Участие медицинской сестры в лабораторных исследованиях

После этой подготовки Вы идете в туалет и обираете среднюю порцию мочи в емкость (100-120мл). Завинчиваете емкость крышкой и доставляете мочу на место, указанное медицинской сестрой.

Завинчиваете емкость крышкой и доставляете мочу на место, указанное медицинской сестрой.

Очень важно чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены правильные результаты исследования.

ПАМЯТКА ДЛЯ ПАЦИЕНТА. ИССЛЕДОВАНИЕ МОЧИ ПО ЗИМНИЦКОМУ.

Исследование мочи по Зимницкому назначено Вашим врачом. Цель исследования - объективно оценить функцию почек.

Для получения достоверных результатов Вам необходимо подготовить себя к этому исследованию: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя, лечь спать в обычное для Вас время.

Вы будете собирать мочу в течение всего следующего дня. Поэтому Вы должны встать утром в 6 часов, получить у медицинской сестры отделения емкости для сбора мочи (8 емкостей). Убедитесь, что на емкости для мочи указаны Ваши: фамилия, имя, отчество, отделение, палата.

В 6 часов утра Вы идете в туалет и полностью опорожняете мочевой пузырь в унитаз. Затем через каждые 3 часа собираете всю мочу, которая накопилась у Вас за это время, в отдельную емкость. Вы должны собрать мочу в 9, 12, 15, 18, 21, 24, 3 и 6ч. Каждую емкость завинчиваете крышкой и доставляете ее на место, указанное медицинской сестрой отделения. Для сбора мочи в ночные часы напомните дежурной м/сестре, чтобы она не забыла Вас вовремя разбудить.

Очень важно чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены правильные результаты исследования.

Достоверность результатов, полученных при анализе суточной мочи, во многом зависит от аккуратности сбора образца. Должна быть собрана вся моча, выделенная больным за 24 часа.

Ниже приведена последовательность действий медицинской сестры для обеспечения правильного сбора суточной мочи:

Получите из лаборатории специальный контейнер для сбора суточной мочи. Для сбора мочи на ряд лабораторных анализов требуется контейнер с консервантом. Консервант может обладать агрессивными свойствами (например, соляная кислота), поэтому нужно соблюдать меры предосторожности и предупредить об этом пациента.

Наклейте на контейнер этикетку с данными пациента и указанием времени начала сбора мочи.

Объясните пациенту, что он должен собрать всю мочу, выделенную им за 24 часа.

В любое время (обычно это 8 часов утра) пациент должен опорожнить мочевой пузырь, выпустив мочу в унитаз.

В 8 часов утра следующего дня мочевой пузырь последний раз снова полностью опорожняют и добавляют эту порцию мочи в контейнер.

Собранная моча, предназначенная для анализа, должна быть отправлена в лабораторию как можно скорее.

ПАМЯТКА ДЛЯ ПАЦИЕНТА. ИССЛЕДОВАНИЕ СУТОЧНОЙ МОЧИ.

Исследование мочи по Нечипоренко назначено Вашим врачом. Цель исследования - по результатам анализа объективно оценить Ваше состояние.

Для получения достоверных результатов Вам необходимо подготовить себя к этому исследованию: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя, лечь спать в обычное для Вас время. Вы должны собрать всю выделенную мочу за 24 часа. Емкость для сбора мочи (на 3 литра) Вы должны получить у медицинской сестры отделения заранее. Если в емкости содержится жидкость которую добавляют в качестве консерванта, уточните у медицинской сестры, какая это жидкость и как с ней обращаться.

Предварительно напишите на этикетке данной емкости для мочи Ваши данные: фамилия, имя, отчество, отделение, палата, дату и время сбора мочи; запись должна быть сделана разборчивым почерком.

Утром Вы идете в туалет. Обязательно зафиксируйте время (нулевое время). Первую утреннюю порцию не собираете (выпускаете в унитаз), а соберете все последующие порции точно до того же времени следующего дня (за сутки в емкость 3 л). Если в емкость добавлен консервант, то предварительно каждую порцию мочи собираете в отдельную емкость, а затем переливаете ее в 3-литровую емкость. В перерывах между сбором мочи емкость храните в закрытом виде. По окончании сбора суточной мочи завинчивайте емкость крышкой и доставляете мочу медицинской сестре.

ВНИМАНИЕ!

* Держите мочу в недосягаемом для детей месте, так как в качестве консерванта при сборе суточной мочи может использоваться концентрированная кислота

Недопустимо направлять мочу на исследование в емкостях, не предназначенных для этих целей, так как остатки содержащихся в таких емкостях ингредиентов могут существенным образом исказить результаты Ваших анализов.

ВЗЯТИЕ ПРОБ МОЧИ ПРИ ПОМОЩИ КАТЕТЕРА (специальная методика сбора мочи).

Под специальной методикой сбора мочи понимают получение проб с помощью катетеризации мочевого пузыря. Эта процедура должна выполняться урологами. В настоящее время катетеризацию мочевого пузыря проводят в том случае, если пациент не может мочиться или не способен контролировать мочеотделение.

Уретральные катетеры вводят через цистоскоп в соответствующий мочеточник. Первоначальную мочу выпускают из мочевого пузыря, затем его промывают и лишь после этого берут пробы мочи. Обычно такая процедура используется для проведения дифференциальной диагностики инфекции мочевого пузыря и инфекции почек. Пробы мочи могут быть получены из каждого мочеточника отдельно.

В прошлом была широко распространена практика взятия проб мочи на бактериологическое исследование путем катетеризации мочевого пузыря. Однако в настоящее время она упразднена, т.к. было установлено, что процедура катетеризации сама по себе связана с риском инфицирования мочевыводящих путей. Нередко этот способ получения проб мочи используют у пациентов с постоянным катетером. Однако следует соблюдать определенные правила получения проб мочи через постоянный катетер. Любые бактерии, присутствующие в моче, будут быстро размножаться, оставаясь в дренажной сумке. Поэтому мочу для анализа не стоит брать из дренажной сумки - это приведет к неправильной оценке содержания бактерий в мочевом пузыре. Мочу следует собирать из изолированного рукава дренажной трубки с помощью шприца и иглы, соблюдая правила асептики.

Моча должна быть собрана в стерильный стеклянный или пластиковый контейнер. Для анализа достаточно 5-10мл мочи.

При проведении пункции мочевого пузыря прокол делают иглой со шприцем в надлобковой области. Игла должна входить в наполненный мочевой пузырь, после чего мочу аспирируют шприцем. Обычно этот метод используется при подозрении на анаэробную инфекцию.

Получение спинномозговой жидкости (ликвора).

Для получения спинномозговой жидкости производится люмбальная пункция.

Обычно жидкость собирают в 3 отдельные стерильные пластиковые пробирки с пробками для:

- клинического анализа;

- биохимических и серологических исследований;

- бактериологического анализа.

Пробирки снабжают этикетками с данными о больном (фамилия, имя, отчество, отделение, номер истории болезни, время взятия). Полученные пробы немедленно доставляют в лабораторию. Это особенно важно для бактериологического посева, так как один из ведущих возбудителей менингита - N. meninqitidis - чрезвычайно чувствителен к охлаждению.

Получение синовиальной жидкости.

Эту жидкость берут для исследования осторожно, с соблюдением всех правил асептики. Перед взятием синовиальной жидкости (артроцентез) пациент должен голодать в течение 6 часов. Жидкость берут шприцем, содержащим 25 ЕД гепарина на каждый миллилитр синовиальной жидкости. Полученную жидкость переносят в стерильные пластиковые пробирки с пробками, маркируют и немедленно направляют на клиническое, бактериологическое, биохимическое и серологическое исследования.

Получение плевральной, перикардиальной и перитониальной жидкости.

Для получения плевральной жидкости выполняют хирургическую операцию - торакоцентез. Такого же типа операцию производят при накоплении жидкости в перикарде или брюшной полости. Полученные пробы в условиях асептики переносят в стерильные пластиковые пробирки с пробками (или емкости, если жидкости много), маркируют и направляют на общеклиническое, биохимическое, цитологическое и бактериологическое исследования.

Получение материала из уретры.

Правильное получение материала из уретры является первым и самым ответственным этапом при диагностике характера инфекционного процесса мочеполовой системы. Для установления этиологического агента инфекционного процесса у мужчин материал берут из уретры, а у женщин - из цервикального канала. При этом необходимо соблюдать следующие правила:

Пациент не должен мочиться в течение 1 часа до забора материала

Ввести стерильный маленький тампон в уретру на 2-4 см, повернуть тампон на 360 и вынуть его

Сразу же после забора материала поместить тампон на предметное стекло и, вращая тампон по кругу, равномерно распределить материал по поверхности предметного стекла

Высушить мазок на воздухе и доставить в лабораторию.

Методика получения материала из цервикального канала с использованием цитощеточки:

Удалить стерильным тампоном слизь из устья цервикального канала

Ввести стерильную щеточку в цервикальный канал и повернуть ее на 360, вынуть, не касаясь поверхности влагалища

Поместить щеточку на предметное стекло и, и вращая тампон вдоль предметного стекла, равномерно распределить материал по его поверхности

Высушить мазок на воздухе и доставить в лабораторию

Методика получения материала с конъюнктивы:

Нанести местный анестетик на поверхность роговицы одного или обоих глаз

Используя стерильный малый тампон, осторожно протереть им внутреннюю поверхность нижнего, а затем верхнего век, при заборе материала с обоих глаз вначале протирают менее пораженный глаз

Сразу же после забора материала поместить тампон на предметное стекло и, вращая тампон вдоль предметного стекла, равномерно распределить материал по его поверхности

Высушить мазок на воздухе и доставить в лабораторию.

Сбор мокроты.

Этот биологический материал используют для общеклинического исследования мокроты и наиболее часто для бактериологического анализа.

Для сбора мокроты используют широкогорлые контейнеры вместимостью 70мл с завинчивающейся крышкой. Мокроту лучше собирать утром до приема пищи. Чтобы предотвратить примешивание к мокроте содержимого полости рта, пациент перед выделением мокроты, должен тщательно почистить зубы и прополоскать рот и глотку кипяченой водой, Полоскание ротовой полости перед сбором мокроты уменьшает риск загрязнения пробы слюной. Пациента нужно предупредить о том, что собирать следует только мокроту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании. Емкость с мокротой маркируют и как можно скорее доставляют в лабораторию. Если получить мокроту не предоставляется возможным, то исследуют содержимое бронхиального или бронхоальвеолярного смыва.

Сбор кала.

Результаты копрологического исследования зависят от правильной подготовки пациента и правильного сбора, хранения и доставки материала на исследования. Перед исследованием больному отменяют медикаменты, примеси которых мешают микроскопическому исследованию и влияют на внешний вид каловых масс, а также усиливают перистальтику кишечника. К таким препаратам относятся все слабительные, ваго- и симпатикотропные соедства, каолин, бария сульфат, препараты висмута, железа и средства вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе. Если у женщин в назначенное время для сбора кала имеется менструация, то получение биоматериала лучше отложить.

Собирают кал за одну дефекацию в чистую сухую пластиковую емкость с завинчивающейся крышкой. Недопустимо направлять кал на исследование в спичечных или картонных коробках, т.к. при этом меняются свойства и консистенция кала. Кал не должен содержать посторонних примесей (моча, отделяемое мочеполовых органов). Нельзя собирать фекалии после клизм. Если необходимо знать точное количество испражнений, то пустую емкость перед сбором и после сбора материала взвешивают. Емкость с собранным материалом маркируют и немедленно направляют в лабораторию.

Только добившись строгого и точного выполнения инструкций по взятию и сбору материала на исследования, можно повысить качество результатов лабораторных исследований. Любое отступление от инструкции является нарушением процедуры проведения исследований и приводит к ошибочным результатам. Главные медицинские сестры ЛПУ должны постоянно анализировать и выявлять причины нарушений инструкции по взятию и сбору материала на исследования и разрабатывать меры по их устранению (в США такие инструкции являются законом, и их нарушения, приведшие к нанесению ущерба пациенту - в том числе морального - преследуются в судебном порядке).

2. Доставка биологического материала в лабораторию

Важнейшим моментом в обеспечении качества клинических лабораторных исследований является транспортировка проб биологического материала в лабораторию.

Все собранные пробы отправляют в микробиологическую лабораторию немедленно после получения (как правило, доставляется в течение часа), за исключением случаев использования емкостей с транспортировочными средами, разрешенными к применению для этих целей в Российской Федерации в установленном порядке.

Это необходимо для:

- сохранения жизнеспособности возбудителей и возможности выделения микроорганизмов, требующих особых условий культивирования (Haemophylus и др.);

- предотвращения избыточного роста быстрорастущих и активных микроорганизмов;

- поддержания соотношения исходных концентраций изолятов при наличии в пробе микробных ассоциаций;

- сокращения времени контакта пробы с некоторыми антисептиками, используемыми местно, которые могут обладать антибактериальной активностью;

- объективизации клинического диагноза инфекционно-воспалительного заболевания и оценки результатов терапии.

Допускается использование альтернативных методов для увеличения сроков доставки биоматериала в лабораторию.

Пробы хранят в холодильнике при температуре 2-8 °С, за исключением нижеперечисленных случаев:

- Когда пробу хранят в специализированной транспортировочной емкости (транспортировочная система), разрешенной к применению в установленном порядке, представляющей собой стерильную одноразовую пробирку с агаризованной или жидкой транспортировочной средой и зондом-тампоном, вмонтированным в пробку и стерильно упакованным вместе с пробиркой. В таких емкостях пробы хранят при комнатной температуре (18-20 °С). Транспортировочные среды, специальные плотные с активированным углем и без него, позволяют обеспечить сохранение жизнеспособности микроорганизмов, требующих особых условий культивирования, в течение 48-72 ч.

Для проб на анаэробы и для фекальной флоры используют специальные емкости с транспортировочной средой, пробирки со средами для выделения кампилобактерий и хеликобактера, разрешенные к применению в установленном порядке. Такие среды создают анабиотическую атмосферу для микроорганизмов, что способствует снижению их метаболизма, сдерживанию роста, препятствует их высыханию и накоплению продуктов жизнедеятельности.

Каждую пробу, собранную в жидкую среду, тщательно перемешивают со средой.

- Когда кровь культивируют в бульоне, тогда после получения пробу хранят в термостате при температуре 35-37 °С.

Если пробы собирают в специальные емкости для последующего исследования с двухфазной средой, их следует хранить при комнатной температуре (18-20 °С).

- Когда при возможном наличии температурозависимых микроорганизмов (Neisseria sp.) пробы оставляют при комнатной температуре (18-20 °С).

- Когда пробу хранят в емкостях с соответствующими питательными средами, подготовленных в лаборатории или разрешенных к применению в установленном порядке при проведении:

- бактериологических исследований - в пробирках с вмонтированными зондами-тампонами или без них со средой, состоящей из забуференного физиологического раствора с глицерином для определения энтеробактерий семейства Кишечных ("на дизгруппу") и аэромонад. При работе с тампонами, вмонтированными в ватно-марлевую пробку, следят за тем, чтобы не замочить (не загрязнить) пробку средой и/или собранным материалом. Собранную пробу тщательно перемешивают со средой. Используют также готовые пробирки со специальной плотной средой, разрешенные к применению в установленном порядке;

- вирусологических исследований - в специальных емкостях с жидкой средой, разрешенных к применению в установленном порядке;

- паразитологических исследований - пробу тщательно смешивают с консервантом.

Пробы ликвора хранят при комнатной температуре (18-20 °С), а при проведении в лаборатории вирусологических исследований - в термостате при 35-37 °С.

Для транспортирования проб, исследуемых на наличие аэробов и факультативных анаэробов, используют:

- одноразовые стерильные сухие пробирки с вмонтированным зондом-тампоном (тубсеры) или емкости с транспортировочной средой, разрешенные к применению для этих целей в Российской Федерации в установленном порядке; допускается использование стерильных стеклянных пробирок, укупоренных газопроницаемой пробкой с вмонтированным зондом-тампоном, приготовленных в лаборатории;

- одноразовые стерильные емкости с завинчивающейся крышкой (допускаются стеклянные с газопроницаемой пробкой) - для сбора проб мочи, мокроты, фекалий, бронхо-альвеолярного лаважа, биопсийного (кусочки ткани) материала;

- стерильные одноразовые с завинчивающейся пробкой или стеклянные пробирки - для сбора стерильных жидкостей, бронхо-альвеолярного лаважа, отделяемого из дренажей или соскобов;

- стерильные чашки Петри - для сбора проб волос или для транспортирования соскобов с маркировкой дна чашки;

- специальные стерильные носоглоточные и урогенитальные зонды-тампоны с осью из алюминия (диаметр оси - 0, 9 мм) и маленьким тампоном из хлопка или вискозы на кончике (диаметр тампона - 2, 5 мм), вмонтированным в пробку, укупоривающую стерильную одноразовую стеклянную пробирку - для проб из носоглотки на В. pertusis и из уретры у мужчин.

Для транспортирования проб, исследуемых на наличие анаэробов, используют емкости со специальными транспортировочными средами и пробирки с тиогликолевой средой; пробирки со средами для выделения кампилобактерий и хеликобактера, разрешенные к применению для этих целей в Российской Федерации в установленном порядке. Пробу, собранную в жидкую среду, тщательно с ней перемешивают. Для получения проб рекомендуются следующие приемы:

- отделяемое дренажей, используемых для активной аспирации полостей, отсасывают стерильным шприцем с плотным поршнем в объеме 2-4 мл; на заполненный шприц надевают стерильную иглу, закрытую стерильным ватным тампоном, удаляют из шприца избыток воздуха; ватный тампон сбрасывают в дезинфицирующий раствор; конец иглы вкалывают в стерильную резиновую пробку и в таком виде шприц с материалом доставляют в лабораторию;

- содержимое очагов инфекции и полостей, получаемое путем их пунктирования, собирают в объеме 2-4 мл с помощью 2-, 5-, 10-миллилитровых шприцев с плотным поршнем; из шприца удаляют избыток воздуха, закрыв иглу стерильным ватным тампоном, который затем сбрасывают в дезинфицирующий раствор; иглу дезинфицируют протиранием тампоном, смоченным 70%-м этиловым спиртом; для герметизации конец иглы вкалывают в стерильную резиновую пробку и в таком виде шприц с материалом доставляют в лабораторию.

При сборе большого объема материала (3 мл и более) анаэробные бактерии могут оставаться жизнеспособными в течение 24 ч при комнатной температуре (18-20 °С).

Если отделяемого всего несколько капель, его переносят из шприца в небольшую емкость или в пробирку с транспортировочной средой немедленно после получения (емкости с транспортировочными средами накануне получают в лаборатории).

Кусочки тканей (биопсийный материал) при подозрении на анаэробную инфекцию собирают в стерильные одноразовые емкости с завинчивающейся крышкой (допускается - в стеклянную посуду с притертой крышкой) и доставляют в лабораторию немедленно.

Для транспортирования проб, исследуемых на наличие вирусов, используют специальные емкости с жидкой средой для сохранения вирусов.

4. Техника безопасности при сборе и транспортировке биологического материала

К работе по взятию и транспортировке биологического материала допускается медицинский персонал, прошедший специальный инструктаж по технике работы и мерам безопасности.

При взятии биологического материала должны использоваться средства защиты: медицинские халаты, шапочки, сменная обувь, резиновые (латексные, виниловые) перчатки, а при необходимости -- дополнительно марлевые маски (респираторы), очки, клеенчатые фартуки.

Работать с исследуемым материалом следует в резиновых (латексных, виниловых) перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Следует избегать уколов и порезов.

В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2 мин. тампоном, обильно смоченным 70% спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным тампоном. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода.

При подозрении на попадание крови на слизистые оболочки, их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70% спиртом или 1% раствором борной кислоты или 0, 05% раствором перманганата калия.

Для транспортировки образцов следует использовать преимущественно пластиковую одноразовую тару, герметично закрытую пластмассовыми, резиновыми пробками или завинчивающимися крышками. Запрещается использовать стеклянную посуду со сколами, трещинами и т.п. При транспортировке сосудов, закрытых целлюлозными (ватными) пробками, следует исключить их увлажнение.

Транспортировка биоматериала осуществляется в специальных закрытых переносках (укладках), желательно - термостатированных, выдерживающих дезинфекцию.

Сопроводительная документация помещается в предназначенный для нее карман переноски (укладки), а в случае его отсутствия -- кладется в переноску в отдельном полиэтиленовом пакете.

При хранении биологического материала в холодильнике каждый образец упаковывается в отдельный полиэтиленовый пакет. Для этой цели выделяется отдельный холодильник, хранение в котором пищевых продуктов и лекарственных препаратов не допустимо.

Источники

1. "МУ 4.2.2039-05. 4.2. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории. Методические указания" по состоянию на август 2014 г.

2. Кишкун А.А. Клиническая лабораторная диагностика: учебное пособие для медицинских сестер. - М.ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 720 с.

3. Обуховец, Т.П. Основы сестринского дела: учебное пособие для студентов образовательных учреждений среднего профессионального образования, обучающихся в медицинских училищах и колледжах / Т. П. Обуховец, О. В. Чернова ; под общ. ред. Б. В. Кабарухина. Ростов-на-Дону: Феникс, 2015. - 765с.

Размещено на Allbest.ru