Вплив похідних 1,2,4-триазолу на сполучені системи: відновлені тіоли/no in vitro
Дослідження антиоксидантних властивостей та впливу на тіол-дисульфідну систему суспензії нейронів в дослідах in vitro за умов моделювання оксидативого та нітрозуючого стресу. Додавання до інкубаційного середовища динітрозильного комплексу заліза.
Рубрика | Медицина |
Вид | статья |
Язык | украинский |
Дата добавления | 05.10.2018 |
Размер файла | 43,2 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Размещено на http://www.allbest.ru/
УДК 616.12-008.331.1:616-092.41-085.615.225.2.615.036.6
Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця
Вплив похідних 1,2,4-триазолу на сполучені системи: відновлені тіоли/no in vitro
Нагорна О.О.
Анотація
антиоксидантний нейрон інкубаційний динітрозильний
Проводили дослідження антиоксидантних властивостей та впливу на тіол-дисульфідну систему суспензії нейронів в дослідах in vitro за умов моделювання оксидативого та нітрозуючого стресу шляхом додавання до інкубаційного середовища динітрозильного комплексу заліза в токсичній концентрації 250 ммоль/л за Методичними рекомендаціями ДЕЦ МОЗ України. При нітрозуючому оксидативному стресі в нейрональній суспензії встановили зростання вмісту показників окислювальної модифікації білків (АФГ, КФГ), окислювального глутатіону, нітротирозину та пониження антиоксидантної активності, активності глутатіонредуктази, глутатіон-трансферази та рівня відновленого глутатіону. Додавання в суспензію нейронів 11 тіолвміщуючих сполук показало, що всі використані сполуки, за винятком двох, за антиоксидантною активністю перевищували референт-препарати - метіонін, унітіол, тіосульфат натрію, дибунол, альфа-токоферол. Тіолвміщуючі сполуки понижували вміст нітротирозину, стабільного ендогенного продукту окиснення пероксинітриту, що використовується в якості маркера пошкодження. Тіолвміщуючі сполуки понижували вміст окисненого глутатіону та підвищували відновленого, який розглядається як інгібітор активних форм кисню. Тіолвмісні сполуки, особливо тіотриазолін та ангіолін, зберігали активність глутатіон-трансферази та глутатіонредуктази, що стверджує їх антиоксидантну дію.
Ключові слова: тіолвмісні сполуки, нітрозуючий, оксидативний стрес, маркери окислювального пошкодження білків, тіолдисульфідна система та система оксиду азоту.
Реферат
ВЛИЯНИЕ ПРОИЗВОДНЫХ 1,2,4-ТРИАЗОЛА НА СОВМЕЩЕННЫЕ СИСТЕМЫ: ВОССТАНОВЛЕННЫЕ ТИОЛЫ/NO IN VITRO Нагорная E.A.
Проводили исследования антиоксидантных свойств и влияния на тиол-дисульфитную систему суспензии нейронов в экспериментах in vitro в условиях моделирования оксидативного и нитрозирующего стресса путем внесения в инкубационную среду динитрозильного комплекса железа в токсической концентрации 250 ммоль/л согласно Методическим рекомендациям ДЭЦ МЗ Украины. При нитрози- рующем оксидативном стрессе установили в нейрональной суспензии повышение содержания показателей окислительной модификации белков (АФГ, КФГ), окисленного глутатиона, нитротирозина и понижение антиоксидантной активности, активности глутатионредуктази, глутатион^-трансферазы и уровня восстановленного глутатиона. Внесение в нейрональную суспензию 11 тиолсодержащих соединений показало, что все используемые соединения, за исключением двух, по антиоксидантному действию превышали референт-препараты - метионин, унитиол, тиосульфат натрия, дибунол, альфа-токоферол. Тиолсодержащие соединения понижали содержание нитротизорина, стабильного эндогенного продукта окисления пероксинитрита, что используется в качестве маркера NO-зависимого повреждения. Тиолсодержащие соединения снижали содержание окисленного глутатиона и повышали восстановленного, который рассматривается как ингибитор активных форм кислорода. Тиолсодержащие соединения, особенно тиотриазолин и ангиолин, сохраняли активность глутатион-S- трансферазы и глутадионредуктазы, что подтверждает их антиоксидантное действие.
Ключевые слова: тиолсодержащие соединения, нитрозирующий, оксидативный стресс, маркеры окислительного повреждения белков, тиол-дисульфидная система, система оксида азота.
Summary
INFLUENCE OF 1,2,4-TRIAZOL DERIVATIVES ON COMBINATIVE SYSTEMS: REDUCED THIOLS/NO IN VITRO Nagornaya Ye.A.
It has been found out that the triazol derivative thiotriazolinum possesses cardio-, neuro-, hepatoprotec- tive action. It has been shown that functional disturbances are connected with endothelial dysfunction and the changing in thiol-disulfide system markers and the nitric oxide system. The aim of the study is to carry out screening of 1,2, 4-triazole derivatives by their antioxidant action and influence on the thiol-disulfide neuron system in oxidative and nitrosative stress. We studied antioxidant properties and effects on the thiol- disulfite system of neuron suspension in experiments in vitro by modelling of oxidative and nitro-oxidative stress by introducing the iron dinitrosyl complex in a toxic concentration of 250 mmol/l into the incubation medium according to the Methodological Recommendations of the Ukrainian Ministry of Public Health. During nitro-oxidative stress, we found an increase in the content of oxidative modification parameters of proteins (APG, KFG), oxidized glutathione, nitrotirozine and reduction of antioxidant activity, glutathione reductase activity, glutathione-S-transferase and the level of reduced glutathione in the neuronal suspension. The introduction of 11 thiol-containing compounds into the neuronal suspension showed that all the compounds used, with the exception of two, had antioxidant effects exceeding the reference drugs as methionine, unitiol, sodium thiosulfate, dibunol, and alpha-tocopherol. Thiol-containing compounds reduced the content of nitro- tisorin, a stable endogenous oxidation product of peroxynitrite, which is used as a marker for NO-dependent damage. Thiol-containing compounds lowered the content of oxidized glutathione and increased the content of reduced oxidized glutathione, which is considered as an inhibitor of reactive oxygen species. Thiol- containing compounds, especially thiotriazolin and angiolin, retained the activity of glutathione-S-transferase and glutathione reductase that confirms their antioxidant effect.
Key words: thiol-containing compounds, nitro-oxidative stress, markers of protein oxidative damage, thiol disulfide system, nitric oxide system.
В Запорізькому державному медичному університеті проводився цілеспрямований пошук біологічно активних сполук серед п'яти- та шестичленних азагетероциклічних сполук і їх конденсованих аналогів. Внаслідок цих досліджень серед похідних триазолу був виявлений лікарський засіб, який отримав назву «тіотриазолін». Тіотриазолін - високоактивний препарат з широким спектром дії, що має кардіо-, нейро- та гепатопротекторну дію [6]. Встановлено, що порушення метаболізму і функції життєво важливих органів пов'язані з дисфункцією ендотелію, яка, в свою чергу, обумовлена зміщеннями тіолдисульфідної системи та системи оксиду азоту [4], що є підставою для застосування тіолових сполук для попередження змін метаболізму і функції ендотелію[1]. Тому пошук нових ендоте- ліопротекторів доцільно проводити серед похідних триазолу з урахуванням їх впливу на маркери окислювального пошкодження білків та тіол- дисульфідної системи [2].
Мета дослідження
Провести скринінг похідних 1,2,4-триазолу за наявністю дії та впливу на тіол-дисульфідну систему нейронів при оксидативному і нітрозуючому стресі in vitro.
Матеріали і методи дослідження
Для досліджень in vitro використовували 95 безпородних білих щурів-самців у віці 4 тижнів і масою 80 - 100 г., що утримувалися у віварії НМУ ім. О.О. Богомольця відповідно до положень Європейської конвенції про захист безхребетних тварин, які використовуються для експериментів та інших наукових цілей (Страсбург, 2005), «Загальних етичних принципів експериментів на тваринах», ухвалених П'ятим національним конгресом з біоетики, Київ, 2013.
Виділення збагачених фракцій нейронів і нейроглії проводилось у два етапи. На першому етапі мозкова тканина дезінтегрується з метою одержання клітинної суспензії, на другому - здійснюється диференціальне ультрацентрифугування у градієнті щільності сахарози і фіколу. Для одержання нейронів і нейроглії щурів декапітують і швидко вилучають мозок. Кору головного мозку відокремлюють від білої речовини, подрібнюють і переносять у розчин, що містить 7,5% полівінілпіролідону (ПВП), 1% бичачий сироватковий альбумін (БСА) і 10 мМСаСІ2. Отриману суспензію фільтрують через три сита під невеликим тиском для зменшення втрат нейрональних клітин. Після послідовного пропускання через сита клітинну суспензію нашаровують на градієнт, що складається з 2 видів сахарози -- 1М і 1,75М. Центрифугування проводять при 60000g протягом 15 хв (при температурі 10°С). У результаті центрифугування одержують два шари і щільний осад. Верхній шар представлений залишками мієлінових оболонок, другий шар складається з гліальних і нейрональних клітин. Осад, представлений тілами нейронів, відповідав ступеню чистоти 90%. Надалі проводять додаткове очищення другого шару шляхом другого фільтрування й ультрацентрифугування. Виділені нейрональні клітини відмивають від сахарози й альбуміну охолодженим фізіологічним розчином (температура розчину 4 °С). Отриману в такий спосіб суспензію ділять на серії:
- інтактна: суспензія нейронів без внесення ініціюючих агентів і досліджуваних потенційних нейропротекторів;
- контрольна: суспензія нейронів, до якої додають агенти, що ініціюють оксидативний і нітро- зуючий стреси;
- з метою моделювання нітрозуючого стресу, в інкубаційне середовище у токсичній концентрації (0,1-5 мкМ) вносять динітрозольний комплекс заліза (DNIC). DNIC, на відміну від NO, виступає більш сильним нітрозилюючим агентом, взаємодіє з тіолами білків, гістидином, аспартатом, глутаміном, метіоніном, цистеїном, глутатіоном і утворює N- та S-нітрозотіоли в токсичній зоні 250 мкмоль.
За умов нормального функціонування клітин, фізіологічних концентрацій оксиду азоту та відсутності дефіциту кисню утворення DNIC є необхідною умовою для транспорту активних форм азоту. Токсичний вплив цієї сполуки на метаболізм клітин проявляється лише при розвитку оксидативного стресу. Значні концентрації DNlC викликають оборотне, а на більш пізніх етапах, незворотне окиснення та нітрозилювання значної частини регуляторних та транспортних білків цитоплазми, внутрішньої та зовнішньої клітинної мембрани. За таких умов відбувається окислення металів змінної валентності - міді, цинку, заліза, які знаходяться в активних центрах білків-ферментів, що призводить до їх інактивації. Особливо важливими вказані перетворення є для ферментів, що задіяні у підтримці антиоксидантного захисту.
Для оцінки інтенсивності оксидативного стресу в цитозольній фракції гомогенату головного мозку визначали маркери окисної модифікації білка - альдегідфенілгідразони (АФГ) і кетонфенілгідразони (КФГ).
Біохімічний метод оцінки заснований на реакції взаємодії окислених амінокислотних залишків з 2,4-динітрофенілгідразином (2,4-ДНФГ) з утворенням 2,4-динітрофенілгідразонів. Для цього до 0,2 мг цитозольної та мітохондріальної фракцій клітин додавали 0,1 мл 25% трихлороцтової кислоти та центрифугували 30 хв при 3000 об/хв. Далі до осаду додавали 1 мл 2,2% ДНФГ та інкубують 1 год при температурі 37°С, потім повторно центрифугували 10 хв при 3000 об/хв. Осад, що утворився, промивають 3 мл етилацетату, розчиняють у 3 мл 50% розчину сечовини, додають 1 краплю 7% розчину соляної кислоти та розводять дистильованою водою в 12 разів. Підготований таким чином розчин надалі досліджували на спектрофотометрі, визначаючи вміст АФГ при довжині хвилі 274 нм, КФГ - при 363 нм [7].
Глутатіон відновлений встановлювали за методом, заснованим на взаємодії ортофталієвого ангідриду з відновленим глутатіоном, унаслідок чого утворюється флюоресціюючий комплекс, який реєструється флюорометрично при Ex/Em=340/420 нм. Глутатіон розраховували за калібрувальною кривою [7]. Глутатіонредуктаза (ГР) відновлює дисульфідний зв'язок окисненого глутатіону GSSG до його сульфгідрильної форми GSH. Відновлення глутатіону відбувається за рахунок енергії НАДФ-Н, що утворюється в пен- тозному циклі ГР. Є одним з основних ферментів тіол-дисульфідної системи.
Глутатіон-трансфераза (Г-S-T) входить до родини ферментів, що нейтралізують токсичний вплив різних гідрофобних і електрофільних сполук шляхом їх кон'югації з відновленим глутатіоном. Г-S-T локалізована переважно у цитозолі клітин. Основна функція GST -- захист клітини від цитотоксичних продуктів окисної модифікації білкових молекул, ліпідів шляхом їх відновлення, приєднання до субстрату молекули глутатіону або нуклеофільного заміщення гідрофобних груп. Є одним із ключових ферментів як антиоксидантної, так і тіол-дисульфідної систем. Зміна активності даного ензиму відображає спрямованість, перебіг патологічного процесу, а також ефективність лікування. Принцип методу: активність глутатіон-Б-трансферази визначають за швидкістю утворення глутатіон-Б-кон'югатів між GSH і 1-хлор-2,4- динітробензолом (ХДНБ). Збільшення концентрації кон'югатів у ході реакції реєструють спектрофотометрично при довжині хвилі 340 нм (максимум поглинання глутатіон-Б- ХДНБ).
Для оцінки антиоксидантної активності (АОА) за гальмуванням нітрозуючого стресу визначали ступінь гальмування продуктів окислювальної модифікації білку - АФГ, КФГ в пробах [7].
Нітротирозин є специфічним маркером окислювального стресу. Його визначали в гомогенаті серця твердофазним імуносорбентним методом за набором фірми ELISA та виражали в нм/г тканини. Дослідження, проведені на відібраних 11 сполуках - похідних 1,2,4-триазолу - 3-метил- 1,2,4-триазоліл-5-тіокарбонових кислотах та їх солях.
Достовірність відмінностей між експериментальними групами оцінювали за допомогою t- критерію Стьюдента та U-критерію Уїтні-Манна. Для всіх видів аналізу статистично значимими
вважали відмінності при р<0,05.
Результати дослідження та їх обговорення
Встановлено, що додавання вказаного токсичного агента (DNIC) викликало розвиток нітро- зуючого та оксидативного стресу. Про це свідчить підвищення маркерів окисного пошкодження білків - альдегідфенілгідразонів (АФГ) та кетонфенілгідразонів (КФГ), а також збільшення вмісту нітротирозину (табл. 1 - 3). Так, встановлено підвищення на 93,3% рівня АФГ у нейрональній суспензії на 60 хвилину інкубації. Внесення до інкубаційного середовища досліджуваних сполук показало наявність у них здатності обмежувати реакції оксидативного стресу, що спричинені додаванням DNIC. Найбільш активними у цьому відношенні виявилися сполуки під робочим шифром 1.2 (тіотриазолін) та 1.11 (ангіолін), які обмежували окисну деструкцію білків і накопичення їх альдегідних похідних на 35,9 та 41,5%% відповідно. Серед інших сполук досить активними виявилися сполуки з шифром 1.6 (на 30,3%), 1.7 (на 33,8%) та 1.9 (на 28,3%). Наявна антиоксидантна активність у 5 перерахованих сполуках підтверджується статистично значимими отриманими результатами (табл. 1). Всі використані сполуки, окрім 1,2,4-триазолу та 1.10, за силою своєї антиоксидантної активності перевищували використані референс-препарати - метіонін, унітіол, тіосульфат натрію, дибунол та а-токоферол.
Таблиця 1. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
АФГ, у.о./г білка |
АОА, % |
|
1 |
інтакт |
- |
6,41 ± 1,84 |
- |
|
2 |
контроль |
- |
12,39 ± 1,02# |
- |
|
3 |
1,2,4-триазол |
0,38 |
10,31 ± 0,96 |
16,8 |
|
4 |
1.1 |
2,5 |
9,48 ± 0,58 |
23,5 |
|
5 |
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
7,94 ± 0,92* |
35,9 |
|
6 |
1.3 |
0,38 |
9,97 ± 0,84 |
19,5 |
|
7 |
1.4 |
0,38 |
9,06 ± 0,86 |
26,9 |
|
8 |
1.5 |
2,5 |
9,63 ± 0,77 |
22,3 |
|
9 |
1.6 |
0,38 |
8,64 ± 0,91* |
30,3 |
|
10 |
1.7 |
2,5 |
8,2 ± 1,05* |
33,8 |
|
11 |
1.8 |
2,5 |
9,22 ± 0,97 |
25,6 |
|
12 |
1.9 |
2,5 |
8,88 ± 0,74* |
28,3 |
|
13 |
1.10 |
2,5 |
10,46 ± 1,03 |
15,6 |
|
14 |
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
7,25 ± 0,84* |
41,5 |
|
15 |
метіонін |
0,78 |
9,91 ± 0,93 |
20,0 |
|
16 |
унітіол |
0,78 |
9,86 ± 0,81 |
20,4 |
|
17 |
тіосульфат натрію |
15,6 |
10,2 ± 1,18 |
17,7 |
|
18 |
дибунол |
3,0 |
9,46 ± 0,92 |
23,6 |
|
19 |
а-токоферол |
2,5 |
9,81 ± 0,88 |
20,8 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Паралельно з накопиченням альдегідних похідних, спостерігалося зростання кетонфенілгід- разонів (КФГ), що є пізніми маркерами окисної деструкції білкових молекул. Вміст зазначеного маркеру зростав на 60 хвилині інкубації у 2,51 рази. Це підтверджує те, що під впливом активних форм кисню та азоту відбувається порушення нативної структури білків з утворенням білкових агрегатів та їх розпад на окремі фрагменти. Утворення карбонільних (кетонних) похідних відбувається на більш пізніх етапах окисного стресу за рахунок кон'югації ліпідних пероксидів з амінокислотними залишками гістидину, цистеїну та лізину. Окрім карбонільних похідних, утворюються дисульфіди, сульфенових (БО), суль- финових(БО2-), сульфонових(БО3-) кислот та сульфоксиду метіоніну [9]. Карбонільні похідні є більш стабільними та токсичними продуктами, аніж альдегідні, вони можуть утворюватися за рахунок амінокислотних залишків аргініну та лізину, що супроводжується виділенням одного або декількох реакційно здатних атомів азоту, які можуть включатися у реакції вільно- радикального окиснення та посилювати їх. Наявність у досліджуваних сполук здатності зменшувати інтенсивність утворення КФГ можна розглядати як найбільш значущу їх властивість в якості антиоксидантів. Значну силу антиоксидантної дії у цьому відношенні проявляли сполуки 1.2 (тіотриазолін) та сіль лізинію-3-метил-1,2,4- триазоліл-5-тіооцтової кислоти (1.11). Визначено, що вказані сполуки здатні обмежувати накопичення карбонільних похідних на 50,2% та 55,8% відповідно. Дещо меншу, але статистично значущу активність проявляли сполуки 1.6 та 1.9. Також встановлено, що кальцієва сіль лізи- нію-3-метил-1,2,4-триазоліл-5-тіооцтової кислоти (1.4) знижувала вміст КФГ на 37,5% та АФГ на 26,9%. Виявлена статистично значуща активність сполуки 1.7 у відношенні АФГ не проявлялася у відношенні карбонільних похідних. Як і у попередньому дослідженні, найбільш слабкий антиоксидантний ефект притаманний речовині з шифром 1.10.
Таблиця 2. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі на 60 хвилину інкубації
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
КФГ, у.о./г білка |
АОА, % |
|
інтакт |
- |
3,13 ± 0,61 |
- |
||
контроль |
- |
7,86 ± 1,27# |
- |
||
1,2,4-триазол |
0,38 |
6,59 ± 0,67 |
16,1 |
||
1.1 |
2,5 |
5,32 ± 0,82 |
32,3 |
||
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
3,91 ± 0,31* |
50,2 |
||
1.3 |
0,38 |
6,04 ± 0,94 |
23,1 |
||
1.4 |
0,38 |
4,91 ± 0,45* |
37,5 |
||
1.5 |
2,5 |
5,55 ± 0,39 |
29,4 |
||
1.6 |
0,38 |
4,06 ± 0,58* |
48,3 |
||
1.7 |
2,5 |
5,98 ± 0,65 |
23,9 |
||
1.8 |
2,5 |
4,96 ± 0,72 |
36,9 |
||
1.9 |
2,5 |
4,22 ± 0,83* |
46,3 |
||
1.10 |
2,5 |
7,08 ± 0,97 |
9,9 |
||
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
3,47 ± 0,53* |
55,8 |
||
метіонін |
0,78 |
5,92 ± 0,88 |
24,7 |
||
унітіол |
0,78 |
5,89 ± 0,96 |
25,0 |
||
тіосульфат натрію |
15,6 |
6,11 ± 1,04 |
22,2 |
||
дибунол |
3,0 |
5,03 ± 0,93 |
36,0 |
||
а-токоферол |
2,5 |
5,74 ± 0,89 |
26,9 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Таблиця 3. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
Нітротирозин, нмоль/г білка |
АОА, % |
|
інтакт |
- |
10,03 ± 1,44 |
- |
||
контроль |
- |
39,48 ± 3,61# |
- |
||
1,2,4-триазол |
0,38 |
35,34 ± 2,48 |
10,5 |
||
1.1 |
2,5 |
33,63 ± 2,69 |
14,8 |
||
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
28,18 ± 2,33* |
28,6 |
||
1.3 |
0,38 |
37,5 ± 3,05 |
5,0 |
||
1.4 |
0,38 |
29,95 ± 2,04 |
24,1 |
||
1.5 |
2,5 |
33,96 ± 2,39 |
13,9 |
||
1.6 |
0,38 |
29,85 ± 2,17* |
24,4 |
||
1.7 |
2,5 |
28,93 ± 2,54* |
26,4 |
||
1.8 |
2,5 |
31,22 ± 3,11 |
20,9 |
||
1.9 |
2,5 |
29,11 ± 3,04* |
26,3 |
||
1.10 |
2,5 |
39,05 ± 3,36 |
1,1 |
||
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
23,54 ± 2,08* |
40,4 |
||
метіонін |
0,78 |
35,87 ± 2,63 |
9,1 |
||
унітіол |
0,78 |
33,54 ± 2,29 |
15,0 |
||
тіосульфат натрію |
15,6 |
38,91 ± 2,94 |
1,4 |
||
дибунол |
3,0 |
32,72 ± 2,57 |
17,1 |
||
а-токоферол |
2,5 |
34,48 ± 2,98 |
12,7 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Перераховані зміни, а саме накопичення АФГ та КФГ у суспензії нейронів, свідчать про розгортання реакцій оксидативного стресу, які відбувалися на фоні підвищення маркеру нітрозативного стресу - нітротирозину. Концентрація цього показника на 60 хвилині інкубації складала 39,48 ± 3,61 нмоль/г білка, що вище значень інтактної серії у 3,9 рази (табл. 5.3). У даний час нітроти- розин розглядається не лише як маркер запалення, а й як показник синтезу оксиду азоту. До його утворення в організмі призводять декілька біохімічних шляхів, в першу чергу синтез пероксинітриту (ONOO-). Останній є сильним окислювачем та утворюється при взаємодії монооксиду азоту з молекулою кисню. Пероксинітрит здатен окислювати аміно- та тіольні групи білків, що викликає порушення їх структурної конформації та фізико-хімічних властивостей. Утворюючись у клітині, молекула пероксинітриту ініціює процеси перекисного окиснення біліпідного шару мембран та викликає пошкодження цілісності молекул нуклеїнових кислот, в першу чергу ДНК. Суттєву роль у токсичності пероксинітриту відіграє гідроксил-радикал, який утворюється при розпаді останнього. Нітротирозин є стабільним ендогенним продуктом окиснення пероксинітриту та може використовуватися у якості маркера NO- залежних процесів пошкодження у клітині за умов оксидативного та нітрозативного стресу.
Проведеними дослідженнями встановлена здатність досліджуваних сполук виступати у якості молекул-«пасток» для монооксиду азоту та інших його реакційно-здатних активних форм, що проявлялося зменшенням вмісту нітротирозину в інкубаційному середовищі. З цього витікає, що похідні 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а- тіокарбонових кислот у тій чи іншій мірі здатні приймати на себе активні форми кисню та азоту, перериваючи тим самим каскад патобіохімічних процесів, які викликають пошкодження клітин. Більш активними у цьому відношенні були тіотриазолін та ангіолін. Внесення цих сполук до нейрональної суспензії з DNIC зменшувало рівень нітротирозину та обмежувало реакції утворення пероксинітриту на 28,6 та 40,4% відповідно. За силою антиоксидантної дії інші досліджені похідні, що перевищували використані препарати порівняння, можна структурувати у наступному порядку: 1.7 - 26,4%; 1.9 - 26,3%; 1.4 - 24,1%. Сполуки під робочим шифром 1.3 та 1.10 не проявили здатності обмежувати надлишок активних форм азоту, що можливо пояснюється наявністю у структурі молекули іону магнію.
Однією з антиоксидантних систем, що функціонує в організмі є тіодисульфідна система та найбільш активний її компонент - система глутатіону. Складові компоненти цієї системи - глутатіон, цистеїн, метіонін та інші, що мають у своїй структурі вільну тіольну групу у відновленій формі, здатні зв'язувати активні форми оксиду азоту, тим самим зменшуючи негативний вплив останніх. Враховуючи наявність у молекулах досліджуваних сполук тіольної групи, важливим, на нашу думку, є встановлення їхньої активності стосовно підтримки тіол-дисульфідної рівноваги в клітині за умов моделювання окисного та нітрозативного стресу. Більшість тіолів здатні значно обмежувати цитотоксичність NO та його реакційних форм. Зв'язуючись з NO, тіоли утворюють комплекс у вигляді S-нітрозотіолів, які формують депо ендогенного NO. Ця реакція попереджує зв'язування молекули NO з супероксидом і попереджує утворення пероксинітриту.
Важливою біохімічною реакцією у процесі розгортання нітрозативного стресу є сполучення відновленої форми глутатіону з активними формами азоту. В таку реакцію включаються всі білкові сполуки, що містять тіолову групу. В результаті утворюються N-нітрозаміни. Неконтрольоване зростання реакційно-здатних форм оксиду азоту викликає подальше окиснення білків та інактивацію ферментів, що ще більше виснажує антиоксидантну систему клітини [8]. Проведені дослідження підтверджують, що функціонування системи глутатіону на певному рівні ефективно захищає клітину від окисного стресу.
Встановлено, що інкубування нейронів з DNIC призводило до зміщення тіолдисульфідної рівноваги в бік окислених тіолів, про що свідчило зниження рівня відновленого глутатіону у 5,9 разів, яке відбувалося на фоні накопичення його окисненої форми у 3,6 разів. Вказане порушення тіол-дисульфідної рівноваги розгорталося на тлі зниження активності ключових ферментів системи глутатіону - Г-S-T і ГР відносно інтактних проб (табл. 6 -7). Так, активність вказаних ферментів на 60 хвилину інкубації була нижчою у 5,4 та 3,4 рази відповідно стосовно інтактної серії. Біохімічною основою вказаних змін в умовах надлишку активних форм азоту є активація процесів S-нітрозування та денітрозування білкових молекул, які в даний час розглядаються як основа клітинного сигналінгу.
Глутатіон, який є ендогенним антиоксидантом, виконує роль «пастки» супероксид-аніону та гідроксид-аніону, обмежуючи тим самим їхню цитотоксичну дію та попереджає пошкодження клітинних мембран та внутрішньоклітинних органел. Окрім перерахованого, глутатіон виконує багато інших функцій, життєво важливих для клітини. До них можна віднести детоксикаційну, структурну та регуляторну. Відновлена форма глутатіону, нарівні з іншими тіол-вмісними білками, розглядається в якості інгібітору активних форм кисню та стабілізує клітинні мембрани. У цитоплазмі клітин глутатіон зв'язує активні іони заліза та міді, попереджуючи тим самим їх включення у реакцію Фентона, при якій утворюється реакційно-здатний та цитотоксичний гідроксил-радикал. За умови активації перекисного окиснення ліпідів та окисної модифікації білків, падіння рівню відновленого глутатіону з паралельним накопиченням його окисленої форми (дисульфіду) відбувається фосфорилювання та активація ядерного фактору NF-kB - ключового регуляторного білка клітинної загибелі. Останнє, у свою чергу, викликає зростання швидкості транскрипції генів прозапальних цитокінів. Крім того, зниження загального вмісту SH-груп в клітині викликає зміну проникності та біодоступності мембран для токсичного впливу продуктів окисного стресу.
Підвищення рівня окислених низькомолекулярних тіолів викликає порушення транспорту оксиду азоту та посилює утворення його активних токсичних форм - нітрозонію, нітроксилу та пероксинітриту, що також показано у нашому дослідженні (табл. 3). Накопичення перерахованих сполук у клітині викликає додаткове окиснення відновлених тіолових сполук.
Таблиця 4. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
Глутатіон відновлений, ммоль/л |
АОА, % |
|
1 |
інтакт |
- |
3,06 ± 0,37 |
- |
|
2 |
контроль |
- |
0,52 ± 0,14# |
- |
|
3 |
1,2,4-триазол |
0,38 |
0,61 ± 0,36 |
17,3 |
|
4 |
1.1 |
2,5 |
0,93 ± 0,21 |
78,8 |
|
5 |
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
1,55 ± 0,19* |
2,98 р |
|
6 |
1.3 |
0,38 |
0,89 ± 0,31 |
71,1 |
|
7 |
1.4 |
0,38 |
0,97 ± 0,25 |
86,5 |
|
8 |
1.5 |
2,5 |
0,81 ± 0,26 |
55,8 |
|
9 |
1.6 |
0,38 |
1,18 ± 0,45 |
2,3 р |
|
10 |
1.7 |
2,5 |
1,31 ± 0,51 |
2,5 р |
|
11 |
1.8 |
2,5 |
0,84 ± 0,36 |
61,5 |
|
12 |
1.9 |
2,5 |
1,06 ± 0,29 |
2,0 р |
|
13 |
1.10 |
2,5 |
0,56 ± 0,33 |
7,7 |
|
14 |
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
1,68 ± 0,51* |
3,2 р |
|
15 |
метіонін |
0,78 |
0,87 ± 0,85 |
67,3 |
|
16 |
унітіол |
0,78 |
0,88 ± 0,77 |
69,2 |
|
17 |
тіосульфат натрію |
15,6 |
0,65 ± 0,16 |
25,0 |
|
18 |
дибунол |
3,0 |
0,89 ± 0,19 |
71,1 |
|
19 |
а-токоферол |
2,5 |
0,85 ± 0,26 |
63,4 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Таблиця 5. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
Глутатіон окислений, ммоль/л |
АОА, % |
|
1 |
нтакт |
- |
0,129 ± 0,022 |
- |
|
2 |
контроль |
- |
0,471 ± 0,092# |
- |
|
3 |
1,2,4-триазол |
0,38 |
0,405 ± 0,083 |
14,0 |
|
4 |
1.1 |
2,5 |
0,341 ± 0,076 |
27,6 |
|
5 |
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
0,168 ± 0,031* |
64,3 |
|
6 |
1.3 |
0,38 |
0,385 ± 0,069 |
18,2 |
|
7 |
1.4 |
0,38 |
0,285 ± 0,054 |
39,5 |
|
8 |
1.5 |
2,5 |
0,349 ± 0,082 |
25,9 |
|
9 |
1.6 |
0,38 |
0,227 ± 0,056* |
51,8 |
|
10 |
1.7 |
2,5 |
0,204 ± 0,036* |
56,7 |
|
11 |
1.8 |
2,5 |
0,312 ± 0,049 |
31,8 |
|
12 |
1.9 |
2,5 |
0,239 ± 0,055 |
49,2 |
|
13 |
1.10 |
2,5 |
0,428 ± 0,067 |
9,1 |
|
14 |
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
0,143 ± 0,032* |
69,6 |
|
15 |
метіонін |
0,78 |
0,371 ± 0,087 |
21,2 |
|
16 |
унітіол |
0,78 |
0,369 ± 0,067 |
21,6 |
|
17 |
тіосульфат натрію |
15,6 |
0,391 ± 0,072 |
17,0 |
|
18 |
дибунол |
3,0 |
0,336 ± 0,069 |
28,7 |
|
19 |
а-токоферол |
2,5 |
0,377 ± 0,071 |
19,9 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Таблиця 6. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
Г-S-T, ммоль/ (хв.* г білка) |
АОА, % |
|
1 |
інтакт |
- |
29,11 ± 2,18 |
- |
|
2 |
контроль |
- |
5,43 ± 1,19# |
- |
|
3 |
1,2,4-триазол |
0,38 |
6,06 ± 1,36 |
11,6 |
|
4 |
1.1 |
2,5 |
9,36 ± 1,54 |
72,4 |
|
5 |
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
18,84 ± 2,68* |
3,5 р |
|
6 |
1.3 |
0,38 |
6,37 ± 1,55 |
17,3 |
|
7 |
1.4 |
0,38 |
13,66 ± 2,06* |
2,5 р |
|
8 |
1.5 |
2,5 |
8,23 ± 1,74 |
51,6 |
|
9 |
1.6 |
0,38 |
15,04 ± 2,26* |
2,8 р |
|
10 |
1.7 |
2,5 |
16,26 ± 2,37* |
3,0 р |
|
11 |
1.8 |
2,5 |
12,31 ± 1,83* |
2,3 р |
|
12 |
1.9 |
2,5 |
12,32 ± 1,79* |
2,2 р |
|
13 |
1.10 |
2,5 |
6,08 ± 1,09 |
12,0 |
|
14 |
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
20,3 ± 1,43* |
3,7 р |
|
15 |
метіонін |
0,78 |
8,56 ± 1,45 |
57,6 |
|
16 |
унітіол |
0,78 |
8,61 ± 1,52 |
58,6 |
|
17 |
тіосульфат натрію |
15,6 |
7,67 ± 1,69 |
41,2 |
|
18 |
дибунол |
3,0 |
10,52 ± 2,06 |
1,9 р |
|
19 |
а-токоферол |
2,5 |
9,44 ± 1,73 |
73,8 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Таблиця 7. Активність похідних 3-метил-1,2,4-триазоліл-5-а-тіокарбонових кислот в суспензії нейронів in vitro при DNIC-індукованому стресі
№ п/п |
Сполуки |
Доза, мкмол/мл |
ГР, ммоль/(хв.* г білка) |
АОА, % |
|
1 |
інтакт |
- |
14,85 ± 2,12 |
- |
|
2 |
контроль |
- |
4,38 ± 0,95# |
- |
|
3 |
1,2,4-триазол |
0,38 |
5,41 ± 0,88 |
23,5 |
|
4 |
1.1 |
2,5 |
6,02 ± 0,96 |
37,4 |
|
5 |
1.2 (тіотриазолін) |
2,5 |
10,06 ± 1,06* |
2,3 р |
|
6 |
1.3 |
0,38 |
5,54 ± 1,11 |
26,5 |
|
7 |
1.4 |
0,38 |
7,01 ± 0,78* |
60,0 |
|
8 |
1.5 |
2,5 |
5,96 ± 0,69 |
36,1 |
|
9 |
1.6 |
0,38 |
8,42 ± 0,56* |
92,2 |
|
10 |
1.7 |
2,5 |
8,51 ± 0,77* |
94,3 |
|
11 |
1.8 |
2,5 |
7,22 ± 1,03 |
64,8 |
|
12 |
1.9 |
2,5 |
7,66 ± 0,93* |
74,9 |
|
13 |
1.10 |
2,5 |
5,13 ± 0,42 |
17,1 |
|
14 |
1.11 (ангіолін) |
2,5 |
11,69 ± 0,83* |
2,7 р |
|
15 |
метіонін |
0,78 |
5,91 ± 0,89 |
34,9 |
|
16 |
унітіол |
0,78 |
5,77 ± 0,84 |
31,7 |
|
17 |
тіосульфат натрію |
15,6 |
5,47 ± 0,96 |
24,9 |
|
18 |
дибунол |
3,0 |
6,51 ± 0,71 |
48,6 |
|
19 |
а-токоферол |
2,5 |
5,59 ± 0,75 |
27,6 |
Примітка: # - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольній і інтактній групах * - р<0,05 - статистична достовірність змін між показниками в контрольних і дослідних групах
Встановлена нашими дослідженнями здатність деяких досліджуваних сполук виступати в ролі молекул-«пасток» вільних радикалів та чинити модулюючу дію стосовно тіол-дисульфідної рівноваги в клітинах є найбільш важливим проявом їхнього антиоксидантного ефекту. Збільшення функціональності системи глутатіону, а також пов'язаних з його обміном ферментів - глутатіон-редуктази та глутатіон-трансферази, при внесенні до інкубаційного середовища похідних 1,2,4-триазолу - 3-метил-1,2,4-триазоліл-5- тіокарбонових кислот та їх солей захищає клітини від активних форм кисню та продуктів перекисного окиснення [3;5].
Найбільш активними у цьому відношенні виявилися тіотриазолін (1.2) та ангіолін (1.11). Вказані сполуки в дослідах in vitro обмежували не лише окисну модифікацію білків (табл. 1-2), а й завдяки модуляції патобіохімічних реакцій окисного стресу сприяли обмеженню окисної модифікації ферментів, зберігаючи їхню функціональну активність. Так, внесення тіотриазоліну викликало збереження активності глутатіон-S- трансферази у 3,5 разів, а глутатіон-редуктази - у 2,3 рази. Ангіолін чинив у даному відношенні більш виражену дію та підвищував активність вказаних ферментів у 3,7 та 2,7 разів відповідно, у порівнянні з показниками активності в контрольній серії. Також досить активними при вивченні здатності підтримувати тіол-дисульфідну рівновагу виявилися сполуки з шифром 1.6, 1.7, 1.8, 1.9 (табл. 6 - 7).
Суттєве падіння активності Г-S-T може відігравати значну роль при активації процесів та перетворень, які спрямовують клітину до запрограмованої загибелі (апоптозу). Активність цього ферменту разом з підтриманням на певному рівні відновленої форми глутатіону відіграє ключову роль у переключенні некротичної гибелі на некроз. Перераховані патобіохімічні механізми, які протікають у клітині, а також отримані нами дані підтверджують захисну роль відновленої форми глутатіону та підтримка тіолдисульфідної рівноваги завдяки внесенню тіолвмісних сполук до нейрональної суспензії.
Висновки
1. В умовах оксидативного та нітрозативного стресу у суспензії нейронів зростав вміст маркерів окисного пошкодження білків - АФГ на 93,3%, КФГ в 2,51 рази на 60 хвилині, маркерів нітрозуючого стресу нітротирозину у 3,99 рази та окисненої форми глутатіону у 3,6 рази. Порушення тіол-дисульфідної рівноваги відбувалося на тлі пониження активності ключових ферментів системи глутатіону - глутатіон-S- трансферази в 5,4 раза, глутатіонредуктази в 3,4 раза та відновленої форми глутатіону в 5,9 разів.
2. Тіолвміщуючі сполуки при додаванні до нейрональної суспензії в інкубаційному середовищі обмежували реакції оксидативного стресу, збільшуючи активність глутатіон-трансферази, глутатіонредуктази, вміст відновленого глутатіону, понижуючи рівень маркерів окислювального пошкодження білків АФГ, КФГ, нітротирозину та окисненого глутатіону. Найбільш активними у цьому відновленні виявили сполуки під робочим шифром 1,2 (тіотриазолін) та 1,11 (ангіолін).
Перспективи подальших досліджень
Планується експериментально порівняти вплив ангіоліну з іншими метаболітотропними засобами на фізичну працездатність.
Література
1. Нейропротекция и нейропластичность / [И. Ф. Беленичев, В. И. Черний, Е. А. Нагорна и др.]. - Киев: Логос, 2015. - 512 с.
2. Горбачова С.В. Порушення функціонування сполученої системи відновлені тіоли-оксид азоту” при гострому порушенні мозкового кровообігу та можливі шляхи їх корекції / С. В. Горбачова, І. Ф. Бєленічев, Л. І. Кучеренко // Медична та клінічна хімія. - 2015. - Т. 17,№ 4. - С. 63-67.
3. Горожанская Э. Г. Содержание глутатиона и активность глута- тион^-трансферазы как фактор прогноза эффективности лекарственной терапии больных раком яичников / Э.Г. Горожан- ская, В.Б. Ларионова, Г.Н. Зубрихина // Рос. онкол. журн. - 2002. - №. 5. - С. 29-33.
4. Завгородняя А. Н. Эндотелиальные механизмы патогенеза цереброваскулярной патологии / А. Н. Завгородняя, В. А. Малахов // Укр. мед. часопис. -- 2006. -- № 2. -- С. 32-39.
5. Калинина Е.В. Роль глутатиона, глутатионтрансферазы и глу- таредоксина в регуляции редокс-зависимых процессов / Е.В. Калинина, Н.Н. Чернов, М.Д. Новичкова // Успехи биол.наук. - 2014. - Т. 54. - С. 299-348
6. Мазур И. А. Тиотриазолин: фармакологические аспекты и клиническое применение / И. А. Мазур, Н. А. Волошин, И. С. Чекман. - Запорожье, 2005. - 160 с.
7. Чекман І.С. Доклінічне вивчення специфічної активності потенційних лікарських засобів первинної та вторинної нейропро- текції: метод. рек. / І. С. Чекман, І.Ф. Бєленічев, О.О. Нагорна [та ін.]. - Київ : Юстон, 2016. -92 с.
8. Belenichev I. F. TheThiol-Disulfide Balance and the Nitric Oxide Systemin the Brain Tissue of Rats Subjected to Experimental Acute Impairment of Cerebral Blood Flow: The Therapeutic Effects of Nootropic Drugs / I. F. Belenichev, S. V. Gorbacheva, N.V. Bukhtiyarova // Neurochemical Journal. - 2014. - Vol. 8, № 1. - P. 24-27.
Guo S. Specific inhibition of hypoxia inducible factor 1 ex aggerates cell injury induced by in vitro ischemia through deteriorating cellular redox environment / S. Guo, M. Miyake, K.J. Liu [et al] // Journal of neurochemistry. - 2009. - Vol. 108 - P. 1309-1321.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Особливості NO-синтазного та аргіназного шляхів метаболізму L-аргініну у лімфоцитах та ендотеліоцитах при їх сумісній інкубації in vitro, в нормі та за умов хронічної гіперімунокомплексемії та вивчення впливу й можливість корекції цих процесів корвітином.
автореферат [191,7 K], добавлен 29.03.2009Дослідження антимікробної активності похідних амінопропанолів з N-алкіларильним радикалом проти сформованих біоплівках S. aureus. Дослідження впливу сполук та препаратів на плівкоутворення. Ознайомлення з антибіоплівковою активністю гентаміцину.
статья [788,7 K], добавлен 07.02.2018Поняття механізму моделювання біофізичних процесів. Переваги математичного моделювання як методу дослідження. Структурне моделювання зорової системи. Пропускна здатність зорового аналізатора як кількість інформації, що сприймається зоровою системою.
реферат [19,3 K], добавлен 05.02.2011Сукупність необхідних умов, що забезпечують найкращі умови використання методів озонотерапії в лікуванні захворювань серцево-судинної системи. Клінічні ефекти озонотерапії та існуючі протипоказання до цих методів. Фактори лікувального впливу озону.
дипломная работа [1,3 M], добавлен 15.06.2015Стрес як природний фізіологічний стан, необхідний для нормальної життєдіяльності людини. Системи організму, які реалізують стрес. Роль активації вільнорадикального окиснення в механізм дії оксидативного стресу. Характеристика антиоксидантних ферментів.
курсовая работа [583,0 K], добавлен 06.10.2015Радіонуклідний метод діагностики. Емісійна комп’ютерна томографія. Однофотона емісійна КТ. Позитронна емісійна томографія (ПЕТ). Радіоімунні (in vitro) методи діагностики. Метод магнітно-резонасной томографії. Протипоказання і потенційні небезпеки МРТ.
реферат [39,4 K], добавлен 27.02.2011Вивчення антиоксидантної системи організму та впливу на її стан різних факторів. Вивчення тютюнопаління як одної з проблем цивілізованого суспільства. Лабораторне дослідження стану антиоксидантної системи щурів, які підлягали дії тютюнового диму.
дипломная работа [379,3 K], добавлен 21.03.2015Характеристика стану здоров’я школярів та його динаміка протягом навчання в початковій школі. Вплив факторів внутрішньошкільного середовища на стан здоров’я учнів. Розробка комплексу профілактичних заходів з оптимізації дії керованих факторів ризику.
автореферат [70,0 K], добавлен 09.03.2009Значення ентропії Колмогорова-Сіная по ЕЕГ статевозрілих щурів-самців лінії Вістар характерні для вихідного стану та в умовах гострого і хронічного емоційного стресу. Оцінка напруження систем регуляції серцевого ритму в умовах емоційного стресу.
автореферат [86,3 K], добавлен 09.03.2009Аналіз структурно-морфологічних характеристик серцево-судинної системи при дозованому навантаженні. Дослідження стану системи організму під час м'язової роботи. Розгляд методик тестування показників частоти серцевих скорочень, тиску та об'єму крові.
курсовая работа [1,5 M], добавлен 25.09.2010