Способ получения тромбоцитов
Разработка способа культивирования тромбоцитов в синтетической питательной среде. Порядок посева и центрифугирования индивидуальных доз крови с последующей отмывкой тромбоцитов. Схема освобождения тромбоцитов от плазмы и ферментных соединений крови.
Рубрика | Медицина |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 25.04.2014 |
Размер файла | 25,9 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
3
Способ получения тромбоцитов
В.А. Лифановский
Введение
Способ получения тромбоцитов относится к гематологии. Цель изобретения - экономия крови и повышение степени очистки тромбоцитов. Тромбоциты культивируются в синтетической питательной среде. Способ включает операции: выделение тромбоцитов из крови дифференциальным центрифугированием, приготовление жидкой и твердой питательной сред, посев тромбоцитов в жидкую питательную среду, посев на твердую питательную среду, посев на жидкую питательную среду, выделение тромбоцитов из среды и их промывка солевыми растворами. Культивирование производится при температуре 0 - 44°С в течение 1 - 45 суток при аэрации. Полученные тромбоциты и среда после культивирования в ней тромбоцитов могут быть использованы как сырье при производстве лекарственных препаратов.
Изобретение относится к медицине, точнее к гематологии и вопросу получения клеток крови и их заменителей.
Известен способ получения тромбоцитов, включающий последовательное центрифугирование индивидуальных доз крови с последующей отмывкой. При первом мягком центрифугировании крови осаждаются эритроциты и лейкоциты. При втором, более жестком центрифугировании осаждаются тромбоциты. Полученные тромбоциты отмываются различными солевыми средами (О.К.Гаврилов, Г.И.Козинец, Н.Б.Черняк "Клетки костного мозга и периферической крови" //М., "Медицина",1985 г., с.227 - 231).
Недостатком указанного способа получения тромбоцитов является то, что для его осуществления, для получения нужного количества тромбоцитов, требуется большое количество крови, которое может быть взято у нескольких доноров, которые должны быть подобраны по антигенам АВО и HLA, что сделать очень сложно (Хью Р.К. Барбер "Иммунобиология для практических врачей"//М., "Медицина", 1980г., с. 137-138). Очистка не обеспечивает освобождение тромбоцитов от примеси эритроцитов и лейкоцитов полностью, а также от веществ, преимущественно белковой природы, определенных плазмой крови, которые обволакивают тромбоциты толстым слоем снаружи (З.С.Баркаган "Геморрагические заболевания и синдромы"//М., "Медицина", 1989 г., с. 14-15).
Целью настоящего изобретения является устранение указанных недостатков, т.е. создание способа получения тромбоцитов, полностью свободных от факторов, определенных плазмой крови и других форменных элементов ее, имеющих наперед заданные характеристики, и экономия крови.
питательная среда плазма кровь тромбоциты
Метод
Указанная цель достигается тем, что тромбоциты, полученные из малого количества крови путем дифференциального центрифугирования, помещают в среду, содержащую определенный набор химических веществ, и выдерживают в ней при определенных физических и химических условиях, при соблюдении условий строгой стерильности, т.е. дополнительно производится культивирование тромбоцитов в питательной среде, что и определяет возможность их получения в большом количестве, при минимальной затрате крови. Полученные таким способом тромбоциты не несут на своей мембране факторы, определяемые кровью донора. Выделение тромбоцитов из среды производится фильтрованием или центрифугированием с одновременной отмывкой солевыми средами. Среда, применяемая культивирования тромбоцитов, имеет следующие компоненты в мг/л:
Хлористый кальций |
3 - 200 |
|
Хлористый калий |
5 - 10000 |
|
Хлористый цинк |
0,01 - 100 |
|
Натрий фосфорнокислый двухзамещенный |
5 - 10000 |
|
Сульфат магния |
0,01 - 100 |
|
Гексацианоферрат /11/ калия |
0,01 - 200 |
|
DL лейцин |
3 - 2000 |
|
DL серин |
1,9 - 1500 |
|
DL триптофан |
0 - 500 |
|
L цистеин |
0 - 400 |
|
L гистидин |
1,7 - 1500 |
|
L аргинин |
0,6 - 500 |
|
L глютаминовая кислота |
1,1 - 1000 |
|
DL метионин |
0,5 - 500 |
|
L пролин |
0,8 - 1000 |
|
L аспарагин |
0,9 - 1000 |
|
DL лизин |
0 - 700 |
|
L глютамин |
0 - 500 |
|
Аминоуксусная кислота |
0,3 - 500 |
|
Сахароза |
100 -10000 |
|
Аденозинтрифосфат |
0 - 2000 |
|
Фолиевая кислота |
0,01 - 0,5 |
|
Тиамина бромид |
0,01 - 1 |
|
Пангамат кальция |
0,01 - 0,5 |
|
Пиридоксина гидрохлорид |
0,01 - 0,5 |
|
Цианокобаламин |
0,01 - 0,5 |
|
Аскорбиновая кислота |
0,01 - 1 |
|
Вода дистиллированная |
один литр |
Сахаразу можно заменить инозитом, дульцитом или маннитом, взяв их в том же количестве.
Культивирование
Культивирование тромбоцитов возможно при условии восполнения потребляемого ими кислорода. Поэтому культивирование можно проводить в тонком слое при доступе к поверхности свежего воздуха, или применив продувание питательной среды воздухом мелкими пузырями, что дополнительно предотвращает агрегацию тромбоцитов.
Добавив в среду агар-агар, можно получить твердую питательную среду, при этом можно не вводить углеводы, т.к. тромбоциты разжижают агар-агар.
Культивирование можно производить в стеклянной посуде, но нужно учесть, что примеси в стекле влияют на интенсивность роста, поэтому желательно использовать кварцевое стекло. Форма посуды может быть любой.
Культивирование производится в термостате при температуре 0 - 44°С в течение 1- 50 суток.
Первый этап развития культуры тромбоцитов, выделенных из крови, занимает длительное время, для его сокращения нужен редкий посев и отмывание тромбоцитов, например, 0,9% раствором хлористого натрия, перед посевом. Культура после последующих пересевов развивается быстрее. Срок развития может служить индикатором чистоты культуры.
Применяя известные методы пересева с жидкой питательной среды на твердую и обратно, можно добиться желаемой однородности и очистки тромбоцитов.
Экономию крови можно считать полной, т.к. она используется только для первоначального посева.
Конечным продуктом являются тромбоциты, образовавшиеся в результате некоторого деления исходных тромбоцитов, полученных из крови, при их росте и размножении на искусственной питательной среде. Поэтому способ дает возможность получить нужное количество тромбоцитов, свободных от плазмы крови и антигенов, определяемых ею.
Пример исполнения
Способ включает приготовление питательной среды, взятие крови, выделение и отмывку тромбоцитов, поспев, культивирование, выделение из среды культивирования и промывку.
Для приготовления 100 мл питательной среды заготовляют навески следующих веществ в мг:
Хлористый кальций |
5 |
|
Хлористый калий |
300 |
|
Хлористый цинк |
0,01 |
|
Натрий фосфорнокислый двухзамещенный |
50 |
|
Сульфат магния |
0,01 |
|
Гексацианоферрат /11/ калия |
0,01 |
|
DL лейцин |
3 |
|
DL серин |
1,9 |
|
DL триптофан |
0,37 |
|
L цистеин |
0,28 |
|
L гистидин |
1,66 |
|
L аргинин |
0,63 |
|
L глютаминовая кислота |
1,1 |
|
DL метионин |
0,52 |
|
L пролин |
0,76 |
|
L аспарагин |
0,86 |
|
DL лизин |
0,9 |
|
L глютамин |
0,26 |
|
Аминоуксусная кислота |
0,22 |
|
Сахароза |
200 |
|
Фолиевая кислота |
0,01 |
|
Пангамат кальция |
0,01 |
Аминокислоты и витамины растворяются, каждая в отдельности, в 2 мл воды (вода везде используется дистиллированная, фармакопейная). В чистую (вся посуда моется хозяйственным мылом, с последующей обработкой хромовой смесью) колбу, емкостью 250 мл, наливается 50 мл воды. В ней растворяют хлористый калий, хлористый кальций, хлористый цинк, натрий фосфорнокислый двухзамещенный, сульфат магния, гексацианоферрат/11/ калия и сахарозу. В полученный раствор вливают растворы аминокислот и витаминов. Объем раствора доводят водой дл 97,5мл. Колбу закрывают ватно-марлевым тампоном и раствор стерилизируют в автоклаве при давлении 0,5 атмосферы в течение 10 минут. В остывший раствор стерильно добавляют 2 мл 1%раствора аденозинтрифосфата и 0,5мл смеси следующего состава в мл:
Тиамина бромид 6% раствор |
0,05 |
|
Пиридоксина гидрохлорид 5% раствор |
0,05 |
|
Цианокобаламин 10% раствор |
0,05 |
|
Аскорбиновая кислота 5% |
0,05 |
разбавленных 10 мл воды.
30 мл полученной среды переливают в колбу емкостью 100 мл и к ней добавляют 750 мг выщелоченного агар-агара. На водяной бане добиваются растворения агара и полученный раствор разливают в две чашки Петри, которые стерилизуют в автоклаве при 0.5 атмосферы 10 минут. Твердую и жидкую питательные среды помещают в термостат на 72 часа при температуре 37°С, для проверки стерильности. Одновременно среды обогащаются кислородом.
Культивирование производится в следующем устройстве: пробирка с отводом закрывается резиновой пробкой с отверстием, в которое пропущена стеклянная трубка, доходящая до дна пробирки. Нижний конец трубки имеет отверстие диаметром 0,01мм. Снаружи в пробку вставляют керамический бактериальный фильтр, для стерилизации воздуха. Отвод пробирки закрыт плотной ватной пробкой и на него надета резиновая трубка, пережатая зажимом. Приготовленный прибор в двух экземплярах стерилизуется в автоклаве при 1 атм 0,5 часа. Пробирки заполняют жидкой питательной средой в количестве 10 мл каждая. Емкость пробирок с отводом 50 мл.
Получение тромбоцитов
Для получения тромбоцитов, для посева берут 0,05 мл крови донора из пальца, кожу обрабатывают бензином, формалином, спиртом и йодом, под контролем ультрафиолетового облучения в настольном боксе, в который вводится только кисть донора, одетая в перчатку.
Сделав укол прокаленной иглой, набирают в шприц 0,05 мл, в котором находится 5 мл 09% раствора хлористого натрия, энергично встряхивают и переносят в центрифужную пробирку, закрытую пробкой. Раствор крови центрифугируют при ускорении 4 м/с^2 5 минут.
Надосадочную жидкость переливают в чистую центрифужную пробирку и вновь центрифугируют при ускорении 24 м/с^2 10 минут. Надосадочную жидкость отсасывают, оставляя в пробирке 0,1 мл жидкости. Содержимое пробирки разводят 5 мл 0,9% раствора хлористого натрия в воде и вновь центрифугируют при ускорении 24 м/с^2 5 минут. Надосадочную жидкость сливают, содержимое пробирки перемешивают, для переведения тромбоцитов во взвешенное состояние. Смесь тромбоцитов переносят в пробирку с питательной средой.
Посев
Пробирка, с посеянными в питательную среду тромбоцитами, помещается в термостат в наклонном положении, под углом 30° к горизонту, при температуре 37°С. Через каждые два часа производится продувание питательной среды воздухом 2 минуты. Для этого резиновую грушу, выжав из нее воздух, соединяют с отводом пробирки, освобождают грушу и снимают зажим с трубки. Воздух проходит через питательную среду мелкими пузырями. Пробирку при этом располагают вертикально. Наличие роста проверяют, наблюдая раздавленную каплю в микроскопе при увеличении в 600 раз. Через 192 часа из пробирки производят посев на агаризованную среду, для проверки чистоты и выделения чистой культуры от одной клетки. Для этого, из пробирки петлей набирают среду, растирают ее по поверхности агаризованной среды и той же петлей делают посев во второй чашке. Чашки помещают в термостат при 37°С. через 48 часов наблюдают выросшие колонии в микроскоп при увеличении в 105 раз. Отдельные колонии тромбоцитов на гладкой поверхности агаризованной питательной среде имеют диаметр до 5 мм. Форма круглая, полупрозрачная. Поверхность блестящая, гладкая. Структура зернистая. Цвет светло-бронзовый, у молодых заметен только на просвет, напоминают каплю воды на поверхности при условии смачиваемости. Профиль выпуклый, край ровный, в месте плотного посева колонии сливаются. Консистенция студенистая в воде плохо эмульгируют. В толщу агара не развиваются. Отдельную колонию переносят во вторую пробирку. Культивирование производится при тех же условиях. За 48 часов происходит развитие тромбоцитов до плотности 2,4х10^9 в одном мл среды, при посеве 2 колоний диаметром 4 мм в 10 мл питательной среды. (Скорость развития культуры тромбоцитов при первых посевах сильно зависит от состояния здоровья донора).
Тромбоциты от среды отделяют центрифугированием при ускорении 24 м/с^2. Надосадочную жидкость заменяют 0,9% раствором хлористого натрия, размешивают и вновь центрифугируют. Надосадочную жидкость сливают и в осадке получают тромбоциты.
Технико-экономическая или иная эффективность
При посеве тромбоцитов в питательную среду с плотностью 10^6 клеток на один литр за 48 часов культивирования получается 2,4х10^12 клеток, при этом, для первоначального посева использовалось 0,05мл крови. В одном литре крови здорового человека содержится в среднем 0,3х10^12 тромбоцитов.
Следовательно, для получения тромбоцитов один литр питательной среды заменяет 8 литров донорской крови, при условии 100% выхода тромбоцитов из последней.
Получаемые способом культивирования тромбоциты не содержат примесей, определяемых кровью донора.
Полученные таким образом тромбоциты могут быть использованы для производства лекарственных препаратов, и свойства их могут регулироваться составом среды.
Формула изобретения
Способ получения тромбоцитов, включающий выделение тромбоцитов из крови дифференциальнвым центрифугированием и отмывку их, отличающийся тем, что, с целью экономии и повышения степени очистки, выделенные тромбоциты культивируют при 0° - 44°С в течение 2х10^5 - 3х10^6с при аэрации в питательной среде, содержащей следующие компоненты, мг/л:
Хлористый кальций |
3 - 200 |
|
Хлористый калий |
5 - 10000 |
|
Хлористый цинк |
0,01 - 100 |
|
Натрий фосфорнокислый двухзамещенный |
5 - 10000 |
|
Сульфат магния |
0,01 - 100 |
|
Гексацианоферрат /11/ калия |
0,01 - 200 |
|
DL лейцин |
3 - 2000 |
|
DL серин |
1,9 - 1500 |
|
DL триптофан |
0 - 500 |
|
L цистеин |
0 - 400 |
|
L гистидин |
1,7 - 1500 |
|
L аргинин |
0,6 - 500 |
|
L глютаминовая кислота |
1,1 - 1000 |
|
DL метионин |
0,5 - 500 |
|
L пролин |
0,8 - 1000 |
|
L аспарагин |
0,9 - 1000 |
|
DL лизин |
0 - 700 |
|
L глютамин |
0 - 500 |
|
Аминоуксусная кислота |
0,3 - 500 |
|
Сахароза |
100 -10000 |
|
Аденозинтрифосфат |
0 - 2000 |
|
Фолиевая кислота |
0,01 - 0,5 |
|
Тиамина бромид |
0,01 - 1 |
|
Пангамат кальция |
0,01 - 0,5 |
|
Пиридоксина гидрохлорид |
0,01 - 0,5 |
|
Цианокобаламин |
0,01 - 0,5 |
|
Аскорбиновая кислота |
0,01 - 1 |
|
Вода дистиллированная |
один литр |
Дополнение: культура тромбоцитов на указанной среде с агар-агаром, совершенно высохшем, может существовать 16 лет, расселяясь.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Определение тромбоцитопении или кардинального снижения количества тромбоцитов в крови. Границы нормальных значений количества тромбоцитов. Ускоренное разрушение тромбоцитов. Синдром анемии - классификация, этиология, методы диагностики. Принципы лечения.
презентация [900,5 K], добавлен 06.04.2016Кровь. Функции крови. Компоненты крови. Свертывание крови. Группы крови. Переливание крови. Болезни крови. Анемии. Полицитемия. Аномалии тромбоцитов. Лейкопения. Лейкоз. Аномалии плазмы.
реферат [469,2 K], добавлен 20.04.2006Целесообразность применения скрининговых тестов свертывающей системы. Функция тромбоцитов в процессе коагуляции. Допустимый предоперационный уровень тромбоцитов. Главные компоненты механизма гемостаза. Аспирин как антикоагулянт, механизм коагуляции.
контрольная работа [19,6 K], добавлен 04.08.2009Общая характеристика нарушений функций или строения клеток крови — эритроцитов, лейкоцитов или тромбоцитов, патологических изменений их числа, а также изменений свойств плазмы крови. Виды и проявления анемии, талассемии, диатеза, тромбоцитопатии.
презентация [5,2 M], добавлен 26.06.2015Состав плазмы крови. Морфология форменных элементов крови: эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Понятие о лейкоцитарной формуле. Морфофункциональные особенности лимфы. Сравнение состояния хроматина в лимфоците и моноците. Гемоглобин и его соединения.
презентация [7,7 M], добавлен 22.05.2015Лабораторное исследование периферической крови у детей. Функции эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Качественные изменения нейтрофилов. Скорость оседания эритроцитов. Белковый состав плазмы крови. Нормальные показатели у детей различного возраста.
презентация [3,2 M], добавлен 22.09.2016Агглютинация при смешивании эритроцитов и плазмы. Проявление эффекта при смешивании сыворотки с кровью. Иммунизация при переливании крови, несовместимой по резус-фактору. Функции кровяных пластинок (тромбоцитов). Сосудисто-тромбоцитарный гемостаз.
презентация [1,7 M], добавлен 29.08.2013Тромбоцитопения как снижение в крови числа тромбоцитов, бесцветных клеток крови, которые имеют огромное значение для свертывания крови, ее главные причины и предпосылки, факторы риска, профилактика, патологическая анатомия. Клиническая картина, симптомы.
презентация [821,5 K], добавлен 27.04.2014Рассмотрение изменений количества эритроцитов, тромбоцитов, скорости оседания крови при различных состояниях организма. Изучение изменений крови на примере острой пневмонии. Сравнительный анализ показателей заболеваемости болезнями органов дыхания детей.
дипломная работа [144,5 K], добавлен 25.07.2015Состав крови, ее элементы. Эритроциты человека - безъядерные клетки, состоящие из белково-липидной оболочки и стромы, заполненной гемоглобином. Виды гемолиза. Строение и функции лекоцитов и тромбоцитов. Сравнительная таблица форменных элементов крови.
презентация [1,4 M], добавлен 24.06.2013