Способ получения тромбоцитов

Разработка способа культивирования тромбоцитов в синтетической питательной среде. Порядок посева и центрифугирования индивидуальных доз крови с последующей отмывкой тромбоцитов. Схема освобождения тромбоцитов от плазмы и ферментных соединений крови.

Рубрика Медицина
Вид статья
Язык русский
Дата добавления 25.04.2014
Размер файла 25,9 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

3

Способ получения тромбоцитов

В.А. Лифановский

Введение

Способ получения тромбоцитов относится к гематологии. Цель изобретения - экономия крови и повышение степени очистки тромбоцитов. Тромбоциты культивируются в синтетической питательной среде. Способ включает операции: выделение тромбоцитов из крови дифференциальным центрифугированием, приготовление жидкой и твердой питательной сред, посев тромбоцитов в жидкую питательную среду, посев на твердую питательную среду, посев на жидкую питательную среду, выделение тромбоцитов из среды и их промывка солевыми растворами. Культивирование производится при температуре 0 - 44°С в течение 1 - 45 суток при аэрации. Полученные тромбоциты и среда после культивирования в ней тромбоцитов могут быть использованы как сырье при производстве лекарственных препаратов.

Изобретение относится к медицине, точнее к гематологии и вопросу получения клеток крови и их заменителей.

Известен способ получения тромбоцитов, включающий последовательное центрифугирование индивидуальных доз крови с последующей отмывкой. При первом мягком центрифугировании крови осаждаются эритроциты и лейкоциты. При втором, более жестком центрифугировании осаждаются тромбоциты. Полученные тромбоциты отмываются различными солевыми средами (О.К.Гаврилов, Г.И.Козинец, Н.Б.Черняк "Клетки костного мозга и периферической крови" //М., "Медицина",1985 г., с.227 - 231).

Недостатком указанного способа получения тромбоцитов является то, что для его осуществления, для получения нужного количества тромбоцитов, требуется большое количество крови, которое может быть взято у нескольких доноров, которые должны быть подобраны по антигенам АВО и HLA, что сделать очень сложно (Хью Р.К. Барбер "Иммунобиология для практических врачей"//М., "Медицина", 1980г., с. 137-138). Очистка не обеспечивает освобождение тромбоцитов от примеси эритроцитов и лейкоцитов полностью, а также от веществ, преимущественно белковой природы, определенных плазмой крови, которые обволакивают тромбоциты толстым слоем снаружи (З.С.Баркаган "Геморрагические заболевания и синдромы"//М., "Медицина", 1989 г., с. 14-15).

Целью настоящего изобретения является устранение указанных недостатков, т.е. создание способа получения тромбоцитов, полностью свободных от факторов, определенных плазмой крови и других форменных элементов ее, имеющих наперед заданные характеристики, и экономия крови.

питательная среда плазма кровь тромбоциты

Метод

Указанная цель достигается тем, что тромбоциты, полученные из малого количества крови путем дифференциального центрифугирования, помещают в среду, содержащую определенный набор химических веществ, и выдерживают в ней при определенных физических и химических условиях, при соблюдении условий строгой стерильности, т.е. дополнительно производится культивирование тромбоцитов в питательной среде, что и определяет возможность их получения в большом количестве, при минимальной затрате крови. Полученные таким способом тромбоциты не несут на своей мембране факторы, определяемые кровью донора. Выделение тромбоцитов из среды производится фильтрованием или центрифугированием с одновременной отмывкой солевыми средами. Среда, применяемая культивирования тромбоцитов, имеет следующие компоненты в мг/л:

Хлористый кальций

3 - 200

Хлористый калий

5 - 10000

Хлористый цинк

0,01 - 100

Натрий фосфорнокислый двухзамещенный

5 - 10000

Сульфат магния

0,01 - 100

Гексацианоферрат /11/ калия

0,01 - 200

DL лейцин

3 - 2000

DL серин

1,9 - 1500

DL триптофан

0 - 500

L цистеин

0 - 400

L гистидин

1,7 - 1500

L аргинин

0,6 - 500

L глютаминовая кислота

1,1 - 1000

DL метионин

0,5 - 500

L пролин

0,8 - 1000

L аспарагин

0,9 - 1000

DL лизин

0 - 700

L глютамин

0 - 500

Аминоуксусная кислота

0,3 - 500

Сахароза

100 -10000

Аденозинтрифосфат

0 - 2000

Фолиевая кислота

0,01 - 0,5

Тиамина бромид

0,01 - 1

Пангамат кальция

0,01 - 0,5

Пиридоксина гидрохлорид

0,01 - 0,5

Цианокобаламин

0,01 - 0,5

Аскорбиновая кислота

0,01 - 1

Вода дистиллированная

один литр

Сахаразу можно заменить инозитом, дульцитом или маннитом, взяв их в том же количестве.

Культивирование

Культивирование тромбоцитов возможно при условии восполнения потребляемого ими кислорода. Поэтому культивирование можно проводить в тонком слое при доступе к поверхности свежего воздуха, или применив продувание питательной среды воздухом мелкими пузырями, что дополнительно предотвращает агрегацию тромбоцитов.

Добавив в среду агар-агар, можно получить твердую питательную среду, при этом можно не вводить углеводы, т.к. тромбоциты разжижают агар-агар.

Культивирование можно производить в стеклянной посуде, но нужно учесть, что примеси в стекле влияют на интенсивность роста, поэтому желательно использовать кварцевое стекло. Форма посуды может быть любой.

Культивирование производится в термостате при температуре 0 - 44°С в течение 1- 50 суток.

Первый этап развития культуры тромбоцитов, выделенных из крови, занимает длительное время, для его сокращения нужен редкий посев и отмывание тромбоцитов, например, 0,9% раствором хлористого натрия, перед посевом. Культура после последующих пересевов развивается быстрее. Срок развития может служить индикатором чистоты культуры.

Применяя известные методы пересева с жидкой питательной среды на твердую и обратно, можно добиться желаемой однородности и очистки тромбоцитов.

Экономию крови можно считать полной, т.к. она используется только для первоначального посева.

Конечным продуктом являются тромбоциты, образовавшиеся в результате некоторого деления исходных тромбоцитов, полученных из крови, при их росте и размножении на искусственной питательной среде. Поэтому способ дает возможность получить нужное количество тромбоцитов, свободных от плазмы крови и антигенов, определяемых ею.

Пример исполнения

Способ включает приготовление питательной среды, взятие крови, выделение и отмывку тромбоцитов, поспев, культивирование, выделение из среды культивирования и промывку.

Для приготовления 100 мл питательной среды заготовляют навески следующих веществ в мг:

Хлористый кальций

5

Хлористый калий

300

Хлористый цинк

0,01

Натрий фосфорнокислый двухзамещенный

50

Сульфат магния

0,01

Гексацианоферрат /11/ калия

0,01

DL лейцин

3

DL серин

1,9

DL триптофан

0,37

L цистеин

0,28

L гистидин

1,66

L аргинин

0,63

L глютаминовая кислота

1,1

DL метионин

0,52

L пролин

0,76

L аспарагин

0,86

DL лизин

0,9

L глютамин

0,26

Аминоуксусная кислота

0,22

Сахароза

200

Фолиевая кислота

0,01

Пангамат кальция

0,01

Аминокислоты и витамины растворяются, каждая в отдельности, в 2 мл воды (вода везде используется дистиллированная, фармакопейная). В чистую (вся посуда моется хозяйственным мылом, с последующей обработкой хромовой смесью) колбу, емкостью 250 мл, наливается 50 мл воды. В ней растворяют хлористый калий, хлористый кальций, хлористый цинк, натрий фосфорнокислый двухзамещенный, сульфат магния, гексацианоферрат/11/ калия и сахарозу. В полученный раствор вливают растворы аминокислот и витаминов. Объем раствора доводят водой дл 97,5мл. Колбу закрывают ватно-марлевым тампоном и раствор стерилизируют в автоклаве при давлении 0,5 атмосферы в течение 10 минут. В остывший раствор стерильно добавляют 2 мл 1%раствора аденозинтрифосфата и 0,5мл смеси следующего состава в мл:

Тиамина бромид 6% раствор

0,05

Пиридоксина гидрохлорид 5% раствор

0,05

Цианокобаламин 10% раствор

0,05

Аскорбиновая кислота 5%

0,05

разбавленных 10 мл воды.

30 мл полученной среды переливают в колбу емкостью 100 мл и к ней добавляют 750 мг выщелоченного агар-агара. На водяной бане добиваются растворения агара и полученный раствор разливают в две чашки Петри, которые стерилизуют в автоклаве при 0.5 атмосферы 10 минут. Твердую и жидкую питательные среды помещают в термостат на 72 часа при температуре 37°С, для проверки стерильности. Одновременно среды обогащаются кислородом.

Культивирование производится в следующем устройстве: пробирка с отводом закрывается резиновой пробкой с отверстием, в которое пропущена стеклянная трубка, доходящая до дна пробирки. Нижний конец трубки имеет отверстие диаметром 0,01мм. Снаружи в пробку вставляют керамический бактериальный фильтр, для стерилизации воздуха. Отвод пробирки закрыт плотной ватной пробкой и на него надета резиновая трубка, пережатая зажимом. Приготовленный прибор в двух экземплярах стерилизуется в автоклаве при 1 атм 0,5 часа. Пробирки заполняют жидкой питательной средой в количестве 10 мл каждая. Емкость пробирок с отводом 50 мл.

Получение тромбоцитов

Для получения тромбоцитов, для посева берут 0,05 мл крови донора из пальца, кожу обрабатывают бензином, формалином, спиртом и йодом, под контролем ультрафиолетового облучения в настольном боксе, в который вводится только кисть донора, одетая в перчатку.

Сделав укол прокаленной иглой, набирают в шприц 0,05 мл, в котором находится 5 мл 09% раствора хлористого натрия, энергично встряхивают и переносят в центрифужную пробирку, закрытую пробкой. Раствор крови центрифугируют при ускорении 4 м/с^2 5 минут.

Надосадочную жидкость переливают в чистую центрифужную пробирку и вновь центрифугируют при ускорении 24 м/с^2 10 минут. Надосадочную жидкость отсасывают, оставляя в пробирке 0,1 мл жидкости. Содержимое пробирки разводят 5 мл 0,9% раствора хлористого натрия в воде и вновь центрифугируют при ускорении 24 м/с^2 5 минут. Надосадочную жидкость сливают, содержимое пробирки перемешивают, для переведения тромбоцитов во взвешенное состояние. Смесь тромбоцитов переносят в пробирку с питательной средой.

Посев

Пробирка, с посеянными в питательную среду тромбоцитами, помещается в термостат в наклонном положении, под углом 30° к горизонту, при температуре 37°С. Через каждые два часа производится продувание питательной среды воздухом 2 минуты. Для этого резиновую грушу, выжав из нее воздух, соединяют с отводом пробирки, освобождают грушу и снимают зажим с трубки. Воздух проходит через питательную среду мелкими пузырями. Пробирку при этом располагают вертикально. Наличие роста проверяют, наблюдая раздавленную каплю в микроскопе при увеличении в 600 раз. Через 192 часа из пробирки производят посев на агаризованную среду, для проверки чистоты и выделения чистой культуры от одной клетки. Для этого, из пробирки петлей набирают среду, растирают ее по поверхности агаризованной среды и той же петлей делают посев во второй чашке. Чашки помещают в термостат при 37°С. через 48 часов наблюдают выросшие колонии в микроскоп при увеличении в 105 раз. Отдельные колонии тромбоцитов на гладкой поверхности агаризованной питательной среде имеют диаметр до 5 мм. Форма круглая, полупрозрачная. Поверхность блестящая, гладкая. Структура зернистая. Цвет светло-бронзовый, у молодых заметен только на просвет, напоминают каплю воды на поверхности при условии смачиваемости. Профиль выпуклый, край ровный, в месте плотного посева колонии сливаются. Консистенция студенистая в воде плохо эмульгируют. В толщу агара не развиваются. Отдельную колонию переносят во вторую пробирку. Культивирование производится при тех же условиях. За 48 часов происходит развитие тромбоцитов до плотности 2,4х10^9 в одном мл среды, при посеве 2 колоний диаметром 4 мм в 10 мл питательной среды. (Скорость развития культуры тромбоцитов при первых посевах сильно зависит от состояния здоровья донора).

Тромбоциты от среды отделяют центрифугированием при ускорении 24 м/с^2. Надосадочную жидкость заменяют 0,9% раствором хлористого натрия, размешивают и вновь центрифугируют. Надосадочную жидкость сливают и в осадке получают тромбоциты.

Технико-экономическая или иная эффективность

При посеве тромбоцитов в питательную среду с плотностью 10^6 клеток на один литр за 48 часов культивирования получается 2,4х10^12 клеток, при этом, для первоначального посева использовалось 0,05мл крови. В одном литре крови здорового человека содержится в среднем 0,3х10^12 тромбоцитов.

Следовательно, для получения тромбоцитов один литр питательной среды заменяет 8 литров донорской крови, при условии 100% выхода тромбоцитов из последней.

Получаемые способом культивирования тромбоциты не содержат примесей, определяемых кровью донора.

Полученные таким образом тромбоциты могут быть использованы для производства лекарственных препаратов, и свойства их могут регулироваться составом среды.

Формула изобретения

Способ получения тромбоцитов, включающий выделение тромбоцитов из крови дифференциальнвым центрифугированием и отмывку их, отличающийся тем, что, с целью экономии и повышения степени очистки, выделенные тромбоциты культивируют при 0° - 44°С в течение 2х10^5 - 3х10^6с при аэрации в питательной среде, содержащей следующие компоненты, мг/л:

Хлористый кальций

3 - 200

Хлористый калий

5 - 10000

Хлористый цинк

0,01 - 100

Натрий фосфорнокислый двухзамещенный

5 - 10000

Сульфат магния

0,01 - 100

Гексацианоферрат /11/ калия

0,01 - 200

DL лейцин

3 - 2000

DL серин

1,9 - 1500

DL триптофан

0 - 500

L цистеин

0 - 400

L гистидин

1,7 - 1500

L аргинин

0,6 - 500

L глютаминовая кислота

1,1 - 1000

DL метионин

0,5 - 500

L пролин

0,8 - 1000

L аспарагин

0,9 - 1000

DL лизин

0 - 700

L глютамин

0 - 500

Аминоуксусная кислота

0,3 - 500

Сахароза

100 -10000

Аденозинтрифосфат

0 - 2000

Фолиевая кислота

0,01 - 0,5

Тиамина бромид

0,01 - 1

Пангамат кальция

0,01 - 0,5

Пиридоксина гидрохлорид

0,01 - 0,5

Цианокобаламин

0,01 - 0,5

Аскорбиновая кислота

0,01 - 1

Вода дистиллированная

один литр

Дополнение: культура тромбоцитов на указанной среде с агар-агаром, совершенно высохшем, может существовать 16 лет, расселяясь.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Определение тромбоцитопении или кардинального снижения количества тромбоцитов в крови. Границы нормальных значений количества тромбоцитов. Ускоренное разрушение тромбоцитов. Синдром анемии - классификация, этиология, методы диагностики. Принципы лечения.

    презентация [900,5 K], добавлен 06.04.2016

  • Кровь. Функции крови. Компоненты крови. Свертывание крови. Группы крови. Переливание крови. Болезни крови. Анемии. Полицитемия. Аномалии тромбоцитов. Лейкопения. Лейкоз. Аномалии плазмы.

    реферат [469,2 K], добавлен 20.04.2006

  • Целесообразность применения скрининговых тестов свертывающей системы. Функция тромбоцитов в процессе коагуляции. Допустимый предоперационный уровень тромбоцитов. Главные компоненты механизма гемостаза. Аспирин как антикоагулянт, механизм коагуляции.

    контрольная работа [19,6 K], добавлен 04.08.2009

  • Общая характеристика нарушений функций или строения клеток крови — эритроцитов, лейкоцитов или тромбоцитов, патологических изменений их числа, а также изменений свойств плазмы крови. Виды и проявления анемии, талассемии, диатеза, тромбоцитопатии.

    презентация [5,2 M], добавлен 26.06.2015

  • Состав плазмы крови. Морфология форменных элементов крови: эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Понятие о лейкоцитарной формуле. Морфофункциональные особенности лимфы. Сравнение состояния хроматина в лимфоците и моноците. Гемоглобин и его соединения.

    презентация [7,7 M], добавлен 22.05.2015

  • Лабораторное исследование периферической крови у детей. Функции эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Качественные изменения нейтрофилов. Скорость оседания эритроцитов. Белковый состав плазмы крови. Нормальные показатели у детей различного возраста.

    презентация [3,2 M], добавлен 22.09.2016

  • Агглютинация при смешивании эритроцитов и плазмы. Проявление эффекта при смешивании сыворотки с кровью. Иммунизация при переливании крови, несовместимой по резус-фактору. Функции кровяных пластинок (тромбоцитов). Сосудисто-тромбоцитарный гемостаз.

    презентация [1,7 M], добавлен 29.08.2013

  • Тромбоцитопения как снижение в крови числа тромбоцитов, бесцветных клеток крови, которые имеют огромное значение для свертывания крови, ее главные причины и предпосылки, факторы риска, профилактика, патологическая анатомия. Клиническая картина, симптомы.

    презентация [821,5 K], добавлен 27.04.2014

  • Рассмотрение изменений количества эритроцитов, тромбоцитов, скорости оседания крови при различных состояниях организма. Изучение изменений крови на примере острой пневмонии. Сравнительный анализ показателей заболеваемости болезнями органов дыхания детей.

    дипломная работа [144,5 K], добавлен 25.07.2015

  • Состав крови, ее элементы. Эритроциты человека - безъядерные клетки, состоящие из белково-липидной оболочки и стромы, заполненной гемоглобином. Виды гемолиза. Строение и функции лекоцитов и тромбоцитов. Сравнительная таблица форменных элементов крови.

    презентация [1,4 M], добавлен 24.06.2013

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.