Влияние глутоксима на рост лекарственно-резистентных микобактерий туберкулеза и на активность основных противотуберкулезных препаратов в культуре легочной ткани
Изучение влияния препарата глутоксима на рост лекарственно-резистентных микобактерий туберкулеза в клеточной и внеклеточной среде в культуре легочной ткани мышей. Исследование действия глутоксима на их рост в присутствии противотуберкулезных препаратов.
Рубрика | Медицина |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 26.11.2017 |
Размер файла | 13,7 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии ММА
им. И.М.Сеченова
Влияние глутоксима на рост лекарственно-резистентных микобактерий туберкулеза и на активность основных противотуберкулезных препаратов в культуре легочной ткани
А.Д.Куничан, Г.Б.Соколова,
М.В.Синицын, С.Е.Бугаенко, М.И.Перельман
Москва
Проведено изучение влияния Глутоксима на рост лекарственно-резистентных микобактерий туберкулеза (ЛР МБТ) в клеточной и внеклеточной среде в культуре легочной ткани мышей. В этом же аспекте представляло интерес исследование действия Глутоксима на рост ЛР МБТ в присутствии противотуберкулезных препаратов, к которым микобактерии устойчивы (изониазид и рифампицин).
Методы: легочную ткань мышей культивировали модифицированным методом эксплантации в силиконовых перфузионных камерах. Кусочки легочной ткани (эксплантанты) помещали на покровное стекло камеры и фиксировали их к стеклу с помощью плазмы крови кролика. В камеры вводили среду 199. В течение 5-6 дней культивирования вокруг эксплантантов образовывалась обширная зона выселения и роста клеточных элементов, среди которых преобладали макрофаги и фибробласты. По периметру эксплантантов возникал фибропластический вал, который отслаивался, образуя кольцевидную структуру, заполненную разнообразными подвижными клеточными элементами легочной ткани. Здесь также преобладали большие и малые макрофаги.
Лекарственно-резистентные МБТ получали от больных туберкулезом. Устойчивость к изониазиду составляла 1 мкг/мл, к рифампицину - 50 мкг/мл. Взвесь ЛР МБТ в среде 199 получали без количественного дозирования микробных тел. В этом не было необходимости, поскольку во все камеры с культурой ткани, включая контрольные, вводили одинаковый объем взвеси ЛР МБТ. глутоксим микобактерия противотуберкулезный препарат
В первой серии экспериментов изучали влияние одного Глутоксима на рост ЛР МБТ. Глутоксим из ампул с 1 мл 3% раствора препарата разбавляли до окончательной концентрации 1 мкг/мл в среде 199, содержавшей 10% сыворотки крупного рогатого скота и взвесь ЛР МБТ. В контрольном варианте использовали ту же питательную среду с равным содержанием взвеси ЛР МБТ без Глутоксима. В камерах с культурой ткани производили замену среды на содержавшую и не содержавшую Глутоксим и помещали их в термостат при t 37 C0.
Во второй серии экспериментов изучали влияние Глутоксима на рост ЛР МБТ в присутствии изониазида или рифампицина. Изониазид разбавляли в среде 199, содержавшей те же компоненты, что и в первой серии, до концентрации 1 мкг/мл, рифампицин - до концентрации 50 мкг/мл, Глутоксим - до концентрации 1 мкг/мл. Было выделено 5 групп камер: 1. Контрольные камеры без препаратов; 2. Камеры, содержавшие один изониазид; 3. Камеры с одним рифампицином; 4. Камеры, содержавшие изониазид+Глутоксим; 5. Камеры, содержавшие рифампицин+Глутоксим.
Наблюдение за ростом микроколоний ЛР МБТ в зоне выселения и роста клеточных элементов (ВНУ) и за ее пределами (ВНЕ) вели в фазовом контрасте с помощью инвертированного микроскопа МБИ-13 (ЛОМО, Россия). Микроколонии ЛР МБТ, представлявшие собой характерные морфологические образования, известные под названием «кос», подсчитывали в 100 полях зрения при увеличении 21040. Одновременно оценивали состояние клеточных элементов: жизнеспособность, подвижность, фагоцитирующую активность, состояние внутренних структур (ядер, гранул, эндо- и эктоплазмы).
Данные о количестве микроколоний ЛР МБТ обрабатывали статистически с помощью компьютерной программы «Статистика».
Результаты: в первой серии экспериментов микроколонии ЛР МБТ появлялись в виде мелких «кос» на 3-4 дни после инокуляции микробной взвеси как в контрольных (без Глутоксима), так и в опытных камерах в большом количестве за пределами зоны выселения и роста клеточных элементов и в незначительном количестве в пределах этой зоны. В последующие 3-5 дней нарастало их количество и размеры. К этому времени производили окончательный подсчет микроколоний ЛР МБТ, поскольку при дальнейшем культивировании они переплетались, что затрудняло выделение и подсчет отдельных микроколоний. Количественные данные о росте микроколоний ЛР МБТ представлены в табл.1.
При использовании одного Глутоксима в концентрации 1 мкг/мл в зоне выселения и роста клеточных элементов число выросших микроколоний ЛР МБТ было значимо меньше, чем за ее пределами, что подтверждается высокой степенью статистической достоверности различий. В контрольных камерах число микроколоний ЛР МБТ в пределах клеточного массива статистически не отличалось от такового за ее пределами.
В контрольных камерах большинство клеточных элементов потеряло признаки жизнеспособности: макрофаги были неподвижны, не образовывали псевдоподий, в их цитоплазме определялись крупные бесформенные включения. Из многих макрофагов имелись выросты «кос» микроколоний МБТ. Фибробласты деформировались, гранулярные структуры в них были комковаты, ядра визуально не определялись.
В камерах с Глутоксимом также наблюдались признаки деградации клеточных элементов, однако они не были столь выраженными. Сохранялась некоторая подвижность макрофагов, цитоплазма их представлялась более структурной. Часть макрофагов образовывала псевдоподии, что свидетельствовало о продолжении процесса фагоцитирования. Часть фибробластов деформировалась, однако часть сохраняла типичную веретенообразную форму с правильным расположением гранул и отчетливо видимым ядром.
Тем самым, Глутоксим, в отсутствии противотуберкулезных препаратов, способствовал более эффективному фагоцитозу МБТ в клеточной среде культуры легочной ткани и уменьшал повреждаемость клеточных элементов, обусловленную инфекцией.
Во второй серии экспериментов введение Глутоксима в сочетании с противотуберкулезными препаратами - изониазидом или рифампицином - привело к значительным изменениям численности лекарственно-резистентной микробной популяции в зоне выселения и роста клеточных элементов по сравнению с таковой за ее пределами. Таким образом, Глутоксим оказывал существенное влияние на рост ЛР МБТ в клеточной среде как в присутствии изониазида, так и рифампицина. Количество микроколоний здесь было в 10 раз меньше при сочетании Глутоксима с изониазидом и в 5 раз меньше при сочетании его с рифампицином по сравнению с таковым во внеклеточной среде.
При сопоставлении этих данных с данными, полученными в первой серии экспериментов, создается впечатление усиления Глутоксимом противотуберкулезной активности рифампицина и, особенно, изониазида. Это может быть связано со значительным ослаблением жизнеспособности ЛР МБТ при активации фагоцитарной способности макрофагов, в результате чего действие противотуберкулезных препаратов становится более выраженным.
Характерным было полное сохранение жизнеспособности клеточных элементов легочной ткани при сочетании Глутоксима с изониазидом или рифампицином. Макрофаги были подвижны, морфологические признаки деградации в них отсутствовали. Фибробласты имели характерную продолговатую форму, овальное ядро с ядрышками, в них отмечалось перинуклеарное расположение гранул.
В контрольных камерах без препаратов, с одним изониазидом или с одним рифампицином клеточные элементы подверглись значительной деградации и не были жизнеспособными. Отмечался пророст «кос» ЛР МБТ из макрофагов. За пределами клеточного массива во всех случаях наблюдался обильный рост микроколоний ЛР МБТ.
Заключение
1. Глутоксим в отсутствие противотуберкулезных препаратов способствует уменьшению роста лекарственно-резистентных микобактерий туберкулеза в клеточной среде культуры легочной ткани по сравнению с их ростом во внеклеточной среде примерно в 1,8 раза.
2. При сочетании с изониазидом Глутоксим в клеточной среде приводит к уменьшению популяции лекарственно-резистентных МБТ примерно в 10 раз, при сочетании с рифампицином - примерно в 5 раз.
3. Во всех случаях Глутоксим не оказывает влияние на рост ЛР МБТ во внеклеточной среде.
4. Глутоксим способствует сохранению жизнеспособности и функциональной активности клеточных элементов культуры легочной ткани, инфицированной лекарственно-резистентными МБТ, особенно при сочетании его с противотуберкулезными препаратами.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Источники возбудителя и классификация микобактерий туберкулеза. Антигенная структура микобактерий. Патогенность и вирулентность различных видов микобактерий. Влияние химических факторов на микобактерии Иммунизирующее свойства микобактерий. Диагностика.
курсовая работа [67,7 K], добавлен 30.03.2008Особенности строения и функционирования возбудителя туберкулеза. Туберкулез как инфекционное заболевание. Возможные исходы заражения. Методы выявления и подтверждения диагноза туберкулеза. Методы исследования лекарственной чувствительности микобактерий.
дипломная работа [3,0 M], добавлен 22.06.2012Классификация противотуберкулезных препаратов. Характеристика возбудителя заболевания. Отличительные свойства микобактерии туберкулеза, пути заражения. Факторы, способствующие распространению болезни. Основные симптомы туберкулеза, его лечение.
презентация [3,9 M], добавлен 02.06.2014Классификация культивируемых микобактерий. Микробиологическая диагностика туберкулеза. Окраска микобактерий туберкулеза по Цилю-Нильсену, посев культуры на среде Левенштейна-Йенсена. Эпидемиологическая ситуация и динамика заболеваемости туберкулезом.
презентация [2,9 M], добавлен 23.02.2014Основные термины и понятия при фармакотерапии туберкулеза. Особенности фармакодинамики и применения основных противотуберкулезных средств. Формы туберкулеза в зависимости от величины бактериальной популяции. Проблемы фармакотерапии туберкулеза.
реферат [64,2 K], добавлен 28.06.2011Актуальность проблемы туберкулеза. Совокупность признаков и данных анамнеза, повышающих риск развития локального туберкулеза. Отбор лиц с вероятностью латентной инфекции. Фульминантная печеночная недостаточность. Обзор противотуберкулезных препаратов.
презентация [561,0 K], добавлен 17.03.2016Осуществление рутинных методик полимеразно-цепной реакции (ПЦР). ПЦР диагностика туберкулеза легких. Молекулярно-генетическое исследование для идентификации видов микобактерий из культурального материала. ПЦР диагностика внелегочных форм туберкулеза.
курсовая работа [1,2 M], добавлен 20.05.2013Общая характеристика мультирезистентного туберкулеза как наиболее опасной формы туберкулеза. Причины возникновения данного заболевания. Классификация лекарственной устойчивости бактерий M.tuberculosis. Методы комплексного лечения данного заболевания.
презентация [4,1 M], добавлен 25.02.2014Эпидемиология и этиология туберкулеза кожи. Факторы, способствующие возникновению туберкулеза кожи. Пути проникновения микобактерий в кожу. Клинические формы туберкулезной волчанки. Дифференциальный диагноз данного заболевания и принципы его лечения.
презентация [591,5 K], добавлен 20.04.2016Современная диагностика туберкулеза. Принцип работы автоматизированной системы Bactec Mgit 960 для выявления микобактерий туберкулеза и постановки тестов на лекарственную чувствительность к противотуберкулезным препаратам. Материалы и методы исследования.
дипломная работа [118,6 K], добавлен 19.05.2013