 5), pp. S392-403. DOI 10.4103/2152-7806.120783.

20. Dankert John F., Merkow David, Lin Charles C., Kaplan Daniel J., Haskel Jonathan D., Behery Omar, Crespo Alexander, Ganta Abhishek J Orthop Trauma. 2020, vol. 29.

21. Hedequist D., Haugen A., Hresko T., Emans J. Spine. 2009, vol. 34, pp. 60-64. DOI 10.1097/BRS.0b013e31818ed75e.

22. Ho C., Skaggs D. L., Weiss J. M., Tolo V. T. Spine. 2007, vol. 32, pp. 2739-2744. DOI 10.1097/BRS.0b013e31815a5a86.

23. Richards B. R., Emara K. M. Spine. 2001, vol. 26, pp. 1990-1996. DOI 10.1097/00007632-200109150-00009.

24. Kowalski T. J., Berbari E. F., Huddleston P. M., Steckelberg J. M., Mandrekar J. N., Osmon D. R. Clin Infect Dis. 2007, vol. 44, pp. 913-920. DOI 10.1086/512194.

25. Tominaga H., Setoguchi T., Ishidou Y., Nagano S., Yamamoto T., Komiya S. EurSpine J. 2016, vol. 25, pp. 3908-3915. DOI: 10.1007/s00586-016-4674-2.

26. DiPaola C. P., Saravanja D. D., Boriani L. et al. Spine J. 2012, vol. 12, pp. 218-230. DOI 10.1016/j.spinee.2012.02.004.

27. Keller S. C., Cosgrove S. E., Higgins Y., Piggott D. A., Osgood G., Auwaerter P. G. Open Forum Infect Dis. 2016, vol. 30 (4), pp. 176. DOI 10.1093/ofid/ofw176.

28. Byval'tsev V. A., Stepanov I. A., Borisov V. E. Khirurgiya pozvonochnika [ ]. 2018, vol. 15, no. 2, pp. 76-83. DOI http://dx.doi.org/10.14531/ss2018.2.76-83. [In Russian]

29. Mesa B. S., Talwar D., Flynn J. M. SpineDeform. 2020, vol. 8 (1), pp. 45-50. DOI: 10.1007/s43390-020-00033-4.

30. Hey H. W., Thiam D. W., Koh Z. S., et al. Spine. 2017, vol. 42, pp. 267-274. DOI 10.1097/BRS.0000000000001710.

31. Bortolin Monica, De Vecchi Elena, Romano Carlo Luca, Toscano Marco, Mattina Roberto, Drago Lorenzo J Antimicrob Chemother. 2016, vol. 71 (1), pp. 123-127. DOI 10.1093/jac/dkv327.

32. Mateus Trinconi Cunha, Maria Aparecida Murca, Stanley Nigro, Giselle Burlamaqui Klautau, Mauro Jose Costa Salles BMC Infect Dis. 2018, vol. 3, no. 18 (1), p. 157. DOI 10.1186/s12879-018-3069-x.

33. Willy C., Scheuermann-Poley C., Stichling M., von Stein T., Kramer A. Unfallchirurg. 2017, vol. 120 (7), pp. 549-560. DOI 10.1007/s00113-017-0375-5.

34. Edmiston C. E. Jr., Spencer M., Leaper D. Surg Infect (Larchmt). 2018, vol. 19 (8), pp. 774-780. DOI 10.1089/sur.2018.156.

35. Laratta Joseph L., Lombardi Joseph M., Shillingford Jamal N., Reddy Hemant P., Gvozdyev Borys V., Kim Yong J. J Spine Surg. 2018, vol. 4 (2), pp. 471-477. DOI 10.21037/jss.2018.04.03.

36. Masuda S., Fujibayashi S., Otsuki B., Kimura H., Matsuda S. Clin Spine Surg. 2017, vol. 30 (9), pp. E1246-E1250. DOI 10.1097/BSD.0000000000000567.

37. Stall Alec C., Becker Ed, Ludwig Steven C., Gelb Daniel, Poelstra Kornelis A. Spine (Phila Pa 1976). 2009, vol. 1, no. 34 (5), pp. 479-483. DOI 10.1097/ BRS.0b013e318197e96c.

38. Rajagopalan Thaya, Baskaralingam Vaseeharan, Jeyachandran Sivakamavalli, Aroki- adhasIswarya, Marimuthu Govindarajan, Naiyf S. Alharbi, Shine Kadaikunnan, Mohammed N. Alanbr, Jamal M. Khaled, Giovanni Benelli MicrobPathog. 2018, vol. 114, pp. 17-24. DOI 10.1016Zj.micpath.2017.11.011.

39. Warburton Andrew, Girdler Steven J., Mikhail Christopher M., Ahn Amy, Cho Samuel K. Neurospine. 2019, vol. 4. DOI: 10.14245/ns.1938296.148.

40. Eltorai A. E. M. J Orthop. 2017, vol. 14 (4), pp. 565-570. DOI 10.1016/ j.jor.2017.07.012.

41. Delaney Lauren J., MacDonald Daniel, Leung Jay, Fitzgerald Keith, Sevit Alex M., Ei- senbrey John R., Patel Neil, Forsberg Flemming, Kepler Christopher K., Fang Taolin, Kurtz Steven M., Hickok Noreen J. ActaBiomater. 2019, vol. 93, pp. 12-24. DOI 10.1016/j.actbio.2019.02.041.

42. Dioscaris Garcia, Mayfield Cory K., Leong Jacqueline, Deckey David G., Zega Alexandra, Glasser Jillian, Daniels Alan H., Eberson Craig, Green Andrew, Born Christopher The Spine Journal. 2020, vol. 20 (6). DOI 10.1016/j.spinee.2020.01.001

43. Deer Timothy R., Provenzano David A., Hanes Michael, Pope Jason E., Thomson Simon D., Russo Marc A., McJunkin Tory, MichaelSaulino, Raso Louis J., Lad Shivanand P., SamerNarouze, Falowski Steven M., Levy Robert M., Baranidharan Ga- nesan, Golovac Stanley Spine J. 2020, vol. 20, pp. S1529-9430(20)30001-2. - DOI 10.1016/j.spinee.2020.01.001.

44. Mian Wang, Bhardwaj Garima, Webster Thomas J Int J Nanomedicine. 2017, vol. 12, pp. 6471-6476. DOI 10.2147/IJN.S134983.

45. Harrison P. L., Harrison T., Stockley I., Smith T. J. Bone Joint J. 2017, vol. 99-B (9), pp. 1153-1156. DOI 10.1302/0301-620X.99B9.BJJ-2016-1309.R1.

46. Sautet P., Paratte S., Mecediche T., Abdel M. P., Flecher X., Argenson J. N., Ollivier M. BoneJoint J. 2019, vol. 101-B (7), pp. 848-851. DOI 10.1302/0301- 620X.101B7.BJJ-2018-1206.R1.

47. Bock R. M., Jones E. N., Ray D. A., Sonny Bal B., Pez-zotti G., McEntire B. J. J Biomed Mater Res A. 2017, vol. 105 (5), P. 1521-1534. DOI 10.1002/jbm.a.35987.

48. Herren C., Jung N., Pishnamaz M., Breuninger M., Siewe J., Sobottke R. DtschArztebl Int. 2017, vol. 114 (51-52), pp. 875-882. DOI 10.3238/arztebl.2017.0875.

49. Bazarov A. Yu. Travmatologiya i ortopediya Rossii [ ]. 2019, no. 25 (1), pp. 146-155. DOI 10.21823/2311-2905-2019-25-1-146-155. [In Russian]

50. Javidan Yashar, Richard M. A. J., Hurley K. Jr. Minimally Discectomy and Corpectomy for Trauma, Tumor, Infection, and Deformity. Operative Techniques in Orthopaedics. 2019, vol. 29, iss. 2, pp. 100-721. Available at: https://doi.org/10.1016/j.oto.2019. 100721.

51. Lattwein K. R., Shekhar H., Kouizer J. J. P., van Wamel W. J. B., Holland C. K., Looiman K. UltrasoundMedBiol. 2020, vol. 46 (2), pp. 193-215. DOI 10.1016/ j.ultrasmedbio.2019.09.011.

52. Xiao-Feng Lian, Jian-Guang Xu, Bing-Fang Zeng, Xiao-Kang Liu, Hao Li, Man-le Qiu, Er-Zhu Yang J Spinal DisordTech. 2014, vol. 27 (8), pp. E315-317. DOI 10.1097/BSD.0000000000000122.

53. Jeung Il Kim, KuenTak Suh, Seong-Jang Kim, Jung Sub Lee J Spinal DisordTech. 2010, vol. 23 (4), pp. 258-265. DOI 10.1097/BSD.0b013e3181a9452c.

54. Acala-Maquez C., Torrelba R., Mehbod A. A., Dawson J. M., Dressel T. D., Transfeldt E. ClinSpineSurg. 2018, vol. 31 (8), pp. 351-355. DOI 10.1097/BSD. 0000000000000668.

55. Ridwan S., Grote A., Simon M. World Neurosurg. 2020, vol. 134, pp. e624-e630. DOI 10.1016/j.wneu.2019.10.146.

56. Zeng Junkai, Sun Xiaojiang, Sun Zhenyu, Guan Jie, Han Chen, Zhao Xin, Zhang Pu, Xie Youzhuan, Zhao Jie World Neurosurg. 2019, vol. 127, pp. e389-e395. Available at: https://doi.org/10.1016/j.wneu.2019.03.130

57. Inanmaz M. E., Kose K. C., Isik C., Atmaca H., Basar H. BMC Surg. 2014, vol. 14, p. 85. DOI 10.1186/1471-2482-14-85.

58. Larsson A., Uusijrvi J., Lind F., Gustavsson B., Saraste H. Eur Spine J. 2011, vol. 20 (12), pp. 2217-2222. DOI 10.1007/s00586-011-1797-3.

Размещено на Allbest.ru