Перспективы использования сиалированных иммуноглобулинов в терапии различных заболеваний

Размещено на http://www.allbest.ru/

ФГБНУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт общей патологии и патофизиологии»

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека»

Перспективы использования сиалированных иммуноглобулинов в терапии различных заболеваний

Маркина Ю.В., Маркин А.М., Собенин И.А., Орехов А.Н.

г. Москва, Россия

Резюме

Ключевую роль в борьбе с различными патогенами, направленную на выживание клеток и организма в целом играют иммуноглобулины. Данные о центральной роли гликозилирования были подтверждены в ходе многочисленных исследований течения множества заболеваний человека. В частности, изменение профиля гликозилирования антител наблюдается при воспалительных заболеваниях (аутоиммунитет, злокачественные новообразования), а также инфекционных и онкологических заболеваниях. Можно смело утверждать, что анализ гли- козилирования антител может стать многообещающим дополнением для совершенствования существующих стратегий диагностики различных заболеваний. В дополнение к этому, специфические изменения молекул гликанов иммуноглобулинов можно использовать в терапии заболеваний различного рода моноклональными антителами, что подчеркивает важную роль гликанов в формировании эффекторной функции антител. Всё это будет способствовать очередному прорыву в области разработки терапевтических препаратов и вакцин следующего поколения.

Ключевые слова: гликаны, иммуноглобулины, антитела, воспаление, сиалирование.

Abstract

PROSPECTS FOR THE USE OF SIALYLATED IMMUNOGLOBULINS IN DISEASE TREATMENT

YULIA V. MARKINA, ALEXANDER M. MARKIN, IGOR A. SOBENIN, ALEXANDER N. OREKHOV

Research Institute of Human Morphology, Moscow, Russian Federation

The central role of glycosylation has been well confirmed in numerous studies. In particular, a change in the glycosylation profile of antibodies is observed in infectious diseases, autoimmune dis-orders and cancer. The analysis of antibody glyco-sylation can lead to a promising improvement of existing strategies for the disease diagnosis. Specific changes in immunoglobulin glycan molecules can be used in the targeted therapy of multiple diseases, emphasizing the importance of glycans in antibody effector function. Altogether, use of si- alylated immunoglobulins may contribute to the next breakthrough in the development of therapeutic drugs and vaccines of the next generation.

Keywords: Glycans, immunoglobulins, antibodies, inflammation, sialylation.

Введение

Иммуноглобулины появились 462 миллиона лет назад и в процессе эволюции сформировали разнообразные виды молекулярных структур, обладающих антиген-распознающими, антигенсвя- зывающими и эффекторными функциями, заключенными в одной молекуле [1].

Выделяют 5 основных классов константных доменов тяжелых цепей иммуноглобулинов, которые определяют изотипы IgM, IgG, IgA, IgD и IgE. IgG можно разделить на 4 подкласса: IgG1, IgG2, IgG3 и IgG4, IgA - на IgA1 и IgA2, каждый из которых имеет свои биологические свойства [2].

Иммуноглобулины представляют собой гете- родимерные белки, состоящие из двух идентичных тяжелых цепей (Н) и двух идентичных легких цепей (L), соединенные между собой дис- ульфидными связями. Расположение дисуль- фидных связей между тяжелой и легкой цепями создает общеизвестную Y-образную форму, которая дополнительно стабилизируется гибкой шарнирной областью. Иммуноглобулины состоят из двух белковых доменов: Fab-фрагмента, отвечающего за связывание антигена, и Fc-фрагмента, который взаимодействует с Fc-рецептором на поверхности клетки и с некоторыми белками системы комплемента. Уникальная функция антител распознавать антигены обеспечена механизмом структурной перестройки антигенсвязывающего домена [3], а способностью Fc-домена связываться с различными клеточными рецепторами и белками системы комплемента, обеспечивая реализацию некоторых физиологических эффектов иммуноглобулинов -- опсонизации, лизиса клеток, дегрануляции тучных клеток, базофилов и эо- зинофилов [4].

Каждая тяжелая и легкая цепь обладает вариабельной (V) N-концевой областью, состоящей из 3 гипервариабельных областей (CDR) и 4 областей с относительно постоянной аминокислотной последовательностью. 3 CDR тяжелой цепи в сочетании с 3 CDR легкой цепи образуют анти- генсвязывающий домен [5]. Константные домены тяжелой цепи способны к перегруппировке, что обеспечивает такие функции, как активация комплемента или связывание с Fc-рецепторами [6]. Кроме геномной селекции тяжелых цепей, контролирующей вариации Fc-домена, существует второй механизм - гликозилирование. Данная модификация определяет функциональный потенциал антитела путем распознавания структуры Fc-области, изменения в которых меняют сродство антител к Fc-рецепторам [7].

Функциональные особенности гликозилирования иммуноглобулинов

Гликозилирование белков является достаточно динамичной посттрансляционной модификацией, играющей важную роль в регуляции взаимодействий молекул на клеточных поверхностях и функций секретируемых белков. Гликозилиро- вание может влиять на секрецию, стабильность, растворимость, упаковку, связывание, конформацию, биологическую активность и антиген- ность [8]. Гликаны составляют до 15% веса IgG и представляют собой неотъемлемую часть молекулы [9]. Присоединение гликанов к белкам происходит через одну из двух молекулярных связей, либо по остаткам аспарагина (N-глика- ны) или по сериновым/треониновым остаткам (O-гликаны). Однако в отличие от других белков, к которым могут быть добавлены десятки различных N- или O-связанных гликанов, гликаны IgG представлены достаточно консервативным составом N-связанных молекул сахаров [10].

IgG1 гликозилированы по аспарагину-297 в Fc-домене. Гликан антитела представлен гептасахаридом, состоящим из цепи из 2 остатков N-а- цетилглюкозамина (GlcNAc), к которому присоединена манноза, далее следует разветвление 1,3 и 1,6 маннозы и дополнительный остаток GlcNAc на каждую маннозу. К маннозе могут дополнительно присоединяться остатки GlcNAc, и далее до 2-х галактоз на каждый остаток и до 2-х терминальных сиаловых кислот. Разнообразие получившихся гликанов влияет на их функциональные способности. Гликаны можно классифицировать по количеству остатков галактозы: не имеющие остатков галактозы (G0), имеющие один остаток галактозы (G1) или два остатка галактозы (G2). Интересно, что при воспалительных заболеваниях наблюдается увеличение количества агалактозилированных (G0) гликанов [11], и наоборот, повышенный уровень галактозилирования связан со снижением воспалительной активности препаратов антител [12].

Характер гликозилирования IgG изменяется при многих аутоиммунных заболеваниях [13]. Ревматоидный артрит (РА) и первичный остеоартрит были первыми заболеваниями, для которых была однозначно установлена связь с изменением состава гликома IgG. Обнаружено, что у пациентов, страдающих данными патологиями, был более высокий уровень агалактозилированных видов IgG-гликанов, чем в контрольной группе [14]. В последующие годы многочисленные исследования подтвердили, что уровень агалактозилиро- ванных видов гликанов IgG связан не только с тяжестью симптомов, активностью заболевания и его прогрессированием, но также позволяет прогнозировать реакцию заболевания на терапию [15]. Исследования гликома антигенспецифиче- ских IgG при РА показали, что они отличаются у антител к циклическому цитруллинсодержащему пептиду (ACPA) от общих IgG1 как в сыворотке (больше асиалилированных видов), так и в синовиальной жидкости (больше агалактозилирован- ных и больше асиалилированных видов). Обнаружено, что гликопрофиль ACPA-IgG1 начинает меняться ещё до начала заболевания. У таких антител обнаружен более низкий уровень галакто- зилирования и более высокий уровень фукозили- рования ядра [16].

Пониженный уровень галактозилирования IgG обнаружен при многих аутоиммунных заболеваниях, а также связан с их прогрессированием, активностью и тяжестью симптомов [17; 18; 19].

Всё вышесказанное лишь подтверждает предположение, что агалактозилированные виды IgG обладают повышенной способностью активировать систему комплемента через лектиновый путь активации, тем самым способствуя развитию воспаления как основного патологического механизма аутоиммунных заболеваний [20]. В свою очередь, высокосиалилированные IgG благодаря своим противовоспалительным и иммуносупрес- сивным свойствам играют важную роль в иммунном гомеостазе и профилактике аутоиммунных и воспалительных заболеваний [21]. Недавно были получены данные о том, что высокий уровень си- алилирования, по крайней мере частично, может быть обусловлен эстрогеном, который индуцирует экспрессию гена St6gal1, что, возможно, объясняет разницу в частоте заболеваемости РА между женщинами и мужчинами, а также между женщинами до и после менопаузы [22]. Некоторые исследователи высказывают предположения, что развитие некоторых аутоиммунных заболеваний связано со снижением уровня сиалилирования Ig. В случаях отдельных нозологий установлена связь между снижением уровня сиалилирования общего IgG и/или аутоантител IgG и патологической активностью аутоантител [23], тяжестью симптомов заболевания [24], его активностью и течением [25], а также ответом на лечение [26].

Противовоспалительное действие внутривенного иммуноглобулина, используемого для лечения ревматоидного артрита (РА) и других воспалительных состояний, обусловлено популяцией антител, несущих 2,6 - сиалилированые гликаны Ig [27].

В отличие от аутоиммунных и аллоиммунных заболеваний, где антитела обычно участвуют в патологии заболевания, при инфекционных заболеваниях они призваны играть защитную роль. При большинстве инфекционных заболеваний показано изменение картины общего гликозилирова- ния IgG в плазме/сыворотке. У антиген-специ- фических IgG, анти-Gal IgG при гепатите B и C обнаружен специфический профиль гликозили- рования, который включает снижение галактози- лирования, а также ассоциируется с тяжестью заболевания и степенью ассоциированного повреждения печени при гепатите C [28]. Интересно, что у анти-оболочечных антител вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) замечено снижение га- лактозилирования, сиалилирования и фукозили- рования, а также снижение общего галактозили- рования IgG [29].

Изменчивость гликома Ig обнаружена при онкологических заболеваниях. Первым заболеванием, при котором исследовали гликозилирова- ние IgG, была множественная миелома, злокачественная опухоль из плазматических клеток (дифференцированных B-лимфоцитов, продуцирующих антитела). При этом заболевании наблюдается снижение галактозилирования IgG [30]. Обнаружено стадийно-зависимое повышение уровня терминально сиалилированных гликанов иммуноглобулинов [31]. Причем наблюдается интересная особенность: различные линии клонов В-клеток показывают различные профили глико- зилирования IgG [32]. Одно из недавних исследований показало, что различия в гликозилиро- вании IgG связаны с различными фазами заболевания (от доброкачественной до активной миеломы), а также связаны с реакцией на терапию [33]. Исследования гликозилирования IgG при различных других типах рака (например, (рак желудка, рак легкого, рак предстательной железы, немелкоклеточный рак, рак яичников) показали, что количество агалактозилированных IgG связано с прогрессированием заболевания и метастазиро- ванием [34, 35].

Профили гликозлирования Fab и Fc-фрагментов иммуноглобулинов

У здоровых людей от 15 до 25% Fab-фрагментов IgG гликозилированы [36]. Причем более равномерно, с более ограниченным гликановым профилем, чем Fc-домены. Изменение степени гликозилирования Fab-фрагментов IgG также отмечается при патологических состояниях человека. Например, увеличение содержания углеводов в Fab-фрагменте аутоантител при ревматоидном артрите до 80% было зафиксировано с одновременным двукратным снижением способности аутоантител связываться с антигеном. Исследования указывают на важность гликозилирования Fab при множественной миеломе [37]. При В-кле- точной лимфоме было обнаружено появление новых сайтов N-гликозилирования Fab-фрагмента. N-гликозилирование Fab-фрагментов модулирует способность IgG связывать антиген, влияет на период полужизни антител, способность антител к агрегации и образование иммунных комплексов. Механизм влияния гликанов на эти свойства антител неясен. В большинстве случаев для объяснения этих эффектов исследователи выдвигали гипотезу о влиянии углеводного остатка на конформацию вариабельной области антитела.

Потеря остатков сиаловой кислоты Fab-фрагментом приводило к потере противовоспалительной активности [38]. Было обнаружено, что сиа- лилирование Fab-фрагмента играет важную роль в модуляции выделения цитокинов плазмоци- тоидными дендритными клетками (pDCs). Так, обогащенные сиаловой кислотой Fab-фрагменты стимулировали выработку простагландина E2 моноцитами, что в конечном итоге подавляло секрецию IFN-a [39]. сиалированный иммуноглобулин патоген инфекционный

В то же время гораздо больше исследований было посвящено гликозилированию Fc-фрагмента по сравнению с Fab-фрагментом IgG. Через Fc-фрагмент антитело выполняет свои эффектор- ные функции: индукция фагоцитоза, ADCC (антитело-зависимая клеточная цитотоксичность), CDC (комплемент-зависимая цитотоксичность), ADCP (антитело-зависимый клеточный фагоцитоз) и модуляция противовоспалительной активности [40]. У людей есть шесть классических рецепторов Fc (FcgRI, FcgRIIa, FcgRIIb, FcgRIIc, FcgRIIIa и FcgRIIIb), обнаруженных в различных комбинациях на всех врожденных иммунных клетках на разных уровнях экспрессии [41].

Иммуноглобулины и Fc фрагменты используются в терапии некоторых заболеваний, например, при их введении они блокируют аутоантителозависимые эффекторные функции [42]. Изучение роли гликозилирования Fc-фрагмента для активности внутривенных иммуноглобулинов показало, что отщепление концевых остатков сиаловой кислоты Fc-фрагмента делает внутривенные иммуноглобулины неспособными проявить противовоспалительную активность. И наоборот, противовоспалительная активность может быть повышена после сиалирования концевых остатков гликанов, связанных с Fc-фрагментом [43].

Использование искусственно сиалированных Fc-фрагментов подтверждает предположение о противовоспалительной активности сиалирова- ния антител [44]. Механизм этого воздействия до конца не изучен, но существует несколько вероятных объяснений. Одна модель предполагает, что сиалирование стерически ограничивает область Fc-фрагмента, уменьшая сродство антитела к классическим Fc-рецепторам, одновременно повышая сродство к неклассическому Fc-рецептору DC-SIGN (мембранный белок, рецептор, продукт гена CD209). Было показано, что связывание DC- SIGN управляет каскадом, запускающим синтез интерлейкина-33 (IL-33) дендритными клетками, IL-4 базофилами и, в конечном итоге, активацию ингибирующего FCgRIIb на макрофагах, тем самым неспецифично подавляя их провоспалитель- ную активацию [45]. Однако другие структурные анализы показывают, что сиалилирование лишь незначительно изменяет структуру Fc-домена [46] и минимально влияет на связывание с DC- SIGN [47]. Другие предлагаемые модели включают участие рецепторов, таких как Siglec/CD22 [48], иммунорецептор лектин-дендритных клеток С-типа [49] и Fc-рецептороподобный белок 5 [50], которые могут связывать сиалилированные структуры, чтобы стимулировать противовоспалительное действие.

Существенным дополнением являются данные об изменении с возрастом содержания агалакто- зилированных форм Fc фрагмента IgG в сыворотке крови человека. Известно, что количество G0 форм увеличивается, а доля сиалированных форм уменьшается. Интересно, что вызванное беременностью галактозилирование и сиалилирова- ние IgG улучшает течение ревматоидного артрита. Также наблюдается снижение галактозы при системных васкулитах, таких как гранулематоз Вегенера и микроскопический полиангиит. Терминальное сиалилирование IgG-гликана можно рассматривать как защитную реакцию при аутоиммунных заболеваниях. Таким образом, введение IgG с сиалированным гликаном в организм оказывает мощное противовоспалительное действие, которое можно использовать в качестве основы для создания гликомодифицированных терапевтических моноклональных антител.

Заключение

Активное применение лекарственных средств на основе иммуноглобулинов и их производных ставит перед специалистами всех уровней новые задачи. Понимание механизма, лежащего в основе терапевтических эффектов, невозможно без изучения фундаментальных принципов функционального воздействия данных молекул на тот или иной физиологический аспект организма. Рассмотренная нами по- странсляционная модификация иммуноглобулинов, а именно различные варианты гликози- лирования, открывает широчайшие возможности как в диагностике иммунологических нарушений, так и в их терапии. Известные данные свидетельствуют о том, что этот процесс активно контролируется на молекулярном уровне и играет одну из определяющих ролей в регуляции и функциональной активности антител. Однако механизмы, лежащие в основе этого контроля, до конца не понятны. Будущие исследования должны быть направлены на изучение передачи сигналов во время продукции иммуноглобулинов В-клетками, что позволит разгадать механизмы, лежащие в основе специфического гликозилирования антител. Это позволит установить ключевые пути реализации эффек- торной активности антител. Полученные таким образом данные дадут новый толчок в разработке терапевтических препаратов и вакцин следующего поколения. Всё это откроет новую главу в терапии широкого спектра инфекционных, онкологических и аутоиммунных заболеваний.

Литература / References:

1. Cooper MD, Alder MN. The evolution of adaptive immune 8. systems. Cell. 2006;124(4):815-822.

2. Schroeder HW Jr, Cavacini L. Structure and function of immunoglobulins. JAllergy Clin Immunol. 2010;125(2):41-52.

3. Vidarsson G, Dekkers G, Rispens T. IgG subclasses and allotypes: from structure to effector functions. Front Immunol. 2014;5:520.

4. Market E, Papavasiliou FN. V(D)J recombination and the evolution of the adaptive immune system. PLoS Biol. 2003;1(1):E16.

5. Bournazos S, Ravetch JV. Fcgamma receptor function and the design of vaccination strategies. Immunity. 2017;47(2):224-233.

6. Rajewsky K, Forster I, Cumano A. Evolutionary and somatic selection of the antibody repertoire in the mouse. Science. 1987;238(4830):1088-1094.

7. Nimmerjahn F, Ravetch JV. Divergent immunoglobulin g subclass activity through selective Fc receptor binding. Science. 2005;310(5753):1510-1512.

8. Dwek RA. Biological importance of glycosylation. Dev Biol Stand. 1998;96:43-47.

9. Arnold JN, Wormald MR, Sim RB, Rudd PM, Dwek RA. The impact of glycosylation on the biological function and structure of human immunoglobulins. Annu Rev Immunol. 2007;25:21-50.

10. Jennewein MF, Alter G. The immunoregulatory roles of antibody glycosylation. Trends Immunol. 2017;38(5):358-372.

11. Goulabchand R, Vincent T, Batteux F, Eliaou JF, Guilpain P. Impact of autoantibody glycosylation in autoimmune diseases. Autoimmun. 2014;13(7):742-750.

12. Schwab I, Nimmerjahn F. Intravenous immunoglobulin therapy: how does IgG modulate the immune system? Nat Rev Immunol. 2013;13(3):176-189.

13. Seeling M, Bruckner C, Nimmerjahn F. Differential antibody glycosylation in autoimmunity: sweet biomarker or modulator of disease activity? Nat Rev Rheumatol. 2017;13(3):621-630.

14. Parekh RB, Dwek RA, Sutton BJ, Fernandes D., Leung A, Stan- worth D, Rademacher TW, Mizuochi T, Taniguchi T, Matsuta K. Association of rheumatoid arthritis and primary osteoarthritis with changes in the glycosylation pattern of total serum IgG. Nature. 1985;316(6027):452-457.

15. Gudelj I, Salo PP, Trbojevic-Akmacic I, Albers M, Primorac D, Perola M, Lauc G. Low galactosylation of IgG associates with higher risk for future diagnosis of rheumatoid arthritis during 10years of follow-up. Biochim Biophys Acta Mol Basis 27. Dis. 2018;1864(6 PtA):2034-2039.

16. Rombouts Y, Ewing E, van de Stadt LA, Selman MH, Trouw LA, Deelder A, Huizinga TW, Wuhrer M, van Schaardenburg D, Toes 28. RE, Scherer HU. Anti-citrullinated protein antibodies acquire a pro-inflammatory Fc glycosylation phenotype prior to the onset of rheumatoid arthritis. Ann Rheumatic Dis. 2015;74(1):234-241.

17. Fokkink WJ, Selman MH, Dortland JR, Durmus B, Kuitwaard K, Huizinga R, van Rijs W, Tio-Gillen AP, van Doom PA, Deelder 29. AM, Wuhrer M, Jacobs BC. IgG Fc N-glycosylation in Guil- lain-Barre syndrome treated with immunoglobulins. J Proteome Res. 2014;13(3):1722-1730.

18. Trbojevic Akmacic I, Ventham NT, Theodoratou E, Vuckovic F, Kennedy N., Kristic J, Nimmo ER, Kalla R, Drummond H, Stambuk J, Dunlop MG, Novokmet M, Aulchenko Y, Gornik 30. O, Campbell H, Pucic Bakovic M, Satsangi J, Lauc G; IBD- BIOM Consortium. Inflammatory bowel disease associates with proinflammatory potential of the immunoglobulin G glycome. Inflammatory Bowel Dis. 2015;21(6):1237-1247.

19. Strassheim D, Karoor V, Stenmark K, Verin A, Gerasimovska- ya E. A current view of G protein-coupled receptor-mediated signaling in pulmonary hypertension: finding opportunities for 32. therapeutic intervention. Vessel Plus. 2018;2. pii: 29.

20. Troelsen LN, Jacobsen S, Abrahams JL, Royle L, Rudd PM, Narvestad E, Heegaard NH, Garred P. IgG glycosylation changes and MBL2 polymorphisms: associations with markers of systemic 33. inflammation and joint destruction in rheumatoid arthritis. J Rheumatol. 2012;39:463-469.

21. Mihai S, Nimmerjahn F. The role of Fc receptors and complement in autoimmunity. Autoimmun Rev. 2013;12(6):657-60.

22. Engdahl C, Bondt A, Harre U, Raufer J, Pfeifle R, Camponeschi A, Wuhrer M, Seeling M, Martensson IL, Nimmerjahn F, Kro- nke G, Scherer HU, Forsblad-d'Elia H, Schett G. Estrogen induces St6gal1 expression and increases IgG sialylation in mice and 35. patients with rheumatoid arthritis: a potential explanation for the increased risk of rheumatoid arthritis in postmenopausal women. Arthritis Res Ther. 2018;20(1):84.

23. Matsumoto A, Shikata K, Takeuchi F, Kojima N, Mizuochi T. 36. Autoantibody activity of IgG rheumatoid factor increases with decreasing levels of galactosylation and sialylation. J Biochem. 2000;128(4):621-628.

24. Fokkink WJ, Selman MH, Dortland JR, Durmus B, Kuitwaard K, Huizinga R, van Rijs W, Tio-Gillen AP, van Doom PA, Deelder AM, Wuhrer M, Jacobs BC. IgG Fc N-glycosylation in Guil- lain-Barre syndrome treated with immunoglobulins. J Proteome Res. 2014;13(3):1722-1730.

25. Kemna MJ, Plomp R, van Paassen P, Koeleman CAM, Jansen BC, Damoiseaux J, Cohen Tervaert JW, Wuhrer M. Galactosyla- tion and sialylation levels of IgG predict relapse in patients with PR3-ANCA associated vasculitis. EBioMedicine. 2017;17:108-118.

26. Ogata S, Shimizu C, Franco A, Touma R, Kanegaye JT, Choud-hury BP, Naidu NN, Kanda Y, Hoang LT, Hibberd ML, Tremoulet AH, Varki A, Burns JC. Treatment response in kawasaki disease is associated with sialylation levels of endogenous but not therapeutic intravenous immunoglobulin g. PLoS One. 2013;8(12):e81448.

27. Anthony RM, Nimmerjahn F, Ashline DJ, Reinhold VN, Paulson JC, Ravetch JV. Recapitulation of IVIG anti-inflammatory activity with a recombinant IgG Fc. Science. 2008;320(5874):373-376.

28. Mehta AS, Long RE, Comunale MA, Wang M, Rodemich L, Kra- kover J, Philip R, Marrero JA, Dwek RA, Block TM. Increased levels of galactose-deficient anti-Gal immunoglobulin G in the sera of hepatitis C virus-infected individuals with fibrosis and cirrhosis. J Virol. 2008;82(3):1259-1270.

29. Ackerman ME, Crispin M, Yu X, Baruah K, Boesch AW, Harvey DJ, Dugast AS, Heizen EL, Ercan A, Choi I, Streeck H, Nigrovic PA, Bailey-Kellogg C, Scanlan C, Alter G. Natural variation in Fc glycosylation of HIV-specific antibodies impacts antiviral activity. J Clin Invest. 2013;123(5):2183-2192.

30. Aurer I, Lauc G, Dumic J, Rendic D, Matisic D, Milos M, Hef- fer-Lauc M, Flogel M, Labar B. Aberrant glycosylation of Igg heavy chain in multiple myeloma. Collegium Antropologicum. 2007;31(1):247-251.

31. Fleming SC, Smith S, Knowles D, Skillen A, Self CH. Increased sialylation of oligosaccharides on IgG paraproteins - a potential new tumour marker in multiple myeloma. J Clin Pathol. 1998;51(11):825-830.

32. Mimura Y, Ashton PR, Takahashi N, Harvey DJ, Jefferis R. Contrasting glycosylation profiles between Fab and Fc of a human IgG protein studied by electrospray ionization mass spectrometry. J Immunol Methods. 2007;326(1-2):116-126.

33. Mittermayr S, Le GN, Clarke C, Millan Martin S, Larkin AM, O'Gorman P, Bones J. Polyclonal Immunoglobulin G N-Gly- cosylation in the pathogenesis of plasma cell disorders. J Pro- teome Res. 2017;16(2):748-762.

34. Arnold JN, Saldova R, Galligan MC, Murphy TB, Mimura-Kimu- ra Y, Telford JE, Godwin AK, Rudd PM. Novel glycan biomarkers for the detection of lung cancer. J Proteome Res. 2011;10(4):1755- 1764.

35. Alley WR Jr, Vasseur JA, Goetz JA, Svoboda M, Mann BF, Matei DE, Menning N, Hussein A, Mechref Y, Novotny MV. N-linked glycan structures and their expressions change in the blood sera of ovarian cancer patients. J Proteome Res. 2012;11:2282-2300.

36. van de Bovenkamp FS, Hafkenscheid L, Rispens T, Rombouts Y. The emerging importance of IgG fab glycosylation in immunity. J Immunol. 2016;196(4):1435-1441.

37. Hashimoto R, Toda T, Tsutsumi H, Ohta M, Mori M. Abnormal N-glycosylation of the immunoglobulin G kappa chain in a multiple myeloma patient with crystalglobulinemia: case report. Int J Hematol. 2007;85(3):203-206.

38. Kдsermann F, Boerema DJ, Rьegsegger M, Hofmann A, Wymann S, Zuercher AW, Miescher S. Analysis and functional consequences of increased Fab-sialylation of intravenous immunoglobulin (IVIG) after lectin fractionation. PLoS One. 2012;7(6):e37243.

39. Wiedeman AE, Santer DM, Yan W, Miescher S, Kдsermann F, Elkon KB. Contrasting mechanisms of interferon-alpha inhibition by intravenous immunoglobulin after induction by immune complexes versus Toll-like receptor agonists. Arthritis Rheum. 2013;65(10):2713-2723.

40. Takai T. Roles of Fc receptors in autoimmunity. Nat Rev Immunol. 2002;2(8):580-592.

41. Pincetic A, Bournazos S, DiLillo D. Maamary J, Wang TT, Dahan R, Fiebiger BM, Ravetch JV. Type I and type II Fc receptors regulate innate and adaptive immunity. Nat Immunol. 2014;15(8):707- 716.

42. Debre M, Bonnet MC, Fridman WH, Carosella E, Philippe N, Reinert P, Vilmer E, Kaplan C, Teillaud JL, Griscelli C. Infusion of Fc gamma fragments for treatment of children with acute immune thrombocytopenic purpura. Lancet. 1993;342(8877):945- 949.

43. Kaneko Y, Nimmerjahn F, Ravetch JV. Anti-inflammatory activity of immunoglobulin G resulting from Fc sialylation. Science. 2006;313(5787):670-673.

44. Washburn N, Schwab I, Ortiz D, Bhatnagar N, Lansing JC, Medeiros A, Tyler S, Mekala D, Cochran E, Sarvaiya H, Garofalo K, Meccariello R, Meador JW, Rutitzky L, Schultes BC, Ling L, Avery W, Nimmerjahn F, Manning AM, Kaundinya GV, Bosques CJ. Controlled tetra-Fc sialylation of IVIg results in a drug candidate with consistent enhanced anti-inflammatory activity. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015;112(11):E1297-306.

45. Anthony RM, Kobayashi T, Wermeling F, Ravetch JV. Intravenous gammaglobulin suppresses inflammation through a novel T(H)2 pathway. Nature. 2011;475(7354):110-113.

46. Ahmed AA, Giddens J, Pincetic A, Lomino JV, Ravetch JV, Wang LX, Bjorkman PJ. Structural characterization of anti-inflammatory immunoglobulin G Fc proteins. J Mol Biol. 2014;426(18):3166- 3179.

47. Yu X, Vasiljevic S, Mitchell DA, Crispin M, Scanlan CN. Dissecting the molecular mechanism of IVIg therapy: the interaction between serum IgG and DC-SIGN is independent of antibody gly- coform or Fc domain. J Mol Biol. 2013;425(8):1253-1258.

48. Seite JF, Cornec D, Renaudineau Y, Youinou P, Mageed RA, Hillion S. IVIg modulates BCR signaling through CD22 and promotes apoptosis in mature human B lymphocytes. Blood. 2010;116(10):1698-1704.

49. Massoud AH, Yona M, Xue D, Chouiali F, Alturaihi H, Ablona A, Mourad W, Piccirillo CA, Mazer BD. Dendritic cell im- munoreceptor: a novel receptor for intravenous immunoglobulin mediates induction of regulatory T cells. J Allergy Clin Immunol. 2014;133(3):853-863.e5.

50. Haga CL, Ehrhardt GR, Boohaker RJ, Davis RS, Cooper MD. Fc receptor-like 5 inhibits B cell activation via SHP-1 tyrosine phosphatase recruitment. ProcNatlAcadSci USA. 2007;104(23):9770- 9775.

Сведения об авторах

Маркина Юлия Владимировна, кандидат медицинских наук, научный сотрудник лаборатории инфекционной патологии и молекулярной микроэкологии ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека» (Россия, Москва).

Маркин Александр Михайлович, кандидат медицинских наук, научный сотрудник лаборатории инфекционной патологии и молекулярной микроэкологии ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека» (Россия, Москва).

Собенин Игорь Александрович, доктор медицинских наук, руководитель лаборатории медицинской генетики ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии» (Россия, г. Москва).

Орехов Александр Николаевич, доктор биологических наук, профессор, заведующий лабораторией ангиопатологии ФГБНУ «Научно-исследовательский институт общей патологии и патофизиологии» (Россия); ведущий научный сотрудник лаборатории инфекционной патологии и молекулярной микроэкологии ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека (Россия, Москва).

Dr. Yulia V. Markina, MD, PhD, Research Fellow, Laboratory of Infectious Pathology and Molecular Microecology, Research Institute of Human Morphology (Moscow, Russian Federation).

Dr. Alexander M. Markin, MD, PhD, Research Fellow, Laboratory of Infectious Pathology and Molecular Microecology, Research Institute of Human Morphology (Moscow, Russian Federation).

Dr. Igor A. Sobenin, MD, DSc, Head of the Laboratory for Medical Genetics, National Medical Cardiology Research Center (Moscow, Russian Federation).

Prof. Alexander N. Orekhov, MD, DSc, Professor, Head of the Laboratory of Angiopathology, Research Institute of Pathology and Pathophysiology (8, Baltiyskaya Street, 125315, Moscow, Russian Federation); Senior Researcher, Laboratory of Infectious Pathology and Molecular Microecology, Research Institute of Human Morphology (Moscow, Russian Federation).

Размещено на Allbest.ru