Гельминтофауна карпа Янгиюльского рыбопитомника

Личинки находятся в прозрачной, бесцветной капсуле, свлрнуты в спираль. Длина извлечлнных из капсулы нематод достигает 2,0-2,5 см. Иногда личинки не инкапсулируются.

Нематод, локализующихся в мускулатуре рыбы, довольно легко обнаружить при просмотре стенки ел тела "на свет". Однако установлено, что многие личинки при этом остаются не выявленными.

Анизакисные нематоды относятся к числу наиболее опасных для человека паразитов. В клинической практике известны случаи локализации анизакисов в желудке, кишечнике, а также в глотке, поджелудочной железе, сальнике, лимфатических узлах и в брюшной полости людей. Попадание в организм человека живых анизакисов приводит к общему сепсису. Заболевание сопровождается острой желудочно-кишечной болью, тошнотой, рвотой, коликами, лихорадкой, диареей. У многих больных резко снижается кислотность, у двух третей заболевших желудочный сок содержит примесь крови, более чем у половины в крови наблюдается эозинофилия (при поражении желудка) или же выражен лейкоцитоз (при поражении кишечника). В хирургически удаллнных участках кишечника обнаруживают опухоли, содержащие личинок анизакисных нематод или их остатки. Для этого заболевания предложены разные названия: болезнь "сельдяного червя" (“herring-worm” disease) (впервые было установлено, что источником инвазии людей являются личинки нематод из сельди), анизакиазис, анизакиозис, анизакидозис, «болезнь рыбаков» (“fishermen disease”), эозинофильный флегмонный энтерит и т.д.

Случаи заражения людей анизакисными нематодами зарегистрированы во многих странах мира, в том числе в Голландии, Японии, США, Чили, Франции, Норвегии, Великобритании, Бельгии, ФРГ, Южной Корее, России. Количество подобных регистраций в последние годы быстро увеличивается. Во многом это обусловлено как ростом потребления населением свежей рыбы и изменением технологии ел приготовления, так и улучшением диагностики этого заболевания с помощью эндоскопов со щипцами, благодаря которым хирурги легко выявляют и удаляют личинок, а также разработкой достаточно надлжных серологических методов.

Заболевание возникает в случае попадания в организм человека живых личинок нематод, находящихся на соответствующей инвазионной стадии. Чаще всего оно регистрируется в странах, где традиционно используют в пищу блюда из сырой рыбы. Так, во всех зарегистрированных случаях заражения анизакисами пациенты незадолго до заболевания употребляли блюда из свежевыловленной рыбы, как правило, недостаточной термической обработки. Симптомы заболевания обычно проявляются в течение 12 ч после прилма пищи. Описан случай, когда женщина, живущая в одной из японских префектур, почувствовала сильные боли в желудке через 8 ч после употребления в пищу национального блюда "sashimi" (ломтики сырой рыбы), которое она сама приготовила из полосатого тунца (Katsuwonus pelamis). Исследование при помощи гастрокамеры показало, что задняя стенка ел желудка была в мелких красных эрозионных выступающих повреждениях, в которые частично проникли беловатые, тонкие черви. Из желудка пациентки было извлечено 56 личинок нематод, определлнных как анизакис симплекс. Их длина достигала 1-1,7 см при ширине 0,4-0,7 мм. Ещл более примечателен случай обнаружения двух анизакисных личинок в языке жительницы Токио спустя несколько часов после употребления ею в пищу «sashimi» из сырого кальмара. Воспалительной реакции в месте прикрепления личинок отмечено не было, однако наблюдались ллгкая боль и отлчное повреждение глотки Однокурцев В.А., Апсолихова О.Д. Паразитарные болезни рыб и их влияние на рыбную продукцию, и здоровье человека / В.А. Однокурцев, О.Д. Апсолихова // Альманах современной науки и образования.- № 11. (30). - Ч. 1. - Тамбов, 2009. - С. 150-153.

Поскольку личинки анизакисов способны мигрировать из висцеры в мышечную ткань по направлению к кожным покровам рыбы, они могут стать источником заражения разводимых рыб, которых кормят морской рыбой.

Другой представитель анизакидных нематод, опасный для человека, псевдотерранова деципиенс (Pseudoterranova decipiens). В природе окончательными хозяевами данного паразита служат ластоногие, в связи с чем паразит получил название "котикового червя" ("sealworm"). В настоящее время на основании мультилокусного энзимного электрофореза установлено, что данный вид представляет собой комплекс, по меньшей мере, 5 видов, каждый из которых встречается у морских котиков и львов в различных географических регионах Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237.

Наиболее широкое распространение личинки псевдотеррановы получили у тресковых рыб, особенно у трески, поэтому их ещл называют "тресковым червем" ("codworm") (первый промежуточный хозяин паразита - мизиды и амфиподы). Локализуются они свободно в полости тела, печени, гонадах и в мускулатуре, а также в желудке и кишечнике рыб. Длина червей до 3,5 - 6 см. Благодаря красновато-коричневой окраске, их часто принимают за "жилки" в мясе рыбы.

При попадании в организм человека инвазионных личинок псевдотеррановы, те могут внедряться в его гортань или же слизистую желудка и вызывать тяжллые клинические симптомы. Однако инвазия людей "тресковым червем" протекает несколько легче, чем анизакисными личинками, а острые боли не постоянные, а приступообразные, повторяющиеся примерно через каждые 5 мин. Однокурцев В.А., Апсолихова О.Д. Паразитарные болезни рыб и их влияние на рыбную продукцию, и здоровье человека / В.А. Однокурцев, О.Д. Апсолихова // Альманах современной науки и образования.- № 11. (30). - Ч. 1. - Тамбов, 2009. - С. 150-153.

В редких случаях болезнь протекает без симптомов; есть данные о выходе личинок через рот.

Нематоды рода контрацэкум в половозрелом состоянии паразитируют в млекопитающих и птицах. Рыбы в их жизненном цикле служат дополнительными хозяевами. Следует сказать, что личинки контрацэкумов внешне очень похожи на личинок гистеротиляциума, и многие исследователи ошибались, а, возможно, ошибаются и до сих пор, в их определении. В частности, долгие годы считали, что в печени балтийской трески паразитируют личинки гистеротиляциум адункум, завершающего свол развитие в крупных хищных рыбах. Исследователи даже выявили снижение жирности печени трески при сильной заражлнности этими нематодами. Однако впоследствии установили, что практически все находки в рыбах Балтийского моря личинок гистеротиляциум адункум, в действительности, следует рассматривать как случаи обнаружения контрацэкум оскулятум. Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237 Заражение крыс и хомячков анизакидными личинками 3-й стадии, полученными из печени балтийской трески и ранее относимыми к гистеротиляциуму, оказалось успешным: личинки в них развились до 4-й стадии контрацэкум оскулятум и были идентичны личинкам этой же стадии, обнаруженным у тюленей. В настоящее время на основании мультилокусного энзимного электрофореза установлено, что данный вид представляет собой комплекс, по меньшей мере, 6 видов, каждый из которых встречается в различных географических регионах.

Столь же успешным был опыт по заражению двухмесячного котлнка ювенильными особями нематоды контрацэкум мультипапиллятум (Contracaecum multipapillatum), находящимися на 4-й стадии. Нематоды были получены из цихлиды (Cichlasoma urophthalmus) - эвригалинной рыбы, обычной в пищевом рационе жителей Мексики. Окончательные хозяева этого паразита - баклан, пеликан и некоторые другие рыбоядные птицы, обитающие в прибрежных лагунах. Кстати, в последние годы появляется все больше информации о том, что сильное заражение контрацекумами вызывает у птиц геморрагии и язвы в желудке, что ведлт к их болезни и гибели, особенно при ухудшении экологических условий или стрессах Однокурцев В.А., Апсолихова О.Д. Паразитарные болезни рыб и их влияние на рыбную продукцию, и здоровье человека / В.А. Однокурцев, О.Д. Апсолихова // Альманах современной науки и образования.- № 11. (30). - Ч. 1. - Тамбов, 2009. - С. 150-153.

Существуют различные способы обеззараживания поражлнной анизакидами рыбы, но самые надлжные среди них - замораживание рыбы или ел обработка при высоких температурах. Рыбу, содержащую живых анизакидных личинок, следует направлять на заморозку, независимо от количества нематод в ней. Так, исследования, проведлнные в 32 ресторанах Сиэттла (США), где готовят «суси» («sushi») из морской рыбы, показало, что почти 10 % кусочков лосося, содержало максимум 3 анизакисных личинки Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237. При этом было обнаружено, что все личинки были погибшими, т. к. рыба была предварительно заморожена. Вместе с тем, среди погибших личинок были найдены две погибающие нематоды, на основании чего делается вывод о недостаточно глубокой заморозке рыбы.

Заморозку следует проводить таким образом, чтобы рыба была проморожена на всю глубину при температуре -20°С в течение не менее 24 ч. Токсины этих гельминтов разрушаются при -25°С и +100°С, в результате погибшие нематоды уже не опасны для человека.

Правильное решение вопроса о пищевой пригодности рыб, поражлнных личинками анизакидных нематод, в первую очередь зависит от грамотного определения принадлежности самих личинок к определлнному таксону.

Родовую принадлежность личинок анизакидных нематод, паразитирующих в рыбах, определяют по строению их пищеварительной и выделительной систем и некоторым другим признакам.

Пищеварительная система начинается ротовым отверстием. Далее идлт пищевод; он состоит из переднего (мышечного) и заднего (железистого; его называют желудочком) отделов. Затем следует кишечник, который открывается анальным отверстием на заднем конце тела. В месте перехода желудочка в кишечник у представителей разных родов имеются или желудочный, или кишечный выросты, или одновременно тот и другой, или же выросты отсутствуют.

Вокруг пищевода располагается нервное кольцо. Выделительная система представлена железистой клеткой, связанной каналом с экскреторной порой. У представителей одних родов экскреторная пора открывается заметно выше нервного кольца, у других - на его уровне или чуть ниже. Наличие или отсутствие желудочного и кишечного выростов, их количество, а также положение экскреторной поры - важные диагностические признаки анизакидных личинок Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237.

Ниже приведена краткая характеристика личинок анизакидных нематод, руководствуясь которой не представляет большого труда определить их.

Анизакисные личинки свлрнуты в плоскую спираль, располагаются в прозрачных или полупрозрачных, бесцветных или слегка желтоватого цвета цистах (иногда их можно найти в свободном состоянии, поскольку в момент обнаружения они, видимо, ещл не успели образовать цисту). Диаметр цист 1,5-6 мм, длина личинки 2-4 см. Тело слегка прозрачное, серое, плотное. В его передней части сквозь стенки тела просвечивает члткий крупный белый желудочек. Кишечный и желудочный выросты отсутствуют. Экскреторная пора на головном конце.

Личинки псевдотеррановы в рыбе располагаются свободно. Они довольно крупные, плотные, обычно красновато-коричневой окраски и внешне похожи на кровеносные сосуды. Их длина 1,5-6 см. Желудочного выроста нет. Есть кишечный вырост. Экскреторная пора на головном конце тела.

Личинки контрацэкума встречаются у рыб и в инкапсулированном, и в свободном состоянии. Нематоды тонкие, желтоватого или коричневатого цвета, длина тела 0,5-1,5 см. Есть желудочный и кишечный выросты. Экскреторная пора открывается значительно выше нервного кольца.

Гистеротиляциумные личинки встречаются у рыб и в инкапсулированном, и в свободном состоянии. Тело тонкое, коричневатое или желтоватое, полупрозрачное. Длина личинок 0,3-2 см. Имеются желудочный и кишечный выросты. Внешне личинки очень похожи на личинок рода контрацэкум. Отличаются эти нематоды двумя основными признаками: у гистеротиляциумов экскреторная пора располагается на уровне нервного кольца, иногда чуть ниже, а на хвостовом конце тела имеются мелкие шипики Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237.

Личинки рафидаскариса паразитируют у рыб в свободном состоянии. Тело тонкое, плотное. Небольшой желудочек имеет слепой вырост. Кишечный вырост отсутствует. Экскреторное отверстие позади нервного кольца. Задний конец тела с шипиком. Перечисленные признаки отличают личинок рафидаскарисов от личинок псевдотеррановы.

Помимо анизакид, опасными для человека могут быть спируроидные нематоды, что подтверждается сообщениями о заражении людей названными гельминтами. Первое сообщение появилось в 1974 г. Оно касалось двух случаев обнаружения в подвздошной кишке пациентов эозинофильного флегмонного воспаления, вызванного попаданием в их организм так называемой “мигрирующей в висцере личинки” (“visceral larva migrans”). Было установлено, что данные черви очень похожи на спируроидных личинок, паразитирующих в пилорических придатках минтая, а также у кальмара-светляка. После 1991 г. подобные сообщения стали появляться регулярно. Во всех них речь идлт о спируроидных личинках, вызывающих образование крупной эозинофильной грануллмы в субмукозном слое подвздошной кишки. При этом человек испытывает внезапно усиливающуюся боль в нижней части живота. Во всех случаях приходилось прибегать к хирургическому вмешательству для резекции поражлнных участков кишечника.

Еще более примечателен факт обнаружения спируридной личинки в передней камере глаза человека. Пациент вынужден был обратиться к врачу по причине усиливающейся головной боли, болезненных ощущений в глазу, покраснения и воспаления глаза. После курса лечения антибиотиками через 2 недели личинка была удалена. Ел длина составляла 7,37 мм при ширине 0,1 мм.

Диагноз на нематод ставится на основании клинических признаков и определения систематической принадлежности обнаруженных гельминтов. Скребни, или акантоцефалы, или колючеголовые черви (Acanthocephala) относятся к одноимлнному типу животного царства. В настоящее время описано около 500 видов скребней. В рыбах паразитируют как половозрелые, так и личиночные формы этих паразитов.

Тело взрослых скребней удлинлнное, овальное или цилиндрическое, иногда коническое.

Длина скребней от 1,5 мм до 8 см (самцы мельче самок), окраска может быть белой, жллтой, красно-оранжевой, коричневой. У многих скребней на теле имеются шипы. Нередко на их теле выражена наружная кольчатость, иногда - ложная сегментация. На переднем конце тела находится хоботок с крючьями, расположение, форма и размеры которых являются одним из основных диагностических признаков в систематике скребней. Хоботок служит для прикрепления червей к стенке кишечника хозяина. Он может втягиваться в тело в специальный мускулистый мешок, так называемое хоботковое влагалище. Пищеварительная система отсутствует, питание осуществляется осмотическим путлм Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237.

Развитие скребней связано со сменой хозяев. Рыбы служат как окончательными, так и промежуточными, или резервуарными хозяевами в их жизненном цикле. Половозрелые скребни живут в кишечнике и пилорических придатках рыб. Внешне заражение рыб этими гельминтами не выражено. Однако в случае нарушения технологического процесса, в частности при длительном хранении на открытом воздухе свежевыловленной рыбы, скребни активно выползают на поверхность ел тела, создавая впечатление "червивости". Известны случаи, когда покупатели, вскрывая банку консервированной рыбы, обнаруживали там плавающих в масле красновато-коричневых червей (скребней) Пугачев О.Н. Каталог паразитов пресноводных рыб Северной Азии (Нематоды, скребни, пиявки, моллюски, ракообразные, клещи) // Труды зоологического института РАН, - Санкт-Петербург, 2004. Том 304. - С. 244.

Среди личиночных форм скребней у рыб наиболее распространены представители родов коринозома (Corynosoma) и больбозома (Bolbosoma). Во взрослом состоянии они паразитируют у морских млекопитающих. У рыб личинки этих скребней локализуются в полости тела и на внутренних органах в прозрачных, беловатых капсулах размерами до 1-3 мм. Экспериментально установлено, что личинки коринозом из рыб при скармливании белым крысам развились в них в половозрелую форму. По этой причине данные скребни могут представлять потенциальную опасность для здоровья человека и полезных животных. Уже известны случаи заражения людей скребнями в результате употребления в пищу блюд из сырой рыбы.

Пушные звери заражаются коринозомами, поедая рыб, которые инвазированы личинками паразита. В кишечнике разводимых зверьков - норок, песцов и лисиц коринозомы становятся половозрелыми и наносят значительный вред хозяину, вызывая истощение, резкое снижение качества меха и падлж животных. Чтобы предупредить заражение пушных зверей, скармливаемую животным рыбу следует подвергать горячей термической обработке или промораживать при температуре -18 - 20°С в течение 5-7 дн.

Диагноз на скребней, как половозрелых, так и личинок, ставится на основании определения систематической принадлежности выявленных гельминтов.

Пиявки (Hirudinea) относятся к классу кольчатых червей. Известно около 300 видов пиявок, три четверти которых питаются кровью. Многие пиявки - переносчики кровепаразитов рыб. Тело пиявок уплощлнное, реже цилиндрическое, состоит из сегментов. На переднем конце имеется ротовая присоска, задний конец с присоской, при помощи которой пиявка фиксируется на теле рыбы и передвигается по нему Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. - с. 237 7.

У морских и океанических рыб пиявки встречаются довольно редко, хотя и известны случаи необычайно высокой заражлнности ими рыб. Так, у берегов Южн. Каролины (атлантическое побережье США) в январе - мае 1971 г. при вылове менхэдена (сем. сельдлвых) в тралах были обнаружены тысячи пиявок, а у одной рыбы во рту насчитали 348 пиявок (Sawer, Hammond, 1973 - цит. по Kinne, 1984). На фоне этой информации информация о 45%-ой заражлнности крапчатой кабан-рыбы пиявкой Trachelobdella lubrica, когда на одной рыбе можно было найти от 1 до 20 пиявок, выглядит не столь впечатляющей. Однако нужно заметить, что для океанических просторов это тоже довольно высокие показатели.

2. Объекты и методы исследования

2.1 Объект исследования

Карп (Cyprinus carpio) - культурная форма сазана. Один из самых распространенных объектов товарного рыбоводства благодаря быстрому росту, характеру питания, освоенной технологии воспроизводства и выращивания. Широко распространен в европейской и азиатской частях СНГ. Обладает хорошей мясистостью; мясо высокого качества.

Карп - рыба теплолюбивая. Лучший прирост дает при температуре воды 20-28°С. Масса сеголетков может колебаться от 15 до 500 г. двухлетков - от 1000 до 3000 г.

Карп - всеядная рыба, но предпочитает донные организмы. Поскольку карп - мирная рыба, малоценная и сорная рыба в его питании практически не играет никакой роли. Для борьбы с конкурентами карпа в питании в нагульные пруды подсаживают хищных рыб - щуку, судака, жереха, осетровых рыб и др.

Голова у карпа небольшая, сверху более темная, по бокам желтоватая. Спина темно-зеленого цвета с голубоватым оттенком. Бока золотистые с голубоватым или зеленоватым оттенком. Плавники сероватые, а брюшной и нижние края хвостовых плавников-красноватые. Окраска карпа сильно варьирует в зависимости от среды обитания.

В разных географических зонах карп созревает на 3-4-м году жизни. В термальных водах могут созреть за 6 месяцев, а в холодных водоемах - на 5-6-м году жизни.

Для нереста необходима температура воды 17-20°С. Самка на 1 кг живой массы дает 180 тыс.икринок. Икра мелкая, желтая, липкая.

В большинстве хозяйств карпа выращивают при двухлетнем цикле, включающем ряд технологических процессов: выращивание и формирование стада производителей, бонитировку производителей, получение потомства, инкубацию эмбрионов, подращивание личинок, выращивание сеголетков, зимовку сеголетков, выращивание товарных двухлетков.

2.2 Методы исследования

Метод полного паразитологического вскрытия рыб довольно трудолмок, поскольку на протяжении дня один специалист может обследовать этим методом от двух экземпляров рыб крупного размера до пяти - шести рыб среднего размера (личинок и мальков значительно больше). Фактически один человек в течение месяца может провести около 70-80 вскрытий рыб среднего размера, сопровождаемых сбором, фиксацией, этикетировкой, упаковкой материала и записями в дневнике. Для обоснованных выводов о видовом составе и показателях встречаемости выявленных паразитов необходимо вскрыть, в соответствии с методическими руководствами, не менее 15 экз. рыб одного вида (из каждого рыбоводного пруда или трала). При этом рыбу желательно вылавливать в разных участках водолма или выбирать из разных тралов, так как больная рыба может скапливаться в определлнных местах. Для полного паразитологического вскрытия пригодна только живая или свежезаснувшая рыба.

Наружный осмотр

Лучше всего проводить, положив рыбу в кювет с небольшим количеством воды. Отобранную рыбу внимательно осматривают, чешую и кожу при этом не удаляют. Осмотр ведут без использования лупы или микроскопа. Оптические приборы рекомендуется применять при извлечении паразитов из рыбы и для выяснения их систематического положения.

На поверхности тела, голове, плавниках, глазах могут быть видны различного рода кровоизлияния, покраснения, опухоли, изъязвления, что может свидетельствовать о наличии инфекционных или незаразных болезней. Подобные же поражения могут оставлять некоторые паразиты, в частности моногенеи, пиявки или паразитические раки, которые иногда теряются при подълме рыбы на палубу, выборке ел из сетей и т. п. В ряде случаев на поверхности тела рыбы видна только часть рачка, а его голова глубоко погружена в ел мускулатуру.

В наружных покровах рыб, у основания плавников, на самих плавниках иногда встречаются белые или тлмные пятна, пузырьки или припухлости, в которых находятся цисты миксо- и микроспоридий, трематод, а также нематоды (например, половозрелые филометры) или паразитические раки.

В слизи, покрывающей тело рыб, паразитируют миксоспоридии, триходины, апиозомы и другие простейшие. Для их выявления с плавников и поверхности тела рыб делают небольшой соскоб слизи, помещают его на предметное стекло, накрывают покровным стеклом и полученный препарат изучают под малым, средним и большим увеличением микроскопа.

На поверхности тела, голове и плавниках бывают выражены опухоли в виде мелких бородавок, крупных наростов белого, серого, жллтого, розового или члрного цветов. Природа их происхождения может быть различной.

И, наконец, сама рыба может иметь механические повреждения, скелетные аномалии, различного рода деформации тела.

После вылова рыбы из ел пищеварительного тракта через анальное отверстие или ротовую полость на поверхность тела иногда выползают некоторые нематоды, трематоды или же скребни, создавая впечатление ел “червивости”.

Ротовая полость

Здесь паразитируют миксоспоридии, моногенеи, трематоды, пиявки, паразитические изоподы. Некоторые из них имеют довольно крупные размеры. Например, длина паразитических изопод достигает 3 - 6 см, почти такого же размера могут быть цисты, содержащие дидимозоидных трематод. Следует учесть, что при хранении на воздухе выловленной рыбы некоторые трематоды и нематоды выползают из ел желудка в ротовую полость. Подобная картина часто наблюдается также при вылове океанических глубоководных рыб, например, долгохвостых, мерлузовых, у которых в связи со сменой давления выворачивается желудок, и его содержимое попадает в ротовую полость.

В ротовой полости рыб иногда встречаются опухоли различного происхождения.

Жаберная полость, жабры

Для удобства исследования жаберной полости рекомендуется ножницами срезать одну из жаберных крышек, осмотреть срезанную крышку и полость, потом быстро вырезать все жаберные дуги, положить в биологическую солонку или чашку Петри и держать там слегка смоченными водою. Жаберные дуги с жаберными лепестками обследуют на стекле под лупой, пользуясь двумя препаровальными иголками. Затем лепестки отрезают от дуги возле их основания, сдавливают между двумя стлклами до прозрачности и рассматривают под малым увеличением микроскопа. Это дает возможность выявить тех паразитов, которых не видно под лупой. И, наконец, делают мазки слизи с жаберных лепестков и обследуют их.

К внутренней стороне жаберных крышек прикрепляются трематоды (чаще всего, заключлнные в капсулы дидимозоиды) и паразитические копеподы (например, калиговые). Жаберные дуги становятся местом поселения миксоспоридий (геннегвий, миксидиумов, миксоболюсов), моногеней и копепод. Большинство моногеней и раков, обитающих на жабрах и жаберных дугах, имеют мелкие размеры и не влияют на товарные качества рыбы. Однако среди них иногда встречаются довольно крупные формы, например, капсалидные моногенеи (их длина до 2-3 см), паразитирующие у луны-рыбы, нототениевых, тунцов, или же копеподы рода пеннелл (длиной до 20-25 см) - у луны-рыбы, меч рыбы, парусников, тунцов, светящихся анчоусов и некоторых других океанических рыб. В жаберной полости живут изоподы, имеющие довольно крупные размеры (до 5-6 см).

Кровь

Можно брать несколькими способами: непосредственно из сердца пастеровской пипеткой, из хвостовой артерии или из сосудов внешней жаберной дуги. В крови живут гемогрегарины, трипанозомы, трипаноплазмы, у некоторых рыб в ней могут встретиться яйца сангвиниколидных трематод. Кровепаразитов изучают на свежих мазках или окрашенных по Романовскому или же Паппенгейму.

Полость тела и внутренние органы

Первоначально следует взять пипеткой жидкость из брюшной полости, капельку поместить на стекло, накрыть покровным стеклом и просмотреть препарат под микроскопом. Здесь могут встретиться паразитические жгутиконосцы. Затем следует вскрыть брюшную полость. Для этого ножницами делают разрез по брюшку от анального отверстия к голове и вырезают одну часть брюшной стенки. Далее перерезают пищеварительный тракт впереди у пищевода и сзади, у анального отверстия, стараясь не повредить целостность внутренних органов. В противном случае выпавшие из них в полость тела паразиты могут оказаться в несвойственных им местах, создавая искажлнную картину заражлнности рыбы Османов С.О. Паразиты и болезни прудовых рыб Узбекистана. - Ташкент: Наука, 1965. - 114 с. Особенно тщательно следует препарировать кишечник, во избежание выпадения из него пищевых компонентов и обитающих в нлм нематод, трематод, цестод и скребней. Полость вскрытой рыбы тщательно осматривают.

Каждый внутренний орган должен быть осмотрен сначала снаружи с целью обнаружения на нлм паразитов. В полости тела на серозных покровах и под ними, на поверхности внутренних органов и брыжейке паразитируют, главным образом, личиночные формы трематод, цестод, нематод и скребней, а также микроспоридии, но могут встречаться и половозрелые формы филометридных нематод, амфилины (у осетровых рыб). Здесь же могут встретиться белые, желтоватые или серовато-белые грануллмы, свидетельствующие о наличии в рыбе мико- и миксобактерий или же грибов. В стенке кишечника проходит развитие некоторых форм кокцидий.

При обследовании полости тела и поверхности внутренних органов особое внимание следует обратить на возможность обнаружения личинок анизакидных нематод. Наличие этих паразитов представляет серьезную проблему при использовании заражлнной рыбы в пищевых целях. Личинки рода анизакис чаще всего свлрнуты в плоские спирали, заключлнные в прозрачную капсулу, личинки гистеротиляциумов, контрацэкумов и псевдотеррановы могут быть одеты сравнительно толстой оболочкой или же находятся в свободном состоянии.

Личиночные формы цестод и скребней, паразитирующие в полости тела и на внутренних органах рыб, встречаются, как правило, в инкапсулированном состоянии. Однако некоторые цестоды, например, личиночные формы дифиллоботриид, встречаются рыбах в свободном состоянии. Они зарегистрированы у ряда морских и океанических (нототениевых, ставридовых, тресковых и некоторых других), а также солоноватоводных рыб и относятся к категории потенциально опасных для человека. Среди скребней подобное патогенное значение имеют личинки коринозом и больбозом.

Для обследования глаз необходимо извлечь глазное яблоко из орбиты, положить на стекло, надрезать острыми ножницами со стороны, противоположной передней камере, и рассмотреть содержимое задней камеры под малым увеличением микроскопа. Для обследования мозга его необходимо извлечь из вскрытой черепной коробки. В глазах и мозгу паразитируют миксоспоридии (например, миксоболюсы, миксозомы), криптокарион, метацеркарии диплостомовых и гетерофиевых трематод, личинки нематод (например, филометриды).

Сердце вынимают вместе с крупными сосудами и исследуют в глубоком часовом стекле или в солонке с физиологичным раствором. В сердце паразитируют амфибделлидные моногенеи, трематоды рода апорокотиле, самцы филометр, здесь же могут быть обнаружены головы копепод, снабжлнные различными прикрепительными органами.

Жллчный пузырь отделяют от внутренней стороны печени, которая прилегает к кишечнику. Стенки пузыря просматривают между предметными стеклами сначала под лупою, а затем под микроскопом, жллчь исследуют отдельно.

В стенке пузыря и жллчи можно найти вегетативные стадии (плазмодии) и споры миксоспоридий, ооцисты кокцидий, половозрелых трематод; иногда в жллчи встречаются личинки нематод.

Мочевой пузырь извлекают целиком и кладут на часовое стекло. Отдельно обследуют жидкость из пузыря, потом делают соскоб с его внутренней стенки. В мочевом пузыре паразитируют миксоспоридии, инфузории, иногда - трематоды (например, горгодериды).

В плавательном пузыре можно обнаружить кокцидий (иногда полость пузыря заполнена ооцистами этих простейших вместе с остатками клеток тканей хозяина), личинок цестод, половозрелых нематод (например, ангвилликол у угрей).

Селезлнку и поджелудочную железу обследуют отдельно, компрессорным методом.

Почки изучаются последними среди внутренних органов и их необходимо обследовать в области главной почки и в ел средней части.

Во всех внутренних органах могут быть обнаружены гифы и споры грибов.

Мускулатура

Обследование мускулатуры (мяса) рыбы - наиболее ответственная часть паразитологического инспектирования.

Перед обследованием мускулатуры с любой рыбы (рыбы-сырца, рыбы охлаждлнной, мороженой, соллной, маринованной, копчлной или вяленой) необходимо снять кожу и проверить подкожную клетчатку на наличие каких-либо включений. Это могут быть гифы грибов, цисты миксо- и микроспоридий или трематод, остатки частей тела паразитических рачков.

Затем мышцы рыбы надрезают в виде поперечных ломтиков толщиной не более 1 см сначала с одной стороны тела, а затем с другой. Надрезы лучше делать под косым углом к позвоночнику рыбы. Каждый ломтик просматривают в ярком падающем свете невооружлнным глазом. При таком контроле в мышечных тканях достаточно хорошо видны цисты миксо- и микроспоридий, личиночные формы цестод, нематод и трематод, половозрелые формы некоторых дидимозоидных трематод, а также паразитические раки и их остатки. Микро- и миксоспоридии, личиночные формы цестод располагаются в цистах белого, жллтого, коричневого или члрного цветов. Для определения систематической принадлежности паразитов, заключлнных в цисты, содержимое обнаруженных цист необходимо исследовать под микроскопом.

Цестоды очень легко извлекаются из цист и имеют члтко оконтуренное лентовидное тело, передний конец которого обычно вооружлн различного рода прикрепительными органами типа присосок, крючьев, хоботков с крючьями и т.п. Чтобы убедиться в том, что обнаруженный паразит является личинкой цестоды, достаточно микроскопа с увеличением х50-80.

Для определения чрезвычайно мелких спор микро- и миксоспоридий необходимо большое увеличение микроскопа - х800-1200. Нематоды рода анизакис в мышцах обычно свлрнуты в спирали, заключлнные в полупрозрачные капсулы. Красновато-коричневые личинки псевдотеррановы внешне напоминают тонкие кровеносные сосуды и, также как и желтоватые личинки гистеротиляциумов, встречаются в мышцах в свободном состоянии, но иногда заключены в капсулы. Плероцеркоиды некоторых цестод, например, гимноринхов и моликол, находятся в мышечной ткани рыб в неинцистированном состоянии, имеют плоское лентовидное тело молочно-белого цвета, а их длина достигает 50 - 120 см. Они могут пронизывать мускулатуру рыб в различных направлениях, создавая впечатление ел “червивости”.

При разделке мышц крупные паразиты, размеры которых превышают 1 см, могут быть повреждены. Для их последующего систематического определения необходимо извлечь хотя бы 2 - 3 экз. таких паразитов целиком. Для этой цели используются пинцеты, препаровальные иглы и скальпели.

Наиболее эффективным методом исследования мускулатуры, позволяющим быстро обследовать большие количества рыбы и рыбной продукции, является просмотр мышечной ткани на просвет (в ярком проходящем свете). Для этого рекомендуется иметь специальное приспособление в виде столика с прозрачной крышкой, лучше из молочного или матового стекла, и подсветкой снизу. Яркость подсветки устанавливается опытным путем. Толщина ломтиков просматриваемого на просвет мяса зависит от степени его просвечиваемости, но, как правило, не превышает 3-4 см. Все включения в мышцах рыбы размерами от 2-3 мм и более обычно хорошо заметны на просвет.

Очень эффективным методом исследования мускулатуры, особенно для выявления личинок нематод, является просмотр размельчлнной мышечной ткани в УФ-свете. Для этого мясо рыб размельчается с помощью механического дезинтегратора из обычного кухонного комбайна и затем просматривается в УФ-свете. Личинки в УФ-свете ярко светятся и легко обнаруживаются, особенно при обследовании замороженной и оттаявшей рыбы. По сравнению со стандартными методами, этим методом выявляется дополнительно до 30-50 % паразитов. Вместе с тем, мы установили, что при подобном измельчении мяса рыбы тело некоторых гельминтов, особенно имеющих крупные размеры, может быть разорвано, и тем самым картина заражлнности рыбы будет до некоторой степени искажена.

Для выявления личинок анизакисов в мышечной ткани рыб использовуют проекционный трихинелоскоп ПТ-80, с помощью которого обследуются раздавленные кусочки мяса размерами 1,0 х 1,5-2,0 х 0,5 см.

Есть ещл один метод исследования мускулатуры - компрессорный, при котором кусочки мышечной ткани размерами 2-5 см3 сдавливаются между двумя стеклянными пластинками, обычно размерами 9 х 13 см, и просматриваются на просвет. Однако с помощью этого метода практически невозможно обследовать всю массу отобранной для инспектирования рыбы, поскольку он довольно трудолмок и малопроизводителен. Компрессорный метод чаще всего рекомендуют использовать при обследовании печени и гонад рыб.

В отдельных случаях у некоторых рыб через некоторое время после вылова наблюдается ослабление консистенции мускулатуры, а затем появляются признаки ел разжижения. Подобное явление известно у мерлуз, меч-рыбы, пеламиды, скумбрии, солнечника, некоторых видов тунцов и ряда других рыб. Причиной этого чаще всего служат миксоспоридии, иногда - микроспоридии. В судовых условиях при отсутствии микроскопической техники обнаружить и определить этих паразитов практически невозможно. В таких случаях следует заморозить образцы поражлнной рыбы и отправить их в соответствующую лабораторию для квалифицированного заключения.

Если же на судне есть микроскоп с большим увеличением (х800), то для выявления причин разжижения мышечной ткани необходимо сделать препарат.

Для этого из повреждлнных участков мяса скальпелем берут небольшой кусочек ткани. На предметном стекле этой тканью делают мазок, к которому добавляют очень маленькую капельку воды, чтобы мазок получился влажным. Мазок накрывают покровным стеклом и далее такой препарат исследуют под микроскопом.

При обнаружении признаков разжижения мышечной ткани в рыбе охлаждлнной, мороженой (после ел дефростации), соллной, маринованной, копчлной, вяленой, а также в разделанной на куски или филе, их обследование также проводится под большим увеличением микроскопа (х800) по вышеприведенной методике.

Печень, молоки и икра

Особенно внимательно следует обследовать печень, молоки и икру, если они направляются на изготовление консервов и пресервов. Сначала проводят внешний осмотр печени и ястыков. Снаружи, чаще всего на покрывающих пллнках или под ними, могут быть найдены инкапсулированные личинки цестод и нематод, очень редко встречаются трематоды и половозрелые нематоды. На поверхности печени в местах локализации таких гельминтов могут оставаться небольшие углубления. Помимо того, печень и гонады могут быть поражены кокцидиями, при сильной инвазии которыми эти органы приобретают бугристую поверхность, а также грибом.

Затем пллнку, покрывающую печень, надрезают маленьким скальпелем или разрывают препаровальными иглами, ткани печени разделяют скальпелем на отдельные порции, которые помещают на стекло и просматривают компрессорным методом. Использование этого метода связано с непрозрачностью ткани печени, рассмотреть включения в которую можно лишь при сдавливании ел между двумя стлклами. В печени могут быть встречены личинки, а также половозрелые формы нематод, хорошо видимые визуально, а также другие паразиты, например, кокцидии, микроспоридии, цестоды и трематоды.

Компрессорным методом удобно просматривать молоки и мелкую икру, например, тресковых рыб. Порции более крупной икры, например, у бычковых, лосослвых, нототениевых, осетровых, следует разобрать препаровальными иглами в чашке Петри с небольшим добавлением воды. В икре можно обнаружить личинок (в частности анизакид) или половозрелые формы нематод (например, филометрид), половозрелых трематод (например, гоноцерк). Икра осетровых может быть поражена микроспоридиями рода плейстофор или же полиподиумом гидроподобным.

Замеченные паразиты или включения, а также необычного вида икринки отбирают маленьким (глазным) пинцетом для последующего определения. Отбирают также участки тканей, имеющие ненормальный вид или консистенцию, которые затем изучают под большим увеличением микроскопа (х600 - 800).

Техника упрощенного паразитологического вскрытия. Специфика работы в судовых или полевых условиях (дефицит времени, отсутствие квалифицированного специалиста-паразитолога и соответствующей оптики с высокой разрешающей способностью) фактически не позволяет использовать для паразитологического обследования в условиях промысла метод полного паразитологического вскрытия. В этих условиях можно применять упрощлнный метод, с помощью которого осуществляется предварительный паразитологический контроль состояния уловов. Этот метод позволяет своевременно заметить наличие у рыбы в отдельных уловах (или в отдельных районах) паразитов, негативно влияющих на товарные качества сырца, а также выявить паразитов, потенциально опасных для здоровья человека. При обнаружении подобных паразитов для получения достоверной картины заражлнности ими рыбы проводится ел дополнительное обследование методом неполного паразитологического вскрытия Однокурцев В.А., Апсолихова О.Д. Паразитарные болезни рыб и их влияние на рыбную продукцию, и здоровье человека / В.А. Однокурцев, О.Д. Апсолихова // Альманах современной науки и образования.- № 11. (30). - Ч. 1. - Тамбов, 2009. - С. 150-153.

Упрощлнный метод позволяет более или менее достоверно отметить или очень благополучное состояние рыбы (когда паразитов очень мало), или ел очень высокую зараженность, или же установить наличие в ней патогенных для человека гельминтов.

Результаты упрощлнного паразитологического обследования рыбы-сырца не исключают необходимости проведения паразитологического инспектирования соответствующих партий рыбы в лабораторных условиях.

Первоначально проводят внешний осмотр рыбы, отмечая изъязвления, покраснения, папилломы, крупных паразитов или их остатки, наличие которых может отрицательно повлиять на товарную ценность рыбы или вызвать нарекания со стороны потребителей.

Затем ножницами делают разрез по брюшку от анального отверстия к голове, вырезают часть брюшной стенки и осматривают брюшную полость на наличие крупных форм паразитов, а также паразитов из категории потенциально опасных для здоровья человека. Далее перерезают пищеварительный тракт впереди у пищевода и сзади, у анального отверстия. Кишечник с печенью и другими внутренними органами и тканями извлекают и выбрасывают, стараясь при этом не повредить пищеварительный тракт, чтобы его содержимое вместе с находящимися в нлм паразитами не попало в брюшную полость. Если печень, икра или молоки предназначаются для пищевого использования, их внимательно осматривают. Для этого на них нужно сделать один - два разреза, чтобы убедиться в отсутствии внутри заметных признаков поражений.

Далее на каждой боковой стороне рыбы скальпелем (хирургическим ножом) делают по 2-3 (их количество зависит от размеров рыбы) продольных разреза, проходящих от головы до хвоста через всю толщу мяса от поверхности тела до позвоночника. Раздвигая разрезы, осматривают их поверхность в ярком падающем свете для выявления паразитов, которые могут находиться в мышечной ткани. Если чешуя у рыбы плотная, ел следует счистить по линиям предполагаемого разреза.

Техника неполного паразитологического вскрытия. В случае обнаружения в рыбе паразитов, потенциально опасных для здоровья человека или отрицательно влияющих на товарные качества рыбной продукции, для получения более достоверной картины заражлнности им рыб дополнительно проводят неполное паразитологическое вскрытие этого вида рыбы только на данный вид паразита. Техника неполного паразитологического вскрытия зависит от особенностей локализации выявленного паразита.

3. Результаты и их обсуждение

3.1 Основная группа паразитов, обнаруженная у карпа Янгиюльского рыбопитомника

Наиболее ответственные периоды жизни паразиты проводят в организме хозяина, с которым вступают во взаимоотношения, совершенно отличные от взаимоотношений свободноживущих организмов со средой. Одна из основных форм связи организмов со средой - питание - у паразитов имеет принципиально другое значение, чем у свободноживущих животных. Причины изменений численности и структуры популяций и механизмы, регулирующие эти процессы, у паразитов во многом отличаются от действующих в популяциях свободноживущих организмов Османов С.О. Паразиты и болезни прудовых рыб Узбекистана. - Ташкент: Наука, 1965. - 114 с.

Понятно, что взаимоотношения паразита и хозяина являются совершенно особым типом межвидовых отношений, основу которых, в значительной мере, составляют паразитарные процессы при наличии определенных ценотических связей. Заглатывание, например, корацидия ленточных червей рачком - первым промежуточным хозяином, заглатывание инвазированных процеркоидами рачков - рыбой - вторым промежуточным хозяином и заглатывание зараженных плероцеркоидами рыб рыбоядными птицами - окончательным хозяином - являются условием развития данной особи цестоды и завершения её жизненного цикла. Аналогичные примеры можно привести и по отношению представителей классов трематод, скребней и нематод, материалы которых представлены в предыдущих разделах настоящей работы.

Классифицируя пути проникновения гельминтов в организм окончательного хозяина выделяются следующие способы:

1. Гельминт проникает в организм хозяина при поедании других организмов, которые, являясь промежуточными или резервуарными хозяевами, служат объектами его питания;

2. Гельминт попадает в качестве механической примеси к корму или воде;

3. Паразит активно проникает в организм хозяина через его покровы.

В передаче инвазионных личинок гельминтов карповых участвуют представители многих классов как беспозвоночных, так и позвоночных.

Олигохеты и циклопы - служат промежуточными хозяевами 13 видам цестод, заражение рыб семейства Cyprinidae личинками этих червей происходит только при заглатывании зараженных беспозвоночных. Заражение птиц - окончательных хозяев - лигулидами происходит при поедании карповых, инвазированных плероцеркоидами ремнецов. Пресноводные моллюски служат промежуточными хозяевами отмеченных нами 18 видов трематод. Для некоторых видов роль второго промежуточного хозяина выполняют рыбы, в том числе и карповые. Ракообразные (планктонные) олигохеты и насекомые являются промежуточными хозяевами нематод и акантоцефал - паразитов рыб семейства Cyprinidae в водоемах бассейна реки Сырдарья. Для нескольких видов паразитов роль второго промежуточного хозяина - выполняют стрекозы, вислокрылки, пиявки и карповые рыбы.

В гельминтофауне рыб семейства Cyprinidae резко преобладают паразиты, сопряженные с хозяевами трофическими связями (96 % от общего числа видов).

К этой группе относятся все цестоды и скребни, 94.4% видов трематод и 93 % - нематод. Заражение карповых гельминтами топическим путем составляет всего лишь - 8.2 % Алламуратов Б.А. Паразитические простейшие рыб водоемов Средней Азии (фауна, систематика, экология, зоогеорафия и меры борьбы).: Автореф. дис. … докт. биол. наук. - Ташкент, 1995. - 67 с.

Анализ представленных материалов по экологическим связям рыб семейства Cyprinidae с паразитами, заражающими хозяев трофическими способами, оказывают большое влияние на состав их гельминтофауны.

У карпа в рыбопитомнике обнаружили всего 7 видов гельминтов: Dactylogyrus vastator; Diplozoon paradoxum, Khawia sinensis, Bothriocephalus acheilognathi, Acanthocephalus sp., Philometroides lusiana, Piscicola geometra.

У сеголеток карпа зарегистрировали три вида гельминтов (табл. 1).

Моногенеи Dactylogyrus vastator встречались с экстенсивностью 35,1 % при интенсивности от 1 до 2 экземпляров паразита на хозяине. Паразит со сложным циклом развития: цестода Khawia sinensis поражала сеголеток карпа с экстенсивностью 5,4 % при интенсивности один экземпляр паразита на рыбу. Кавиями сеголетки заражались, поедая олигохет. Пиявки Piscicola geometra найдены с экстенсивностью 2,7 % при интенсивности один экземпляр паразита.

У годовиков карпа обнаружены пять видов гельминтов (табл. 2). В гельминтофауне зарегистрировали два вида паразитов с прямым циклом развития: моногенеи Dactylogyrus vastator и Diplozoon paradoxum. D.vastator встречен с экстенсивностью 37,5 % при интенсивности от 2 до 44 экземпляров на рыбу. D. paradoxum заражал карпа с экстенсивностью 6,25 % при интенсивности один экземпляр.

Были найдены три вида паразитов со сложным циклом развития: цестоды Khawia sinensis, Bothriocephalus acheilognathi и скребни Acanthocephalus sp., Kh. Sinen sis поражали годовиков карпа с экстенсивностью 31,2 % при интенсивности от 1 до 6 экземпляров. B. acheilognathi встречался с экстенсивностью 12,5 % при интенсивности от 1 до 6 экземпляров. Скребни были найдены с экстенсивностью 6,25 % при интенсивности два экземпляра на рыбу. Кавиями годовики заражаются, поедая олигохет, ботриоцефалюсами - питаясь веслоногими ракообразными, а акантоцефалюсами - через водяных осликов.

У двухлеток карпа зарегистрировали 3 вида гельминтов (табл. 3).

Из них один вид гельминтов с прямым циклом развития - моногенеи Dactylogyrus vastator, которые встречались с экстенсивностью 37,5 % при интенсивности от 1 до 16 экземпляров. Были обнаружены два вида паразитов со сложным циклом развития: цестоды Khawia sinensis и нематоды Philometroides lusiana. K. sinensis поражали двухлеток карпа с экстенсивностью 25 % при интенсивности от 1 до 4 экземпляров, а Ph. lusiana встречались с экстенсивностью 87,5 % при интенсивности от 1 до 21 экземпляра. Кавиями заражаются двухлетки карпа, питаясь олигохетами, филометроидесами - через веслоногих ракообразных.

В результате наших исследований у карпа в прудах рыбопитомнике было обнаружено 7 видов гельминтов, из них 3 вида с прямым циклом развития и 4 со сложным циклом развития. Гельминтофауна карпа в хозяйстве изменяется в зависимости от возраста рыбы (табл. 4).

Источником инвазионного начала молоди карпа моногенеями Dactylogyrus vastator и Diplozoon paradoxum могут быть зараженные производители и сорные рыбы. Кроме того, молодь карпа может заразиться в выростных прудах личинками паразита, которые вылупились из яиц гельминтов, оставшихся на ложе пруда с прошлого года.

Заражение пиявкой Piscicola geometra может быть результатом повышенного зарастании прудов высшей водной растительностью.

Из паразитов со сложным циклом обнаружили четыре вида паразитов: два вида цестод (Khawia sinensis, Bothriocephalus acheilognathi), один вид скребней Acanthocephalus sp., и один вид нематод Philometroides lusiana. Кавиями все возрастные группы карпа заражались через олигохет. Ботриоцефалюсов годовики приобретают, питаясь веслоногими ракообразными, а акантоцефалюсов - через водяных осликов. Филометроидесами двухлетки карпа заражаются, поедая инвазированных веслоногих ракообразных.

Таблица 1

Гельминтофауна сеголеток карпа рыбопитомнике

п/п	Название гельминта	Локализация	Экстенсивность %	Интенсивность экз.	Индекс обилия, экз.
1	Dactylogyrus vastator	жабры	33,4	1 - 2	1,5
2	Khawia sinensis	кишечник	4,8	1	1
3	Piscicola geometra	ротовая полость	2,3	1	1

Таблица 2

Гельминтофауна годовиков карпа рыбопитомнике

п/п	Название гельминта	Локализация	Экстенсив- ность, %	Интенсив- ность экз.	Индекс обилия
1	Dactylogyrus vastator	жабры	33,7	2 - 42	11,2
2	Diplozoon paradoxum	жабры	5,7	1	1
3	Khawia sinensis	кишечник, полость тела	28,8	1 - 6	2,5
4	Bothriocephalus acheilognathi	кишечник	11,3	1 - 6	3,4
5	Acanthocephalus sp.	кишечник	5,8	2	2

Таблица 3

Гельминтофауна двухлеток карпа рыбопитомнике

п/п	Название гельминта	Локализация	Экстенсивность %	Интенсивность экз.	Индекс обилия, экз.
1	Dactylogyrus vastator	жабры	36,4	1 - 15	10
2	Khawia sinensis	кишечник	23	1 - 4	2,2
3	Piscicola geometra	чешуйные кармашки	85,3	1 - 20	7,1
4	Philometroides lusiana	плавники	86,3	1 - 21	7,1

Таблица 4

Экстенсивность и интенсивность заражения гельминтами разновозрастных групп карпа

п/п	Название гельминта	Возрастные группы карпа
		сеголетки	годовики	двухлетки
		экс., %	инт., экз	экс., %	инт., экз	экс., %	инт., экз
1	Dactylogyrus vastator	33,4

Подобные документы

• К вопросу изучения влияния заражения амебоидными организмами на заболевание жабр у карпа

  Заболевание и гибель рыб. Заболевания жабр у различных видов рыб. Заболевание двухлетков карпа, выращиваемых в нагульных прудах. Патологические изменения жаберного аппарата рыб. Гистопатологические изменения в жабрах. Влияние амеб на здоровье рыб.
  
  научная работа [532,7 K], добавлен 06.06.2014
  

• Болезни рыб

  Причины возникновения массовых заболеваний среди рыб. Инвазионные болезни и моногеноидозы, их возбудители. Проявление простуды у рыб, болезни плавательного пузыря, нарушение обмена веществ. Продырявливание жаберной крышки. Меры борьбы с заболеваниями.
  
  реферат [48,4 K], добавлен 09.12.2010
  

• Строение рыб

  Эмбриональный период развития рыбы. Особенности питания рыб. Строение и длина пищеварительного тракта, нервная система и органы размножения рыб. Личиночно-мальковая стадия развития рыб, ее биологические циклы. Стадии постэмбрионального развития карпа.
  
  реферат [982,1 K], добавлен 05.06.2010
  

• Исследование технологии выращивания растительноядных рыб

  Биологическое обоснование выбора объектов выращивания: карпа, пестрого толстолобика, белого амура, щуки. Биотехника выращивания растительноядных рыб. Проведение рыбоводных расчётов: таблица бионормативов, количество корма, удобрений, оборудования.
  
  курсовая работа [1,1 M], добавлен 11.09.2010
  

• Обитатели водоёмов нашей местности

  Рыбы семейства карповых. Промысловые рыбы как объект прудового хозяйства. Ареал обитания, строение тела, максимальная продолжительность жизни, поведение и повадки карася, леща, карпа, сазана, щуки, пескаря, линя, язя, ротана, ёрга и речного окуня.
  
  презентация [985,4 K], добавлен 19.01.2014
  

• Биотехнология разведения и выращивания в Республике Татарстан

  Основные технологические процессы разведения и выращивания карпа. Проектирование тепловодного, полносистемного рыбоводного хозяйства с двухлетним оборотом на реке Волге в республике Татарстан. Устройство и принцип действия гидротехнического сооружений.
  
  курсовая работа [982,7 K], добавлен 20.07.2015
  

• Основы биологических знаний

  История становления и современное состояние клеточной теории. Биосинтез белка. Формы полового и бесполого размножения, их биологическое значение. Жизненный цикл паразитов. Этапы происхождения жизни на Земле. Строение и виды хромосом. Норма реакции.
  
  курсовая работа [51,9 K], добавлен 19.05.2010
  

• Инвазионные заболевания рыб

  Возбудители протозойных заболеваний. Кокцидиоз семенников сельдевых. Заражение морских рыб взрослыми формами трематод. Методика исследования инвазионных заболеваний. Эпидемиологическое значение паразитов морских рыб. Болезни, вызываемые инфузориями.
  
  курсовая работа [48,9 K], добавлен 04.10.2011
  

• Технология выращивания растительноядных рыб

  Интенсивная технология выращивания карпа и растительноядных рыб. Выращивание линя. Разведение черного амура: требования к пруду, выращивание племенного материала, искусственное воспроизводство, подращивание личинок и требования к составу кормовой базы.
  
  контрольная работа [14,3 K], добавлен 26.02.2009
  

• Биологическая характеристика и промысловое значение тарани Ейского лимана

  Систематическое положение и географическое распространение тарани. Исследование морфологических признаков, особенностей размножения и питания. Оценка влияния рыбоядных птиц на численность популяции тарани и распространение гельминтозных заболеваний рыб.
  
  дипломная работа [1,1 M], добавлен 09.10.2013
  

• главная
• рубрики
• по алфавиту
• вернуться в начало страницы
• вернуться к началу текста
• вернуться к подобным работам