Дослідження функціональних властивостей латротоксинподібного білка як можливого учасника процесу нейросекреції

Функціональні властивості латротоксинподібного білка на модельних системах штучних і біологічних мембран, свіжоізольованих нейронах гіпокампа і мозочка, і культурі клітин гіпокампу. Дослідження впливу білка на роботу потенціалзалежних кальцієвих каналів.

Рубрика Медицина
Вид автореферат
Язык украинский
Дата добавления 22.06.2014
Размер файла 40,6 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Національна Академія Наук України

Інститут фізіології ім.О.О.Богомольця

УДК 612.822:611.813.14

Дослідження функціональних властивостей латротоксинподібного білка як можливого учасника процесу нейросекреції

03.00.02 - біофізика

Автореферат дисертації на здобуття вченого ступеня

кандидата біологічних наук

Гливук Наталія Валентинівна

Київ - 2002

Дисертацією є рукопис

Робота виконана у відділі нейрохімії Інститута фізіології ім.О.О.Богомольця НАН України

Науковий керівник: доктор біологічних наук

МАЛИШЕВА Маргарита Костянтинівна Інститут фізіології ім.О.О.Богомольця НАН України зав. відділом нейрохімії

Офіційні опоненти :

Доктор біологічних наук , академік НАН України КРИШТАЛЬ Олег Олександрович Інститут фізіології ім. О.О. Богомольця НАН України зав. відділом фізико-хімічної біології клітинних мембран

Доктор медичних наук, професор ГРОМОВ Леонід Олександрович Інститут фармакології та токсикології Медичної Академії Наук України зав. відділом нейрофармакології.

Провідна установа:

Інститут біохімії ім. О.В.Палладіна НАН України, м. Київ

Захист відбудеться ” 15 жовтня 2002 р. о ”__14___” годині на засіданні спеціалізованої вченої ради Д-26.198.01 при Інституті фізіології ім.О.О.Богомольця НАН України за адресою: 01024, м. Київ, вул. Богомольця 4. латротоксинподібний білок біологічний гіпокамп

З дисертацією можна ознайомитися в бібліотеці Інститута фізіології ім.О.О.Богомольця НАН України за адресою: 01024, м. Київ, вул. Богомольця 4.

Автореферат розісланий ”_13_”__вересня__2002 р.

Вчений секретар спеціалізованої вченої ради

доктор біологічних наук Сорокіна-Маріна З.О.

ЗАГАЛЬНА ХАРАКТЕРИСТИКА РОБОТИ

Актуальність теми. Хімічна синаптична передача є основною формою міжклітинного сполучення в нервовій системі. Вивільнення нейромедіатора відбувається за рахунок процесу регульованого екзоцитозу, як відповідь на підвищення внутрішньоклітинної концентрації кальцію. Цей процес є результатом цілого ряду так званих рухових реакцій синаптичних везикул, кожна з яких, в свою чергу, опосередковується роботою багатьох білків. За останнє десятиріччя було відкрито велику кількість білків, що беруть участь у цих процесах. Ці білки умовно можна поділити на кілька окремих груп, згідно з особливостями їх дії. Дослідження їх структурних та функціональних властивостей за допомогою біохімічних, генетичних та молекулярно-біологічних методів дозволили скласти детальну картину міжмолекулярних взаємодій певних факторів, що лежать в основі процесу вивільнення нейромедіатора. Однак, незважаючи на велику кількість досліджень, що спрямовані на розуміння тонких механізмів регуляції процесу синаптичної передачі, багато питань залишаються відкритими. Одним з них є питання про те, що ж, насамперед, безпосередньо викликає процес злиття синаптичних везикул з мембраною клітин. За останні півтора десятка років було відкрито декілька білків - посередників злиття різного типу мембран. Це білки ААА родини АТФаз - NSF, що опосередковує злиття мембран синаптичних везикул з плазматичними мембранами, р97 - посередник злиття мембран в апараті Гольджи та ендоплазматичному ретикулюмі, та інші. Проведені раніше дослідження свідчать про те, що ще одним претендентом на роль посередника злиття є цитоплазматичний білок нервових клітин, названий латротоксинподібним. Своєю назвою він завдячує б-латротоксину - діючому компоненту отрути паука каракурта. Цей компонент є відомим ініціатором масованого вивільнення нейромедіатора з пресинаптичного закінчення і з яким латротоксинподібний білок має спільні антигенні детермінанти. Попередні дослідження показали, що цей білок відзначається не лише деякою структурною подібністю, а і наявністю характерних для б-латротоксину властивостей. Тому детальне дослідження функціональних властивостей латротоксинподібного білка можливо допоможе з'ясувати його місце в процесі вивільнення нейромедіатора. Це, в свою чергу, значною мірою поповнить інформацію щодо білків - учасників синаптичної передачі, і внесе деяке розуміння в питання щодо механізму вивільнення нейромедіатора - ключового процесу, що забезпечує міжклітинне сполучення в нервовій системі та між нейронами та іншими акцепторними клітинами.

Зв'язок роботи з науковими програмами, планами, темами. Дослідження проводились відповідно до планів наукової роботи відділу нейрохімії Інститута фізіології ім.О.О.Богомольця НАН України: “Вивчення злиття штучних та біологічних мембран в модельних системах”.

Мета роботи. Метою роботи було дослідити функціональні властивості латротоксинподібного білка на модельних системах штучних та біологічних мембран, свіжоізольованих нейронах гіпокампа та мозочка, та культурі клітин гіпокампу.

Завдання роботи.

1. Дослідити вплив різних факторів на злиття мембранних структур в умовах in vitro.

2. Дослідити здатність латротоксинподібного білка модулювати злиття мембран.

3.Дослідити АТФ-азну активність латротоксинподібного білка.

4. Дослідити модулюючий вплив рН середовища та фосфорилювання латротоксин-подібного білка на його здатність викликати злиття негативно заряджених ліпосом.

5.Дослідити вплив латротоксинподібного білка на роботу потенціалзалежних кальцієвих каналів.

6. дослідити вплив латротоксинподібного білка на спонтанні постсинаптичні відповіді.

Наукова новизна роботи. З використанням модельних систем штучних та біологічних мембран показано, що латротоксинподібний білок викликає злиття мембран, а факторами, що за цих умов регулюють його активність, є процес фосфорилювання та зміна рН середовища інкубації. Окрім цього показано, що латротоксинподібний білок здатен проявляти АТФазну активність. З використанням методу фіксації потенціалу в конфігурації “ціла клітина” показано, що латротоксинподібний білок здатен викликати збільшення амплітуди потенціалзалежних кальцієвих струмів Р- та L-типів, при цьому кінетичні параметри цих струмів залишаються незмінними. З використанням нейронів культури гіпокампа встановлено, що латротоксинподібний білок викликає спонтанне вивільнення нейромедіатора, що виражається в значному зростанні частоти та амплітуди спонтанних постсинаптичних потенціалів.

Теоретичне та практичне значення роботи. Отримані дані щодо можливої участі латротоксинподібного білка в процесі нейросекреції мають, насамперед, теоретичне значення, оскільки поповнюють об'єм інформації про можливе опосередковування процесу вивільнення нейромедіатора. Окрім того в результаті роботи було отримано дані, які дозволяють віднести латротоксинподібний білок в якості нового члена до родини АТФаз. Також нами показано, що латротоксинподібной білок суттєво впливає на роботу кальцієвих каналів. Отримані нами нові дані дають підстави припустити, що описаний нами латротоксинподібний білок може бути новим регуляторним фактором в процесі синаптичної передачі. Ці дані є дуже важливими для більш глибокого розуміння та подальшого дослідження тонких механізмів регуляції процесу синаптичної передачі.

Особистий внесок автора в отримання наукових результатів. Особисто автором зроблений огляд літератури по даній проблемі. Досліджено АТФазну активність латротоксинподібного білка. Досліджено вплив латротоксинподібного білка на роботу кальцієвих каналів P- та L-типів свіжоізольованих нейронів Пуркіньє мозочка та нейронів гіпокампа, відповідно. Дослідження впливу латротоксинподібного білка на генерування спонтанних постсинаптичних відповідей на культурі нейронів гіпокампа проведено спільно зі старшим науковим співробітником Інституту фізіології ім. О.О. Богомольця - к.б.н. Сторожуком М.В. Дослідження здатності латротоксинподібного білка впливати на процес АТФ - індукованого злиття біологічних мембран та дослідження здатності латротоксинподібного білка впливати на процес злиття штучних мембран в нативному стані та при дії ендогенних та екзогенних модуляторних факторів гіпокампа проведено спільно зі старшими науковими співробітниками Інститута фізіології ім. О.О. Богомольця - к.б.н. Колчинською Л.І. і к.б.н. Кастрикіною Т.Ф. та старшими науковими співробітниками Інститута біохімії ім. О.В.Палладіна - к.б.н. Терлецькою Я.Т. і к.б.н. Трікаш І.О. Проведена обробка та статистичний аналіз усіх результатів.

Апробація результатів дисертації: на Міжнародному симпозіумі в Київі (Україна)(1997), Дев`ятому міжнародному конгресі в Нешвілі (США)(1997), на інститутських наукових семінарах та семінарах Сектору молекулярної фізіології Інституту фізіології ім. О.О. Богомольця НАН України.

Публікації. Результати досліджень опубліковані в 4 наукових статтях та 3 тезах конференцій.

Структура та обсяг дисертації. Дисертація складається із вступу, огляду літератури, матеріалів та методів досліджень, результатів досліджень, обговорення, висновків та списку використаних джерел із 233 найменувань. Робота викладена на 153 сторінках та ілюстрована 28 рисунками.

Основний зміст дисертації

МЕТОДИКА Досліджень

Об'єкт досліджень. Дослідження здатності латротоксинподібного білка викликати злиття мембранних структур проводили з використанням модельних систем, що містили синаптичні мембрани і везикули; лише синаптичні везикули; або систему ліпосом. Дослідження впливу латротоксинподібного білка на кальцієві канали проводили на свіжоізольованих нейронах гіпокампа та нейронах Пуркіньє мозочка. Дослідження здатності латротоксинподібного білка впливати на спонтанну синаптичну активність проводили з використанням культури клітин гіпокампа.

Метод виділення латротоксинподібного білка. Латротоксинподібний білок виділяли із сірої речовини головного мозку бика з використанням іонообмінної та гідрофобної хроматографій, за методом {Трикаш И.О., Терлецкая Я.Т., et al. 1998}.

Дослідження злиття ліпосом та біологічних мембран. Злиття ліпосом реєстрували по зміненню інтенсивності флюоресценції за рахунок утворення комплексу Tb3+-ДПК внаслідок злиття мембран двох типів ліпосом 1-ий з яких містив TbCl3 і 2-ий - ДПК. Як контролі використовували : на мінімальний рівень флюоресценції (0%) - типову реакційну суміш без додавання білка, на максимальний рівень флюоресценції (100%) - ліпосоми що містили TbCl3 і ДПК. Злиття біологічних мембран досліджували за допомогою флуоресцентного барвника 18. Як контролі використовували : на мінімальний рівень флюоресценції (0%) - типову реакційну суміш без вмісту білку, на максимальний рівень флюоресценції (100%) -отриману суміш, після додавання до досліджуваної суспензії октаетиленглікольдодецилефіру в кінцевій концентрації 0,25%. Вимірювання проводили на флюоресцентному спектрофотометрі Хітачі 650-10 в умовах збудження 276 нм і емісії 545 нм з використанням відсікаючого фільтру 530 нм для усування світлорозсіювання.

Визначення АТФ-азної активності латротоксинподібного білка. Визначення АТФ-азної активності проводили при 37С в 2 мл. реакційної суміші такого складу (в мМ): АТФ-1; Трис-НСІ-10 (pH 7.0, або рН 8,1); MgCl2-1; 50-100 мкг білку. Кількість утвореного неорганічного фосфату вимірювали за допомогою методу {P.S.Chen et.al. 1956}. Як контроль на реактиви використовували відповідну аліквоту реакційної суміши з додаванням білка безпосередньо перед фарбуванням.

Методика отримання поодиноких ізольованих нейронів гіпокампа та Пуркін'є мозочока. Для отримання ізольованих нейронів застосовувався метод м'якої ферментативної обробки. Для експериментів використовували щурів лінії Вістар, віком 13 (для мозочка) та 17 діб (для гіпокампа). Ферментативну обробку проводили на протязі 35-40 хв з додаванням протеази (Sigma, P-5147, from Aspergillus oryzae) 8-9 мг та 12 мг на 5мл, відповідно для гіпокампа та мозочка при t-32?C. При електрофізіологічному дослідженні нейрони зберігали стабільність характеристик електрозбудливих іонних струмів та були здатні відповідати на аплікацію сполук протягом 30-90 хвилин.

Методика отримання культури клітин гіпокампу. Для приготування первинної культури нейронів гіпокампа використовували мозок новонародженних щурів лінії Вістар. Зрізи гіпокампа товщиною 200-300 мкм оброблялися ферментативно розчином 0.05% пронази Е (Sigma) протягом 18 хвилин при 32С. Для підтримання життєдіяльності клітин використовували мінімальне середовище Ігла (МЕМ, “Sigma”, США) з додаванням 10% кінської сироватки (Gibco, США). Дослідження проводили в культурі віком від 14 до 25 діб.

Електрофізіологічні вимірювання.Для реєстраціі іонних струмів крізь мембрану нейронів був застосований метод внутриклітинноі перфузіі (Неер Э., Сакман Б. (1992)). Внутришньопіпетковий розчин містив (в мМ): 70 Трис-фосфат, 40 TEA-Cl, 20 Трис-Cl, 5 ЕГТА, 5 Mg2+-АТФ, 1-3 ГТФ, pH=7.4. [206]. Позаклітинний розчин (у mM для L-типу кальцієвих струмів): 40 тетраетиламоній хлорид (TEA-Cl), 2 MgCl2, 20 BаCl2, 100 Холін-хлорид, 20 Трис-Cl, pH=7.4. Позаклітинний розчин (у mM для P-типу кальцієвих струмів): 40 TEA-Cl, 2 MgCl2, 2 BаCl2, 100 Холін-хлорид, 20 Трис-Cl, pH=7.4. Для дослідження спонтанних постсинаптичних потенціалів внутришньопіпетковий розчин мав такий склад (в мМ): Cs глюконат 100, CsCl 30, MgCl2 4, Na2АТФ 4, EGTA 10, HEPES 10. Склад позаклітинного розчину - (у mM ): NaCl 140, KCl 4, CaCl2 2, MgCl2 1, HEPES 10, глюкоза 10, pH=7.4.

Обробка результатів експериментів. Результати статистичної обробки експериментальних даних представлені як середнє арифметичне ± стандартна похибка середнього арифметичного (n - кількість експериментів). Дані апроксимувались різними функціями із використанням програмного забезпечення Origin.

Результати досліджень

Модулювання злиття мембран під впливом латротоксинподібного білка. Для дослідження здатності латротоксин-подібного білка впливати на процес злиття мембран використовували систему, що містила синаптичні везикули та мембрани синаптосом. Було показано, що при додаванні латротоксинподібного білка до цієї системи відбувалося часткове пригнічення процесу злиття (Рис. 1 (крива 2)). Вже на другу хвилину інкубації гальмуюча дія латротоксинподібного білка на АТФ-індуковане злиття синаптичних везикул та мембран синаптосом становила близько 22% від контрольного рівня і далі зростала з часом інкубації . Ці результати дозволили нам припустити, що для латротоксинподібного білка може бути характерна поведінка подібна до таких білків родини ААА АТФаз, як р97 або Cdc48p; білків, що опосередковують злиття виключно гомотипових мембран. Для перевірки цього припущення ми використали систему що містила лише синаптичні везикули. Додавання латротоксинподібного білка до інкубаційного середовища призводило до підвищення відносного проценту злиття мембран (рис. 2). За першу хвилину інкубації відбувалося збільшення ефективності злиття синаптичних везикул на 33% і потім, на протязі подальшої інкубації, відбувалося лише збільшення відносного проценту злиття пропорційно до контрольних значень (рис. 2). Так відносний процент злиття мембран в контролі та під впливом латротоксинподібного білка на першу хвилину інкубації становив 9% та 12 %, відповідно, і потім зростав до 12% та 16% на 2 хвилину, 14%/18% - на 3 хвилину і 15%/20% - на 4 хвилину інкубації. Постійна часу наростання процесу злиття становила ф=1.118 ± 0.06 хв. для контроля, та ф=1.126 ± 0.086 хв. при дії білка. Таким чином отримані нами результати дають змогу зробити припушення, що подібно білкам р97 та Cdc48p, латротоксинподібний білок може впливати на процес злиття гомотипових мембран.

Дослідження АТФ-азної активності латротоксинподібного білка. З літератури відомо, що вищезгадані білки р97 та Cdc48p належать до ААА родини АТФаз. Це дозволило нам припустити, що латротоксинподібний білок також здатен проявляти АТФазну активність і може виконувати роль подібну до відомих білків родини ААА АТФаз. Дослідження показали, що латротоксинподібний білок дійсно проявляє АТФазну активність (рис. 3, крива 1). Додавання латротоксинподібного білка до інкубаційного середовища, що містило АТФ, призводило до вивільнення неорганічного фосфату. Було показано, що при рН 7.4 процес гідролізу АТФ досягав максимальної швидкості, яка становила 0,140 мкмольPi / мг латротоксинподібного білка / хв. Таким чином наші дослідження показали що АТФазна активність латротоксинподібного білка становить близько 4-6 мкмольРі/мг білка/годину, що відповідає таким значенням для білків ААА родини АТФаз, що описані в літературі. Крім того, як відомо з літератури, рН середовища є фактором, який суттєво змінює активність білків. Так, максимум АТФазної активності для білків ААА родини проявляється при зсуві рН в бік лужного середовища. Дослідження впливу рН на активність латротоксинподібного білка показали, що так само як і в випадках р97 та NSF, підвищення рН до 8,1 призводило до значних змін АТФазної активності латротоксинподібного білка (рис. 3, 4). Максимальна швидкість гідролізу АТФ латротоксинподібним білком при рН 8,1 становила 0,132 мкмольPi / мг білка / хв. Збільшення концентрації латротоксинподібного білка в інкубаційному середовищі призводило до пропорційного зростання кількості вивільненого фосфату за одиницю часу і мало лінійну форму. Таким чином, отримані нами результати свідчать, що латротоксинподібний білок має АТФазну активність і можливо належить до родини ААА-АТФаз, білків, які опосередковують злиття мембран.

Модулюючий вплив рН середовища на здатність латротоксинподібного білка викликати злиття негативно заряджених ліпосом. Найбільш зручною моделлю для досліджень модулювання здатності латротоксинподібного білка викликати злиття гомотипових мембран є система ліпосом. Нами було показано, що зміни рН середовища мають значний вплив на активність латротоксинподібного білка та його здатність викликати злиття від'ємно заряджених ліпосом. Як видно з рисунку 5, підвищення рН до 8.1 призводило до майже повної інактивації впливу білка. Інкубування на протязі 6 хвилин призводило лише до незначного злиття ліпосом, що становило близько 1,2%; тоді як в контрольних умовах при рН 7,4 відносний процент злиття вже на першу хвилину інкубації становив 3%, а до 6 хвилини збільшувався до 17%. Це свідчить про те, шо навіть при досить незначному зсуві рН в лужну область відбуваються значні конформаційні зміни в молекулі білка, що призводять до інактивації здатності латротоксинподібного білка викликати злиття штучних мембран. Однак зсув рН в бік кислого середовища мав зворотній ефект. Так при рН 6,0 додавання латротоксинподібного білка до інкубаційного середовища призводило до того, що вже на самому початку інкубації відносна кількість ліпосом, що злилися, становила близько 35 %.

Вплив фосфорилювання латротоксинподібного білка на його здатність викликати злиття негативно заряджених ліпосом. Фосфорилювання білків може призводити до значних змін їх функціональних властивостей, і, відповідно, було цікавим з'ясувати, чи призведе фосфорилювання латротоксинподібного білка до модифікації його фузогенної активності. Фосфорилювання латротоксинподібного білка проводили з використанням каталітичної субодиниці цАМФ-залежної протеїнкінази за стандартною методикою. Нами було показано, що за умов фізіологічного рН фосфорилювання латротоксинподібного білка призводить до значного зниження його здатності викликати злиття негативно заряджених ліпосом(рис.6). Додавання нефосфорильованого латротоксинподібного білка до інкубаційного середовища призводило до лінійного збільшення відносного проценту мембран, що злилися, і після 6 хвилин інкубації швидкість цього процесу не зменшувалась. Злиття ліпосом під дією нативного латротоксинподібного білка приймали за контроль. Ефективність впливу фосфорильованого латротоксинподібного білка знижувалась майже на 65%. При зсуві рН в бік кислого середовища (рис. 7) фосфорилювання білка додатково збільшувало його здатність викликати злиття негативно заряджених ліпосом. За цих умов ефективність дії латротоксинподібного білка зростала майже на 43 відсотки, в порівнянні з контролем. В обох випадках наростання кількості ліпосом, що злилися, мало лінійну залежність. Таким чином, отримані нами результати дали нам змогу припустити, що латротоксинподібний білок здатен змінювати свою активність під впливом різних факторів, що опосередковують модуляцію активності інших білків, зокрема білків синаптичної передачі в умовах in vivo.

Вплив N-етилмалієміду на здатність латротоксинподібного білка викликати злиття негативно заряджених ліпосом. З літературних даних відомо, що білки родини ААА-АТФаз, що опосередковують злиття мембран, дуже чутливі до впливу N-етилмалієміду. Дослідження впливу N-етилмалієміду на активність латротоксинподібного білка проводили з використанням системи ліпосом. Латротоксинподібний білок попередньо обробляли розчином N-етилмалієміду. Наши дослідження показали, що за таких умов фузогенна активність латротоксинподібного білка значно знижується (рис. 8), але не зникає зовсім. Варто відмітити, що в обох випадках математично процес злиття ліпосом під дією обробленого N-етилмаліємідом та нативного латротоксинподібного білка описувався одноекспоненційними кривими з постійною часу наростання ф=3,6 ± 0,59 хв., для білка обробленого N-етилмаліємідом, і ф = 3,397 ± 0,55 хв. для нативного білка. Таким чином, ці результати також підтверджують наше припущення, що латротоксинподібний білок може належати до родини синаптичних білків, що мають N-етилмаліємід-чутливі властивості, а саме - ААА родини АТФаз, що забезпечують транспортні реакції та комплексні перетворення на протязі синаптично-везикулярного циклу.

Дослідження впливу латротоксинподібного білка на роботу потенціалзалежних кальцієвих каналів. Дослідження здатності латротоксинподібного білка впливати на роботу кальцієвих каналів проводили на свіжоізольованих нейронах гіпокампа та клітинах Пуркіньє мозочка щурів лінії Вістар віком 17 та 13 днів, відповідно. Нейрони виділяли за стандартними методиками з використанням слабкої ферментативної обробки з подальшим механічним диспергуванням тканини з допомогою пастерівської піпетки. Експерименти проводили з використанням стандартної методики фіксації потенціалу в умовах внутрішньоклітинного діалізу {Kostyuk P.G. 1981}. Кальцієвий струм Р-типу реєстрували в нейронах Пуркінь'є мозочка. В цьому випадку застосовували позаклітинний розчин, що містив (в мМ): TEA-Cl - 40, MgCl2 - 2, BаCl2 - 2, Холін-хлорид - 100, Трис-Cl - 20, (pH=7.4); та внутрішньопіпетковий, що містив (в мМ): Tріс-фосфат - 70, TEA-Cl - 40, Трис-Cl - 20, ЕГТА - 5, MgАТФ - 5, ГТФ - 1-3, (pH=7.4). Підтримуваний потенціал становив -70 мВ. Після прориву мембрани нейрон перфузували внутрішньопіпетковим розчином на протязі 3 хв до початку стимуляції. Струм викликали ступінчастою деполяризацією мембрани клітини до -25 мВ тривалістю 200 мс з інтервалом 15 с. Після досягнення струмом стаціонарного рівня до зовнішнього розчину додавали латротоксинподібний білок в концентрації 0,1 мкМ. За таких умов відбувалося швидке збільшення амплітуди кальцієвого струму на 72 4 % (Рис. 9). При цьому, аплікація латротоксинподібного білка не призводила до достовірних змін кінетичних параметрів струму. Як видно з рисунків 9 А, В, кінетика наростання та спаду кальцієвого струму залишалася незмінною, а відбувалося лише збільшення амплітуди струму. Відмивання латротоксинподібного білка із зовнішньоклітинного розчину призводило до часткового усування його дії, яке становило близько 29 6 % від його максимального значення(n=4) (Рис.9, А; 10). Також було перевірено вплив латротоксинподібного білка на потенціал-залежні характеристики кальцієвих струмів Р-типу. Вольт-амперну характеристику отримували при ступінчастій деполяризації мембрани нейронів від підтримуваного потенціалу -70 мВ до різних рівнів з інкрементом 10 мВ, тривалістю 200 мс. На рис. 9 Б представлено узагальнену вольт-амперну характеристику для кальцієвих каналів Р-типу нейронів Пуркін'є мозочка щурів в контролі (крива 1), при дії латротоксинподібного білка в концентрації 10 мкг/мл (крива 2); у всіх випадках n=4).

Як видно з рисунку латротоксинподібний білок не впливав на потенціал-залежні характеристики кальцієвого струму Р-типу. Для перевірки, чи такий ефект на Р тип кальцієвого струму, не був обумовлений лише зміною зовнішнього розчину, що містив певну кількість білка, були проведені експерименти, в ході яких використовували відповідну кількість інактивованого латротоксинподібного білка. Інактивований латротоксинподібний білок не впливав на кальцієвий струм Р-типу нейронів Пуркін'є мозочка щурів (Рис. 9). Подальші дослідження властивостей латротоксинподібного білка проводили на високопорогових кальцієвих каналах L-типу. Кальцієвий струм L-типу реєстрували в свіжоізольованих нейронах гіпокампа. В цьому випадку застосовували позаклітинний розчин, що містив (в мМ): TEA-Cl - 40, MgCl2 - 2, BаCl2 - 20, Холін-хлорид - 100 , Трис-Cl - 20, (pH=7.4); та внутрішньопіпетковий, що містив (в мМ): Трис-фосфат - 70, TEA-Cl - 40, Трис-Cl - 20, ЕГТА - 5, АТФ -Mg2+- 5, ГТФ - 1-3 Трис, (pH=7.4). Підтримуваний потенціал становив -55 мВ. Після прориву мембрани нейрон перфузували внутрішньопіпетковим розчином на протязі 3-х хв до початку стимуляції. Струм викликали ступінчастою деполяризацією мембрани клітини до 0 мВ тривалістю 50 мс з інтервалом 15с. Після досягнення струмом максимального рівня до зовнішнього розчину додавали латротоксинподібний білок в концентрації 0,1 мкМ. Це викликало збільшення кальцієвого струму L-типу в середньому на 33 5 %, яке повністю усувалося при відмиванні білка із зовнішнього розчину (n=4) (Рис.11 А, Рис.12). Також було досліджено вплив латротоксинподібного білка на потенціал-залежні характеристики кальцієвих струмів L-типу. На рис. 11 Б представлено узагальнену вольт-амперну характеристику для кальцієвих каналів L-типу нейронів гіпокампу щурів в контролі (1), при дії латротоксинподібного білка в концентрації 10 мкг/мл (2) та при відмиві білка із зовнішнього розчину (3); у всіх випадках n=4. Таким чином, отримані нами результати свідчать про те, що аплікація латротоксинподібного білка на L-тип кальцієвого струму також призводила до збільшення амплітуди струму, а кінетичні та потенціалзалежні характеристики струму залишалися незмінними.

Дослідження впливу латротоксинподібного білка на спонтанну постсинаптичну активність. Для дослідження можливого впливу латротоксинподібного білка на вивільнення нейромедіатора, ми вивчали спонтанні ГАМК-ергічні постсинаптичні струми в нейронах гіпокампа в контролі та після аплікації 0.3 мкМ білка до зовнішнього розчину. Для виділення гальмівних спонтанних постсинаптичних струмів (“мініатюрна активність“) до зовнішнього розчину додавали 10 мкM CNQX та 50 мкM APV, для блокування іонотропних глутаматних рецепторів, та 1 мкМ ТТХ для блокування натрієвих каналів (Рис. 13, 14) За таких умов в контролі спостерігалась незначна спонтанна активність, частота якої становила близько 0,37 0,07 Гц (n=3)(Рис. 13, 14). Аплікація 0,3мкМ латротоксинподібного білка призводила до значного зростання частоти спонтанної активності, яка становила близько 3,8 0,45 Гц (n=3)(Рис. 13, 14, 15 А).

На рисунку 13 представлений частотно-амплітудний розподіл спонтанних постсинаптичних відповідей в контролі та під дією 0,3мкМ латротоксинподібного білка. Як видно з рисунку, додавання латротоксинподібного білка викликало швидке зростання частоти спонтанних постсинаптичних відповідей, яке дещо спадало з часом(рис. 13, 14). В середньому, зростання частоти спонтанних відповедей відбувалося майже в 10 разів. При цьому також відбувалося зростання їх амплітуди, яке становило близько 44,6 24,56% (рис. 15 Б).

Таким чином, отримані нами результати свідчать про те, що латротоксинподібний білок здатен викликати спонтанне вивільнення нейромедіатора, що призводить до зростання частоти та амплітуди спонтанних постсинаптичних відповідей в порівнянні з контрольними значеннями.

ОБГОВОРЕННЯ РЕЗУЛЬТАТІВ ДОСЛІДЖЕНЬ

З літературних даних відомо, що в пресинаптичному закінченні є велика кількість білків, які виконують роль посередників в процесі злиття мембран {Meyer, H. H., et. al.1998}{Meyer, H. H., et. al. 2000}{Yuan, X., et.al. 2001}{Barnard, R. J., et.al. 1997}{Hanson, P. I.,et.al.1997}. Це білки так званої родини ААА АТФаз - NSF, що опосередковує злиття мембран синаптичних везикул з плазматичними мембранами; р97 - посередник злиття мембран в апараті Гольджі та ендоплазматичному ретикулюмі, та інші{Meyer, H. H., et. al. 2000}{Kondo, H. et. al. 1997}{Roy, L.et. al. 2000}. Їх основна роль полягає в тому, що вони забезпечують дисоціацію білкового SNARE комплексу, який зв`язує мембрани синаптичних везикул з пресинаптичними мембранами в активній зоні, наближаючи їх одну до одної так, щоб за умови усунення запобіжного механізму могло відбутися їх спонтанне злиття. Такий розвиток подій пропонують автори однієї з гіпотез, що описує злиття мембран в процесі синаптичної передачі {Mayer, Wickner, et al. 1996 }. Отримані нами результати показали, що латротоксинподібний білок підвищував АТФ-ініційоване злиття між собою переважно мембран синаптичних везикул. Це можна пояснити тим, що за цих умов білковий комплекс злиття, який формується між синаптичними везикулами, дещо відрізняється по структурі від комплексу злиття активної зони {Weber, Parlati, et al. 2000}. Ймовірно, це є визначальним для здатності латротоксинподібного білка викликати злиття мембран. Наші результати показали, що латротоксинподібний білок здатен викликати злиття переважно гомотипових мембран, а факторами, які модулюють активність латротоксинподібного білка, є його фосфорилювання та зміна рН середовища. Як відомо з літературних даних, саме цими факторами модулюється функціональна активність синаптичних білків{Greengard, Valtorta, et al. 1993}{Greengard & Browning 1988}{Greengard, Browning, et al. 1987}{Greengard 1978}{Nielander, Onofri, et al. 1995}. Отримані нами результати узгоджуються з даними літератури і свідчать про те, що латротоксинподібний білок здатен змінювати свою активність за рахунок ендогенних модуляторних факторів за тих самих умов, при яких відбувається модулювання активності інших білків активної зони. АТФазна активність латротоксинподібного білка за своєю величиною подібна до описаної раніше для інших білків родини ААА АТФаз {Meyer, Kondo, et al. 1998}. Більш того, дослідження залежності ферментативної активності латротоксинподібного білка від зсуву рН в бік лужного середовищя (умови, що підвищують АТФазну активність білків родини ААА до максимального рівня), показали, що її величина також зростає. При досліджені АТФазної активності р97 було показано, що його максимальна активність проявляється при рН середовища 9,0 {Meyer, Kondo, et al. 1998}. Окрім того, також було показано, що в умовах моделі штучних мембран р97 викликає злиття ліпосом {Otter-Nilsson, Hendriks, et al. 1999}. Таким чином, отримані нами результати і дані літератури дають можливість припустити, що латротоксинподібний належить до родини ААА АТФаз, ферментних білків, які виконують вирішальну роль в злитті мембранних структур. В свою чергу, модулювання активності латротоксинподібного білка може відбуватися за рахунок роботи внутрішньоклітинних механізмів, таких як зміна рН та процеси фосфорилювання-дефосфорилювання, які за фізіологічних умов забезпечують активацію-деактивацію білків активної зони синаптичного закінчення. В попередніх дослідженнях було показано, що латротоксинподібний білок може проявляти властивості, які характерні для б-латротоксину. Дослідження, проведені на штучній ліпідній мембрані, показали, що додавання білка викликає поступове зростання мембранного струму за рахунок утворення каналів в мембрані. Вбудовування латротоксинподібного білка до мембрани уповільнюється в присутності моновалентних катіонів, а додавання 5 мM CaCl2 значно активує цей процес. Саме така поведінка характерна для -латротоксина, про що свідчать результати досліджень Міронов С. та співавтори [Mironov & Richter 2000]. Окрім цього значний вплив на вбудовування білка, має поляризація мембрани. Ця властивість також притаманна -латротоксину. Це може свідчити про те, що латротоксинподібний білок не тільки має структурну подібність до нейротоксину, але його функціональні властивості також відповідають характеристикам отрути павука каракурта. З огляду на вищезгадане нами було припущено, що латротоксинподібний білок здатен впливати на роботу Са каналів. Для ескпериментальної моделі ми використали два типи каналів P-тип Са каналів нейронів Пуркін'є мозочка щурів, які приймають безпосередню участь в процесі синаптичної передачі і зв'язані із специфічним рецептором для б-латротоксину - нейрексином; та L-тип Са каналів з нейронів гіпокампу щура, які обумовлюють повільну збуджуючу синаптичну передачу, але не залежать від б-латротоксинових рецепторів. Показано, що латротоксинподібний білок, дійсно впливає на роботу Са каналів, при цьому його дія на Р тип кальцієвих каналів була більш специфічною, ніж на L тип. Окрім цього, одержані дані дали змогу припустити, що латротоксинподібний білок може впливати на спонтанне вивільнення нейромедіатора з пресинаптичного закінчення завдяки своєму потенціюючому впливу на Са канали активної зони. В подальших наших дослідженнях ми підтвердили це припущення і показали, що аплікація латротоксинподібного білка призводила до значного зростання частоти спонтанної активності, яка становила близько 3,8 Гц (Рис. 17, 18), а також до збільшення амплітуди струмів. Таким чином, отримані нами результати показали, що ефект латротоксинподібного білка на спонтанні постсинаптичні струми має риси подібні до дії б-латротоксину{Capogna 1998}. Подібно до б-латротоксину латротоксинподібний білок значно збільшує частоту спонтанних ІПСС. Загалом подібність інших властивостей цих білків дозволила нам зробити припущення, що вплив латротоксинподібного білка відбувається за рахунок механізмів, що опосередковують дію б-латротоксина. Це може включати в себе дію білка через 1) високоспецифічні рецептори до б-латротоксину - нейрексин та латрофілін {Geppert, Khvotchev, et al. 1998}, {Bittner, Krasnoperov, et al. 1998}, 2) шляхом формування катіон-селективних пор в плазматичній мембрані {Zhukareva, Shatursky, et al. 1992}, {Khvotchev & Sudhof 2000}, 3) або безпосередньо впливаючи на злиття синаптичних везикул. Оскільки концентрація латротоксинподібного білка в наших експериментах була значно нижчою, ніж необхідно для формування пор, можна припустити що його дія реалізувалася за рахунок роботи б-латротоксин-специфічних рецепторів.

Висновки

З використанням біохімічних та електрофізіологічних методів було досліджено функціональні властивості латротоксинподібного білка та встановлено, що він може бути віднесений до родини ААА АТФаз - білків, які опосередковують злиття мембранних структур.

Латротоксинподібний білок здатен викликати злиття штучних та біологічних гомотипових мембран.

Показано, що властивості латротоксинподібного білка можуть модулюватися ендогенними факторами, такими як зміна рН середовища та фосфорилювання.

Для латротоксинподібного білка характерна АТФазна активність, величина якої становить 6 мкмольРі/мг білка/год.

Латротоксинподібний білок здатен потенціювати Са струм через канали P- та L-типу без зміни їх кінетичних та потенціал-залежних параметрів. Приріст амплітуди Са струму P-типу в нейронах Пуркін'є мозочка щура становив 72%, а Са струму L-типу в нейронах гіпокампу щура - 40%, при аплікації латротоксинподібного білка ззовні в концентрації 10 мкг.

Дослідження на нейронах гіпокампа в культурі показали, що частота та амплітуда постсинаптичних струмів значно зростають при дії латротоксинподібного білка. Ці дані вказують на те, що цей білок може виступати в ролі фактора, що бере участь в вивільненні нейромедітора.

ПЕРЕЛІК СТАТЕЙ, ОПУБЛІКОВАНИХ ЗА МАТЕРІАЛАМИ ДИСЕРТАЦІЇ

Trikash I., Terletskaya M. Malysheva M. Kolchinskaya L. Kactrykina T. Glyvuk N., Membrane fusion in model system (1997). Neirofiziologia/Neurophysiology, 29, 283-285

М.К.Малишева, Л.І.Колчинська, Я.Т.Терлецька, І.О.Трікаш, Н.В.Гливук Деякі характеристики фузогенної активності цитоплазматичного латротоксинподібного білка мозку (1998). Нейрофизиология, 30, № 4/5, 294-296

Н.В.Гливук, Л.И.Колчинская, М.К.Малышева АТФазная активность латротоксинподобного белка (2002). Нейрофизиология 34, № 1, pp. 3-6.

Glyvuk N.V., Storozhuk M.V. Effect of latrotoxin-like protein on spontaneous postsynaptic activities in hippokampal cell cultures (2002) Neirofiziologia/Neurophysiology, 34, № 2/3, 152-154.

Перелік тез доповідей, опублікованих за матеріалами дисертації:

Н.В.Гливук, І.О.Трікаш, Я.Т.Терлецька, Л.І.Колчинська, М.К.Малишева Вплив латротоксинподібного білка на злиття ліпосом і його можлива участь в нейросекреції (1995). Експериментальна та клінічна фізіологія,4, 68

Trikash I., Terletskaya M. Malysheva M. Kolchinskaya L. Kactrykina T. Glyvuk N. Latrotoxin-like brain protein and its fusogenic activity (1997). Biophis.J., 2, 72

АНОТАЦІЇ

Гливук Н.В. Дослідження функціональних властивостей латротоксинподібного білка як можливого учасника процесу нейросекреції.-Рукопис. Дисертація на здобуття вченого ступеня кандидата біологічних наук за спеціальністю 03.00.02 - біофізика.- Інститут фізіології ім. О.О. Богомольця НАН України, Київ, 2002.

Дисертаційна робота присвячена дослідженню функціональних властивостей латротоксинподібного білка як можливого учасника процесу нейросекреції. В роботі показано, що латротоксинподібний білок збільшує ступінь АТФ - викликаного злиття гомотипових мембран. Ця властивість латротоксинподібного білка може модулюватися процесами фосфорилювання-дефосфорилювання, зміною рН середовища та шляхом обробки білка N-этилмаліємідом. Встановлено, що латротоксинподібному білку притаманна АТФазна активність, характерна для білків ААА родини АТФаз. Показано, що аплікація 0,1мкМ латротоксинподібного білка призводила до значного збільшення амплітуди кальцієвого струму Р-типу (біля 72%) та дещо меньшому зростанню струму L-типу (біля 33%). Дослідження впливу латротоксинаподібного білка на спонтанні постсинаптичні відповіді показали, що аплікація 0,3мкМ білка призводила до деякого зростання амплітуди (44.6 24.6 %) та значного збільшення частоти (1027 121,2 %) GABAергічних IPSC. Таким чином латротоксинподібний білок можливо здатен брати участь в процесі синаптичної передачі.

Ключові слова: латротоксинподібний білок; синаптична передача; кальцієві канали; АТФазна активність; злиття мембран.

АННОТАЦИЯ

Гливук Н.В. Исследования функциональных свойств латротоксинподобного белка как возможного участника процесса нейросекреции.-Рукопись. Диссертация на соискание учёной степени кандидата биологических наук по специальности 03.00.02.- биофизика.- Институт физиологии им. А.А.Богомольца НАН Украины, Киев, 2002.

Диссертационная работа посвящена изучению функциональных свойств латротоксинподобного белка как возможного участника процесса нейросекреции. В работе было показано, что латротоксинподобный белок увеличивает степень АТФ-вызванного слияния гомотипичных мембран. Это свойство латротоксинподобного белка может модулироваться процессами фосфорилирования-дефосфорилирования, изменением рН среды и обработкой латротоксинподобного белка N-этилмалиемидом. Установлено, что латротоксинподобный белок обладает АТФ-азной активностью, характерной для белков ААА семейства АТФ-аз. Показано что апликация 0,1мкМ латротоксинподобного белка приводила к значительному увеличению амплитуды кальциевого тока Р- типа (около 72%) и несколько меньшему увеличению тока L-типа (около 33%). Исследования влияния латротоксинподобного белка на спонтанные постсинаптические ответы показали, что приложение 0,3мкМ белка приводило к значительному увеличению частоты (1027 121,2 %) и небольшому увеличению амплитуды (44.6 24.6 %) GABAергических IPSC ответов. Таким образом, латротоксинподобный белок, возможно, способен принимать участие в процессе синаптической передачи.

Ключевые слова: латротоксинподобный белок; синаптическая передача; кальциевые каналы; АТФазная активность; слияние мембран.

ABSTRACT

Glyvuk N.V. The investigation of fun ctional properties of the latrotoxin-like protein as a possible participator of the process of neurosecretion.- Manuscript. Thesis for Ph.D. degree on specialty 03.00.02 - biophysics.- , O.O.Bogomoletz Institute of Physiology National Academy of Sciences of Ukraine, Kyiv, 2002.

The dissertation work is devoted to the investigation of functional properties of latrotoxin-like protein as a possible participator of process of neurosecretion. For the investigation of latrotoxin-like protein`s ability to affect membrane fusion we used system which contained SM and SV. Our experiments revealed that the application of latrotoxin-like protein led to partial inhibition of ATP-induced membrane fusion. But these data let us to suggest that the behavior of this protein could possibly differ in the system of homotypic membranes (for example in system which contains only SV). Experiments made in such conditions showed that indeed the application of latrotoxin-like protein led to the increase of ATP-induced fusion comparing to control. Taking into account literature data and our results we could suggest that latrotoxin-like protein is similar by its action to some other proteins, namely р97, Sec18 and Cdc48p, which mediate processes of membrane fusion. From the other hand it is known that above mentioned proteins belong to the AAA-family of APTases. Our experiments revealed that Latrotoxin-like protein has ATPase activity and its value is actually the same as in other APTases from AAA-family. This feature of latrotoxin-like protein likewise р97 and NSF greatly depends on pH. We showed that the increase of pH to 8,1 led to increase of ATPase activity of latrotoxin-like protein. Thus, these data let us to suggest that latrotoxin-like protein can be considered as a member of ААА-family АТР-аses - group of proteins, which mediate processes of membrane fusion. On the next stage of our work we tried to investigate in more details possible mechanisms of the regulation of latrotoxin-like protein activity. We showed that increase of pH to 8.1 led to almost complete loss of the ability of latrotoxin-like protein to evoke membrane fusion while the decrease рН to 6.0 significantly amplified this feature. Phosphorilation of latrotoxin-like protein also affected its activity. We showed that at physiological рН phosphorilation of latrotoxin-like protein led to decrease of its fusogenic activity, while at рН 6.0 this value increased. These data shows that latrotoxin-like protein likewise other synaptic proteins can modulate its activity by the factors, which provide efficiency of proteins in native conditions. On the next part of our work we decided to investigate the influence of latrotoxin-like protein on the Ca2+ channels. Our investigations showed, that application of 0.1мM of latrotoxin-like protein led to enhance of P-type Ca current for about 72% without any effect on kinetic or potential-dependent parameters of this current. Effect of latrotoxin-like protein could be partly washed out (about 29%). In case of L-type of Ca current application of latrotoxin-like protein in the same concentration also led to increase of current amplitude, but this value was less comparing to P-type Ca current and average was about 33%. This effect could be abolished by the washout of protein from the bath solution. Kinetic and potential-dependent parameters of this current were also unaffected. This data let us to suggest, that latrotoxin-like protein action was more specific for P-type Ca channels than for L-type. To examine possible effect of latrotoxin-like protein on transmitter release, we compared spontaneous GABA-ergic inhibitory postsynaptic currents (IPSC) in hippocampal neurons before and after bath application of the protein (0.3 M) to the external solution. It can be seen that the frequency of spontaneous GABA-ergic IPSC dramatically increased following application of the latrotoxin-like protein. A pronounced increase in the IPSC frequency was observed in all experiments with no exception. Under control conditions, “miniature” currents were detected with the mean frequency of about 0.37 Hz, while after application of 0.3 M latrotoxin-like protein to the external solution the respective frequency of the spontaneous activity reached about 3.8 Hz. The normalized IPSC frequency increased more than 10 times, as compared with the control. The amplitude of spontaneous responses also tended toward increase in the presence of latrotoxin-like protein. The effect also was observed in all experiments, but was significantly smaller than that on the IPSC frequency (the mean increase was only about 44.6 %).

Thus latrotoxin-like protein may be involved into process of synaptic transmission.

Key words: latrotoxin-like protein; synaptic transmission; calcium channels; ATPase activity; membrane fusion.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Призначення та функції гемоглобіну - складного залізовмісного білка еритроцитів крові людини. Його структура, нормальний вміст в крові. Аномалії організму, що пов’язані із гемоглобіном. Токсичність білка і системи для його зв'язування і знешкодження.

    презентация [1,5 M], добавлен 12.12.2013

  • Зміни спектру фракцій сироваткового білка методом диск-електрофорезу в поліакриамідному гелі, кількісні і якісні зміни. Наявність і діапазон порушення показників пероксидного окислення ліпідів клітинних мембран. Показання та удосконалення лікування.

    автореферат [45,7 K], добавлен 18.03.2009

  • Функціональний принцип класифікації методів медико-біологічних вимірювань. Огляд лабораторних та інструментальних методів дослідження. Об'єктивні методи обстеження організму людини. Лабораторна медицина як комплекс багатьох методик дослідження пацієнта.

    контрольная работа [13,5 K], добавлен 27.11.2010

  • Ембріональні стовбурові клітини людини. Властивості стовбурових клітин: самовідновлення, диференціювання у будь-який клітинний тип. Проведення клінічних випробувань стовбурових клітин у медицині в Україні. Метод повернення зрілих клітин в "дитячий стан".

    презентация [1,4 M], добавлен 25.04.2013

  • Діагностика медулобластом мозочка шляхом конкретизації диференціально-діагностичних критеріїв та встановлення прогностично-вагомих клініко-морфологічних ознак. Топографо-анатомічні особливості росту медулобластом мозочка та їх вплив на захворювання.

    автореферат [51,7 K], добавлен 24.03.2009

  • Структурні властивості мембран тромбоцитів і еритроцитів. Концентраційна залежність впливу граміцидину S на зміни форми тромбоцитів. Фракціонування загальних ліпідів. Механізм руйнування тромбоцитарних агрегатів та його температурна залежність.

    автореферат [222,6 K], добавлен 10.04.2009

  • Клінічний аналіз крові - кількісне та якісне дослідження елементів, формуючих кров; діагностика захворювань та подальший моніторинг на фоні медикаментозної терапії. Фактори впливу на показники аналізу крові. Показання та підготовка до дослідження.

    презентация [896,7 K], добавлен 10.10.2013

  • Роль бактеріальної флори та її функції, склад кишкової мікрофлори людини, причини і наслідки її порушення. Використання пробіотиків для підтримання нормобіоценозу. Визначення антагоністичної активності мікроорганізмів, властивості штамів продуцентів.

    дипломная работа [460,5 K], добавлен 24.08.2010

  • Променева діагностика захворювання: рентгенографія, рентгенівська комп'ютерна томографія, ультразвукове дослідження, магнітно-резонансна томографія, радіонуклідні дослідження. Принципи променевого дослідження травного каналу, стравоходу, товстої кишки.

    реферат [29,2 K], добавлен 12.08.2010

  • Значення біологічних маркерів в динаміці раку шлунку. Тенденція до збільшення частоти мутацій р53 відповідно до проникнення пухлинних клітин в оточуючих тканинах. Відсутність достовірної кореляції передопераційної концентрації VEGF з виживанням хворих.

    статья [532,5 K], добавлен 31.08.2017

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.