Определение массовой доли пектиновых веществ в сухих выжимках яблок
Представления о роли пектиновых веществ. Классификация оптических методов анализа. Абсолютные фотометрические методы определения веществ. Методика спектрофотометрического определения массовой доли полигалактуроновой кислоты в растительном сырье.
| Рубрика | Химия |
| Вид | курсовая работа |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 14.06.2010 |
| Размер файла | 574,9 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ
УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ
«МОГИЛЕВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ
имени А.А. КУЛЕШОВА»
ФАКУЛЬТЕТ ЕСТЕСТВОЗНАНИЯ
КАФЕДРА ХИМИИ
Курсовая работа
Определение содержания пектиновых веществ в сушеных выжимках яблок
Содержание
- Введение
- Глава 1. Обзор литературы. Оптические методы анализа
- 1.1 Современные представления о роли пектиновых веществ
- 1.2 Классификация оптических методов анализа
- 1.3 Абсолютные фотометрические методы определения веществ
- 1.4 Спектрофотометрия
- 1.4.1 Основные закономерности светопоглощения
- 1.4.2 Спектры поглощения
- 1.4.3 Спектрофотометры
- Глава 2. Объекты и методы исследований
- 2.1 Методы исследований
- 2.1.1 Методика спектрофотометрического определения массовой доли полигалактуроновой кислоты в растительном сырье с использованием реактива серной кислоты
- Глава 3. Экспериментальные. Результаты и их обсуждение
- 3.1 Экспериментальные данные спектрофотометрического анализа
- 3.2 Экспериментальные данные для спектрофотометрического метода анализа с использованием реактива серной кислоты
- Заключение
- Библиографический список
Введение
Цель данной работы заключалась в определении массовой доли пектинового вещества в сухих выжимках яблок.
Пектиновые вещества - гетерополисахариды, главной структурной единицей которых является б-D-галактуроновая кислота (83-90%). Кроме галактуроновой кислоты в меньших количествах в составе пектиновых веществ присутствуют также D-галактоза, L-арабиноза, L-рамноза и другие нейтральные моносахариды.
ПВ открыты в 1825 году; название происходит от греч. слова pectуs - свернувшийся, застывший.
б-D-галактуроновая кислота
В зависимости от строения, степени полимеризации пектиновые вещества классифицируются на ряд групп.
1. Пектовые кислоты - простейшие представители пектиновых веществ, являющиеся преимущественно продуктами полимеризации остатков б-D-галактуроновой кислоты, связанных 1,4-связями в линейные цепи. Количество единиц б-D-галактуроновой кислоты может достигать до 100. Растворимы в воде, являются основой других групп пектиновых веществ.
2. Пектиновые кислоты (пектины) - более высокомолекулярные соединения, содержащие 100-200 единиц б-D-галактуроновой кислоты. Кроме того, карбонильные группы могут быть в различной степени метоксилированы.
3. Пектаты, пектинаты - соли пектовых и пектиновых кислот.
Пектиновые кислоты, пектаты и пектинаты растворимы в воде в присутствии сахаров, органических кислот с образованием плотных гелей.
4. Протопектины - высокомолекулярные полимеры метоксилированной полигалактуроновой кислоты с галактаном и арабинаном клеточной стенки, изредка прерываемой остатками рамнозы. Не растворимы в воде.
Для достижения поставленной цели необходимо было выполнить ряд задач:
1. Извлечь и перевести протопектин в растворимый пектин (т.е. выделить остатки б-D-галактуроновой кислоты).
2. Определить количество пектина колориметрическим карбозольным методом с применением спектрофотометра СФ-46.
3. Проанализировать полученные данные.
Глава 1. Обзор литературы. Оптические методы анализа
1.1 Современные представления о роли пектиновых веществ
Пектин -- натуральное желирующее и структурообразующее вещество, которое содержится в клеточных стенках и межклеточном пространстве всех растений. Особенно им богаты фрукты, ягоды и многие овощи. Особенно много пектиновых веществ во фруктах, ягодах, стеблях (лен), корнеплодах (сахарная свекла).
Благодаря своим комплексообразующим, студнеобразующим, эмульгирующим свойствам пектины применяются в производстве кондитерских, консервных изделий, лечебных препаратов, в хлебопечении, лечебно-профилактическом питании.
Применение пектинов в медицине является чрезвычайно перспективным. Установлено, что пектины - стабилизаторы аскорбиновой кислоты и являются хорошим противоядием в отношении тяжелых металлов, способствует выведению из организма токсинов и холестерина.
Большую положительную роль они могут играть при систематическом применении в профилактике некоторых кишечных заболеваний и в качестве фактора, повышающего скорость свертывания крови.
Пектиновые вещества достаточно эффективны при лечении и профилактике сахарного диабета, что служит основанием для разработки диабетических продуктов для коррекции углеводного обмена.
Также, пектиновые вещества способствуют достоверному снижению уровня радионуклидов в организме человека, и содержащие пектиновые вещества мучные кондитерские изделия могут быть рекомендованы для включения в рационы питания лиц, проживающих на экологически неблагоприятных территориях. Пектины, обладающие
высокой комплексообразующей способностью, привлекают к себе особый интерес в целях использования для профилактического и лечебного питания в условиях экологического загрязнения.
В промышленных масштабах наиболее рентабельными источниками пектина являются яблочный и свекольный жмых, кожура цитрусовых и корзинки подсолнечника. Содержание пектина в таком сырье составляет от 10 до 35%. Эти четыре вида пектина, получаемые фактически из отходов пищевых производств, практически полностью удовлетворяют потребность в нем опять же пищевой промышленности и, кроме того, косметической и фармацевтической.
Важное значение пектина заключается в том, что он является загустителем и препаратом широкого спектра химико-биологического действия.
В пищевой промышленности пектиновые вещества являются важной составляющей, не безызвестных всем продуктов: мармелад, зефир, джем, пастила, рахат-лукум, питьевые и фруктовые йогурты и десерты, майонез, кетчуп и пр.
Косметическая промышленность также в подавляющем большинстве случаев использует желеобразующие свойства пектина. Маски, кремы, гели разнообразнейших назначений и природы действия стабилизируются пектином. Тенденция его применения растет с каждым днем благодаря постоянному стремлению к натурализации косметики.
В фармацевтике, использование пектина основано не только на желеобразующих свойствах. Добавка пектина к некоторым препаратам (например, ацетилсалициловой кислоте) смягчает их побочное действие на организм. В других случаях его добавки усиливают терапевтическое действие препаратов. К тому же, например, совместное применение пектина с некоторыми антибиотиками пролонгирует их действие и оказывает детоксическое влияние на организм.
В медицинской практике применение пектина очень разнообразно. Наиболее характерным свойством его следует отметить мягкое, без серьезных последствий для организма, связывание вредных веществ (ионов тяжелых металлов, в том числе радионуклидов, а также пестицидов). Кроме того, нельзя забывать о профилактических и протекторных свойствах пектина (наиболее активным в этом плане считается свекловичный пектин). При постоянном его употреблении накопления вредных веществ в организме не происходит. Протекторные свойства используются на свинцовых и цинковых производствах, где работникам в качестве лечебно-профилактического питания выдаются продукты, обогащенные пектином.
Пектин способствует снижению содержания в организме холестерина, кроме того, он применяется при заболеваниях, связанных с нарушением обмена веществ (ожирение, сахарный диабет), заболеваниях желудочно-кишечного тракта, печени, поджелудочной железы и других. Вообще говоря, исключительно благоприятное воздействие пектина на организм связано с его замечательными энтеросорбирующими (связывающими и очищающими от вредных веществ) свойствами. По мнению медиков, именно недостаток натуральных энтеросорбентов в организме приводит к повышению риска возникновения упомянутых заболеваний желудочно-кишечного тракта, системы обмена веществ, а также сердечнососудистой системы.
Для производства пектиновых веществ можно использовать любое растительное сырье с высоким содержанием пектина. Ныне перерабатывают четыре основных вида сырья: яблочные выжимки, жом сахарной свеклы, корзинки подсолнечника и корочки цитрусовых. Содержание пектина в данных материалах соответственно 10-15,10-20,15-25 и 20-35%.
Яблочные пектины высоко ценятся производителями кондитерской продукции в мире. Для молочной и консервной промышленности (производство фруктовых соков) используют цитрусовые пектины. Под этим термином понимают различные сорта пектина из плодов цитрусовых. Лучшим качеством обладает пектин из лайма (разновидность лимона), хорош пектин из лимона, удовлетворителен - из грейпфрута и апельсина. Неудовлетворительные характеристики имеет пектин из мандаринов.
Пектины из жома сахарной свеклы применяют для выработки диетических и фармацевтических продуктов, а также для производства изделий технического назначения.
Пектин из корзинок подсолнечника обладает высокой молекулярной массой и низкой степенью этерификации. Как и пектин из сахарной свеклы, он содержит определенное количество ацетильных групп. Ныне пектин из корзинок подсолнечника успешно применяют при выпуске высококачественных косметических изделий
Пектины, выделенные из одного вида сырья, получили название классических. Для производства продукции с особыми свойствами, разработаны процессы, основанные на переработке комбинированных видов сырья. Так, из смеси яблочных выжимок и кожуры цитрусовых можно получить пектин, сочетающий достоинства яблочного и цитрусового. Современные промышленные технологии позволяют производить классические и комбинированные пектины с заданными свойствами.
1.2 Классификация оптических методов анализа
Оптические методы основаны на измерении эффектов взаимодействия веществ с электромагнитными волнами оптического диапазона. К оптическому диапазону обычно относят область электромагнитных волн с длиной волны л от 100 до 100 000 нм. Часто вместо длины л используют частоту н=c/л (в Гц) и волновое число (в ) (с - скорость света). Тогда оптический диапазон подразделяют на ультрафиолетовую - УФ (100 - 380 нм), видимую - В (380 - 760 нм) и инфракрасную - ИК (760 - 100 000 нм или 13 300 - 100 ).
К оптическим методам относятся рефрактометрия, поляриметрия, абсорбционные оптические методы.
Рефрактометрический анализ широко применяют при исследовании таких пищевых продуктов, как жиры, томатные продукты, варенье, джем, соки и др.
Рефрактометрический анализ основан на измерении показателя преломления (рефракции) вещества, по которому следует судить о природе вещества, чистоте и содержании в растворах.
Преломление луча света возникает на границе двух сред, если среды имеют различную плотность.
Отношение синуса угла падения (а) к синусу угла преломления (В) называют относительным показателем преломления (n) второго вещества по отношению к первому и является величиной постоянной:
Показатель преломления вещества зависит от его природы, а также от длины волны света и температуры.
При падении угла света под углом 90° угол преломления называется предельным углом преломления, а его величина зависит только от показателей преломления этих сред, через которые проходит свет. Поэтому, если известен показатель преломления одной среды, то, измерив предельный угол преломления, можно определить показатель преломления исследуемой среды.
Поляриметрический метод основан на свойстве некоторых веществ изменять направление световых колебаний.
Вещества, обладающие свойством изменять направление колебаний при прохождении через них поляризованного света, называются оптически активными. Особенности строения молекул Сахаров обусловливают проявление оптической активности в растворах.
У поляризованного луча, пропущенного через слой раствора оптически активного вещества, меняется направление колебаний, а плоскость поляризации оказывается повернутой на некоторый угол, называемый углом поворота плоскости поляризации, который зависит от поворота плоскости поляризации, концентрации и толщины слоя раствора, длины волны поляризованного луча и температуры.
Оптическая активность вещества характеризуется удельным вращением (s), под которым понимают угол, на который повернется плоскость поляризации при прохождении поляризованного луча через раствор, в 1 мл которого содержится 1 г растворенного вещества при толщине слоя раствора (длине поляризационной трубки), равной 1 дм.
Угол вращения плоскости поляризации а определяют по формуле
где l -длина трубки, дм;
С --концентрация вещества, г/100 мл.
Из этой формулы легко вычислить концентрацию С, если известен угол вращения:
Оптические абсорбционные методы -- это методы анализа, основанные на поглощении электромагнитного излучения анализируемыми веществами. Именно оптические абсорбционные методы получили широкое распространение в научно-исследовательских и сертификационных лабораториях. При поглощении света атомы и молекулы поглощающих веществ переходят в новое возбужденное состояние. В зависимости от вида поглощающих веществ и способа трансформирования поглощенной энергии различают атомно-абсорбционный, молекулярно-абсорбционный анализ, нефелометрию и люминесцентный анализ.
Атомно-абсорбционный анализ основан на поглощении световой энергии атомами анализируемых веществ.
Молекулярный абсорбционный анализ основан на поглощении света молекулами анализируемого вещества и сложными ионами в ультрафиолетовой, видимой и инфракрасной областях спектра (спектрофотометрия, фотоколориметрия, ИК-спектроскопия).
Фотоколориметрия и спектрофотометрия основаны на взаимодействии излучения с однородными системами, их обычно объединяют в одну группу фотометрических методов анализа.
Нефелометрия основана на поглощении и рассеянии световой энергии взвешенными частицами анализируемого вещества.
Люминесцентный (флуорометрический) анализ основан на измерении излучения, возникающего в результате выделения энергии возбужденными молекулами анализируемого вещества.
Люминесценцией называют свечение атомов, ионов, молекул и других более сложных частиц вещества, которое возникает в результате перехода в них электронов при возвращении из возбужденного в нормальное состояния.
Чтобы вещество стало люминесцировать, к нему необходимо извне подвести определенное количество энергии. Частицы вещества поглощают энергию, переходят в возбужденное состояние, пребывая в нем некоторое время. Затем они возвращаются в состояние покоя, отдавая при этом часть энергии возбуждения в виде квантов люминесценции.
В зависимости от вида возбужденного уровня и времени пребывания в нем различают флуоресценцию и фосфоресценцию.
Флуоресценция -- это вид собственного свечения вещества, которое продолжается только при облучении. Если источник возбуждения устранить, то свечение прекращается мгновенно или спустя не более 0,001 с.
Фосфоресценция -- это вид собственного свечения вещества, которое продолжается после отключения возбуждающего света.
Для исследования продтоваров используют явление флуоресценции.
С помощью люминесцентногоанализа можно обнаружить в исследуемом образце присутствие вещества в концентрации 10-11 г/мл. Этот метод используется для определения некоторых витаминов, содержания белков и жиров в молоке, исследования свежести мяса и рыбы, диагностики порчи овощей, плодов и обнаружения в продуктах консервантов, лекарственных препаратов, канцерогенных веществ, пестицидов.
Все оптические абсорбционные методы иногда объединяют в одну группу спектрохимических или спектроскопических методов анализа, хотя они имеют существенные различия по аппаратному оформлению, по виду поглощающих частиц и другим признакам. Методы разные, но в их основе лежат одинаковые законы светопоглощения.
1.3 Абсолютные фотометрические методы определения веществ
Метод сравнения оптических плотностей стандартного и исследуемого окрашенных растворов
Для определения концентрации вещества берут часть исследуемого раствора, приготавливают из нее окрашенный раствор для фотометрирования и измеряют его оптическую плотность. Затем аналогично приготавливают два-три стандартных окрашенных раствора определяемого вещества известной концентрации и измеряют их оптические плотности при той же толщине слоя (в тех же кюветах).
Значения оптических плотностей сравниваемых растворов будут равны:
для исследуемого раствора
для стандартного раствора
Разделив одно выражение на другое, получаем:
Так как 1Х = lСТ, Ел = const, то
Метод сравнения применяют при однократных определениях.
Метод градуированного графика
Для определения содержания вещества методом градуи-ровочного графика готовят серию из 5-8 стандартных растворов разных концентраций (не менее 3 параллельных растворов для каждой точки).
При выборе интервала концентраций стандартных растворов руководствуются следующими положениями:
* он должен охватывать область возможных изменений концентраций исследуемого раствора, желательно, чтобы оптическая плотность исследуемого раствора соответствовала примерно середине градуировочной кривой;
* желательно, чтобы в этом интервале концентраций при выбранных толщины кюветы I и аналитической длины волны л соблюдался основной закон светопоглощения, т. е. график D = /(С) был линейным;
* интервал рабочих значений D, соответствующий интервалу стандартных растворов, должен обеспечивать максимальную воспроизводимость результатов измерений.
При совокупности перечисленных условий измеряют оптические плотности стандартных растворов относительно растворителя и строят график зависимости D = /(С).
Полученная кривая называется градуировочной (градуировочным графиком).
Определив оптическую плотность раствора Dx, находят ее значения на оси ординат, а затем на оси абсцисс -- соответствующее ей значение концентрации Сх. Этот метод применяют при выполнении серийных фотометрических анализов.
Метод добавок
Метод добавок представляет собой разновидность метода сравнения. Определение концентрации раствора этим методом основано на сравнении оптической плотности исследуемого раствора и того же раствора с добавкой известного количества определяемого вещества. Метод добавок обычно применяют для упрощения работы, для устранения мешающего влияния посторонних примесей, в ряде случаев для оценки правильности методики фотометрического определения. Метод добавок требует обязательного соблюдения основного закона светопоглощения.
Неизвестную концентрацию находят расчетным или графическим способами.
При соблюдении основного закона светопоглощения и постоянной толщине слоя отношение оптических плоскостей исследуемого раствора и исследуемого раствора с добавкой будет равно отношению их концентраций:
откуда
где Dx -- оптическая плотность исследуемого раствора;
Dx + a -- оптическая плотность исследуемого раствора с добавкой;
Сх -- неизвестная концентрация исследуемого вещества в исследуемом окрашенном растворе;
Са -- концентрация добавки в исследуемом растворе.
1.4 Спектрофотометрия
1.4.1 Основные закономерности светопоглощения
При прохождении через слой вещества (в частном случае раствора) светового потока с интенсивностью 10 его интенсивность вследствие поглощения в слое, отражения и рассеяния уменьшается до значения I. Интенсивность падающего светового потока I0 и светового потока I, прошедшего через раствор, можно определить экспериментально.
Связь между интенсивностями световых потоков I0 и I устанавливается законом Бугера-Ламберта, согласно которому однородные слои одного и того же вещества одинаковой толщины поглощают одну и ту же долю падающей на них световой энергии (при постоянной концентрации растворенного вещества). Материалистически этот закон выражается уравнением экспоненциальной зависимости:
где е -- основание натуральных логарифмов;
к - коэффициент поглощения;
l -- толщина поглощающего слоя.
Отношение I/I0 называют пропусканием (Т); его значения могут изменяться от 0 до 1. Часто эту величину выражают в процентах. Если величина Т отнесена к толщине слоя в 1 см, то ее называют коэффициентом пропускания. Поглощение излучения характеризуют оптической плотностью:
Связь между концентрацией поглощающего раствора и его оптической плотностью lg (I0/I) выражается законом Бера, согласно которому оптическая плотность раствора прямо пропорциональна концентрации растворенного вещества при постоянной толщине слоя:
где к1 -- коэффициент пропорциональности;
С -- концентрация растворенного вещества.
Зависимость монохроматического светового потока, прошедшего через слой окрашенного раствора, от интенсивности падающего потока света, концентрации окрашенного вещества и толщины раствора определяется объединенным законом Бугера-Ламбера-Бера, который является основным законом светопоглощения и лежит в основе большинства фотометрических методов анализа.
где к -- коэффициент светопоглощения, зависящий от природы растворенного вещества, температуры, растворителя и длины волны света.
Если концентрация С выражена в молях на литр, a l -- в сантиметрах, то к представляет собой молярный коэффициент светопоглощения и обозначается Ел. Основной закон светопоглощения в этом случае будет иметь следующий вид:
При соблюдении основного закона светопоглощения оптическая плотность раствора прямо пропорциональна молярному коэффициенту светопоглощения, концентрации поглощающего вещества и толщине слоя раствора:
При графическом изображении зависимость оптической плотности от концентрации (при постоянном значении д) С получается прямая линия. Эта прямая проходит через начало координат при отсутствии поглощения света растворителем и систематических погрешностей (рис. 2.1).
1.4.2 Спектры поглощения
В фотометрическом анализе, как правило, используют поглощение света молекулами комплексных (координационных) соединений, сольватов и др. Взаимодействие светового излучения с такими сложными многоэлектронными системами описывают с помощью электронных спектров поглощения, вид которых определяется в основном состоянием электронов внешних орбиталей, участвующих в образовании химической связи.
Электронные спектры поглощения представляют зависимость молярного вещества, коэффициента светопоглощения (Ел), оптической плотности (D) или пропускания (Т) от длины волны поглощаемого света.
Длина волны, при которой наблюдается максимальное поглощение света, обозначается через лмах, молярный коэффициент -- Емах. Область максимального поглощения лучей характеризуется также размытостью максимума поглощения (л1/2мах _ л1/2мах), интервалом, соответствующим половинному значению Емах молярного коэффициента.
Положение максимума спектра поглощения является важной оптической характеристикой вещества, а характер и вид спектра поглощения характеризуют его качественную индивидуальность. Спектры вещества снимают на спектрофотометрах, позволяющих измерять зависимость оптической плотности (пропускания) раствора от длины волны падающего света (в видимой ультрафиолетовой и инфракрасной областях спектра).
Менее качественно спектры поглощения можно снять на фотоколориметрах, снабженных набором узкополосных светофильтров.
Чувствительность и погрешность фотометрического определения зависят от выбранного интервала длин волн поглощаемого света. Оптимальная спектральная область, в которой проводят фотометрические измерения, определяется спектрами поглощения фотометрического комплекса и применяемого реагента.
1.4.3 Спектрофотометры
Фотометрические исследования проводят с помощью фотоколориметров и спектрофотометров. Измерение оптической плотности стандартного и исследуемого окрашенных растворов всегда производят по отношению к раствору сравнения (нулевому раствору). В качестве раствора сравнения можно использовать часть исследуемого раствора, содержащего все добавляемые компоненты, кроме реагента, образующего с определенным веществом окрашенное соединение. Если раствор сравнения при этом остается бесцветным и, следовательно, не поглощает лучей в видимой области спектра, то в качестве раствора сравнения можно использовать дистиллированную воду.
Современные спектрофотометры позволяют работать с высокомоно-хроматизированным потоком излучения. Они применяются для концентрационного анализа и при изучении спектров поглощения веществ. Рассмотрим устройство и принцип действия спектрофотометра СФ-46
Устройство и принцип действия спектрофотометра. Структурную схему спектрофотометра можно представить в виде следующих основных блоков: источник света, монохроматор, кюветное отделение, фотоэлемент, регистрирующее устройство.
Световой пучок от источника света попадает в монохроматор через входную щель и разлагается дифракционной решеткой или призмой в спектр. В монохроматический поток излучения, поступающий из выходной щели в кюветное отделение, поочередно вводятся контрольный и исследуемый образцы. Излучение, прошедшее через кювету, попадает на фотоэлемент, который преобразовывает световую энергию в электрическую. Электрический сигнал затем усиливается и регистрируется.
Монохроматоры. Монохроматор - это оптическая система, выделяющая из всего спектра источника света излучение определенной длины волны. Это обычно призмы, по-разному преломляющие свет разных длин волн, или дифракционные решетки. В видимой области используются обычные стеклянные призмы, но в ультрафиолетовой области они не годятся, поскольку стекло начинает поглощать уже при л < 400 нм, поэтому призмы делают из кварца.
В качестве монохроматоров применяются также дифракционные решетки, которые представляют собой плоскопараллельную пластину с нанесенными на ней параллельными линиями - бороздками. Белый свет из-за дифракции на параллельных бороздках разлагается на непрерывный спектр. Обычно в монохроматорах сначала выделяют пучок света с определенным диапазоном длин волн с помощью призмы, а затем разлагают его еще раз решеткой. Так получают строго монохроматический свет. Основное достоинство дифракционных решеток состоит в том, что можно увеличивать их разрешающую способность, поскольку она прямо пропорциональна плотности линий. Кроме того, во всем диапазоне длин волн дифракционные решетки имеют линейное разрешение, тогда как разрешение призменного монохроматора с увеличением длины волны уменьшается.
Кюветы. Исследуемое вещество растворяют в соответствующем растворе и помещают в оптически прозрачный сосуд для измерений - кювету. Обычно кюветодержатель имеет ячейки для четырех кювет. Поскольку стекло поглощает ультрафиолетовый свет, для проведения измерений в ультрафиолетовой области спектра используют кварцевые кюветы. Для измерений в видимой области можно использовать пластиковые или стеклянные кюветы. При работе с летучими или химически активными веществами кюветы закрывают крышками. Поскольку кювета, помещенная в спектрофотометр, становится составной частью его оптической системы, с ней нужно обращаться очень аккуратно. Царапины и грязь на стенках кюветы сильно рассеивают и поглощают свет, искажая результаты измерений. Об этом особенно надо помнить при работе в ультрафиолетовой области. Кюветы можно протирать мягкими тканями, например, из хлопка. Не рекомендуется использовать для этих целей фильтровальную бумагу. Поскольку органические молекулы поглощают в ультрафиолетовой области, ни в коем случае нельзя касаться оптических (прозрачных) стенок кюветы. Раствор лучше заливать в кювету, поставив ее в предварительно вынутый из прибора кюветодержатель. Кюветы довольно хрупки, особенно кварцевые, поэтому работать с ними надо осторожно, не допуская механических повреждений. Содержимое кюветы должно быть гомогенным - это необходимое условие получения воспроизводимых данных. Нужно следить за тем, чтобы раствор не был мутным. Особенно мешают измерениям пузырьки воздуха, сильно увеличивающие рассеяние. Нельзя наливать в кювету очень холодный раствор, поскольку при этом на наружных стенках кюветы конденсируются пары воды воздуха, и стенки становятся непрозрачными.
Если кюветы загрязнены посторонними примесями, их следует промыть дистиллированной водой и (или) растворителем, в котором растворено исследуемое вещество. Кюветы можно мыть мягкими детергентами. Не рекомендуется мыть кюветы концентрированными кислотами или щелочами, а также другими травящими агентами. Кюветы нужно заполнять до такого уровня, чтобы поток излучения проходил целиком через слой раствора. Чаще всего используются кюветы с оптическим путем 1 см, в которые обычно заливают 2,5-3 мл раствора. В такие кюветы входит 4-5 мл, но заполняют их полностью лишь в том случае, когда это необходимо. Есть кюветы с оптическим путем 50, 20, 5, 2 и 1 мм.
Фотоэлементы. Фотоэлементы преобразовывают световую энергию в электрическую. Электрический сигнал затем усиливается и регистрируется.
Фотоны, бомбардируя поверхность фотоэлемента, выбивают из него электроны, количество которых пропорционально интенсивности света. Эти электроны летят к положительному электроду. В результате в замкнутой цепи возникает электрический ток, который регистрируется по падению напряжения на сопротивлении, находящемся в этой цепи. Напряжение можно усилить, и после компенсации такого сигнала потенциометром, отградуированном в единицах поглощения, на датчике регистрируется непосредственно поглощение образца.
Фотоумножители обычно более чувствительны, чем простые фотоэлементы. Это происходит из-за того, что электроны, вылетевшие из фоточувствительного слоя, ускоряются высоким напряжением, а из-за соударений в газе возникают вторичные электроны, что и приводит к возрастанию тока.
Ширина щели. От размера щели зависит диапазон длин волн света, падающего на образец. Поэтому для получения надежных результатов надо работать при минимально узкой для данных условий эксперимента щели. Если щель выбрана правильно, то при изменении ее размеров вдвое показания прибора не меняются. Обычно нулевое значение поглощения устанавливают щелью, но в хороших спектрофотометрах это делают, изменяя напряжение фотоэлемента. Такая регулировка позволяет работать при постоянной ширине щели.
Спектрофометр СФ-46
Назначение и технические данные. Однолучевой спектрофотометр СФ-46 со встроенной микропроцессорной системой предназначен для измерения пропускания, оптической плотности жидких и твердых веществ в области 190-1100 нм. Диспергирующим элементом служит дифракционная решетка с переменным шагом и криволинейным штрихом. Пределы измерения коэффициентов пропускания 1-100% (оптической плотности 0-2,0). Пределы допускаемой абсолютной погрешности при измерении коэффициентов пропускания в спектральном диапазоне 400-750нм не более 0,5%, в остальном спектральном диапазоне не более 1%.
Рис. Внешний вид спектрофотометра СФ-46.
1 - монохроматор; 2 - микропроцессорная система; 3 - кюветное отделение; 4 -осветитель; 5 - камера с фотоприемниками и усилителями; 6 - рукоятка изменения длины волны; 7 - шкала длин волн; 8 - переключатель ламп; 9 - рукоятка переключения фотоэлементов; 10 - рукоятка изменения ширины щели; 11 - рукоятка перемещения каретки; 12 - рукоятка переключения шторки; 13 - рукоятка установки темнового тока фотоэлемента.
Некоторые технические характеристики прибора:
|
Диапазон измерения пропускания |
3 - 100 % |
|
|
Абсолютная погрешность измерения Т, не более |
1% |
|
|
Стандартное отклонение пропускания, не более |
0,1% (0,001) |
|
|
Абсолютное значение рассеянного излучения при 200 нм |
0,2% |
Излучение от источника (1 или Г) падает на зеркальный конденсатор (2), который направляет его на плоское поворотное зеркало (3) и дает изображение источника излучения в плоскости линзы (4), расположенной вблизи входной щели (5) монохроматора.
Прошедшее через входную щель излучение падает на вогнутую дифракционную решетку (6) с переменным шагом и криволинейным штрихом. Решетка изготовляется на сферической поверхности, поэтому, помимо диспергирующих свойств, она обладает свойством фокусировать спектр. Применение переменного шага и криволинейного штриха значительно уменьшает аберрационное искажение вогнутой дифракционной решетки и позволяет получить высокое качество спектра во всем рабочем спектральном диапазоне.
Дифракционный пучок фокусируется в плоскости выходной щели (7) монохроматора, расположенной над входной щелью (5). Сканирование осуществляется поворотом дифракционной решетки, при этом монохроматическое излучение различных длин волн проходит через выходную щель (7) и линзу (8), контрольный или исследуемый образец, линзу (9) и с помощью поворотного зеркала (10) попадает на светочувствительный слой одного из фотоэлементов (11 или 12).
Для обеспечения работы спектрофотометра в широком диапазоне спектра используются два фотоэлемента два источника излучения сплошного спектра.
Сурьмяно-цезиевый фотоэлемент с окном из кварцевого стекла применяется для измерения в области спектра от 186 до 700 нм, кислородно-цезиевый фотоэлемент -- для измерения в области спектра от 600 до 1100 нм. Длина волны, при которой следует переходить от измерений с одним фотоэлементом к измерениям с другим фотоэлементом, указывается в паспорте.
Блок-схема прибора:
Глава 2. Объекты и методы исследований
Объектом исследования были взяты яблочные выжимки. Данный материал является веществом растительного происхождения. Предметом исследования является растворимый пектин, представленный остатками б-D- галактуроновой кислоты.
2.1 Методы исследований
Извлечение и перевод в растворенное состояние
Для этого берут на весах второго класса точности навеску массой 0,10 г. сухого исследуемого материала, тщательно растирают его в ступке до однородной массы. Количественно переносят в коническую колбу на 250 мл, смывая ступку этанолом, затем выдерживают 30 мин на кипящей водяной бане с обратным холодильником (происходит обессахаривание). После этого содержимое колбы отфильтровывают.
Остаток на фильтре переносят в коническую колбу и к нему добавляют 50 мл дистиллированной воды. Колбу с материалом и водой выдерживают на водяной бане при температуре 40 - 50°С в течение 30 мин для извлечения растворимого пектина. По истечении этого времени содержимое колбы отфильтровывают через бумажный складчатый фильтр. Операцию повторяют три раза. К полученному экстракту добавляют 50 мл 2н Н2SО4 для проведения гидролиза пектина до галактуроновой кислоты. Гидролиз проводят 1 час при кипячении на водяной бане с обратным холодильником. После этого содержимое колбы отфильтровывается в мерную колбу на 100 мл и доводят до метки дистиллированной водой. Полученный раствор гидратопектинов используют для дальнейших анализов.
Для определения массовой доли в растительном сырье протопектина и пектовой кислоты остаток на фильтре измельченного растительного материала заливают 5 мл 0,75 % раствором щавелевокислого аммония и переносят в коническую колбу на 250 мл, содержимое мешают стеклянной палочкой в течении 10 мин, после этого раствор дополняют до 35 мл щавелевокислым аммония и перемешивают еще 10 мин, по истечении времени добавляют 5 мл 1н NаОН и фильтруют. Фильтрат перенося в мерную колбу на 100 мл и доводят до метки щавелевокислым аммонием. Полученный раствор протопектинов используют для дальнейших анализов.
Фильтр вместе с остатком растительного материала переносят в коническую колбу, заливают 100 мл 1н Н2SО4 и помещают на кипящую водяную баню с обратным холодильником на 60 мин. Полученный экстракт отфильтровывают через бумажный фильтр в мерную колбу на 100 мл, после чего содержимое колбы охлаждают и доводят до метки. Таким образом получают экстракты гидратопектина и двух фракций протопектина.
2.1.1 Методика спектрофотометрического определения массовой доли полигалактуроновой кислоты в растительном сырье с использованием реактива серной кислоты.
Приготовление специальных реактивов
Реактив серной кислоты (РСК)
Для поведения колориметрической реакции применяется серная кислота (с=1,64) с добавками мочевины и борной кислоты. К 1л. Н2SO4 добавляют 3 г. Мочевины и нагревают в кварцевой колбе на электроплитке (120°С) 8 часов. После охлаждения к раствору добавляют 6 г. Н3ВО3 и нагревают еще 3 часа. Приготовленную таким образом серную кислоту в дальнейшем называем реактивом серной кислоты (РСК).
Так как перед проведением реакции с углеводом РСК должен быть охлажден до 0°С, то рекомендуется его держать в холодильнике.
РСК пригоден для анализа, если при холостом опыте не образуется окраска.
Очистка карбазола и приготовление рабочего раствора
Карбазол очищают возгонкой : 1 г. карбазола помещают на дно стакана высотой 15-20 см. Стакан накрывают чашкой Петри или круглодонной колбой (можно заполнить водой) и нагревают на электрической плитке (лучше - воздушной бане). Белые хлопья возогнанного карбазола оседают на верхних стенках стакана и на дне колбы.
Очищенный возгонкой карбазол растворяют в этиловом спирте, прошедшем предварительную специальную обработку. Концентрация карбазола в реактиве (раствор в этаноле) 5 мг/мл.
Построение калибровочного графика
Для построения калибровочного графика и расчета коэффициента пропорциональности используют раствор галактуроновой кислоты (ГК). Навеска ГК массой 102 мг (желательно с точностью до 0,01 мг, навеска берется на микровесах) растворяется в воде в 1000 мл мерной колбе, добавляется 0,5 мл 1н NаОН. Приготовленный раствор оставляется на 11 - 13 часов. Этот раствор содержит 100 мкг безводной D-галактуроновой кислоты в 1 мл. Из этого исходного раствора разбавлением готовят серию растворов с меньшими концентрациями: 0,01; 0,02; 0,03; 0,04; 0,05; 0,06; 0,07; 0,08 мг/мл.
Выполнение колориметрической реакции
К 0,5 мл исследуемого раствора в пробирке, помещенной в ледяную баню, приливают 0,25 мл спиртового раствора карбазола, перемешивают встряхиванием и медленно при перемешивании приливают 5,5 мл РСК, охлажденного до 0°С. После перемешивания раствор должен оставаться бесцветным или светло-желтым.
Таким же образом готовят холостой раствор, где в смесь вместо раствора карбазола приливают 0,25 мл этанола.
Пробирки с растворами нагревают в кипящей водяной бане 20 мин. До комнатной температуры охлаждать растворы удобнее всего в проточной водопроводной воде.
Измерение оптической плотности
Оптическая плотность (I) окрашенных растворов измеряется в точках 420 и 490 нм на любом спектрофотометре. Толщина поглощающего слоя l=1 см.
Так как измеряются оптические плотности в точках высокочастотного крыла (коротковолнового) полосы поглощения, то необходимо контролировать калибровку прибора по длинам волн. Смещение аналитических точек по шкале длин волн может привести к существенным ошибкам. Так как для различных приборов возможно расхождение по этой шкале, то рекомендуется калибровочную прямую строить для конкретного прибора, на котором производятся измерения.
Определение коэффициента пропорциональности Кгк
Из исходного раствора ГК разбавлением готовят 8-10 растворов с различной массовой долей ГК (шаг - 10 мкГ/мл). Полученные окрашенные растворы подчиняются закону Ламберта-Бера, калибровочная прямая с наклоном (tg б= Кгк) и оси абсцисс.
Коэффициент пропорциональности рассчитывается, исходя из математического выражения основного закона светопоглощения:
D=К·C·l,
где К - коэффициент пропорциональности ( размерность в нашем случае мг мл·мг-1·см-1);
С - концентрация ГК в растворе (мг/мл);
l - толщина поглощающего слоя (см).
Кгк= ДD/С l, мл·мг-1·см-1,
где ДD - разность оптических плотностей при 490 и 420 нм.
Формулы для расчета
Формула для определения содержания ГК в исследуемом растворе:
Х= амкг/мл·100мл/(Ргр.·106)мкг·100%,
где амкг/мл -содержание галактуроновой кислоты соответствующее оптической плотности;
Ргр - (гр) масса навески;
Содержание пектиновых веществ определяется:
С = Х·R,
Где R - коэффициент пересчета на пектин;
Для яблочного пектина R = 1,3.
Глава 3. Экспериментальные. Результаты и их обсуждение
3.1 Экспериментальные данные спектрофотометрического анализа
Калибровочная кривая представлена на рис. 1.
Рис. 1. Калибровочная кривая для спектрофотометрического метода анализа с использованием реактива серной кислоты
3.2 Экспериментальные данные для спектрофотометрического метода анализа с использованием реактива серной кислоты
Экспериментальные данные по определению количества пектина спектрофотометрическим методом
Экспериментальные данные по определению количества пектина приведены в таблице 1.
Таблица 1.
|
№ п/п |
Фракция 1 |
Фракция 2 |
Фракция 3 |
|||||||
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
|
|
СЯ1, % |
СЯ1- Сср. |
(СЯ1- Сср.)2 |
СЯ2, % |
СЯ2- Сср. |
(СЯ2- Сср.)2 |
СЯ3, % |
СЯ3- Сср. |
(СЯ3- Сср.)2 |
||
12345678910 |
7,1506,1757,4755,8505,8503,2504,5504,8756,1754,225 |
1,5920,6171,9170,2920,292-2,308-1,008-0,6830,617-1,333 |
2,5340,3813,6750,0850,0855,3271,0160,4660,3811,777 |
10,078,1258,4509,4256,1753,2506,1754,55010,406,250 |
2,76250,81251,13752,1125-1,1375-4,0625-1,1375-2,76253,0875-0,8125 |
7,63140,66021,29394,46271,293916,5041,29397,63149,53270,6602 |
5,8506,1754,8757,1505,2006,1756,1753,9004,8754,225 |
0,3900,715-0,5851,690-0,2600,7150,715-1,560-0,585-1,235 |
0,15210,51120,34222,85610,06760,51120,51122,43360,34221,5252 |
|
|
Сср. |
5,558 |
(СЯ-Сср.)2=15,727 |
7,3125 |
(СЯ- Сср.)2=50,964 |
5,46 |
(СЯ- Сср.)2=9,2526 |
Вычисление среднего арифметического результатов наблюдений
Вычисление среднего арифметического результатов наблюдений производят по формуле:
, (1)
где - среднее арифметическое степени этерификации пектина, %;
Сi - степень этерификации пектина i - того наблюдения;
n - число результатов наблюдения.
Среднее арифметическое количество пектина, вычисленное по формуле (1) для первой фракции равно 5,558%, для второй - 7,3125%, для третьей - 5,46%.
Вычисление оценки среднего квадратического отклонения результата наблюдения
Среднее квадратичное отклонение у результата наблюдения оценивают по формуле:
, или (2)
Среднее квадратичное отклонение количества определения пектина, рассчитанное по формуле (2), равно
у1 = =1,3219% или %
у2 ==2,3796% или %
у3 ==1,0139% или %.
Выявление и исключение грубых погрешностей (промахов)
Выявление и исключение грубых погрешностей при небольшом числе измерений (до 10) осуществляют с помощью критерия Шовине. При этом промахом считается результат хi, если разность превышает значения у, приведенные ниже в зависимости от числа измерений:
(3)
Поскольку в нашем случае число наблюдений равно 10, то разность (Сi-Сср) для первой фракции не должна превышать значения 2,6438 (2,0Ч1,3219), для второй - 4,7592 (2,0Ч2,3796), для третьей - 2,0278 (2,0Ч1,0139)
Из данных, приведенных в колонках 3,6,9 таблицы 1, видно, что среди результатов наблюдений в нашем эксперименте нет промахов. Следовательно, все результаты наблюдения необходимо учитывать.
Вычисление оценки среднего квадратического отклонения результата измерения
Среднее квадратическое отклонение S результата измерения оценивают по формуле:
или (4)
Среднее квадратическое отклонение значений количества пектина, вычисленное по формуле (4):
S1= 0,418% или 1 =7,521 %.
S2=0,753 % или 2 =10,297 %.
S3=0,321 % или 3 =5,879 %.
Вычисление доверительной границы случайной погрешности результата измерения
Доверительные границы е (без учета знака) случайной погрешности результата измерения находят по формуле:
, (5)
где t - коэффициент Стьюдента (справочная величина).
Доверительную вероятность Р задаем равной 0,95, тогда для числа результатов наблюдений n=10, коэффициент Стьюдента будет равен t=2,262.
Таким образом, доверительные границы случайной погрешности студнеобразующей способности пектина
е1 = 2,262Ч0,418 = 0,9455 %
е1 = 2,262Ч7,521 = 17,012 %,
е2 = 2,262Ч0,753 = 1,703 %
е2 = 2,262Ч7,521 = 23,291 %,
е3 = 2,262Ч0,321 = 0,726 %
е3 = 2,262Ч5,879 = 13,298 %.
Вычисление границы не исключенной систематической погрешности результата измерений
Границы неисключенной систематической погрешности И результата измерения вычисляют путем построения композиции неисключенных систематических погрешностей средств измерений, метода и погрешностей, вызванных другими источниками. При равномерном распределении не исключенных систематических погрешностей эти границы (без учета знака) вычисляют по формуле:
, (6)
где - граница i - не исключенной систематической погрешности;
k - коэффициент, определяемый принятой доверительной вероятностью. Коэффициент k равен 1,1 при доверительной вероятности Р = 0,95.
При определении количества пектина спектрофотометрическим методом, границы неисключенной систематической погрешности результата измерения будут включать следующие границы неисключенных систематических погрешностей:
- расчет погрешности при взвешивании навески пектина 0,20 г (навеску взвешивают на весах второго класса точности)
И1 = =0,25 %
- расчет погрешности при определении объема анализируемого вещества, пошедшего на колориметрическую реакцию:
При отмеривании 1 см3 анализируемого вещества используется пипетка второго класса точности, объемом 1 см3 по ГОСТ 29169-91
И2 = = 1%
- расчет погрешности при отмеривании 0,5 см3 спиртового раствора для калориметрической реакции:
При отмеривании 0,5 см3 спиртового раствора используется мерная пипетка второго класса точности, объемом 1 см3 по ГОСТ 29169-91
И3 = = 1 %
- расчет погрешности при отмеривании 5,5 см3 кислоты для калориметрической реакции:
При отмеривании 5,5 см3 кислоты используется мерная пипетка второго класса точности, объемом 10 см3 по ГОСТ 29169-91
И4 = = 1 %
- погрешности при снятии показаний на спектрофотометре:
И5 = 0,1 %
Таким образом, границы неисключенной систематической погрешности результата измерений студней из сухого пектина будут
И = 1,1Ч = 1,928%
Вычисление доверительных границ погрешности результата измерения
Находим отношение границ неисключенной систематической погрешности к среднему квадратичному отклонению результата измерения:
,
,
,
поскольку отношение И/S<0,8, то систематической погрешностью пренебрегают, следовательно, погрешностью результата измерения будет относительная погрешность Sотн.
Определение приписанной погрешности измерений при двух параллельных опытах (сходимости результатов измерений)
Сходимость результатов параллельных определений признается удовлетворительной, если
, (10)
где Xmax,n - максимальный результат из «n» определений;
Xmin,n - минимальный результат из «n» определений;
n - число параллельных измерений;
d - норматив внутреннего оперативного контроля (ВОК) сходимости.
Норматив ВОК сходимости вычисляется по формуле:
, (11)
где = S - показатель сходимости (характеристика составляющей случайной погрешности);
Q(P,n) - коэффициент, зависящий от P и n.
При n = 2 и Р=0,95, Q(P,n)=2,77 [8],
Тогда d1= 0,418•2,77= 1,158 %,
d2= 0,753•2,77= 2,086%,
d3= 0,321•2,77=0,889%.
Таким образом, результат измерений количества пектина спектрофотометрическим методом признается удовлетворительным, если расхождение между двумя параллельными измерениями не превышает значения допускаемого расхождения для первой фракции 1,158 %, для второй - 2,086%, для третьей - 0,889%.
Заключение
При проведении исследования изучался образец сухих яблочных выжимок.
В качестве экстрагирующих веществ были использованы: Н2SO4 2н, щавелевокислый аммоний 0.75%, NаОН 1н, вода.
Для определения количества пектина использовался колориметрический карбозольный метод с применением спектрофотометра СФ-46. Для проведения колориметрической реакции применялся РСК.
Для построения калибровочного графика и расчета коэффициента пропорциональности использовали раствор галактуроновой кислоты (ГК). На спектрофотометре измерили оптическую плотность при л = 420 - 490 нм. По расчетной формуле произвели расчет содержания галактуроновой кислоты, и используя коэффициент пересчета определили количество пектина в яблочных выжимках.
Таким образом в результате исследования получили: количество пектина для первой фракции равно (5,558±1.158)%, для второй - (7,3125±2.0860)%, для третьей - (5,460±0.889)%.
Библиографический список
1. Спектрофотометр СФ-46. Техническое описание и инструкция по эксплуатации. Ю-34.11.629 ТО 1992г. 33с.
2. Фотометрические методы анализа
3. Алексеев В. Н. Количественный анализ. Под ред. д-ра хим. наук П. К. Агасяна. Издание 4-е, перераб. М., «Химия».1972. 504с., ил.
4. Пономарев В. Д. Аналитическая химия в двух частях. Учебник для фармац. и фак. мед. ин-тов. - М.: Высш. школа, 1982. Ч.2. Количественный анализ. 288с., ил.
Подобные документы
Методы определения редуцирующих веществ в гидролизатах. Определение легко- и трудногидролизуемых полисахаридов, массовой доли PB в гидролизатах по методу Макэна-Шоорля и эбулиостатическим методом. Анализ гидролизатов методом газожидкостной хроматографии.
реферат [487,2 K], добавлен 24.09.2009Расчет массовой доли вещества в остатке, полученном при кипячении нитрата калия в сильнощелочной среде с алюминием. Вычисление массы исходной смеси при прокаливания кальция и алюминия без доступа воздуха. Определение массовой доли металлов их смеси.
контрольная работа [1,0 M], добавлен 23.11.2009Неопределенность проведения испытаний - метод оценки точности полученных результатов. Методика выполнения измерений массовой доли уксусной кислоты в горчице пищевой методом горячего титрования. Теоретические основы расчета неопределенностей измерений.
курсовая работа [110,6 K], добавлен 27.12.2011Превращения крахмала и низших углеводов, азотистых и пектиновых веществ во время водно-тепловой обработки крахмалистого сырья. Превращения крахмала и белковистых веществ под действием ферментов солода и ферментных препаратов при осахаривании сырья.
контрольная работа [26,6 K], добавлен 03.06.2017Количественное определения содержания Трилона Б (динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты), физико-химическим методом анализа. Определение массовой доли Трилона Б методом обратного комплексонометрического титрования сернокислого цинка.
курсовая работа [263,9 K], добавлен 05.05.2015Методика очистки клеточной стенки от пектиновых и гемицеллюлозных веществ. Получение раствора прочносвязанных с целлюлозой полисахаридов. Разделение фракций по молекулярным массам. Проведение моносахаридного анализа, его этапы и оценка результатов.
курсовая работа [72,5 K], добавлен 03.01.2011Методика определения германия в твердом электролите GeSe-GeJ2. Применимость данного метода определения германия в соединениях для вычисления его массовой доли в твердом электролите GeSe-GeJ2 и отклонение состава твердого электролита от теоретического.
курсовая работа [42,3 K], добавлен 22.05.2008Необходимость идентификации вещества и измерение количественной оценки его содержания. Качественный анализ для химической идентификации атомов, молекул, простых или сложных веществ и фаз гетерогенной системы. Классификация методов количественного анализа.
лекция [76,4 K], добавлен 16.01.2011Способность целлюлозы к набуханию и растворению в растворах гидроксида натрия, ее особенности, техническое значение, методика определения степени ее набухания и растворимости, а также анализ массовой доли в щелочи. Определение содержания альфа-целлюлозы.
реферат [77,5 K], добавлен 24.09.2009Общая характеристика пектинов как гетерогенной группы биогликанов нерегулярного строения, их физиологическое действие. История развития пектинов. Особенности применения пектинов в медицине. Определение сорбционной способности некоторых пектиновых веществ.
курсовая работа [874,0 K], добавлен 12.01.2014
