Покрокова методика визначення мінімальної інгібуючої концентрації гідрофобної біологічно-активної сполуки методом розведення з бульйоном
Специфіка наукової роботи під час воєнного стану у Запоріжжі, поблизу зони бойових дій. Розробка оптимального методу визначення мінімальної інгібуючої концентрації нових гідрофобних біологічно активних сполук, який би відповідав стандартам EUCAST.
Рубрика | Биология и естествознание |
Вид | статья |
Язык | украинский |
Дата добавления | 20.09.2024 |
Размер файла | 826,8 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Размещено на http://www.allbest.ru/
Запорізька обласна клінічна лікарня
Запорізький державний медичний університет
Покрокова методика визначення мінімальної інгібуючої концентрації гідрофобної біологічно-активної сполуки методом розведення з бульйоном
Людмила Антипенко,
канд. фарм. наук, науковий фрілансер
Оксана Ребець,
завідувач бактеріологічної лабораторії
Ірина Карнаух,
лаборант-бактеріолог
Олексій Антипенко,
канд. фарм. наук, доцент, Кафедра органічної і біоорганічної хімії
Сергій Коваленко,
доктор фарм. наук, професор, завідувач кафедри органічної і біоорганічної хімії
м. Запоріжжя
Анотація
Враховуючи специфіку наукової роботи під час воєнного стану у місті Запоріжжя, Україна, поблизу зони активних бойових дій, було вирішено запропонувати оптимальний метод визначення мінімальної' інгібуючої концентрації' нових гідрофобних біологічно активних сполук, який би економив ресурси та час вчених, але відповідав стандартам EUCAST (Європейського комітету з тестування чутливості до антимікробних засобів).
Ключові слова: мінімальна інгібуюча концентрація, C. аІЬісапБ, S. aureus, P. aeroginosa, E. coli, E. aerogenes, C. albicans, 4 - (5-метил - 5,6 - дигідротетразоло [1,5 - е] хіназолін-5 - іл) бензойна кислота
Основна частина
З 2007 року основним нормативним документом, який регламентував методи визначення чутливості мікроорганізмів до антибіотиків і містив референтні значення, щодо яких проводилося порівняння та визначення резистентних штамів, був Наказ Міністерства охорони здоров'я (МОЗ) України «Про затвердження методичних вказівок «Визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів» від 05.04.2007 року №167 [1]. Проте, значення щодо медично важливих збудників інфекцій, внесені до цього наказу, суттєво відрізнялися від європейських стандартів чутливості Європейського комітету з тестування антимікробної чутливості (EUCAS^ [2]. Так, згідно EUCASТ за категоріями чутливості мікроорганізмів до антибіотиків, виділяли «чутливий при підвищеній експозиції» (І), «чутливий у стандартній дозі» (S) та резистентний (R). Вже у 2018 році у МОЗ України був затверджений Наказ «Про внесення змін до додатка 4 до Методики розробки та впровадження медичних стандартів медичної допомоги на засадах доказової медицини» №1752 від 26.09.2018 року, відповідно до якого перелік джерел клінічних настанов доповнювався матеріалами EUCAST[3]. Більш того, у наступному 2019 році Кабінетом Міністрів України був затверджений «Національний план дії щодо боротьби зі стійкістю до протимікробних препаратів» [4], що привело до визнання у 2021 році низки нормативних документів, в тому числі і Наказу №167, такими, що втратили чинність [5].
Мета: Підтримання стабільності у всіх сферах життя є одним із пріоритетів сьогодення, через те, що на даний час на Україні йде війна з російською федерацією [6]. Незважаючи на те, що максимальні ресурси спрямовані на прискорення перемоги та забезпечення Збройних Сил і безпеки мирного населення, навіть у місті Запоріжжя, яке розташоване на кордоні із зоною активних бойових дій [7], було вирішено продовжити займатися науковою діяльністю та розробляти методику визначення мінімальної інгібуючої концентрації з використанням оптимальної мінімальної кількості реагентів і матеріалів.
Матеріали та методи: Метод серійних розведень (2-254 mg/L) на м'ясопептонному бульйоні [9], проведений у бактеріологічній лабораторії КНП «Запорізька обласна клінічна лікарня» ЗОР проти StaphylococcusaureusATCC25923 F-49, PseudomonasaeruginosaATCC 27863, EscherichiacoliATCC 25922, Klebsiella (Enterobacter) aerogenesта CandidaalbicansATCC 885-653 на прикладі нової біологічно активної сполуки, 4 - (5-метил - 5,6 - дигідротетразоло (1,5<| - хіназолін-5-іл) бензойної кислоти (лабораторний шифр №295), синтезованої на кафедрі Органічної і біоорганічної хімії Запорізького державного медичного університету. Тому що, нещодавно, за допомогою insilicoмолекулярного докінгу було виявлено спорідненість 5,6 - дипдротетразоло [1,5<] хЫазол^в до рибосомального 50Sбілка L2P (PDBID: 2QEX) [10], що спонукає до перевірки протимікробних властивостей ряду цих сполук.
Результати та їх обговорення: Серед стандартизованих методів визначення чутливості мікроорганізмів до антибіотиків розрізняють методи серійних розведень та дифузійні [1,8]. Методи серійних розведень базуються на прямому визначенні мінімальної інгібуючої концентрації (МІК) препарату, яка пригнічує видимий ріст досліджуваного мікроорганізму в бульйонній культурі або на щільному поживному середовищі. Для визначення величини МІК певні концентрації сполуки вносять у поживне середовище, в яке потім засівають культуру досліджуваного мікроорганізму і після інкубації оцінюють наявність або відсутність видимого росту.
Враховуючи гідрофобні властивості нових синтезованих сполук було вирішено використовувати ДМСО (диметилсульфоксид) у якості первинного розчинника субстанції згідно прикладів EUCAST[11]. Так, для дослідження протигрибкової активності останній рекомендує діапазон концентрацій 0.25 - 128 mg/L. При цьому для флюканазолу допустимий діапазон концентрацій проти C. albicansF8555: 32-128 mg/L. У нашому випадку експериментально було виявлено, що для визначення нових біологічно - активних сполук ряду 5-феніл - 5,6 - дигідротетразоло [1,5 - с] хіназолінів концентрація 2-254-mg/Lє оптимальною, бо для створення комбінаторних бібліотек з відомою invitroактивністю, наявність речовин навіть з незначною біологічною дією, покращить майбутній insilicoдизайн та аналіз кількісного зв'язку структура-активність (QSAR) протимікробних лікарських субстанцій.
Таким чином, пропонується наступна методика визначення МІК з використанням інокулюма, що був отриманий з 3-5 однотипних, чітко ізольованих колоній, які виросли на неселективних щільних середовищах після 16-24 год. інкубації. Кінцевий об'єм суміші було обрано 2 мл для більш кращої інтерпретації результатів.
Покрокова методика визначення МІК нової гідрофобної' біологічно активної' сполуки.
• В одному штативі позначте стерильні пробірки від 1 до 8; зазначте номер досліджуваної сполуки на пробірці 1;
• 'початковий розчин сполуки №' - початковий розчин досліджуваної сполуки із зазначеним її лабораторним номером, якого вистачить для дослідження на 5 культурах;
• 'культура' - суспензія культури, розведена у 100 разів з мікробіологічної суспензії із стандартною каламутністю за МакФарландом.
• 'KC' - контроль поживного середовища (м'ясо-пептонний бульйон);
• 'KK' - контроль росту культури;
• 'ККД' - контроль росту культури з ДМСО;
• В пробірку 'початковий розчин сполуки №' додайте 9500 pLбульйону.
• В пробірку «культура» додайте 9900 pLбульйону
• В пробірку КС додайте 2000 pLбульйону.
• В пробірки 2-8 та КК додайте по 1000 pLбульйону.
• В пробірку ККД додайте 950 pLбульйону.
• В пробірку ККД додайте 50 pLДМСО.
Приготування початкового розчину: Зважте 0,0512 грам досліджуваної сполуки, додайте 5000 pLДМСО, ретельно розчиніть. З цього розчину 500 pLдодайте до підготовленої пробірки 'початковий розчин сполуки №' з бульйоном. (Концентрація початкового розчину - 512 mg/L (10 mL) для одночасного визначення на 5 культурах.)
• До пробірки 1 додайте 2000 pL «початкового розчину сполуки №». (Якщо Ви визначаєте МІК на 5 культурах, то можете додати його у кожну пробірку 1 на різних штативах.)
• Перенесіть 1000 |А з пробірки 1 у пробірку 2. Ретельно перемішайте вміст цієї пробірки та перенесіть 1000 pLу третю пробірку.
• Продовжуйте розведення так само, включаючи останню пробірку №8.
• Видаліть 1000 pLз пробірки 8, щоб в ней залишився 1 mL
Підготовка культури: Для кожної добової культури необхідно починати з її стандартної каламутності за МакФарландом та розчиняти у 100 разів у ізотонічному розчині натрій хлориду. Інокулюм слід використовувати не пізніше 15 хв. після його приготування.
• Так, до пробірки «культура» з бульйоном додайте 100 pLсуспензії бактеріальної культури (каламутність за МакФарландом бактеріальної суспензії 0,5 (1,5*108 КУО/см3), та 2,0 - для C. albicans (6,0*108 КУО/см3), щоб в результаті отримати 10 mLрозчину з 1,5*106 КУО/см3 для бактерій, та - 6,0*106 КУО/см3 для С. albicans).
• Додайте по 1000 pLрозведеної суспензії культури до пробірок 1-8, КК, ККД (щоб отримати фінальну концентрацію 7,5*105 КУО/см3 для бактерій, та 3,0*106 КУО/см3 для C. albicansу 2 mLсуміші).
• Інкубуйте пробірки при 35 ± 1°С протягом 24 год.
• Огляньте пробірки на наявність видимих ознак росту бактерій.
• Сфотографуйте кожен ряд десяти пробірок 1 -8, КК, КС на темному фоні у світлі, що проходить, як на прикладі (Рис. 1).
• У таблиці зазначте хрестик, де ріст мікроорганізмів (опалесценція) присутня (Табл. 1). Найвище розведення без зростання і є мінімальна інгібуюча концентрація сполуки.
Так, у нашому прикладі, МІК сполуки №295 дорівнює 32 mg/Lпроти S. aureus, 254 mg/Lпроти E. coliта С. albicans (Рис. 1,2; Табл. 1). Варто зазначити, що для азотмісних сполук у випадку прояву протигрибкової активності, МІК є найнижчою концентрацією препарату, що призводить до пригнічення росту на >50% від рівня контролю [11], тобто сполуку №295 слід дослідити детальніше методом дифузії у агар.
Таблиця 1. Приклад зведеної таблиці згідно результатів на Рис. 1.
Номер сполуки |
Назва штаму |
Номер пробірки / Концентрація сполуки, mg/ |
KK |
KC |
||||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
|||||
254 |
128 |
64 |
32 |
16 |
8 |
4 |
2 |
|||||
295 |
S. aureus |
- |
- |
- |
- |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
|
P. aeruginosa |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
||
E. coli |
- |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
||
K. aerogenes |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
||
C. albicans |
- |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
Концентрація ДМСО у пробірці ККД (контролю культури з ДМСО) відповідає концентрації у пробірці 1 у запропонованій методиці, яка надалі зменшується при розведеннях. Так, перевірка впливу 50 pLДМСО (2,5%) на ріст досліджуваних штамів мікроорганізмів у 2 mLпоживної суміші показала їх нечутливість до цього розчинника (Рис. 2). Тобто при повному відтворенні цієї методики та використанні таких самих штамів, можна виключити пробірку ККД для економії часу та реагентів.
Крім того, у випадку, якщо суміш у пробірці 1, 2, тощо, все ще має опалесценцію внаслідок гідрофобності досліджуваної сполуки при додаванні м'ясо-пептонного бульйону, потрібно зберігати додатковий негативний контроль відповідних розведень у холодильнику (замінити додавання розчину культури на 1000 pLбульйону, щоб мати таку ж фінальну концентрацію) для порівняння оптичної густини до та після додавання інокуляту.
Для додаткового контролю можна висіяти суміш з пробірки, яка викликає сумніви на агар для однозначної перевірки росту культури та проведення більш детальних досліджень [8]. Та кожен дослід необхідно відтворювати якнайменше 2 рази.
Висновки: Запропоновано препаративну методику визначення МІК гідрофобних біологічно-активних сполук з використанням оптимальної мінімальної кількості досліджуваної речовини, ДМСО, пробірок, насадок для мікропіпеток та поживного середовища.
Рис. 1. Визначення МІК сполуки №295 методом серійних розведень (2-254 mg/L) проти S. aureus, P. aeroginosa, E. coli
Рис. 2. Визначення МІК сполуки №295 методом серійних розведень (2-254 mg/L) проти K. aerogenesта C. albicans; КК - контроль культури, ККД - контроль культури з ДМСО проти усіх досліджуваних мікроорганізмів
інгібуючий гідрофобний сполука
Досліджувана сполука, 4 - (5-метил - 5,6 - дигідротетразоло [1,5 - с] хіназолін-5 - іл) бензойної кислота, дійсно проявила протимікробні властивості, механізм антибактеріальної дії якої може бути пов'язаний із попередньо розрахованою спорідненістю до рибосомального 50Sбілка L2P (PDBID: 2QEX) [10].
Подяка. Автори щиро вдячні Збройним силам України та Силам територіальної оборони Збройних сил України за проведення досліджень та підготовку цієї статті у безпечних умовах міста Запоріжжя, Україна.
Список використаних джерел
[1] «Про затвердження методичних вказівок «Визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів»» від 05.04.2007 року. (Наказ Міністерства охорони здоров'я України). №167 (2007). Вилучено з https://zakon.rada.gov.ua/rada/show/v0167282-07#Text.
[2] EUCAST. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Clinical breakpoints and dosing of antibiotics. (2022). Retrieved from https://eucast.org/clinical _breakpoints/.
[3] «Про внесення змін до додатка 4 до Методики розробки та впровадження медичних стандартів медичної допомоги на засадах доказової медицини» від 26.09.2018 року. (Наказ Міністерства охорони здоров'я України). №1752. (2018). Вилучено з: https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z1161-18#Text.
[4] «Про затвердження Національного плану дії щодо боротьби зі стійкістю до протимікробних препаратів» від 06.03.2019 року, (Розпорядження Кабінету Міністрів України). №116-с. (2019). Вилучено з: https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/ 116-2019-%D1% 80#Text.
[5] «Про внесення змін до Методичних вказівок з мікробіологічної діагностики менінгококової інфекції та бактеріальних менінгітів і визнання такими, що втратили чинність, деяких наказів Міністерства охорони здоров'я» від 03.11.2021 року. (Наказ Міністерства охорони здоров'я України). №2415. (2021). Вилучено із https://zakon. rada.gov.ua/rada/show/v2415282-21 #Text.
[6] Російське вторгнення в Україну. (2022). Вилучено з https://uk.wikipedia.org/wiki/%D0% A0% D0% BE % D1% 81% D1% 96% D0% B9% D1% 81% D1% 8C % D0% BA % D0% B5_%D 0% B2% D1% 82% D0% BE % D1% 80% D0% B3% D0% BD % D0% B5% D0% BD % D0% BD % D1% 8F_%D0% B2_%D0% A3% D0% BA % D1% 80% D0% B0% D1% 97% D0% BD % D1% 83_(2022).
[7] Жнива біля фронту: в яких умовах іде «битва за врожай» на Запоріжжі. (2022). Вилучено з https://www.radiosvoboda.org/amp/yak-pracuut-agrariy-zaporizhzhya/31937061.html.
[8] Kowalska-Krochmal, B., Dudek-Wicher, R. (2021). The minimum inhibitory concentration of antibiotics: methods, interpretation, clinical relevance. Pathogens, 10 (2), 165.
[9] EUCAST. MIC determination of non-fastidious and fastidious organisms. (2022). Retrieved from https://eucast.org/ast_of_bacteria/mic_determination/.
[10] Antypenko, O., Antypenko, L., Kalnysh, D., Kovalenko, S. (2022) Molecular docking of 5-phenyl - 5,6 - dihydrotetrazolo [1,5 - c] quinazolines to ribosomal 50S protein L2P (2QEX). Grail of Science, 12-13, 693-698.
[11] A EUCAST Definitive Document EDef 7.1: method for the determination of broth dilution MICs of antifungal agents for fermentative yeasts. (2008). Retrieved from https://www.clinicalmicrobiologyandinfection.com/article/S1198-743X(14) 62817 - 2/fulltext.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Особливості та основні способи іммобілізації. Характеристика носіїв іммобілізованих ферментів та клітин мікроорганізмів, сфери їх застосування. Принципи роботи ферментних і клітинних біосенсорів, їх використання для визначення концентрації різних сполук.
реферат [398,4 K], добавлен 02.10.2013Ознайомлення з результатами фітохімічного дослідження одного з перспективних видів рослин Українських Карпат - волошки карпатської. Розгляд залежності вмісту досліджуваних біологічно активних речовин від виду сировини. Аналіз вмісту фенольних сполук.
статья [23,3 K], добавлен 11.09.2017Оптимізація складу живильних середовищ для культивування продуцентів біологічно активних речовин, способи культивування. Мікробіологічний контроль ефективності методів стерилізації. Методи очищення кінцевих продуктів біотехнологічних виробництв.
методичка [1,9 M], добавлен 15.11.2011Механізми дії регуляторів росту рослин, їх роль в підвищенні продуктивності сільськогосподарських культур. Вплив біологічно-активних речовин на площу фотосинтетичної поверхні гречки, синтез хлорофілів в її листках, формування його чистої продуктивності.
реферат [19,0 K], добавлен 10.04.2011На основі вивчених еколого-біологічних властивостей рослин водних та прибережно-водних біоценозів проведення визначення стану їхніх ценозів русла річки Сіверський Донець. Визначення видів біоіндикаторів водного середовища, екологічні особливості видів.
курсовая работа [63,9 K], добавлен 07.05.2009Класичний приклад контактної регуляції. Біологічно активні хімічні речовини, за допомогою яких здійснюється передача електричного імпульсу від нервової клітини через синаптичний простір між нейронами. Характеристика молекулярних рецепторів і трансмітерів.
реферат [3,1 M], добавлен 06.09.2015Характеристика сутності наукової картини світу, ідеалів та норм наукового пізнання, ідеологічних підстав наук як головних компонент природознавства. Визначення проблем співвідношення теоретичних знань про закони природи та філософського світосприйняття.
реферат [25,7 K], добавлен 28.06.2010Сутність статевих хромосом. Типи визначення гомо- та гетерогаметної статі в генетиці. Успадкування ознак, зчеплених зі цими ознаками та якостями. Значення реципрокних схрещувань для їх визначення. Наслідування при нерозходженні статевих хромосом.
презентация [2,8 M], добавлен 04.10.2013Загальна характеристика поверхнево активних речовин, їх класифікація, молекулярна будова та добування. Вплив на мікроорганізми, організм людини та живі системи. Роль ендогенних поверхнево активних речовин в регуляції всмоктування поживних речовин.
реферат [177,3 K], добавлен 18.11.2014Біологічний метод як важлива і невід'ємна складова інтегрованого захисту в сучасних технологіях вирощування овочевих культур. Знайомство з технологією масового розведення макролофуса. Загальна характеристика тепличної білокрилки, розгляд особливостей.
курсовая работа [4,2 M], добавлен 29.03.2019