Сучасний стан вивчення днк-поліморфізму генів міостатину та інсуліну у курей

Новітні види селекції. Особливості реалізації генетичного матеріалу тварин. Аналіз сучасного стану вивчення ДНК-поліморфізму генів міостатину та інсуліну курей, які є перспективними генами-кандидатами для використання у маркер-асоційованій селекції (MAS).

Рубрика Биология и естествознание
Вид статья
Язык украинский
Дата добавления 25.02.2020
Размер файла 29,1 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Сучасний стан вивчення днк-поліморфізму генів міостатину та інсуліну у курей

Шуліка Л.В., м. н. с. 5

Інститут тваринництва НААН

Стаття присвячена аналізу сучасного стану вивчення ДНК-поліморфізму генів міостатину та інсуліну курей, які є перспективними генами-кандидатами для використання у маркер-асоційованій селекції (MAS) з метою покращення продуктивних якостей птиці, насамперед м 'ясної продуктивності. Дослідження поліморфізму локусів кількісних ознак та генів-кандидатів з допомогою різних типів ДНК-маркерів є доцільним, оскільки у теперішній час ефективна селекційно- племінна робота потребує застосування сучасних молекулярно-генетичних підходів.

Аналіз відомостей, що містяться у генетичних базах даних, показав високий рівень поліморфізму для обох генів. Зокрема, у гені міостатину курей на сьогодні виявлено 193 поліморфізми, у гені інсуліну - 336. Частина SNP в межах обох локусів характеризуються асоціаціями з різними показниками м'ясної продуктивності курей, що робить їх перспективними для застосування у MAS з метою покращення м'ясних якостей курей. Стосовно мутацій в локусі міостатину слід відмітити c.234G>A, rs313744840, G2283A, G2100A, G2109A, G2244C, що асоційовані з живою масою курей у тому чи іншому віці. Для поліморфізмів G2100A і G2109A також показано вплив генотипу на деякі забійні якості тушки курей, наприклад, масу абдомінального жиру або грудних м'язів. Деякі дослідження також показують вплив окремих гаплотипів за рядом мутацій локусу MSTN на продуктивні ознаки птиці. В межах локусу інсуліну найбільш перспективними для досліджень є мутації C+1549T, T+3737C і A+3971G, які пов'язані як з живою масою курей, так і з низкою інших показників продуктивності.

В цілому, на даний момент відсутні глибокі і систематизовані дані щодо особливостей генетичної структури за вже відомими поліморфізмами у генах MSTN та INS, їх впливу на продуктивні якості в межах більшості порід курей, як найбільш розповсюджених, так і локальних. Таким чином, для вирішення як фундаментальних питань генетики птиці, так і практичних завдань селекції потрібне подальше вивчення та оцінка генетичних ресурсів різних порід курей за поліморфізмом генів міостатину та інсуліну.

Ключові слова: ген інсуліну, ген міостатину, поліморфізм, ДНК- маркери, кури.

ген інсулін кури маркер

У теперішній час ефективна селекційно-племінна робота у птахівництві повинна базуватися на сучасних науково-методичних підходах, що включають у себе широке застосування молекулярно-генетичних та статистичних методів. Саме такі підходи здатні врешті решт забезпечити більш глибоке розуміння генетичних процесів у штучних популяціях, а також природи формування тих чи інших господарсько-корисних ознак птиці, аж до контроля їх прояву на бажаному рівні.

Накопичення знань про особливості організації та реалізації генетичного матеріалу тварин дозволило у світовій практиці розробити та реалізувати такі новітні види селекції як селекція за генотипом (GAS), маркер-асоційована селекція (MAS) та геномна селекція (GS) [1]. Основою будь-якого із зазначених різновидів є відомості щодо поліморфізму ДНК свійських тварин, який зазвичай виявляють та аналізують з допомогою широкого спектра ДНК-маркерів (SSR, ISSR, RAPD, RFLP, PCR-RFLP, SSCP, SCAR, SNP, Indel etc) [2].

ДНК-маркери можна розподілити на два принципово різні типи: анонімні маркери та маркери з відомою локалізацією [3]. До перших відносяться RFLP, ISSR і RAPD, до останніх - PCR-RFLP, SCAR і SSR. Такі різновиди ДНК- маркерів як SNP та Indel розрізняють в залежності від типу мутації, що лежить в основі маркера - це або точкова мутація (SNP, Single Nucleotide Polymorphism), або вставка/випадіння однієї чи декількох пар нуклеотидів у ланцюзі ДНК (Indel, Insertion/Deletion).

SNP розташовані у геномі тварин із високою частотою, що і робить їх дуже привабливими для використання з метою виявлення і аналізу ДНК- поліморфізму [4]. SNP можна вивчати за допомогою як анонімних, так і маркерів з відомою локалізацією [5]. Перший підхід використовується у геномній селекції, його використання потребує спеціальних ДНК-чипів чи мікропанелей, що дозволяють охопити практично весь геном, дорогого обладнання для процесу детекції, а також наявності референсних популяцій тварин для коректного аналізу [6].

Другий підхід застосовується у GAS і MAS. Він базується на вивченні поліморфізму локусів кількісних ознак (QTL) або генів-кандидатів. QTL - це ділянки хромосом, в межах яких є поліморфізми, для яких відомо про зв'язок з проявом господарсько-корисних ознак. Гени-кандидати - це конкретні гени, що пов'язані з проявом тієї чи іншої господарсько-корисної ознаки; зазвичай розташовуються у межах QTL [7]. У будь-якому випадку їх локалізація відома, що дозволяє вивчати одні й ті ж поліморфізми у різних породах та лініях тварин і птиці, а також аналізувати природу зв'язку між поліморфізмом та рівнем прояву тієї чи іншої ознаки. Таким чином, вивчення поліморфізму генів-кандидатів є необхідним етапом на шляху до ефективного використання та управління генетичними ресурсами сільськогосподарських тварин і птиці.

На сьогодні відома велика кількість генів-кандидатів, що пов'язані з проявом ознак м'ясної та яєчної продуктивності у птиці, зокрема у курей. Серед них ген гормону росту та рецептору гормону росту, ген інсуліноподібного ростового фактору I, ген пролактину та ген рецептору пролактину, гени родини трансфор- муючих ростових факторів, ген міостатину, ген інсуліну тощо. Серед вищезгаданих генів особливу цікавість представляють ген міостатину (MSTN), оскільки він є прямим негативним регулятором росту м'язової тканини у хребетних тварин [8], а також ген інсуліну (INS), що приймає участь у регуляції обміну вуглеводів у тварин [9].

Виходячи з цього, метою досліджень було проаналізувати сучасний стан вивчення ДНК-поліморфізму генів міостатину та інсуліну у курей, а також їх зв'язків із господарсько-корисними ознаками птиці, провести узагальнення відомостей, що містяться у літературних джерелах та базах даних за обраними генами.

Матеріали та методи досліджень. Матеріалом досліджень слугували зарубіжні та вітчизняні літературні джерела; відомості з генетичних баз даних: NCBI GenBank і SNP (www.ncbi.nlm.nih.gov), Ensembl (www.ensembl.org), Chicken QTL Database (www.animalgenome.org/cgi-bin/QTLdb/GG/index); результати власних досліджень.

Результати досліджень. Поліморфізм гену міостатину. Ген міостатину курей має дві назви: GDF-8 (Growth and Differentiation Factor 8) та MSTN (myostatin). Ген локалізований на хромосомі 7, на відстані приблизно 218223 кілобаз від 5'-кінця кодуючої нитки ДНК, складається з трьох екзонів та двох інтронів. Кодує білковий продукт - регуляторний фактор міостатин, що експресу- ється головним чином у м'язовій тканині.

За даними NCBI, у межах локусу міостатину курей на даний час виявлено 193 поліморфізми, більша частина яких представляє собою однонуклеотидні заміни - транзиції або трансверсії. Велика кількість поліморфізмів описана у літературних джерелах (таблиця 1), переважна більшість з них була виявлена дослідниками за допомогою методів SSCP, PCR-RFLP, секвенування або з використанням комбінації даних методів.

Таблиця 1. Однонуклеотидні поліморфізми, локалізовані в гені міостатину курей (за літературними джерелами)

SNP

Джерело

SNP

Джерело

C1204T

[10]

G2100A

[15]

T3360C

G2109A

A3412G

G2244C

A3533G

A2283G

A3624T

C2346T

A3656G

C2373T

T3556C

A2416G

T3581A

A4405C/T

G304A

[11]

T4842G

A322G

A4954G

C334T

C7434G

G167A

A7435G

A7263T

C7436A

G234A

[12]

A154C

[16]

G2283A

[13]

C195G

C7552T

A234G

C7638T

T324C

T7661A

C477T

G976A

[14]

A478T

A1166G

G908A

A1196C

G998A

C1242T

G1006C

G1253T

G1069A

G1601A

G1120T

G1784A

C334G

[17]

C1874T

T382C

G3529A

G2100A

[18]

T5774C

G2109A

Примітка. Поліморфізми, позначені напівжирним курсивом, вивчались у різних роботах

У роботі Bharani Kumar et al. (2007) на основі даних про поліморфізм гену міостатину було досліджено філогенетичні зв'язки між 10 локальними породами курей Індії; всього авторами було виявлено 10 SNP, локалізованих в області промотора, екзона 1, інтронів 1 і 2.

Для деяких поліморфізмів показано наявність зв'язків з продуктивними якостями курей, а саме, з показниками м'ясної продуктивності. Зокрема, Gu Zhiliang et al. (2004) було виявлено 5 поліморфізмів у області 5UTR, для яких показано зв'язок з масою і відсотковим співвідношенням грудних м'язів та абдомінального жиру у курей. Zhang et al. (2012) виявили мутацію у першому екзоні c.234G>A, що була пов'язана з живою масою у курей локальної китайської породи Bian у віці від 6 до 18 тижнів життя. Bhattacharaya et al. (2013) було показано наявність 11 SNP у 1, 2 і 3 екзонах гену у курей ліній яєчного та м'ясного напрямків (бройлери), а також виявлено зв'язок гаплотипів за даними мутаціями з живою масою птиці. Mitrofanova et al. (2017) показали, що мутація rs313744840 у першому екзоні гену впливає на живу масу курочок Пушкінської породи [19]. Також було виявлено вплив поліморфізму гену міостатину на репродуктивні показники курей [20].

Окрім цього, під час дослідження поліморфізму екзонної частині гену міостатину у китайських локальних порід курей Zhang et al. (2011) показали, що мутація G2283A у першому екзоні MSTN також має зв'язок з живою масою курей у віці від 6 до 18 тижнів життя. Зазначена мутація була раніше описана Ye et al. (2007), проте асоціацій з продуктивними якостями курей у даній роботі не було виявлено. У цій роботі всього було виявлено 13 SNP, переважно у екзонній частині гену, для 5 мутацій (G2100A, G2109A, G2244C, C2373T, T4842G) з них показано зв'язок з господарсько-корисними ознаками курей (комерційні лінії бройлерів). За мутацією G2244C російські дослідники показали зв'язок між живою масою півників у віці 7, 49 і 110 днів та генотипом для Юрловської породи курей [21]. Для Пушкінської породи такий асоціацій не було виявлено [22]. Щодо мутацій G2100A і G2109A, Zhu et al. (2007) досліджували їх зв'язок з продуктивними ознаками курей у межах породи Wenling і виявили, що G2100A пов'язана з виходом тушки і масою абдомінального жиру, а G2109A - з масою і відсотковим співвідношенням грудних м'язів. Власні дослідження показали наявність поліморфізму гену міостатину за мутацією G2109A у популяціях курей порід плімутрок білий та род-айленд червоний української селекції [23]. Також у лініях курей української селекції було виявлено вплив генотипу за мутацією G2109A на живу масу курей у віці 21 та 27 тижнів [24, 25].

Отже, у локусі міостатину курей для використання з метою MAS на підвищення м'ясної продуктивності птиці найбільш перспективними виявились мутації c.234G>A, rs313744840, G2283A, G2100A, G2109A, G2244C.

Поліморфізм гену інсуліну. Ген інсуліну позначають як INS або INS-IGF2. Ген розташований на хромосомі 5, на відстані приблизно 13,7 мегабаз від 5'-кінця кодуючої нитки ДНК. Ген містить три екзони і два інтрони, кодує гормон інсулін.

Для гена інсуліну курей характерним є доволі високий рівень поліморфізму, і з роками кількість виявлених мутацій сильно зросла. Так, у 2005 році в роботі Nie et al. у локусі INS виявлено 26 поліморфізмів, з яких два представляли собою інсерції/делеції, інші - SNP. На 2018 рік у базах даних NCBI є інформація щодо 336 поліморфізмів в межах даного гену, переважно у інтронній частині гену або 5UTR (Indel - близько 20, інші - SNP), проте більша частина з них не має детального опису.

Аналіз літературних джерел показав, що дослідження поліморфізму гену INS проводили в основному зарубіжні дослідники, переважно вчені з Китаю. Вітчизняні роботи, присвячені вивченню даного питання, представлені лише власними дослідженнями. Поліморфізми, які згадуються у літературних джерелах, наведено у таблиці 2.

Однонуклеотидні поліморфізми, локалізовані в гені інсуліну курей
(за літературними джерелами)

Таблиця 2

SNP

Локалізація у гені

Джерело

C195T

5'UTR

[26]

T409C

Інтрон 2

[26]

A+428G

Інтрон 2

[26, 27]

C1218A

Інтрон 2

[26]

C+1549T

Інтрон 2

[26-29]

T+3737C

Інтрон 2

[26-32]

A+3971G

3'UTR

[26-32]

G11303145A

Інтрон 2

[33]

C11304264T

Інтрон 2

[33]

T11306685C

Інтрон 2

[33]

C11306451T

Інтрон 2

[33]

g.1295T>C

Інтрон 2

[34]

Найчастіше для визначення генотипів дослідниками використовувався метод PCR-RFLP, завдяки тому, що зазначені поліморфізми знаходились у межах сайтів рестрикції для різних ферментів-рестриктаз. Більшість із наведених у таблиці мутацій вивчалась дослідниками у зв'язку з тими чи іншими показниками продуктивності курей різних порід. За деякими мутаціями також вивчали особливості розподілу алелів у деяких породах курей. Так, поліморфізми G11303145A, C11304264T, T11306685C і C11306451T досліджено Lei et al. (2007) на прикладі курей порід Xinghua та білий плімутрок китайської селекції. При цьому за мутацією G11303145A в обох породах виявили лише алель G, в усіх інших випадках спостерігалась наявність обох алелів. Більш вираженим переважанням частоти одного з алелів характеризувалась порода білий плімутрок. У даному дослідженні мутація G11303145A виявилась пов'язаною із властивостями м'язових волокон грудних та м'язів ніг курей, T11306685C була асоційована з товщиною жиру та вмістом жиру в м'язах ніг, C11306451T - лише із вмістом жиру в м'язах ніг [33]. Bennet et al. (2006) виявили мутацію g.1295T>C та дослідили її розповсюдження у комерційних лініях легорна білого (Hy-Line) та бройлерів Cobb. Дослідники показали, що алель T повністю відсутній у лінії м'ясних курей, проте в лінії яєчних його частота досягає одиниці. Також зазначена мутація впливала на масу тіла курей у віці 55 днів [34].

Що стосується дослідження поліморфізмів A+428G, C+1549T, T+3737C і A+3971G, Qiu et al. (2006) вперше показали їх зв'язок із продуктивними якостями курей, а також вплив гаплотипів за даними мутаціями (в межах дослідної популяції F2 Xinghua х White Recessive Rock). Зокрема, всі досліджувані поліморфізми виявились асоційованими із живою масою курчат. При цьому поліморфізм A+428G був пов'язаний лише з живою масою курчат на 28-й день життя, тоді як три інші - також з живою масою при народженні і на 56-й день життя, а мутація C+1549T - ще й з живою масою у віці 84 дні. Більше того, C+1549T мала зв'язок з рядом інших показників, пов'язаних з м'ясною продуктивністю курей, такими як глибина та кут грудної клітки, маса патраної та потрошеної тушки, довжина тонкого кишечника. T+3737C теж виявилась пов'язаною з масою патраної тушки і довжиною тонкого кишечника, окрім того - з шириною грудної клітки та масою абдомінального жиру. Стосовно A+3971G авторами також показано асоціації з кутом і шириною грудної клітки курей, масою грудних м'язів, довжиною тонкого кишечника [27]. Власні дослідження на прикладі курей української селекції підтвердили, що поліморфізм A+3971G пов'язаний з масою грудних м'язів курей, а також із живою масою у старшому віці - 31 тиждень; також було показано асоціації даного поліморфізму з масою і відсотковим співвідношенням жовтка у яйці. Для T+3737C зв'язків з показниками м'ясної чи яєчної продуктивності нами не було виявлено [24, 25, 31, 32]. Якщо розглядати дослідження, присвячені вивченню власне генетичної структури різних популяцій курей за локусом інсуліну, слід відмітити роботу Khoa et al. (2013), в якій проаналізовано локальні породи курей В'єтнаму за мутаціями C+1549T, T+3737C і A+3971G [28]. Локальні українські популяції було вивчено у власних дослідженнях за поліморфізмами T+3737C і A+3971G [30].

Таким чином, найбільш перспективними для використання з метою MAS на підвищення продуктивних якостей птиці у локусі інсуліну можна вважати мутації C+1549T, T+3737C і A+3971G.

Висновок

Узагальнюючи вищевикладене, як ген міостатину, так і ген інсуліну характеризуються високим рівнем поліморфізму. Частина SNP в межах обох локусів мають зв'язок із різними показниками продуктивності курей, здебільшого м'ясної, що робить їх перспективними для застосування у MAS з метою покращення м'ясних якостей курей. В той же час відсутні глибокі і систематизовані дані щодо особливостей генетичної структури за вже відомими поліморфіз- мами у генах MSTN та INS, їх впливу на продуктивні якості в межах більшості порід курей, як найбільш розповсюджених, так і локальних. Таким чином, для вирішення як фундаментальних питань генетики птиці, так і практичних завдань селекції потрібне подальше вивчення та оцінка генетичних ресурсів різних порід курей за поліморфізмом генів міостатину та інсуліну.

Бібліографічний список

1. Состояние всемирных генетических ресурсов животных в сфере продовольствия и сельского хозяйства [пер. с англ.] / РАСХН, ВИЖ. - Москва: ФАО, 2010. - 512 с.

2. Dodgson J. B. DNA marker technology: a revolution in animal genetics /

3. J. B. Dodgson, H. H. Cheng, R. Okimoto // Poultry Sci. - 1997. - Vol. 76. - P. 11081114.

4. Современные методы генетического контроля селекционных процессов и сертификация племенного материала в животноводстве: учеб. пособ. / Н. А. Зиновьева, П. М. Кленовицкий, Е. А. Гладырь, А. А. Никишов. - М.: РУДН,

5. - 329 с.

6. Сулимова Г. Е. ДНК-маркеры в генетических исследованиях: типы маркеров, их свойства и области применения / Г. Е. Сулимова // Успехи современной биологии. - 2004. - Т. 124, № 3. - С. 260-271.

7. Хлесткина Е. К. Молекулярные маркеры в генетических исследованиях и в селекции / Е. К. Хлесткина // Вавиловский журнал генетики и селекции Т. 17, № 4/2.- С. 1044-1054.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Відкриття та дослідження молекули інсуліну, її хімічна будова. Біосинтез інсуліну, регуляція його секреції, функції та перетворення в організмі, властивості та біологічна дія. Методи визначення інсуліну, його застосування для виготовлення препаратів.

    реферат [2,7 M], добавлен 09.01.2010

  • Основні особливості створення нового селекційного матеріалу, причини використання маркерних ознак в селекції при створенні нових популяцій. Сутність терміну "Marker-Assisted Selection". Аналіз генетичних маркерів м’ясної продуктивності свиней та корів.

    курсовая работа [401,4 K], добавлен 27.08.2012

  • Закономірності успадкування при моногібридному схрещуванні, відкриті Менделем. Закони Менделя, основні позначення. Використання решітки Пеннета для спрощення аналізу результатів. Закон чистоти гамет. Різні стани генів (алелі). Взаємодія алельних генів.

    презентация [4,0 M], добавлен 28.12.2013

  • Селекція як наука. Особливості виведення сортів, пород, штамів. Опис мінливості тварин і рослин за елементами продуктивності. Генетика кількісних ознак в селекції. Типи схрещувань і добору. Явище гетерозису. Характерні риси закону гомологічних рядів.

    презентация [426,3 K], добавлен 04.10.2013

  • Поняття і рівні регуляції експресії генів. Їх склад і будова, механізм формування і трансформування. Транскрипційний рівень регуляції. Приклад індукції і репресії. Регуляція експресії генів прокаріот, будова оперону. Огляд цього процесу у еукаріот.

    презентация [1,7 M], добавлен 28.12.2013

  • Характеристика генетичного апарату бактерій. Особливості їх генів та генетичної карти. Фенотипова і генотипова мінливість прокаріот. ДНК бактерій. Генетичні рекомбінації у бактерій: трансформація, кон’югація, трансдукція. Регуляція генної активності.

    курсовая работа [44,8 K], добавлен 21.09.2010

  • Вивчення законів спадковості генетикою, основоположником якої є Г. Мендель. Схрещування особин, вирощування і аналіз потомства та гібридів. Популяційний відбір та схрещування, передача спадкових генів. Селективний підхід до видового штучного відбору.

    реферат [21,4 K], добавлен 13.02.2010

  • Поняття про популяцію. Нові методи у функційній геноміці. Імуно-генетичні маркери, їх класифікація. Властивості набутого імунітету. Методи аналізу поліморфізму білків. Функційна геноміка сільськогосподарських тварин. Метод мікрочіпів, нутрігеноміка.

    курс лекций [1,8 M], добавлен 28.12.2013

  • Хромосомна теорія спадковості. Кросинговер та конверсія генів. Хромосомні типи визначення статі. Експериментальне дослідження особливостей успадкування мутацій "white" та "cut" (відповідно "білі очі" та "зрізані крила") у Drosophila melanogaster.

    дипломная работа [1,3 M], добавлен 30.11.2014

  • Аналіз генетичних особливостей мікроорганізмів. Нуклеоїд як бактеріальна хромосома. Плазміди та епісоми як позахромосомні фактори спадковості. Практичне використання знань з генетики бактерій. Способи генетичної рекомбінації. Регуляція експресії генів.

    курсовая работа [1,8 M], добавлен 28.03.2014

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.