Радиобиологические эффекты пучка ускорительного источника нейтронов в институте ядерной физики им. Г.И. Будкера СО РАН
Проведены радиобиологическая оценка пучка ускорительного источника нейтронов, нейтронное облучение линии клеток U87 (глиобластома) и FetMSC (эмбриональный костный мозг человека). В экспериментах изучали радиобиологические эффекты нейтронного облучения.
Рубрика | Медицина |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 21.07.2021 |
Размер файла | 129,3 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Радиобиологические эффекты пучка ускорительного источника нейтронов в институте ядерной физики им. Г.И. Будкера СО РАН
Каныгин В.В.1,
Кичигин А.И.1,
Завьялов Е.Л.1,2,
Разумов И.А. 1,г,
Симонович А.Е.3,
Таскаев С.Ю. 1,4
ФГАОУ ВО "Новосибирский национальный исследовательский государственный университет", Новосибирск; 2ФГБНУ "Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук", Новосибирск;
3ФГБУ "Новосибирский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Я.Л. Цивьяна" Минздрава России, Новосибирск,
4ФГБУН "Институт ядерной физики им. Г.И. Будкера Сибирского отделения Российской академии наук", Новосибирск
Аннотация
Проведены радиобиологическая оценка пучка ускорительного источника нейтронов в Институте ядерной физики им. Г.И. Будкера, нейтронное облучение линии клеток U87 (глиобластома) и FetMSC (эмбриональный костный мозг человека). В экспериментах in vivo изучали радиобиологические эффекты нейтронного облучения у иммунодефицитных мышей SCID. В экспериментах in vitro образцы помещали в плексигласовый фантом. Облучение клеточных культур проходило при следующих параметрах: энергия протонов 2,0 МэВ, интеграл тока до 2,69 мА-ч. После облучения через 48 и 96 часов проводили МТТ-тест. В экспериментах in vivo мышей облучали эпитермальными нейтронами с энергией протонов 2,0 МэВ и интегралом тока 3,78-7,56 мА-ч. Линия FetMSC была более толерантна к облучению эпитермальными нейтронами, в то время как ответ линии опухоли U87 был более заметным. Облучение снижало долю выживаемости клеток U87 на 27% и клеток FetMSC на 7%. Внешние патологические признаки были обнаружены у мышей, получавших дозы от 4,48 мА-ч при энергии протонов 2,0 МэВ, в виде трофических нарушений кожи и снижения массы тела. Эксперимент показал, что терапевтическая доза, полученная здоровыми тканями мышей при облучении, хорошо переносилась, а патологические структурные изменения в исследуемых тканях, подвергшихся облучению, не выявлялись. Однако при высоких дозах облучения были определены обратимые изменения в тканях, преимущественно в тонком кишечнике и костном мозге. Наши эксперименты с нормальными и опухолевыми клеточными линиями, облученными различными дозами, показывают, что эффект только нейтронного облучения без бора-10 незначителен для нормальных клеток. Экспериментальные данные на животных свидетельствуют, что дозы до 4,48 мА-ч при энергии протонов 2,0 МэВ были оптимальными для проведения экспериментов BNCT in vivo. радиобиологический глиобластома облучение
Ключевые слова: бор-нейтронозахватная терапия, БНЗТ, радиобиологические исследования, ускорительный источник нейтронов, глиома
RADIOBIOLOGICAL EFFECTIVENESS OF THE ACCELERATOR-BASED NEUTRON BEAM IN VITRO AND IN VIVO AT THE BINP AT THE BUDKER INSTITUTE OF NUCLEAR PHYSICS
Kanygin V.V.1, Kichigin A.1, Zavjalov E.L.1,2, Razumov I.A.1,2, Simonovich A.E.3,
Taskaev S. Yu.1,4
1Novosibirsk National Research State University, Novosibirsk;
2 Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics, Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Novosibirsk;
3 Novosibirsk Research Institute of Traumatology and Ortopaedics n.a. Ya.L. Tsivyan, Novosibirsk,
4 The Budker Institute of Nuclear Physics, Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Novosibirsk
The safety assessment of the beam of the accelerator neutron source at the Institute of nuclear physics was carried out. Neutron irradiation of U87 (glioblastoma) and FetMSC (human embryonic bone marrow) cell lines was performed. In vivo experiments studied the radiobiological effects of neutron irradiation in immunodeficient SCID mice. In in vitro experiments, samples were placed in a plexiglass phantom. Irradiation lasted with proton energy of 2.0 MeV and current integral to 2.69 mA-h. after irradiation, a MTT test was performed 48 and 96 hours later. In vivo experiments, mice were irradiated with epithermal neutrons with a proton energy of 2.0 MeV and a current integral of 3,78-7.56 mA-h. FetMSC line was more tolerant to epithermal neutron irradiation, while the U87 tumor line response was more prominent. Irradiation reduced the survival rate of U87cells by 27% and FetMSC cells by 7%. External pathological signs were found in mice receiving doses of 4.48 mA-h at a proton energy of 2.0 MeV in the form of trophic skin disorders and weight loss. The experiment showed that the therapeutic dose received by healthy tissues of mice under irradiation was well tolerated, and pathological structural changes in the studied tissues exposed to radiation were not detected. However, at high doses of radiation, reversible changes were detected in tissues, mainly in the small intestine and bone marrow. Our experiments with normal and tumor cell lines irradiated with different doses show that the effect of neutron irradiation alone without boron-10 is negligible for normal cells. Experimental data on animals show that doses up to 4.48 mA-h at proton energy 2.0 MeV were optimal for BNCT experiments in vivo.
Keywords: boron neutron capture therapy, BNCT, radiobiological studies, accelerator-based neutron source, glioma
По данным Всемирной организации здравоохранения заболеваемость раком неуклонно растет: по прогнозам распространенность онкологических заболеваний в мире к 2020 г. удвоится в сравнении с показателями 1999 г. Недостаток эффективных методов лечения онкологических заболеваний требует поиска новых лечебных методик.
Бор-нейтронозахватная терапия (БНЗТ) является перспективным и постоянно развивающимся методом лечения рака за счет возможности избирательно уничтожить клетки опухоли [1]. Методика основана на накоплении в опухолевых клетках стабильного изотопа бор-10 и последующего облучения нейтронами. В результате поглощения нейтронов ядрами бора происходит ядерная реакция (захват теплового нейтрона ядром 10B, что приводит к появлению ядра 11B в возбужденном состоянии, которое распадается на ядро лития 7Li и ядро гелия 4He) с выделением энергии в клетке на длине менее 10 мкм, что приводит к ее гибели, ограничивая при этом повреждения примерно размером одной клетки. Таким образом, селективное накопление изотопа бора-10 внутри клеток опухоли и последующее облучение тепловыми нейтронами приводят к разрушению клеток опухоли с относительно малыми повреждениями окружающих нормальных клеток. Эта инновационная методика лечения рака обеспечит прорыв в лечении пациентов, ранее считавшихся обреченными.
Исследования в области использования БНЗТ интенсивно ведутся во многих странах мира (Японии, ЕС, США, Аргентине, Тайване и др.). К настоящему времени в мире несколько тысяч пациентов успешно прошли процедуру БНЗТ на базе специализированных или переоборудованных ядерных реакторов - в Финляндии (FIR1), США (MIT-FCB), Нидерландах (HFR), Швеции (R2-0), Чехии (LVR-15), Японии (JRR-4 и KUR) [1].
В России БНЗТ проводилась в различных центрах: в Обнинске (ФЭИ и МРНЦ) - терапия быстрыми нейтронами на реакторе БР-10, в Снежинске совместно с Челябинским онкоцентром проводили терапию быстрыми нейтронами на нейтронном генераторе с пучком ионов дейтерия энергией 250 кэВ и с тритиевой мишенью, в Томске - быстрыми нейтронами на циклотроне с пучком ионов дейтерия энергией 13 МэВ и бериллиевой мишенью. В Москве (МИФИ совместно с Институтом биофизики и онкоцентром) проведены исследования на собаках, в качестве нейтронозахватного агента использовали гадолиний с целью проведения лечения меланомы слизистой ротовой полости [2].
Для дальнейшего развития метода необходимо продолжение разработки источников нейтронов, соединений бора и методов дозиметрии [3].
В качестве компактных, безопасных, относительно недорогих источников нейтронов могут использоваться ускорители заряженных частиц с соответствующими нейтрон-генерирующими мишенями и системами формирования пучка. За последние 30 лет было предложено большое количество таких проектов [4-7]. Ускорители позволяют получить лучший по качеству терапевтический пучок нейтронов, а также относительно просто и оперативно изменять спектр и поток нейтронов изменением энергии и тока пучка заряженных частиц и заменой мишени. Более того, ускорители нейтронов можно поместить в клинику. Оптимально терапевтический пучок нейтронов обеспечивается реакциями 7Li(p,n)7Be или 9Be(p,n)9B из-за низкой энергии генерируемых нейтронов [8].
В рамках одного из проектов в Институте ядерной физики им. Г.И. Будкера (Новосибирск) был разработан ускорительный источник нейтронов с твердой литиевой мишенью и током протонного пучка до 8,7 мА - ускоритель-тандем с вакуумной изоляцией и припороговым режимом генерации нейтронов в результате реакции 7Li(p,n)7Be, который наилучшим образом подходит для формирования потока эпитепловых нейтронов [9]. С участием международных и российских организаций создан прототип такой установки, на нем получен стабильный протонный пучок с рекордным током, осуществлена генерация нейтронов. Данная установка определяет мировой уровень и, в отличие от других разрабатываемых ускорительных источников, позволяет изменять энергию протонного пучка и тем самым модифицировать спектр нейтронов, что дает возможность проводить исследования для определения оптимальных параметров.
В Новосибирском национальном исследовательском государственном университете была создана лаборатория медико-биологических проблем БНЗТ с целью проведения экспериментальных исследований in vitro и in vivo для определения оптимальных параметров пучка нейтронов.
Для проведения БНЗТ также необходимы препараты адресной доставки бора, обеспечивающие его накопление в клетках опухоли. Борсодержащий препарат, обогащенный нуклидом бор-10, должен накапливаться в опухоли в концентрации более 20 мкг/г при отношении концентрации препарата в опухоли к нормальной ткани 3/1 и выше во время процедуры облучения. Однако существующие препараты боркаптат (BSH) и борфенилаланин (BPA) не обладают достаточной селективностью и не обеспечивают высокие концентрации бора в опухоли. Проблема адресного накопления в опухолевых клетках борсодержащих препаратов остается на данный момент нерешенной и ограничивает продвижение данного метода лечения в клиническую практику. На фоне успехов в разработке ускорительных источников в лаборатории медико-биологических проблем БНЗТ активно развиваются исследования, направленные на разработку борсодержащих препаратов, отвечающих требованию опухоль-специфичной таргетности.
Цель данного исследования - оценка оптимальных и максимальных доз облучения на ускорительном источнике нейтронов ИЯФ СО РАН для клеточных линий и животных с использованием линии клеток U87 (глиобластома), FetMSC (мезенхимальные клетки человеческого эмбриона) и SCID-мышей.
Материалы и методы исследования
Клетки культивировали в среде DMEM / F12 (1:1) (Биолот, Санкт-Петербург, Россия) с добавлением 10% фетальной бычьей сыворотки (Gibco, Thermo Fisher Scientific, Waltham, Массачусетс, США) и гентамицина 50 мкг/мл (Дальхимфарм, Хабаровск, Россия) при 37 °С в атмосфере 5% CO2.
Для экспериментов in vitro образцы помещали в плексигласовый фантом под литиевой мишенью ускорителя. Облучение проведено с энергией протонов 2,0 МэВ и интегралом тока до 2,69 мА-ч. Через 48 и 96 часов после облучения 104 клеток на лунку помещали в 96-луночные пластины для МТТ-теста.
Все эксперименты на животных одобрены межинститутской комиссией по биоэтике и соответствуют принципам "Руководства по уходу и использованию лабораторных животных" [10].
В данном исследовании использовали мышей-самцов SCID (SHO-PrkdcscidHrhr) в состоянии SPF в возрасте 8-12 недель. Экспериментальные животные содержались в индивидуально вентилируемых клетках семейными группами по 2-5 особей в виварии SPF Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (СО РАН). Мышей облучали пучком эпитермальных нейтронов с энергией протонов 2,0 МэВ и интегралом тока 3,78-4,48 мА-ч, а одну группу облучали до набора интеграла тока 7,56 мА-ч. В качестве контроля использовали необлученных животных.
Результаты исследования и их обсуждение
Поскольку нормальные ткани хорошо переносят нейтронное излучение, FetMSC - линия, полученная из нормальной эмбриональной ткани, оказалась более толерантной к эпитермальному нейтронному облучению, в то время как ответ опухолевой линии U87 был более заметным. Гибель клеток, основанная на времени, прошедшем с момента облучения, была очевидной: через 48 ч после облучения выживаемость U87 снизилась до 86,7% и через 96 ч - до 73,6%. Напротив, выживаемость FetMSC по сравнению с контролем уменьшилась незначительно: через 48 ч после облучения выживаемость снизилась менее чем на 1%, а через 96 ч - на 7% (рис. 1А, Б). Наши данные согласуются с предыдущими исследованиями по облучению клеточных линий U251MG, CHO-K1, V79 на ускорителе с током 1,5--3,0 мЛ при энергии протонов 2 МэВ [9], а также по аналогичному облучению клеточной линии U87 пучком с энергией протонов 2 МэВ и током 2,6 мА [11].
Рис. 1. Выживаемость клеток в зависимости от дозы облучения, МТТ-тест на 48 ч (А); выживаемость клеток в зависимости от дозы облучения, МТТ-тест на 96 ч (Б)
В экспериментах на животных изучали радиобиологические эффекты облучения пучком нейтронов с энергией протонов 2,0 МэВ в интегральных характеристиках тока от 3,78 до 7,56 мА-ч. По нашим наблюдениям, у мышей, подвергнутых облучению в дозах менее 4,48 мА-ч, не было выявлено в результате облучения патологических внешних признаков, снижения массы тела и летальных исходов в течение 30 дней после облучения.
Внешние патологические признаки в виде трофических нарушений кожи (снижение эластичности, сухость, шелушение, эрозия) и снижение массы тела были обнаружены у мышей, получавших дозы от 4,48 мА-ч, но эти животные были живы через 1 месяц и постепенно набирали вес (рис. 2).
Доза облучения с энергией протонов 2,0 МэВ и интегралом тока 7,56 мА-ч была полностью летальной (LD100) для мышей, медиана выживаемости составила 4,7±3,2 дня. Эксперимент показывает, что терапевтические дозы, полученные здоровыми мышиными тканями во время облучения, хорошо переносятся. В предыдущих экспериментах по изучению радиобиологических эффектов in vivo доза облучения мышей, получавших инъекции боркаптата BSH (200 мг/кг внутрибрюшинно), не превышала 5,7 гр-экв и составляла 2 гр-экв у мышей, не получавших BSH [9].
Наши эксперименты показали оптимальные дозы для мышей SCID, которые хорошо переносимы животными и при которых не возникают патологические структурные изменения в исследуемых тканях и органах. Настоящее исследование также подтверждает результаты предыдущего морфологического исследования, в котором обратимые изменения в костном мозге и тонком кишечнике мышей наблюдались на 2-й и 9-й дни после высоких доз нейтронного облучения [9].
В настоящее время научно-исследовательская группа физиков Института ядерной физики им. Г.И. Будкера решает сложную научно-техническую задачу создания компактного источника эпитермальных нейтронов на основе ускорителя заряженных частиц. Созданный в ИЯФ СО РАН ускорительный источник, использующий наилучшую реакцию для генерации эпитепловых нейтронов, привлекателен как по компактности, так и по стоимости.
Рис. 2. Масса животных (мыши SCID) после облучения в дозах от 3,78 до 7,56 мА·ч
На ускорителе получен стационарный протонный пучок с необходимой энергией и с током, рекордным для электростатических ускорителей. Достигнутый прогресс на установке значительно опережает мировой уровень и является важнейшей предпосылкой для создания в России специализированного центра нейтронозахватной терапии.
Очевидной является необходимость проведения всех этапов исследований на ускорительном источнике. Для биологов создана уникальная возможность провести экспериментальные исследования радиобиологических эффектов нейтронного потока, а также эффективности БНЗТ с использованием различных препаратов.
Наши эксперименты с нормальными и опухолевыми клеточными линиями, облученными различными дозами, свидетельствуют о том, что негативные эффекты облучения пучком нейтронов в рекомендуемых дозах незначительны. Так, клеточные линии могут быть облучены при энергии протонов 2,0 МэВ с интегралом тока до 2,69 мА-ч без значимых негативных последствий.
Пороговая доза облучения животных на ускорительном источнике нейтронов составила 4,48 мА-ч при энергии протонов 2,0 МэВ. Эксперимент показал, что данная доза хорошо переносилась животными, а патологические структурные изменения в исследуемых тканях, подвергшихся облучению, не выявлялись. Однако при более высоких дозах облучения были отмечены обратимые изменения в тканях, преимущественно в тонком кишечнике и костном мозге.
Наши результаты позволили сделать вывод о том, что полученный пучок является безопасным и наилучшим образом соответствует требованиям БНЗТ.
Заключение
БНЗТ является перспективной технологией в связи с нерешенной проблемой лечения злокачественных опухолей, значительным прогрессом в разработке новых источников нейтронов и препаратов. Однако пока этот метод находится в экспериментальной стадии из-за сложности его реализации. До сих пор не выработано единого механизма передачи данных, полученных в ходе оценки биологического влияния БНЗТ на клеточные линии и опухолевые модели животных в отношении человека. Для широкого внедрения БНЗТ в практику необходимо провести ряд клинических испытаний на ускорительных источниках нейтронов, которые могли бы показать эффективность данного метода. Проблема недостаточной селективности доставки бора-10 к опухоли может быть решена с помощью инновационных препаратов или способов доставки, что позволит значительно увеличить градиент концентрации бора на границе опухоли и здоровой ткани. Но самым важным фактором, значимым для успеха БНЗТ в будущем, будет налаженное сотрудничество специалистов различных дисциплин.
Список литературы
1. Sauerwein W. Neutron Capture Therapy. Principles and Applications. Springer. 2012. 553 p.
2. Mitin V.N., Kulakov V.N., Khokhlov V.F., Sheino I.N., Arnopolskaya A.M., Kozlovskaya N.G., Zaitsev K.N., Portnov A.A. Comparison of BNCT and GdNCT efficacy in treatment of canine cancer. Appl. Radiat Isot. 2009. Vol. 67. No. 7-8. P. 299-301. DOI: 10.1016/j.apradiso.2009.03.067.
3. Barth R.F., Zhang Z., Liu T. A realistic appraisal of boron neutron capture therapy as a cancer treatment modality. Cancer Commun (Lond). 2018. Vol. 38. P. 1-36. DOI: 10.1186/s40880- 018-0280-5.
4. Tsuchida K., Kiyanagi Y., Uritani A. Development of an acceleratordriven compact neutron source for BNCT in Nagoya University. Book of abstracts of the 16 International Congress on Neutron Capture Therapy. Helsinki, Finland. 2014. P. 206-207.
5. Kreiner A.J., Castell W., Di Paolo H., Baldo M., Bergueiro J., Burlon A., Cartelli D., Thatar Vento V., Kesque J., Erhardt J., Ilardo J., Valda A., Debray M., Somacal H., Suarez Sandin J., Igarzabal M., Huck H., Estrada L., Repetto M., Obligado M., Padulo J., Minsky D., Herrera M., Gonzalez S., Capoulat M. Development of a Tandem-Electrostatic-Quadrupole facility for Accelerator-Based Boron Neutron Capture Therapy. Appl. Radiat. and Isotopes. 2011. No. 69. P. 1672-1675.
6. Abe Y., Fuse M., Fujii R. Hospital-based boron neutron in National Cancer Center. An installation design for the accelerator-based epithermal neutron source. Abstracts of 15 ICNCT, 1014 Sept. Tsukuba, Japan. 2012. P. 109-110.
7. Yoshioka M., Kurihara T., Kurokawa S. Construction of accelerator-based BNCR facility at Ibaraki Neutron Medical Research Center. 16th International Congress on Neutron Capture Therapy. Helsinki, Finland. 2014. P. 66.
8. Kreiner A.J., Bergueiro J., Cartelli D., Baldo M., Castell W., Asoia J.G., Padulo J., Suвrez Sandm J.C., Igarzabal M., Erhardt J., Mercuri D., Valda A.A., Minsky D.M., Debray M.E., Somacal H.R., Capoulat M.E., Herrera M.S., Del Grosso M.F., Gagetti L., Anzorena M.S., Canepa N., Real N., Gun M., Tacca H. Present status of Accelerator-Based BNCT. Rep. Pract. Oncol. Radiother. 2016. Vol. 2. P. 95-101. DOI: 10.1016/j.rpor.2014.11.004.
9. Kanygin, V., Kichigin, A., Krivoshapkin, A., Taskaev, S. Perspectives of boron-neutron capture therapy of malignant brain tumors. AIP Conference Proceedings. 2017. Vol. 1882. DOI: 10.1063/1.5001609.
10. Каркищенко Н.Н., Грачева С.В. Руководство по лабораторным животным и альтернативным моделям в биомедицинских технологиях. М., 2010. 336 с.
Byvaltsev V.A., Zavjalov E.L., Kanygin V.V., Kasatova A.I., Kichigin A.I., Razumov I.A., Sycheva T.V., Taskaev S. Yu. Cytopathic effects of accelerator-based boron neutron capture therapy on human glioblastoma cells. Siberian Journal of Oncology. 2019. Vol. 18. No. 4. P. 34-42. DOI: 10.21294/1814-4861 -2019-18-4-34-42.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Понятие радиочувствительности как восприимчивости клеток, тканей, органов или организмов к воздействию ионизирующего излучения. Нелетальные радиобиологические эффекты в организме. Функции эндокринной системы человека и схема желез внутренней секреции.
презентация [573,3 K], добавлен 03.03.2015Понятие и функции стволовых клеток, их типы в зависимости от способов получения, потенциал. Характеристики эмбриональных стволовых клеток. Дифференцировки стволовых клеток костного мозга. Органы и ткани, которые ученые смогли вырастить с их помощью.
презентация [817,5 K], добавлен 04.11.2013Применение ионизирующих излучений в сельском хозяйстве, ветеринарии и животноводстве. Использование ионизирующих излучений для диагностики и лечения животных. Использование нейтронов наряду с другими тяжелыми заряженными частицами для лечения опухолей.
контрольная работа [168,6 K], добавлен 30.01.2009Лечебные эффекты, возникающие при воздействии электричества на организм человека. Схема биотехнической системы электроанальгезии. Критерии формирования стимулирующего импульса. Паравертебральная локализация электродов в зависимости от источника болей.
реферат [1,5 M], добавлен 09.12.2013Изучение применения стволовых клеток при лечении сердечно-сосудистых заболеваний, нарушений эндокринной системы, при процедуре липосакции. Головная боль, легкое недомогание, тератомы, острая лимфобластная лейкемия как побочные эффекты данного лечения.
презентация [802,3 K], добавлен 23.12.2014Роль тучных клеток в регуляции гомеостаза организма. Локализация тучных клеток, их медиаторы. Секреция медиаторов и их функции. Основные типы тучных клеток. Рецепторы и лиганды, эффекты медиаторов. Участие тучных клеток в патологических процессах.
презентация [2,2 M], добавлен 16.01.2014Отношение к животным и этика их использования в экспериментах. История биомедицинского эксперимента. Методы, альтернативные работе с животными. Преимущества и недостатки работы с изолированными культурами клеток. Особенности этики научных работников.
курсовая работа [57,5 K], добавлен 16.05.2011Лейкоз как системное заболевание крови. Причины развития лейкемии у детей. Патогенез заболевания, его клиническая картина и особенности диагностики. Трансплантация костного мозга: побочные эффекты и осложнения. Лечение после пересадки костного мозга.
реферат [46,0 K], добавлен 03.12.2012Лейкозы — многочисленные опухоли, возникающие из кроветворных клеток и поражающие костный мозг. Продолжительность заболевания, этиология и патогенез. Причины острых и хронических лейкозов, клиническая картина, лечение и применение антибиотиков.
реферат [25,2 K], добавлен 17.09.2009Области, границы и фасции шеи. Внутренний и наружный шейный треугольник. Лимфатические узлы. Топография основного сосудисто-нервного пучка шеи в лопаточно-трапециевидном треугольнике. Доступ к сонным артериям. Анализ видов и основных этапов трахеостомии.
презентация [5,4 M], добавлен 26.05.2016