Використання білків теплового шоку HSP70 для індикації стану рослин природних фітоценозів: підходи та проблеми

Визначення стану рослин в умовах варіабельного зовнішнього середовища. Пошук універсальних біомаркерів, які б дозволяли визначати стан рослин. Оцінка фізіологічного стану рослини та впливу на нього екологічних факторів за вмістом HSP70 у листках.

Рубрика Биология и естествознание
Вид статья
Язык украинский
Дата добавления 22.07.2024
Размер файла 318,4 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

104. Zhang Y., Sun M., Zhang Q. 2014. Proteomic analysis of the heat stress response in leaves of two contrasting Chrysanthemum varieties. Plant Omics. 7: 229-236.

105. Zou J., Liu A., Chen X., Zhou X., Gao G., Wang W., Zhang X. 2009. Expression analysis of nine rice heat shock protein genes under abiotic stresses and ABA treatment. J. Plant Physiol. 166: 851-861.

106. Zupanska A.K., Denison F.C., Ferl R.J., Paul A.-L. Spaceflight engages heat shock protein and other molecular chaperone genes in tissue culture cells of Arabidopsis thaliana. Amer. J. Bot. 100 (1): 235-248.

References

1. Gamburg K.Z., Varakina N.N., Rusaleva T.M., Tauson E.L., Rikhvanov E.G., Borovskii G.B., Voinikov V.K. 2011. Comparison of the resistances of Arabidopsis (Arabidopsis thaliana) and

2. Thellungiella (Thellungiella salsuginea) suspension cultures to high temperatures. Dokl. Biol. Sci. 439 (3): 421-424.

3. Gudkova N.V., Kocakovskaya I.V., Kravets V.S., Major P.S. 2001. Effect of ionizing radiation on protein synthesis in etiolated winter wheat seedlings. Physiology and Biochemistry of Cultivated Plants. 33 (2): 121-126. (In Russian)

4. Kozeko L.Ye. 2017. Heat shock protein HSP70 and alcohol dehydrogenase synthesis in leaves of Arabidopsis thaliana and Sium sisaroideum in response to soil flooding. Visn. Hark. nac. agrar. univ., Ser. Biol. 3 (42): 46-51. (In Ukrainian)

5. Kozeko L.Ye. 2014. Changes in heat-shock protein synthesis and thermotolerance of Arabidopsis thaliana seedlings resulting from Hsp90 inhibition by geldanamycin. Cell Tissue Biology. 8 (5): 416422.

6. Kozeko L.Ye., Artemenko O.A., Zaslavsky V.A., Didukh G.Ya., Rahmetov D.B., Martynyuk G.M., Didukh Ya.P., Kordyum Ye.L. 2011. Evaluation of plant state under unfavorable changes of ecological factors using heat shock protein 70 kDa (hsp70). Ukr. Bot. J. 68 (6): 890-900. (In Ukrainian)

7. Kozeko L.Ye., Ovcharenko Yu.V. 2015. Dynamics of structural and functional Sium latifolium (Apiaceae) adaptation to root flooding. Ukr. Bot. J. 72 (2): 172179. (In Ukrainian)

8. Kozeko L.Ye., Rahmetov D.B. 2016. Variation in heat shock proteins HSP70 synthesis dynamics in Malva silvestris and M. pulchella (Malvaceae) in connection with tolerance to high temperature, flooding and drought. Ukr. Bot. J. 73 (2): 194-203. (In Ukrainian)

9. Kordyum Ye.L., Didukh Ya.P., Kozeko L.Ye., Artemenko O.A., Zaslavsky V.A., Didukh A.Ya. 2011. Development and introduction of the technique for assessment of plant condition in adverse environment. Science and Innovation. 7 (5): 73-78. (In Ukrainian)

10. Kordyum Ye.L., Sytnik K.M., BaranenkoV.V., Belyavskaya N.A., Klymchuk D.A., Nedukha E.M. Cellular mechanisms of plant adaptation to adverse effects of ecological factors upon natural conditions. Kiev: 277 p. (In Russian)

11. Lysenko V.S., Varduni T.V., Soier V.G., Krasnov V.P. 2013. Plant chlorophyll fluorescence as an environmental stress characteristic: a theoretical basis of the method application. Fundamental research. 4 (1): 112-120. (In Russian)

12. Patent for Utility Model No. 65170. Kozeko L.Ye., Kordyum Ye.L., Didukh Ya.P., Artemenko O.A., Didukh A.Ya., Zaslavsky V.A. Method for determining the plant state of natural ecocenoses and introduced plants. 25.11.2011, Bul. No. 22.

13. Ananthan J., Goldberg A.L., Voellmy R. 1986. Abnormal proteins serve as eukaryotic stress signals and trigger the activation of heat shock genes. Science. 232 (4749): 522-524.

14. Aparicio F., Thomas C.L., Lederer C., Niu Y., Wang D., Maule A.J. 2005. Virus induction of heat shock protein 70 reflects a general response to protein accumulation in the plant cytosol. Plant Physiol. 138 (1): 529-36.

15. Banti V., Loreti E., Novi G., Santaniello A., Alpi A., Perata P. 2008. Heat acclimation and cross-tolerance against anoxia in Arabidopsis. Plant Cell Environ. 31 (7): 1029-1037.

16. Bedulina D.S., Evgen'ev M.B., Timofeyev M.A., Protopopova M.V., Garbuz D.G., Pavlichenko V.V., Luckenbach T., Shatilina Z.M., Axenov-

17. Gribanov D.V., Gurkov A.N., Sokolova I.M., Zatsepina O.G. 2013. Expression patterns and organization of the hsp70 genes correlate with thermotolerance in two congener endemic amphipod species (Eulimnogammarus cyaneus and E. verrucosus) from Lake Baikal. Mol. Ecol. 22: 1416-1430.

18. Bowen J., Lay-Yee M., Plummer K., Ferguson I. 2002. The heat shock response is involved in thermotolerance in suspension-cultured apple fruit cells. J. Plant Physiol. 159: 599-606.

19. Bray E.A. 2002. Classification of genes differentially expressed during water-deficit stress in Arabidopsis thaliana: an analysis using microarray and differential expression data. Ann. Bot. 89: 803-811.

20. Byth H.A., Kuun K.G., Bornman L. 2001. Virulencedependent induction of Hsp70/Hsc70 in tomato by Ralstonia solanacearum. Plant Physiol. Biochem. 39 (7-8): 697-705.

21. Chankova S., Yurina N. 2016. Chloroplasts heat shock protein 70B as marker of oxidative stress. In: Heat Shock Proteins and Plants. Springer, pp. 169-188.

22. Chaudhary R., Baranwal V.K., Kumar R., Sircar D., Chauhan H. 2019. Genome-wide identification and expression analysis of Hsp70, Hsp90, and Hsp100 heat shock protein genes in barley under stress conditions and reproductive development. Funct. Integr. Genomics. 19: 1007-1022.

23. Chen Y., Chen X., Wang H., Bao Y., Zhang W. 2014. Examination of the leaf proteome during flooding stress and the induction of programmed cell death in maize. Proteome Sci. 12: 33.

24. Chen J., Gao T., Wan S., Zhang Y., Yang J., Yu Y., Wang W. 2018. Genome-wide identification, classification and expression analysis of the HSP gene superfamily in tea plant (Camellia sinensis). Int. J. Mol. Sci. 19: 2633.

25. Chen Z., Zhou T., Wu X., Hong Y., Fan Z., Li H. 2008. Influence of cytoplasmic heat shock protein 70 on viral infection of Nicotiana benthamiana. Mol. Plant Pathol. 9: 809-817.

26. Cong W., Miao Y., Xu L., Zhang Y., Yuan C., Wang J., Zhuang T., Lin X., Jiang L., Wang N., Ma J., Sanguinet K.A., Liu B., Rustgi S., Ou X. 2019. Transgenerational memory of gene expression changes induced by heavy metal stress in rice (Oryza sativa L.). BMC Plant Biol. 19: 282.

27. Crisp P.A., Ganguly D.R., Smith A.B., Murray K.D., Estavillo G.M., Searle I., Ford E., Bogdanovic O., Lister R., Borevitz J.O., Eichten S.R., Pogson B.J. Rapid recovery gene downregulation during excess-light stress and recovery in Arabidopsis. Plant Cell. 29 (8): 1836-1863.

28. Cuk K., Gogala M., Tkalec M., Vidakovic-Cifrek Z. Transgenerational stress memory in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh.: antioxidative enzymes and HSP70. Acta Bot. Croat. 69 (2): 183-197.

29. DeRocher A., Vierling E. 1995. Cytoplasmic HSP70 homologues of pea: differential expression in vegetative and embryonic organs. Plant Mol. Biol. 27: 441-456.

30. Evgen'ev M.B., Garbuz D.G., Shilova V.Y., Zatsepina O.G. 2007. Molecular mechanisms underlying thermal adaptation of xeric animals. J. Biosci. 32: 489-499.

31. Feder M.E., Hofmann G.E. 1999. Heat-shock proteins, molecular chaperones, and the stress response: evolutionary and ecological physiology. Annu. Rev. Physiol. 61: 243-282.

32. Fietto L.G., Costa M.D.L., Cruz C.D., Souza A.A., Machado M.A., Fontes E.P.B. 2007. Identification and in silico analysis of the Citrus HSP70 molecular chaperone gene family. Genet. Mol. Biol. 30 (3, Suppl.): 881-887.

33. Gao F., Zhou Y., Zhu W., Li X., Fan L., Zhang G. 2009. Proteomic analysis of cold stress-responsive proteins in Thellungiella rosette leaves. Planta. 230: 10331046.

34. George K.J., Malik N., Vijesh Kumar I.P., Krishnamurthy K.S. 2017. Gene expression analysis in drought tolerant and susceptible black pepper (Piper nigrum L.) in response to water deficit stress. Acta Physiol. Plant. 39 (4): 104.

35. Guy C.L., Li Q.B. 1998. The organization and evolution of the spinach stress 70 molecular chaperone gene family. Plant Cell. 10: 539-556.

36. Hlavackova I., Vitamvas P., Santrucek J., Kosova K., Zelenkova S., Prasil I.T., Ovesna J., Hynek R., Kodicek M. 2013. Proteins involved in distinct phases of cold hardening process in frost resistant winter barley (Hordeum vulgare L.) cv Luxor. Int. J. Mol. Sci. 14 (4): 8000-8024.

37. Hu W., Hu G., Han B. 2009. Genome-wide survey and expression profiling of heat shock proteins and heat shock factors revealed overlapped and stress specific response under abiotic stresses in rice. Plant Sci. 176 (4): 583-590.

38. Hu X., Liu R., Li Y., Wang W., Tai F., Xue R., Li C. 2010. Heat shock protein 70 regulates the abscisic acid-induced antioxidant response of maize to combined drought and heat stress. Plant Growth Regul. 60 (3): 225-235.

39. Hwang J.E., Hwang S.G., Kim S.H., Lee K.J., Jang C.S., Kim J.B., Kim S.H., Ha B.K., Ahn J.W., Kang S.Y., Kim D.S. 2014. Transcriptome profiling in response to different types of ionizing radiation and identification of multiple radio marker genes in rice. Physiol. Plant. 150 (4): 604-619.

40. Ireland H.E., Harding S.J., Bonwick G.A., Jones M., Smith C.J., Williams J.H.H. 2004. Evaluation of heat shock protein 70 as a biomarker of environmental stress in Fucus serratus and Lemna minor. Biomarkers. 9 (2): 139-155.

41. Jia D., Zhang B., Zhang P.P., Zhang J.Y., Liu Y.H., Wang J.S., Ma R.Y. 2015. Identification of differentially expressed genes in Alternanthera philoxerides under drought stress using suppression subtractive hybridization. Russ. J. Plant Physiol. 62 (1): 93-100.

42. Jiang L., Hu W., Qian Y., Ren Q., Zhang J. 2021. Genome-wide identification, classification and expression analysis of the Hsf and Hsp70 gene families in maize. Gene. 770: 145348.

43. Jiang S., Lu Y., Li K., Lin L., Zheng H., Yan F., Chen J. Heat shock protein 70 is necessary for rice stripe virus infection in plants. Mol. Plant Pathol. 15: 907-917.

44. Jouili H., Bouazizi H., El Ferjani E. 2011. Plant peroxidases: biomarkers of metallic stress. Acta Physiol. Plant. 33: 2075.

45. Komatsu S., Makino T., Yasue H. 2013. Proteomic and biochemical analyses of the cotyledon and root of flooding-stressed soybean plants. PLoS ONE. 8 (6): e65301.

46. Kordyum E.L., Dubyna D.V. 2019. Phenotypic plasticity in plant adaptation and coexistence. Int. J. Adv. Res. Bot. 5 (3): 8-13.

47. Kosova K., Vitamvas P., Planchon S., Renaut J., Vankova R., Prasil I.T. 2013. Proteome analysis of cold response in spring and winter wheat (Triticum aestivum) crowns reveals similarities in stress adaptation and diferences in regulatory processes between the growth habits. J. Proteome Res. 12: 4830-4845.

48. Kozeko L. 2021. Different roles of inducible and constitutive HSP70 and HSP90 in tolerance of Arabidopsis thaliana to high temperature and water deficit. Acta Physiol. Plant. 43: 58.

49. Kozeko L., Kordyum E. 2009. Effect of hypergravity on the level of heat shock proteins 70 and 90 in pea seedlings. Microgravity Sci. Technology. 21 (1): 175-178.

50. Kozeko L., Talalaiev O., Neimash V., Povarchuk V. A protective role of HSP90 chaperone in gamma-irradiated Arabidopsis thaliana seeds. Life Sci. Space Res. 6: 51-58.

51. Kovalchuk I., Kovalchuk O. 2008. Transgenic plants as sensors of environmental pollution genotoxicity. Sensors. 8: 1539-1558.

52. Kubienova L., Sedlarova M., Wunschova A., Piterkova J., Luhova L., Mieslerova B., Lebeda A., Navratil M., Petrivalsky M. 2013. Effect of extreme temperatures on powdery mildew development and Hsp70 induction in tomato and wild Solanum spp. Plant Protect. Sci. 49: 41-54.

53. Lamech L.T., Haynes C.M. 2015. The unpredictability of prolonged activation of stress response pathways. J. Cell Biol. 209 (6): 781-787.

54. Landi S., Capasso G., Ben Azaiez F.E., Jallouli S., Ayadi S., Trifa Y., Esposito S. 2019. Different roles of heat shock proteins (70 kDa) during abiotic stresses in barley (Hordeum vulgare) genotypes. Plants. 8: 248.

55. Leng L., Liang Q., Jiang J., Zhang C., Hao Y., Wang X., Su W. 2017. A subclass of HSP70s regulate development and abiotic stress responses in Arabidopsis thaliana. J. Plant Res. 130: 349-363.

56. Li Q.B., Guy C.L. 2001. Evidence for non-circadian light/dark-regulated expression of Hsp70s in spinach leaves. Plant Physiol. 125: 1633-1642.

57. Li Q.B., Haskell D.W., Guy C.L. 1999. Coordinate and noncoordinate expression of the stress 70 family and other molecular chaperones at high and low temperature in spinach and tomato. Plant Mol. Boil. 39: 21-34.

58. Li Z., Long R., Zhang T., Wang Z., Zhang F., Yang Q., Kang J., Sun Y. 2017. Molecular cloning and functional analysis of the drought tolerance gene MsHSP70 from alfalfa (Medicago sativa L.). J. Plant Res. 130: 387-396.

59. Lichtenthaler H.K. 1998. The stress concept in plants: an introduction. In: Stress of life from molecules to man. Ann. N. Y. Acad. Sci. 851: 187-198.

60. Lin B., Wang J., Liu H., Chen R., Meyer Y., Barakat A., Delseny M. 2001. Genomic analysis of the Hsp70 superfamily in Arabidopsis thaliana. Cell Stress & Chaperones. 6 (3): 201-208.

61. Lin S., Wu T., Li M., Huang X., Zhang Y., Han L., Wu B., Chen Y., Lin S., Lin D., Wu M., Wu J. 2019. Cloning, in silico characterization, subcellular localization, and expression of a heat shock cognate 70 kDa protein/gene (EjHsc70-2) from Eriobotrya japonica. Acta Physiol. Plant. 41: 119.

62. Liu J., Pang X., Cheng Y., Yin Y., Zhang Q., Su W., Hu B., Guo Q., Ha S., Zhang J., Wan H. 2018. The Hsp70 gene family in Solanum tuberosum: genomewide identification, phylogeny, and expression patterns. Sci. Rep. 8: 16628.

63. Liu G.T., Wang J.F., Cramer G., Dai Z.W., Duan W., Xu H.G., Wu B.H., Fan P.G., Wang L.J., Li S.H. Transcriptomic analysis of grape (Vitis vinifera L.) leaves during and after recovery from heat stress. BMC Plant Biol. 12: 174.

64. Ma N.L., Rahmat Z., Lam S.S. 2013. A review of the “Omics” approach to biomarkers of oxidative stress in Oryza sativa. Int. J. Mol. Sci. 14: 7515-7541.

65. Majoul T., Bancel E., Triboi E., Hamida J.B., Branland G. 2004. Proteomic analysis of the effect of heat stress on hexaploid wheat grain: characterization of heat-responsive proteins from non-prolamins fractions. Proteomics. 4: 505-513.

66. Makoto H., Setsuko K. 2007. Proteomic analysis of rice seedlings during cold stress. Proteomics. 7: 12931302.

67. Manaa A., Ben Ahmed H., Valot B., Bouchet J.P., Aschi-Smiti S., Causse M., Faurobert M. 2011. Salt and genotype impact on plant physiology and root proteome variations in tomato. J. Exp. Bot. 62: 2797-2813.

68. Mayer M.P., Bukau B. 2005. Hsp70 chaperones: cellular functions and molecular mechanism. Cell. Mol. Life Sci. 62: 670-684.

69. Nam M.H., Heo E.J., Kim J.Y., Kim S.I., Kwon K.H., Seo J.B. Kwon O., Jong S.Y., Park Y.M. 2003. Proteome analysis of the responses of Panax ginseng C.A. Meyer leaves to high light: use of electrospray ionization quadrupole-time of flight mass spectrometry and expressed sequence tag data. Proteomics. 3 (12): 2351-2367.

70. Niederbacher B., Winkler J.B., Schnitzler J.P. 2015. Volatile organic compounds as non-invasive markers for plant phenotyping. J. Exp. Bot. 66 (18): 5403-16.

71. Noel L.D., Cagna G., Stuttmann J., Wirthmuller L., Betsuyaku S., Witte C.-P., Bhat R., Pochon N., Colby T., Parker J.E. 2007. Interaction between SGT1 and cytosolic/nuclear HSC70 chaperones regulates Arabidopsis immune responses. Plant Cell. 19: 4061-4076.

72. Nordhues A., Schottler M.A., Unger A.K., Geimer S., Schonfelder S., Schmollinger S., Rutgers M., Finazzi G., Soppa B., Sommer F., Muhlhaus T., Roach T., Krieger-Liszkay A., Lokstein H., Crespo J.L.,

73. Schroda M. 2012. Evidence for a role of VIPP1 in the structural organization of the photosynthetic apparatus in Chlamydomonas. Plant Cell. 24 (2): 63759.

74. Pan X., Zhu B., Luo Y., Fu D. 2013. Unraveling the protein network of tomato fruit in response to necrotrophic phytopathogenic rhizopus nigricans. PLoS ONE. 8: e73034.

75. Paul A.L., Zupanska A.K., Ostrow D.T., Zhang Y., Sun Y., Li J.L., Shanker S., Farmerie W.G., Amalfitano C.E., Ferl R.J. 2012. Spaceflight transcriptomes: unique responses to a novel environment. Astrobiology. 12: 40-56.

76. Renaut J., Lutts S., Hofmann L., Hausman J. 2004. Responses of poplar to chilling temperatures: proteomic and physiological aspects. Plant Biol. 6: 81-90.

77. Rizhsky L., Liang H., Shuman J., Shulaev V., Davletova S., Mittler R. 2004. When defense pathways collide. The response of Arabidopsis to a combination of drought and heat stress. Plant Physiol. 134: 16831696.

78. Rodriguez-Serrano M., Romero-Puertas M.C., Pazmino D.M., Testillano P.S., Risueno M.C., Del Rio L.A., Sandalio L.M. 2009. Cellular response of pea plants to cadmium toxicity: cross talk between reactive oxygen species, nitric oxide, and calcium. Plant Physiol. 150 (1):229-43.

79. San C., Sun-Hee K., Sung Oh I., Won-Joong J., Mi Sook H., Eun-Jeong P., Dong-Woog C. 2015. The heat shock protein 70a from 'Pyropia seriata' increases heat tolerance in 'Chlamydomonas'. Plant Omics. 8 (4): 327-334.

80. Sarkar N.K., Kundnani P., Grover A. 2013. Functional analysis of Hsp70 superfamily proteins of rice (Oryza sativa). Cell stress chaperones. 18 (4): 427-37.

81. Scarpeci T.E., Zanor M.I., Carrillo N., Mueller Roeber B., Valle E.M. 2008. Generation of superoxide anion in chloroplasts of Arabidopsis thaliana during active photosynthesis: A focus on rapidly induced genes. Plant Mol. Biol. 66: 361-78.

82. Scharf K.D., Berberich T., Ebersberger I., Nover L. 2012. The plant heat stress transcription factor (Hsf) family: Structure, function and evolution.

83. Biochimica et Biophisica Acta. 1819: 104-119.

84. Sershen, Varghese B., Naidoo C., Pammenter N.W. The use of plant stress biomarkers in assessing the effects of desiccation in zygotic embryos from recalcitrant seeds: challenges and considerations. Plant Biol. J. 18 (3): 433-444.

85. Shatilina Z.M., Riss H.W., Protopopova M.V., Trippe M., Meyer E.I., Pavlichenko V.V., Bedulina D.S., Axenov-Gribanov D.V., Timofeyev M.A. The role of the heat shock proteins (HSP70 and sHSP) for the thermotolerance of freshwater amphipods from contrasting habitats. J. Therm. Biol. 36: 142-149.

86. ShuiFeng Y.E., ShunWu Y.U., LieBo S.H.U., JinHong W.U., AiZhong W.U., LiJun L.U.O. 2012. Expression profile analysis of 9 heat shock protein genes throughout the life cycle and under abiotic stress in rice. Chinese Sci. Bull. 57 (4): 336-343.

87. Song G., Yuan S., Wen X., Xie Z., Lou L., Hu B., Cai Q., Xu B. 2018. Transcriptome analysis of Cdtreated switchgrass root revealed novel transcripts and the importance of HSF / HSP network in switchgrass Cd tolerance. Plant Cell Rep. 37: 14851497.

88. Sorensen J.G. 2010. Application of heat shock protein expression for detecting natural adaptation and exposure to stress in natural populations. Curr. Zool. 56 (6): 703-713.

89. Sorensen J.G., Kristensen T.N., Loeschcke V. 2003. The evolutionary and ecological role of heat shock proteins. Ecol. Lett. 6: 1025-1037.

90. Stirbet A., Lazar D., Kromdijk J., Govindjee. 2018. Chlorophyll a fluorescence induction: Can just a one-second measurement be used to quantify abiotic stress responses? Photosynthetica. 56: 86-104.

91. Sung D.Y., Guy C.L. 2003. Physiological and molecular assessment of altered expression of Hsc70-1 in Arabidopsis. Evidence for pleiotropic consequences. Plant Physiol. 132 (2): 979-987.

92. Sung D.Y., Vierling E., Guy C.L. 2001. Comprehensive expression profile analysis of the Arabidopsis Hsp70 gene family. Plant Physiol. 126: 789-800.

93. Swindell W.R., Huebner M., Weber A.P. 2007. Transcriptional profiling of Arabidopsis heat shock proteins and transcription factors reveals extensive overlap between heat and non-heat stress response pathways. BMC Genomics. 8: 125.

94. Taylor N.L., Heazlewood J.L., Day D.A., Millar A.H. 2005. Differential impact of environmental stresses on the pea mitochondrial proteome. Mol. Cell. Proteom. 4: 1122-1133.

95. Tomanek L., Somero G.N. 2000. Time course and magnitude of synthesis of heat-shock proteins in congeneric marine snails (genus Tegula) from different tidal heights. Physiol. Biochem. Zool. 73 (2): 249256.

96. Tang R., Gupta S.K., Niu S. Li X.Q., Yang Q., Chen G., Zhu W., Haroon M. 2020. Transcriptome analysis of heat stress response genes in potato leaves. Mol. Biol. Rep. 47: 4311-4321.

97. Tang T., Yu A., Li P., Yang H., Liu G., Liu L. 2016. Sequence analysis of the Hsp70 family in moss and evaluation of their functions in abiotic stress responses. Sci Rep. 6: 33650.

98. Wang X.Q., Yang P.F., Liu Z., Liu W.Z., Hu Y., Chen H., Kuang T.Y., Pei Z.M., Shen H.S., He Y.K. 2009. Exploring the mechanism of Physcomitrella patens desiccation tolerance through a proteomic strategy. Plant Physiol. 149: 1739-1750.

99. Whitham S.A., Quan S., Chang H., Cooper B., Estes B., Zhu T., Wang X., Hou Y. 2003. Diverse RNA viruses elicit the expression of common sets of genes in susceptible Arabidopsis thaliana plants. Plant J. 33: 271-283.

100. Wong C.E., Li Y., Whitty B.R., Diaz-Camino C., Akhter S.R., Brandle J.E., Golding G.B., Weretilnyk A., Moffatt B.A., Griffith M. 2005. Expressed sequence tags from the Yukon ecotype of Thellungiella reveal that gene expression in response to cold, drought and salinity shows little overlap. Plant Mol. Biol. 58: 561-574.

101. Ye T., Shi H., Wang Y., Chan Z. 2015. Contrasting changes caused by drought and submergence stresses in bermudagrass (Cynodon dactylon). Front. Plant Sci. 6: 951.

102. Yer E.N., Baloglu M.C., Ziplar U.T., Ayan S., Unver T. 2015. Drought-responsive Hsp70 gene analysis in Populus at genome-wide level. Plant Mol. Biol. Rep. 34: 483-500.

103. Young L.W., Wilen R.W., Bonham-Smith P.C. 2004. High temperature stress of Brassica napus during flowering reduces microand megagametophyte fertility, induces fruit abortion, and disrupts seed production. J. Exp. Bot. 55 (396): 485-495.

104. Zhang Y., Sun M., Zhang Q. 2014. Proteomic analysis of the heat stress response in leaves of two contrasting Chrysanthemum varieties. Plant Omics. 7: 229-236.

105. Zou J., Liu A., Chen X., Zhou X., Gao G., Wang W., Zhang X. 2009. Expression analysis of nine rice heat shock protein genes under abiotic stresses and ABA treatment. J. Plant Physiol. 166: 851-861.

106. Zupanska A.K., Denison F.C., Ferl R.J., Paul A.-L. Spaceflight engages heat shock protein and other molecular chaperone genes in tissue culture cells of Arabidopsis thaliana. Amer. J. Bot. 100 (1): 235-248.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Шляхи розповсюдження вірусів рослин в природі та роль факторів навколишнього середовища. Кількісна характеристика вірусів рослин. Віруси, що ушкоджують широке коло рослин, боротьба із вірусними хворобами рослин. Дія бактеріальних препаратів і біогумату.

    курсовая работа [584,5 K], добавлен 21.09.2010

  • Дослідження значення та естетичної цінності декоративних рослин в штучному озелененні міста. Агротехніка та методика створення квітників. Класифікація рослин за температурними показниками. Таксономічний склад клумбових фітоценозів Дзержинського району.

    курсовая работа [769,0 K], добавлен 01.03.2016

  • Аналіз екологічних особливостей ампельних рослин та можливостей використання їх у кімнатному дизайні. Характеристика основних видів ампельних рослин: родина страстоцвітні, аралієві, спаржеві, ароїдні, комелінові, акантові, ластовневі, лілійні, геснерієві.

    курсовая работа [1,4 M], добавлен 21.09.2010

  • На основі вивчених еколого-біологічних властивостей рослин водних та прибережно-водних біоценозів проведення визначення стану їхніх ценозів русла річки Сіверський Донець. Визначення видів біоіндикаторів водного середовища, екологічні особливості видів.

    курсовая работа [63,9 K], добавлен 07.05.2009

  • Аналіз особливостей використання і вирощування субтропічних та тропічних плодових рослин в кімнатних умовах. Характеристика видового різноманіття таких рослин, методів вирощування і догляду за ними. Відмінні риси родини Рутових, Бромелієвих, Гранатових.

    курсовая работа [57,0 K], добавлен 21.09.2010

  • Характер зміни вмісту нітратів у фотоперіодичному циклі у листках довгоденних і короткоденних рослин за сприятливих фотоперіодичних умов. Фотохімічна активність хлоропластів, вміст никотинамидадениндинуклеотидфосфату у рослин різних фотоперіодичних груп.

    автореферат [47,7 K], добавлен 11.04.2009

  • Історія еволюційного розвитку та систематика Голонасінних. Особливості анатомічної будови хвойних рослин України. Морфологічна будова представників хвойних. Дослідження впливу різних екологічних факторів на анатомічну та морфологічну будову хвойних.

    курсовая работа [11,5 M], добавлен 04.06.2014

  • Характеристика шкідників і збудників захворювань рослин та їх біології. Дослідження основних факторів патогенності та стійкості. Аналіз взаємозв’язку організмів у біоценозі. Природна регуляція чисельності шкідливих організмів. Вивчення хвороб рослин.

    реферат [19,4 K], добавлен 25.10.2013

  • Зміст та головні етапи процесу формування ґрунту, визначення факторів, що на нього впливають. Зелені рослини як основне джерело органічних речовин, показники їх біологічної продуктивності. Вплив кореневої системи на структуроутворення ґрунтової маси.

    реферат [20,8 K], добавлен 11.05.2014

  • Аналіз сучасного стану епідеміології вірусів вищих рослин. Основні терміни та методи оцінки хвороб рослин. Загальна характеристика та особливості мозаїчного вірусу. Шляхи розповсюдження та заходи боротьби з вірусом зморшкуватої мозаїки квасолі в природі.

    курсовая работа [385,2 K], добавлен 21.09.2010

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.