Спектральный анализ флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия в эксперименте

Размещено на http://www.allbest.ru/

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Спектральный анализ флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия в эксперименте

14.01.07 - глазные болезни

На правах рукописи

Арбуханова Патимат Магомедовна

Москва - 2013

Работа выполнена в Федеральном государственном бюджетном учреждении «Межотраслевой научно-технический комплекс «Микрохирургия глаза» имени академика С.Н. Федорова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Научные руководители: доктор медицинских наук Борзенок Сергей Анатольевич

доктор биологических наук, профессор, академик РАН Островский Михаил Аркадьевич

Официальные оппоненты: Акопян Владимир Сергеевич доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой офтальмологии факультета фундаментальной медицины МГУ им. М.В. Ломоносова

Обрубов Сергей Анатольевич доктор медицинских наук, профессор кафедры офтальмологии ГБОУ ВПО РНИМУ им. Н.И.Пирогова

Ведущая организация: ФГБУ "Научно-исследовательский институт глазных болезней" РАМН

Защита состоится «4» февраля 2013 г. в 14 часов на заседании диссертационного совета по защите докторских диссертаций Д.208.014.01 при ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России по адресу: 127486, г. Москва, Бескудниковский бульвар, д. 59А.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России.

Автореферат разослан «28» января 2013 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, доктор медицинских наук В.В. Агафонова.

Список сокращений

АФ - Аутофлуоресценция

А2Е - N-ретинил-N-ретинилиденэтаноламин, или бис-ретинилиден-этаноламин (pyridinium bisretinoid)

ВМД - Возрастная макулярная дегенерация

ВЭЖХ - Высокоэффективная жидкостная хроматография

ЛГ- Липофусциновые гранулы

ЛСКМ - Лазерная сканирующая конфокальная микроскопия

РПЭ - Ретинальный пигментный эпителий

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы

Возрастная макулярная дегенерация (ВМД) является многофакторным заболеванием, с участием сложного взаимодействия метаболических, функциональных, генетических и экологических факторов (Кацнельсон Л.А. и др., 1982; Sarks S.H., 1976; Beatty S., 2001; Chang Y. et al., 2011). Этиопатогенез ВМД является разносторонним и сложным. Помимо генетической предрасположенности и факторов риска четыре процесса лежат в основе развития заболевания: липофусциногенез, друзогенез, хроническое воспаление и неоваскуляризация (Акопян В.С. 2004; Fine S.L. et al., 2000; Anderson D.H. et al., 2002; Campochiaro P.A., 2004; Klein R. et al., 2004; Kijlstra A. et al., 2005; McConnell V. et al., 2005; Sparrow J.R. et al., 2005; Nowak J.Z., 2006).

Ряд авторов ведущим фактором развития дистрофии сетчатки при ВМД считают первичное поражение ретинального пигментного эпителия (РПЭ) (Киселёва Т.Н. и др., 2005; Burke J.M. et al., 2004; Sparrow J.R. et al., 2005; Holz F.G., 2007). Вследствие его избыточной фагоцитарной активности происходит образование и накопление липофусциновых гранул (ЛГ) в клетках РПЭ, что является основным и самым ранним (доклиническим) процессом генерирующим развитие ВМД (Донцов А.Е. и др., 1999; Островский М.А. и др., 2005; Boulton M. et al., 1993, 2004; Nowak J.Z., 2005, 2006). Накопление ЛГ ведет к снижению функциональной активности клетки РПЭ, происходит её деградация, в результате чего высвободившиеся ЛГ вместе с фрагментами клеточных структур «оседают» на мембране Бруха, что дает начало процессу формирования друз, которые являются самым ранним клиническим проявлением ВМД (Bressler N.M. et al., 1994; Anderson D.H. et al., 2002; Algvere P.V. et al., 2003; Johnson P.T. et al., 2003).

Важной функцией РПЭ является регенерация альдегида витамина А (ретиналя) в процессе зрительного цикла (Вит В.В., 2003; Миронова Э.М., 2005; Фельдман Т.Б. и др., 2009; Henselman R.A. et al. 1976]. Нарушение превращения ретиналя в наружных сегментах фоторецепторов и клетках РПЭ приводит к избыточному образованию флуорофоров в ЛГ (А2Е) (Фельдман Т.Б. и др., 2009; Островский М.А., 2005; Holz F.G. et al., 2001, 2007). При действии света запускаются процессы фотоокисления и фотодеградации флуорофора А2Е, с образованием фототоксичных продуктов, что является пусковым механизмом в развитии дегенеративных заболеваний сетчатки и РПЭ, в частности ВМД (Островский М.А. и др., 1992, 1994; Яковлева М.А. и др., 2009; Allikmets R. et al., 1997; Sparrow J.R. et al., 2010).

При старении и при дегенерации сетчатки содержание и соотношение различных флуорофоров/ групп флуорофоров в ЛГ РПЭ может варьировать (Яковлева М.А. и др., 2009).

До настоящего времени остается окончательно не выясненным вопрос о том, как меняются флуоресцентные характеристики индивидуальных образцов ЛГ и содержащихся в них флуорофорных соединений в условиях in vitro. Интересным также является выявление характера изменений, происходящих в ЛГ РПЭ в зависимости от возраста и наличия ВМД.

Установлено, что ЛГ клеток РПЭ обладают способностью к аутофлуоресценции (АФ) (Katz M.L. et al., 1986; Holz F.G. et al., 2007). На сегодняшний день АФ глазного дна человека - неинвазивный метод диагностики возрастных изменений и дегенеративных заболеваний сетчатки. Интенсивность АФ, при используемой в клинике длине волны возбуждения 488 нм, находится в прямой зависимости не только от количества ЛГ в клетках РПЭ, но и от их состава (наличия флуорофора А2Е и продуктов его фотоокисления и деградации) (Аветисов С.Э. и др., 2009; Яковлева М.А. и др., 2009, 2010; Delori F.C., 1995; Holz F.G., 2007).

Клинически доказано, что избыточное накопление ЛГ предшествует развитию атрофии РПЭ при ВМД и способствует её прогрессированию (Holz F.G. et al., 2001; Brar M. et al., 2009Sparrow J.R. et al., 2010).

Цель работы: оценка возможности повышения информативности метода аутофлуоресценции глазного дна путем выявления состава и изучения спектральных характеристик отдельных флуорофорных соединений липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия трупных глаз человека.

Задачи исследования

1. Определить изменения спектральных характеристик суспензии нативных липофусциновых гранул, выделенных из клеток ретинального пигментного эпителия кадаверных глаз человека до и после облучения видимым светом.

2. Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии провести анализ относительного содержания флуорофоров в хлороформном экстракте липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия отдельных донорских глаз человека.

3. Провести сравнительный анализ флуоресцентных характеристик липофусциновых гранул, выделенных из клеток ретинального пигментного эпителия отдельных кадаверных глаз человека без патологии и с наличием клинических признаков возрастной макулярной дегенерации.

4. Разработать способ получения монослоя нативных клеток ретинального пигментного эпителия, индивидуально выделяемого из отдельных кадаверных глаз человека.

5. Проанализировать спектральные свойства ретинального пигментного эпителия, выделенного из отдельных кадаверных глаз доноров различных возрастных групп.

Научная новизна результатов исследования

1. Впервые проведенный сравнительный анализ спектральных характеристик флуорофоров липофусциновых гранул клеток ретинального пигментного эпителия, выделенного из отдельных кадаверных глаз доноров различного возраста с наличием и без макулярной патологии показал, что в онтогенезе и при наличии возрастной макулярной дегенерации происходит изменение соотношения различных флуорофоров и флуоресцентных свойств липофусциновых гранул в виде накопления продуктов окисления и деградации флуорофора А2Е (oxyА2Е), что ведет к сдвигу максимума спектра флуоресценции в коротковолновую область.

2. Предложенный коэффициент соотношения суммарной интенсивности флуоресценции клеток ретинального пигментного эпителия, выделенного из отдельных кадаверных глаз человека без клинических признаков патологии на глазном дне на длинах волн 510 и 540 нм при возбуждении волной ?488 нм равный 0,6±0,05 отн. ед. является стабильной величиной, не зависимой от возраста пациента.

3. Впервые при исследовании образцов хлороформных экстрактов из липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия, выделенного из отдельных кадаверных глаз человека, так же, как и при ранее исследованных суммарных хлороформных экстрактов из липофусциновых гранул, показано, что флуорофор А2Е не является основным в спектре флуоресценции липофусциновых гранул и что значительной флуоресценцией обладают окисленные формы А2Е.

Практическая значимость результатов исследования

1. Впервые разработанный оригинальный способ получения клеток ретинального пигментного эпителия из отдельных кадаверных глаз человека, отличающийся предварительной фиксацией водным нейтрализованным раствором формалина, позволяет сохранить архитектонику слоя и ультраструктуру клеток пигментного эпителия в процессе отделения сетчатки и адекватно оценить состояние ретинального пигментного эпителия, что дает возможность исследовать индивидуальные образцы клеток, выделенных из различных участков глазного дна.

2. Впервые разработанная экспериментальная модель фотоокисления липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия, заключающаяся в облучении видимым светом суммарной суспензии нативных липофусциновых гранул, позволяет определять соотношение интенсивности флуоресценции в зависимости от степени накопления продуктов фотоокисления и деградации флуорофора А2Е в липофусциновых гранулах.

3. Впервые рассчитанный коэффициент соотношения флуоресценции на длинах волн 510/540 нм при возбуждении волной ?488 нм, для образцов клеток ретинального пигментного эпителия без клинических признаков патологии на глазном дне равен 0,6±0,05 отн. ед. не зависимо от возраста и может использоваться как критерий оценки состояния ретинального пигментного эпителия в экспериментальных и клинических исследованиях.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Проведенные фундаментальные исследования состава и спектральных характеристик флуорофорных соединений липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия, выделенного из отдельных кадаверных глаз человека, показали, что с возрастом и при развитии возрастной макулярной дегенерации происходит образование и накопление продуктов фотоокисления и деградации флуорофора А2Е, сопровождающиеся сдвигом максимумов интенсивности флуоресценции в коротковолновую область.

2. Предложенный коэффициент соотношения интенсивности флуоресценции определяемый на длинах волн 510/540 нм при возбуждении волной ?488 нм равен 0,6±0,05 отн. ед. вне зависимости от возраста, и отклонение от него может использоваться как критерий развития патологического процесса в ретинальном пигментном эпителии.

3. На полученной модели фотоокисления, заключающейся в сравнении спектров флуоресценции суммарных нативных липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия, выделенного от доноров без патологических изменений на глазном дне, до и после облучения видимым светом, доказано, что максимум интенсивности флуоресценции липофусциновых гранул сдвигается в коротковолновую область с 540 нм до 510 нм, что отражает происходящее с возрастом и при развитии возрастной макулярной дегенерации повышение содержания продуктов фотоокисления и деградации.

4. Проведенный сравнительный анализ результатов исследований флуоресцентных характеристик липофусциновых гранул, выделенных, из клеток ретинального пигментного эпителия кадаверных глаз человека без патологии и с наличием возрастных дегенеративных изменений на глазном дне, показал, что в образцах с возрастной макулярной дегенерацией происходит накопление окисленных форм флуорофоров со сдвигом максимумов спектров флуоресценции в коротковолновую область

Внедрение в практику

Результаты исследований внедрены в работу Центра фундаментальных и прикладных медико-биологических проблем ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России и Лаборатории физико-химических основ рецепции Института биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН.

Результаты диссертационной работы используются в лекционных курсах для клинических ординаторов, аспирантов и курсантов Научно-педагогического центра ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н.Федорова», а также ординаторов и аспирантов кафедры глазных болезней Московского государственного медико-стоматологического университета имени А.И. Евдокимова.

Апробация работы

Основные положения диссертации были доложены и обсуждены на IV Всероссийской научной конференции молодых ученых «Актуальные проблемы офтальмологии» (Москва, 2011); Всероссийской научной конференции с международным участием «Федоровские чтения» (Москва, 2011, 2012); научно-практической конференции ФГБУ «МНТК «МГ» им. акад. С.Н. Федорова» (Москва 2011, 2012); научно-практической конференции офтальмологов с международным участием «Филатовские чтения» (Одесса, Украина, 2012).

На VI Всероссийской научной конференции молодых ученых «Актуальные проблемы офтальмологии» (2011) доклад на тему: «Спектральный анализ флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия в эксперименте» занял первое место.

Публикации

По материалам диссертации опубликована 11 печатных работ, из них 3 - в журналах, рецензированных ВАК РФ и 1 - в иностранной печати. По теме диссертационной работы получен 1 патент РФ на изобретение.

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа изложена на 115-ти страницах машинописного текста; иллюстрирована 3-мя таблицами, 26-тью рисунками. Работа состоит из введения и 3-х глав, включающих литературный обзор, материалы и методы исследования, результаты собственных исследований, содержит заключение, выводы и практические рекомендации. Список литературы включает 195 источников, из них 35 - отечественных и 160 - иностранных.

Анализ и скрининговый отбор трупного донорского материала, подготовка препаратов и суспензии клеток РПЭ осуществлялся на базе Центра фундаментальных и прикладных медико-биологических проблем ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России (руководитель - д.м.н. С.А. Борзенок). Исследования образцов клеток РПЭ и хлороформного экстракта ЛГ РПЭ методами ВЭЖХ и ЛСКМ проводились на базе Лаборатории физико-химических основ рецепции Института биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН (зав. лабораторией - д.б.н., академик РАН М.А.Островский). Гистологические исследования выполнены на базе лаборатории патологической анатомии и гистологии глаза ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России (зав. лабораторией - к.м.н. А.В. Шацких).

глаз возрастной макулярный дегенерация

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материалы и методы исследования.

Экспериментальное исследование состояло из двух частей и 4-х этапов (0-3).

Для проведения экспериментального исследования, кадаверные глаза были получены Глазным тканевым банком ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» от трупов-доноров, на основании действующего договора, из танатологических отделений Московского Бюро судебно-медицинской экспертизы.

Анализ и отбор материала проводился от серонегативных трупов по клиническим и возрастным признакам.

В первой части эксперимента (этап 0) в процессе моделирования фотоокисления ЛГ РПЭ исследовалась суммарная суспензия нативных ЛГ РПЭ глаз доноров (n=100) в возрасте 20 - 70 лет, без патологии на глазном дне, до и после облучения видимым светом (400-700 нм) (лампа накаливания КГМ ОАО "Лисма-ВНИИИС"). Для определения изменения спектральных характеристик суммарной суспензии нативных ЛГ РПЭ были получены спектры флуоресценции с помощью спектрофлуориметра "Shimadzu RF-5301PC" (Япония) на длине волны 430 нм (длина волны возбуждения для флуорофора А2Е).

Во второй части экспериментального исследования все 3 этапа проводились на 165-ти кадаверных глазах.

На I этапе были исследованы глазные бокалы, полученные после выделения роговиц для трансплантации (n=165), разделенные на три возрастные группы: I гр. - 20 - 39 лет (n = 50); II гр. - 40 - 59 лет (n =55); III гр. - 60 - 70 лет (n = 60). Каждый кадаверный глаз осматривался с помощью стереомикроскопа «Ompi 99» Opton (Германия) на наличие прижизненных патологических изменений на глазном дне. Описание глазного дна проводилось с учетом постмортальных изменений. При этом оценивалась целостность сетчатки, наличие пигментации, признаки прижизненной атрофии, наличие органических включений в макулярной и парамакулярной областях.

По результатам скринингового осмотра глазного дна был исключен из эксперимента материал с наличием ретинальных кровоизлияний, новообразований, макулярных разрывов, и др., в том числе образцы, использованные для отработки методики выделения клеток РПЭ (n=53).

Для дальнейшего исследования были отобраны глазные бокалы доноров-трупов в возрасте от 20 до 70 лет, с минимальным сроком после смерти донора - 6-18 часов без патологических изменений (n=100) и с наличием возрастной патологии (ВМД, сухая форма) на глазном дне (n=12), что изменило количество глаз в исследуемых в начале I этапа группах: 1 гр. - 20 - 39 лет (n = 34); 2 гр. - 40 - 59 лет (n = 36); 3 гр. - 60 - 70 лет (n = 30). Дополнительно была сформирована группа из исследуемых глаз с возрастными изменениями на глазном дне: 4 гр. - 58 - 70 лет (n = 12).

На II этапе для исследования in vitro, была получена индивидуальная суспензия клеток РПЭ для регистрации спектров флуоресценции методом спектрофлуориметрии (Shimadzu RF-5301PC, Япония), с последующим получением индивидуального хлороформного экстракта ЛГ из суспензии клеток РПЭ для проведения высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) (n=112) с помощью хроматографа фирмы Knauer (Германия). На полученных хроматограммах было проанализировано относительное содержание отдельных флуорофоров/групп флуорофоров в экстракте ЛГ из РПЭ в зависимости от возраста доноров. Также был проведен сравнительный анализ данных ВЭЖХ 2-х образцов, полученных из числа исследуемых глаз без видимой патологии в возрастных группах 1-3 (из n=100, случайная выборка) и 2-х образцов с клиническими признаками ВМД на глазном дне из числа 4-й исследуемой группы (из n=12, случайная выборка).

На III этапе для исследования флуоресцентных свойств ЛГ в клетках РПЭ в условиях in situ был разработан оригинальный способ получения монослоя клеток РПЭ из отдельных кадаверных глаз человека. Образцы клеток РПЭ были выделены из тех же глаз, что исследовались на II-м этапе без клинических признаков возрастных изменений на глазном дне (n=100), за исключением 4-й группы с наличием клинических признаков ВМД, для проведения лазерной сканирующей конфокальной микроскопии (ЛСКМ) Leica TCS SP5 (Германия) на длине волны возбуждения 488 нм.

Полученные при ЛСКМ изображения анализировали с помощью программы Image J (National Institute of Health, США), позволяющей определять среднюю относительную интенсивность флуоресценции РПЭ по всему образцу, а не в отдельно выбранных точках (для представления о флуоресцентных характеристиках индивидуального образца монослоя клеток РПЭ в целом).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Получение модели фотоокисления ЛГ РПЭ.

Спектральный анализ ЛГ РПЭ до и после облучения показал, что при облучении видимым светом суммарной суспензии ЛГ на длине волны возбуждения 430 нм происходит изменение их флуоресцентных характеристик: максимумы спектров флуоресценции сдвигаются в коротковолновую область с 540 нм до 510 нм (т.е. на 30 нм), что свидетельствует об увеличении фотоокисленных форм А2Е в ЛГ.

При этом, отношение интенсивности флуоресценции суммарной суспензии ЛГ на длине волны 510 нм к интенсивности флуоресценции ЛГ на длине волны 540 нм, при возбуждении волной ?430 нм, (D510/D540) увеличивается с 0,87 отн. ед. для неокисленных ЛГ до 1,27 отн. ед. при фотоокислении ЛГ (табл. 1).

Таблица 1. Соотношение интенсивности флуоресценции суммарной суспензии ЛГ РПЭ из кадаверных глаз человека (длина волны возбуждения 430 нм)

Образцы (n=100)	Интенсивность флуоресценции	Соотношение D510/D540
	D510 (отн.ед)	D540 (отн.ед)
Нативные ЛГ	31,7	35,4	0,89
Фотоокисленные ЛГ	33,9	26,6	1,27

Таким образом, в результате исследования было подтверждено, что с возрастом и при развитии ВМД происходит повышение содержания продуктов фотоокисления и деградации в клетках РПЭ.

Скрининговый отбор донорских глаз

После выделения из кадаверного глаза нейросенсорного слоя сетчатки (все дефекты РПЭ, полученные при манипуляции микрохирургическими инструментами были учтены) в случае с отсутствием патологических изменений на глазном дне определялся равномерный РПЭ, без очаговой патологии, в макулярных (фовеальных) зонах имелась интенсивная (более насыщенная) пигментация клеток РПЭ, что соответствовало нормальной картине глазного дна.

При наличии клинических признаков ВМД наблюдался неравномерный разряженный РПЭ, картина "паркетного" глазного дна, с перераспределением пигмента в макулярной и парамакулярной зонах, множественными друзоподобными отложениями в виде желтоватых, незначительно проминирующих образований с неровными границами, окруженных зоной гиперпигментации, без тенденции к слиянию.

Результаты эксперимента in vitro

На II этапе в результате эксперимента in vitro методом ВЭЖХ на полученных хроматограммах было вычислено относительное содержание отдельных флуорофоров/групп флуорофоров в индивидуальных образцах, полученных из кадаверных глаз без клинических признаков патологии на глазном дне (n=100), и для образцов с визуально наблюдаемой ВМД (n=12).

На всех полученных хроматограммах, характерных для образцов без визуально наблюдаемой возрастной патологии на глазном дне, были идентифицированы пики № 6-8 (характерные для А2Е и его изоформ), пик № 5 (соответствующий oxy-А2Е), группы пиков 1 и 2, а также пики 3, 4, 9 и 10 (характерные для продуктов фотоокислительной деградации А2Е (рис. 1).

Рис. 1. Эксперименты in vitro: ВЭЖХ анализ хлороформного экстракта из суспензии клеток РПЭ отдельного кадаверного глаза (детекция по поглощению на длине волны 430 нм)

Вычисленные характерные идентифицированные пики индивидуальных хлороформных экстрактов ЛГ коррелировали с данными, полученными при хроматографическом анализе суммарных хлороформных экстрактов из ЛГ РПЭ (Яковлева М.А. и др., 2010, 2011).

Сравнительный анализ хроматографических данных ВЭЖХ индивидуальных хлороформных экстрактов ЛГ РПЭ, полученных от отдельных доноров из различных возрастных групп без клинических признаков патологии на глазном дне показал, что с возрастом донора происходит увеличение относительного содержания А2Е (с 28,54±1,31 для I гр. до 35,44±0,49 для III гр.), а также увеличение продуктов его фотоокисления и деградации (с 25,7±1,91 для I гр. до 32,49±0,32 для III гр.). При этом во всех случаях наблюдалось резкое падение относительного содержания в хлороформных экстрактах изо-формы А2Е (с 21,23±3,18 для I гр. до 6,65±0,77для III гр.) (табл. 2).

Анализ индивидуальных хлороформных экстрактов ЛГ РПЭ по относительному содержанию флуорофоров и/или их групп в хлороформных экстрактах, полученных из индивидуальных кадаверных глаз с визуально наблюдаемой возрастной дегенерацией - 4 группа (n=12), показал, что при наличии клинических признаков ВМД на глазном дне наблюдается увеличение количества А2Е (пик 6) с 35,44±0,49 для III гр. близкой по возрасту к группе с ВМД до 37,1±0,23 для 4 гр. и продуктов его фотоокисления и деградации (пики 2-5) с 32,5 ± 0,4 для III гр. до 36,5 ±0,6 для 4 гр., также имеется тенденция к увеличению изо-форм А2Е (пик 8) и суммарного количества изомеров А2Е с 42,7 ± 0,61 для III гр. до 47,9 ±0,4 для 4 гр. (табл. 2).

Таким образом, относительное содержание всех компонентов хлороформного экстракта отличается от данных, полученных от доноров без какой-либо патологии на глазном дне, что свидетельствует об изменении состава ЛГ в зависимости от возраста и наличия возрастной дегенерации сетчатки и что, в свою очередь, отражается на спектральных характеристиках ЛГ.

Таблица 2. Зависимость относительного содержания флуорофоров/групп флуорофоров ЛГ в хлороформных экстрактах, полученных из РПЭ отдельных кадаверных глаз

№	Возраст, лет	№ пика на хроматограмме рис. 18	Сумма изомерных форм А2Е
		1	2+ (3 и 4)	5-oxy-A2E	6-A2E	7	8-iso-A2E	9	10
1 гр	20-39 (n=34)	15,78± 1,38	20,80± 1,71	4,91± 0,91	28,54± 1,31	2,56± 0,96	21,23± 3,18	2,25± 0,31	4,32± 1,30	52,33± 2,86
2 гр	40-59 (n=36)	18,36± 0,79	23,50± 0,78	6,86± 0,32	32,46± 1,32	1,27± 0,14	11,98± 3,66	3,55± 0,66	2,02± 0,65	45,10± 2,35
3 гр	60-70 (n=30)	20,21± 0,40	25,2± 0,30	7,29± 0,05	35,44± 0,49	0,62± 0,32	6,65± 0,77	4,55± 0,09	0,37± 0,21	42,70± 0,61
4 гр	58-70 (n=12)	9,62± 0,55	27,1± 0,14	8,49± 0,39	37,1± 0,23	0,94± 0,25	9,89± 0,04	4,5± 0,25	3,11± 0,16	47,9± 0,45

Детальный сравнительный анализ спектральных характеристик индивидуальных суспензий клеток РПЭ продемонстрирован на 4-х исследуемых образцах, характерных для нормы (образцы А и В) и для патологии (ВМД) (образцы Б и Г). При проведении спектрофлуориметрии выявлено, что для образцов без патологических изменений на глазном дне максимумы спектров флуоресценции находятся на 530 (для донора А) и 525 нм (для донора В), тогда как для образцов с ВМД максимумы спектров флуоресценции находятся на 485 (для донора Б) и 505 нм (для донора Г) (рис. 2).

Рис. 2. Спектры флуоресценции суспензии клеток РПЭ: А - норма, Б -ВМД, В - норма, Г -ВМД. (длина волны возбуждении 430 нм)

Полученный на данном этапе исследования сдвиг в коротковолновую область максимумов спектров флуоресценции индивидуальной суспензии клеток РПЭ, выделенной из отдельных кадаверных глаз с наличием патологии (ВМД), свидетельствует о накоплении флуорофоров, продуктов их фотоокисления и фотодеградации в ЛГ РПЭ, имеющих более коротковолновый максимум. Полученный результат соответствует модели фотоокисления ЛГ (этап 0), где также был получен сдвиг максимумов спектров флуоресценции в коротковолновую область до и после облучения видимым светом суммарной суспензии ЛГ.

При анализе методом ВЭЖХ образцов хлороформных экстрактов ЛГ из кадаверных глаз с ВМД уменьшается относительное содержание продуктов 1-й группы пиков, увеличивается относительное содержание продуктов 2-й группы пиков, которые соответствуют продуктам фотоокисления и деградации флуорофора А2Е. Увеличивается относительное содержание и самого А2Е - пик 6 (рис. 3).

Рис. 3. ВЭЖХ анализ хлороформного экстракта из РПЭ индивидуальных кадаверных глаз без патологии, доноры (А и В) и с визуально наблюдаемой патологией (ВМД), доноры (Б и Г); детекция на длине волны 430 нм

Так как полученные результаты в эксперименте in vitro, показали, что спектральные характеристики и состав ЛГ РПЭ меняются в зависимости от возраста и наличия ВМД, возникла необходимость исследования флуоресцентных свойств ЛГ в клетках РПЭ, выделенных из отдельных кадаверных глаз методом конфокальной лазерной сканирующей микроскопии (этап III).

Результаты эксперимента in situ

Этапы выделения и фиксации образцов монослоя клеток РПЭ отдельно из каждого отобранного кадаверного глаза без патологических изменений на глазном дне проводились путем удаления у энуклеированного глазного яблока иридо-хрусталиковой диафрагмы с максимальным иссечением и удалением стекловидного тела до центральной зоны сетчатки, фиксации образовавшегося глазного бокала нейтральным 5%-м раствором формалина в течении 24-х часов, извлечения из полости глазного бокала формалина с помощью автоматической пипетки, 3-х кратным промыванием содержимого бокала дистиллированной водой, иссечения поверхностных слоев сетчатки до слоя РПЭ в диаметре 7-10 мм в области макулы под увеличением х30 стереомикроскопа микрохирургическими инструментами (ретинальным шпателем, ретинальными ножницами и цанговым микропинцетом), отделения монослоя клеток РПЭ с помощью микрохирургического расслаивателя, и переноса монослоя РПЭ на предметное стекло с одновременным капельным нанесением на его поверхность раствора антифейда в количестве 700-1000 мкл, препятствующего разрушению флуорофоров и их «выцветанию» при действии видимого света. Готовый образец монослоя клеток РПЭ накрывался покровным стеклом, после чего хранился в горизонтальном положении в герметично закрытых контейнерах.

Разработанная методика выделения и фиксации клеток РПЭ позволила получать индивидуальные образцы исследуемых клеток в виде монослоя, о чем свидетельствуют данные гистологии комплекса РПЭ/мембрана Бруха/хориоидея. На гистологических препаратах, полученных после выделения образцов монослоя РПЭ, визуализировалась целостность нижележащих слоев (мембрана Бруха) (рис. 4).

А Б

Рис. 4. Гистологический препарат комплекса РПЭ/мембрана Бруха/хориоидея до (А) и после (Б) выделения образца монослоя РПЭ (окраска - гематоксилин - эозином, ув. х 400)

Разработанная оригинальная методика дала возможность выделять индивидуальные образцы клеток РПЭ в виде монослоя для дальнейших экспериментальных исследований в условиях in situ, а также оценить состояние глазного дна, как с наличием, так и после выделения нейросенсорного слоя сетчатки (включая наружные сегменты фоторецепторов), не нарушая морфологического строения и архитектоники нижележащих слоев, в частности РПЭ.

Полученный монослой клеток РПЭ исследовали методом ЛСКМ на длине волны возбуждения ? 488 нм, флуоресценцию получали на длинах волн 510 и 540 нм (рис. 5).

А Б

Рис. 5. Картина интенсивности флуоресценции индивидуального образца монослоя клеток РПЭ: А - эмиссия (em.) 510 нм, Б - эмиссия (em.) 540 нм (длина волны возбуждения 488 нм)

Было определено, что рассчитанный коэффициент соотношения интенсивности флуоресценции на длинах волн 510/540 нм равен 0,6±0,05 отн. ед. и не зависит от возраста, является постоянным в исследуемых возрастных группах без клинических признаков ВМД (табл. 3).

Таблица 3. Соотношение интенсивностей флуоресценции образцов монослоя клеток РПЭ в исследуемых возрастных группах

Соотношение интенсивностей флуоресценции	Возрастные группы доноров
	1 группа 20-39 лет (n=34)	2 группа 40-59 лет (n=36)	3 группа 60-70 лет (n=30)
D510/D540	0,59+ 0,05	0,60+ 0,06	0,62+ 0,03

Выводы

1. Разработанная оригинальная методика получения образцов клеток ретинального пигментного эпителия, отличающаяся предварительной фиксацией водным нейтрализованным раствором формалина тканей глазного бокала дает возможность выделять клетки пигментного эпителия в виде монослоя из отдельных кадаверных глаз, позволяет сохранить архитектонику и исследовать ультраструктуру индивидуальных образцов клеток ретинального пигментного эпителия, выделенного из различных участков глазного дна.

2. После облучения видимым светом суммарных нативных липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия, выделенного от доноров без патологических изменений на глазном дне, происходит увеличение соотношения интенсивности флуоресценции неокисленных липофусциновых гранул к фотоокисленным с 0,87 отн. ед. до 1,27 отн. ед., что выражается сдвигом максимума интенсивности флуоресценции в коротковолновую область с 540 нм до 510 нм.

3. С возрастом происходит снижение суммарного относительного содержания А2Е и его изоформ в хлороформном экстракте липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия и повышение суммарного содержания продуктов его фотоокисления и деградации.

4. Сравнительный анализ флуоресцентных характеристик липофусциновых гранул из клеток ретинального пигментного эпителия кадаверных глаз человека без патологии и с наличием возрастных дегенеративных изменений на глазном дне, показал, что в образцах с возрастной макулярной дегенерацией происходит накопление окисленных форм флуорофоров, что ведет к сдвигу максимумов спектров флуоресценции в коротковолновую область.

5. Соотношение флуоресценции на длинах волн 510/540 нм при возбуждении волной ?488 нм индивидуальных образцов клеток ретинального пигментного эпителия без патологических изменений на глазном дне составляет 0,6±0,05 отн. ед., независимо от возраста пациентов.

6. Динамика изменений спектральных свойств липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия в зависимости от возраста и наличия патологии на глазном дне открывает перспективу разработки технологии дифференцированной аутофлуоресцентной диагностики глазного дна для возрастных изменений и дегенеративных заболеваний сетчатки.

Практические рекомендации

Для исследования ретинального пигментного эпителия в зависимости от возраста и наличия возрастной макулярной дегенерации возможно использование полученного коэффициента соотношения интенсивности флуоресценции ретинального пигментного эпителия на длинах волн 510/540 нм при возбуждении волной ?488 нм равного 0,6±0,05 отн. ед.

Для сохранения архитектоники слоя ретинального пигментного эпителия, выделение пигментного эпителия из кадаверных глаз человека необходимо проводить после предварительной фиксации водным нейтрализованным раствором формалина, что дает возможность адекватно оценить состояние ретинального пигментного эпителия, с последующим выделением индивидуального образца монослоя клеток из различных участков глазного дна.

Список публикаций по теме диссертации

1. Островский М.А., Фельдман Т.Б., Яковлева М.А., Муранов К.О., Тахчиди Х.П., Борзенок С.А., Арбуханова П.М. Определение флуоресцентных характеристик флуорофоров/групп флуорофоров липофусциновых гранул из клеток ретинального пигментного эпителия, их вклада в картину аутофлуоресценции глазного дна и усовершенствование на этой основе нового неинвазивного диагностического метода в офтальмологии - метода аутофлуоресценции глазного дна // Сборник трудов научной конференции по Программе фундаментальных исследований Президиума РАН "Фундаментальные науки: медицина". - М., 2010. - С.63.

2. Арбуханова П.М., Борзенок С.А., Тахчиди Х.П., Островский М.А., Фельдман Т.Б. Фундаментальные и клинические аспекты компонентного анализа флуоресценции глазного дна при возрастной макулярной дегенерации в эксперименте // Филатовские чтения. Сб. тезисов - Одесса, 2011. - С.134.

3. Арбуханова П.М., Борзенок С.А., Островский М.А., Фельдман Т.Б., Муранов К.О. Спектральный анализ флуоресценции флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия в эксперименте Актуальные проблемы офтальмологии: VI-я Всероссийская научная конференция молодых ученых: Сб.науч.раб. - М., 2011. - С.39.

4. Арбуханова П.М., Борзенок С.А., Тахчиди Х.П., Островский М.А., Фельдман Т.Б., Муранов К.О., Яковлева М.А. Флуоресцентный анализ клеток РПЭ, выделенных из кадаверных глаз человека, различных возрастных групп (результаты конфокальной сканирующей лазерной микроскопии) // Актуальные вопросы офтальмологии: Сб. науч. тезисов. - Краснодар. - 2011. - С. 87.

5. Borzenok S., Malyugin B., Komakh Y., Saburina I., Vasiliev A., Aleksandrova M., Kuznetzova A., Zuravleva E., Arbukhanova P. Retinal pigment epithelium cells from cadaver donors eyes: selection, isolation, cultivation and the cryopreservation // Сборник тезисов международной конференции Европейской ассоциации Глазных банков. Фрайбург. - 2011. - С. 6.

6. Островский М.А., Фельдман Т.Б., Яковлева М.А., Арбуханова П.М., Муранов К.О., Борзенок С.А., Тахчиди Х.П. Экспериментальное обоснование возможности компонентного спектрального анализа картины аутофлуоресценции глазного дна // Конференции и семинары по научным направлениям Программы «Фундаментальные науки - медицине». Тезисы докладов. - М., 2011. - С. 94.

7. Арбуханова П.М., Борзенок С.А., Островский М.А., Фельдман Т.Б. Методика выделения клеток ретинального пигментного эпителия из кадаверных глаз человека с последующим изучением флуоресцентных свойств липофусциновых гранул // Филатовские чтения. Сб. тезисов - Одесса, 2012. - С.134.

8. Борзенок С.А., Островский М.А., Фельдман Т.Б., Муранов К.О., Яковлева М.А., Арбуханова П.М. Анализ флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия в эксперименте // Федоровские чтения - 2012. - Сб. тезисов. - М., 2012. - С.131.

9. Соломин В.А., Магарамов Д.А., Качалина Г.Ф., Арбуханова П.М. Диагностическая ценность аутофлуоресценции и микропериметрии у пациентов с влажной формой возрастной макулярной дегенерации // Офтальмохирургия. - 2012. - №1. - С. 82-84.

10. Арбуханова П.М., Борзенок С.А., Яковлева М.А., Фельдман Т.Б., Островский М.А. Разработка метода получения монослоя клеток ретинального пигментного эпителия из кадаверного глаза человека для исследования in situ флуоресцентных свойств липофусциновых гранул // Сенсорные системы. - 2012. - Т. 26. - № 2. - С. 117-123.

11. Арбуханова П.М., Яковлева М.А., Фельдман Т.Б., Борзенок С.А., Островский М.А. Спектры флуоресценции и состав флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия кадаверных глаз человека в норме и в случае визуализируемой патологии // Офтальмохирургия. - 2012. - №3. - 54-58.

Патенты РФ на изобретения по теме диссертации

Тахчиди Х.П., Борзенок С.А., Островский М.А., Арбуханова П.М., Фельдман Т.Б., Муранов К.О., Комах Ю.А. «Способ выделения и фиксации клеток ретинального пигментного эпителия трупных глаз человека». Патент РФ на изобретение № 2464783 от 27.10.2012

Размещено на Allbest.ur