Влияние никотина на активность основных карбоксипептидаз в отделах мозга и надпочечниках крыс

Двухфазное действие на высшую нервную деятельность токсических доз никотина. Эксперимент на самцах белых беспородных крыс по выявлению влияния острого воздействия никотина на активность карбоксипептидаз. Ее активность в отделах мозга и надпочечниках.

Рубрика Биология и естествознание
Вид статья
Язык русский
Дата добавления 19.07.2009
Размер файла 28,1 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

11

Кафедра биохимии

Пензенского государственного педагогического

университета им. В.Г. Белинского

Влияние никотина на активность основных карбоксипептидаз в отделах мозга и надпочечниках крыс

В.Б. Соловьев, М.Т. Генгин

Изучено влияние острого воздействия никотина на активность карбоксипептидазы Н и фенилметилсульфонилфторид-ингибируемой карбоксипептидазы - основных карбоксипептидаз, отщепляющих остатки аргинина и лизина с С-конца молекул-предшественников биологически активных пептидов. Предполагается, что изменение активности исследуемых ферментов может быть одним из механизмов регуляции уровня нейропептидов при действии токсических доз н-миметиков.

Ключевые слова: никотин, нейропептиды, карбоксипептидаза Н, фенилметилсульфонилфторид-ингибируемая карбоксипептидаза, мозг, надпочечники.

Токсические дозы никотина оказывают двухфазное действие на высшую нервную деятельность (ВНД): начальное угнетение с последующей активацией функций [1, 2]. Влияние, оказываемое никотином на нервную систему, не связано с периферическим эффектом вещества, так как при введении йодметилата никотина, не проникающего через гематоэнцефалический барьер, периферические эффекты сохраняются, а характер условно-рефлекторной деятельности не изменяется [3]. Связывание никотина с н-холинорецепторами в центральной нервной системе и мозговом слое надпочечников [4] объясняет свойства никотина, обусловливающие возникновение пристрастия и некоторые поведенческие симптомы этого явления. Однако многообразие фармакологических эффектов токсических доз н-холинотропных препаратов трудно объяснить только с этой позиции.

Результаты исследований последних лет свидетельствуют о выраженном ответе пептидергической системы на действие агонистов н-холинорецепторов [5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12]. Установлено, что их введение вызывает непродолжительное снижение концентрации целого ряда регуляторных пептидов, таких как нейропептид Y, лютеинизирущий гормон и др. [8, 9] с последующим повышением уровня энкефалинов, в-эндорфина, вазопрессина и др. нейропептидов [10, 11, 12]. Молекулярные механизмы действия н-холиномиметиков на уровень биологически-активных пептидов не изучены.

Активная форма регуляторных пептидов образуется в результате протеолитического процессинга пропептидов [13]. В конечных стадиях этого процесса образования биологически-активных пептидов участвуют основные карбоксипептидазы - экзопептидазы, отщепляющие "лишние" остатки аргинина и лизина с С-конца пропептидов [13], в частности карбоксипептидаза Н (КПН) (К. Ф.3.4 17.10) и недавно открытая фенилметилсульфонилфторид-ингибируемая карбоксипептидаза (ФМСФ-КП) (К. Ф.3.4 ?.?) [13]. Известно, что КПН участвует в биосинтезе многих нейропептидов, таких как инсулин, глюкагон, энкефалины, АКТГ, вазопрессин, окситоцин, вещество P, атриальный натрийуретический фактор [13]. Поскольку многие из этих пептидов принимают участие в ответе организма на введение н-холинотропных препаратов [10, 11, 12], то возможно, что КПН вовлекается в развитие этих реакций. Предполагают, что функции ФМСФ-КП сходны с таковыми КПН [13]. Однако роль этого фермента остается до конца не изученной.

Таким образом, целью данной работы было изучение активности КПН и ФМСФ-КП при остром введении н-холиномиметика никотина в отделах головного мозга и надпочечниках крыс, характеризующихся высоким уровнем регуляторных пептидов.

Материалы и методы

Эксперимент выполнен на самцах белых беспородных крыс массой 200-300 г. Никотин вводили внутрибрюшинно в физрастворе в дозе 1 мг/кг. Контрольной группе животных вводили равное количество физраствора. Эвтаназию животных осуществляли путем декапитации под хлороформной анестезией через 0.5, 4, 24 и 72 ч после инъекции, извлекали надпочечники, головной мозг и разделяли его на отделы. Навески ткани гомогенизировали в 50 мМ натрий ацетатном буфере, содержащем 50 мМ NaCl, рН 5,6, в соотношении 1: 50 (вес: объем). В полученном гомогенате определяли активность КПН и ФМСФ-КП флюорометрическим методом L. D. Fricker and S. H. Snyder [14] с модификациями как описано ранее [15], содержание белка методом Лоури [16].

Достоверность отличий между средними определяли с использованием t-критерия Стьюдента [17]. Дисперсионный анализ проводили с помощью программы Microsoft Office Excel 2003. Принадлежность подгрупп животных к разным гомогенным группам оценивали с помощью метода Шеффе. Принадлежность экспериментальных (временных) подгрупп к разным гомогенным группам проводили только в случае достоверности критерия Фишера. При этом оценивали количество гомогенных групп, образуемых экспериментальными подгруппами, с уровнем достоверности р<0,05. Затем производили сравнение значений каждой из подгрупп дисперсионного комплекса по методике Ньюмена-Кейлса [17].

Результаты и их обсуждение

Результаты исследования активности КПН в отделах мозга и надпочечниках самцов крыс при введении никотина в дозе 1 мг на кг массы представлены на рис.1. Активность фермента снижалась примерно на 40-45% по сравнению с контрольными животными в стриатуме через 0,5 ч после инъекции, в гипофизе через 4 ч, в обонятельном мозге и гипоталамусе через 24 ч и в четверохолмии через 72 ч. Через 0,5 и 4 ч после инъекции активность исследуемой карбоксипептидазы в гиппокампе по сравнению с контрольными самцами была ниже примерно на 30-35%. В продолговатом мозге наблюдалось снижение активности фермента через 4 ч на 45% и через 72 ч на 35%. В надпочечниках активность КПН снижалась относительно контроля через 0,5 ч на 50%, через 4 ч на 90%, а через 72 ч повышалась на 45%.

Дисперсионный анализ показал отсутствие влияния времени на активность КПН при введении никотина в гипофизе, гипоталамусе, стриатуме, четверохолмии, обонятельном и продолговатом мозге (таблица 1). В гиппокампе активность фермента повышается через 4 ч, затем через 24 ч снижается, но остается повышенной по сравнению с 0,5 ч; через 72 ч активность КПН остается повышенной по сравнению с уровнем 0,5 ч, но не отличается от 4 ч и 24 ч. В надпочечниках наблюдается U-образная динамика изменения активности фермента: снижение активности через 4 ч после инъекции, повышение через 24 ч до уровня 0,5 ч с дальнейшим повышением активности через 72 ч.

Данные об изменении активности ФМСФ-КП при введении никотина в дозе 1 мг/кг представлены на рис.2. В гипофизе активность фермента снижалась по сравнению с контрольной группой через 0,5 ч в 20 раз, через 4 ч в 15 раз, через 24 ч в 5 раз, а через 72 ч наблюдалось двукратное повышение активности. В обонятельном и продолговатом мозге наблюдалось снижение активности ФМСФ-КП через 4 ч на 30% по отношению к контрольным животным. Никотин вызывал снижение активности данной карбоксипептидазы в гиппокампе на 45% через 0,5 ч после инъекции. В надпочечниках активность ФМСФ-КП снижалась примерно на 65% по сравнению с контрольной группой через 0,5 ч и 4 ч после инъекции. Снижение активности исследуемой карбоксипептидазы после введения никотина происходило в гипоталамусе спустя 72 ч. Активность фермента снижалась в стриатуме на 35-40% через 0,5 ч и 4 ч, затем повышалась на 30% через сутки после введения никотина. В четверохолмии никотин не оказывал влияния на активность исследуемого фермента во все исследованные временные интервалы.

Достоверная зависимость активности ФМСФ-КП от времени после введения никотина наблюдалась в четверохолмии, гипоталамусе и надпочечниках (таблица 2). В четверохолмии наблюдается снижение активности ФМСФ-КП лишь спустя сутки после инъекции по сравнению с 0,5 и 4 ч, с сохранением пониженного уровня активности фермента по прошествии трех суток. В гипоталамусе активность исследуемой карбоксипептидазы повышалась через 4 ч, возвращаясь к уровню 0,5 ч спустя сутки после введения никотина. В надпочечниках время после инъекции достоверно влияло на активность ФМСФ-КП: активность плавно повышалась к 24 ч и оставалась повышенной через 72 ч. Достоверной зависимости активности ФМСФ-КП от времени после введении никотина в остальных отделах нервной системы самцов крыс не обнаружено.

Таким образом, введение никотина вызывает повышение активности КПН в надпочечниках через 72 ч после инъекции; активность ФМСФ_КП при действии повышается в гипофизе через 72 ч, а в стриатуме через 24 (рис.1-2). Повышение активности ферментов процессинга нейропептидов в гипофизе, стриатуме и надпочечниках через сутки и трое суток после введения никотина согласуется результатами исследований, в которых показана двухфазность действия никотина на нервную систему - первоначальное угнетение функций с последующим возбуждением [1, 2], что сопровождается фазностью изменения уровня многих нейропептидов [10, 11, 12]. Значительное снижение активности исследуемых карбоксипептидаз через 0,5 ч и 4 ч после инъекции никотина с последующим повышением активности через 24 ч (в стриатуме) и 72 ч (в гипофизе и надпочечниках) может быть одним из механизмов, участвующих в проявлении двухфазного действия никотина, что подтверждается также U-образной динамикой изменения активности ферментов по данным анализа Шеффе.

Наиболее выраженное влияние никотина на активность обоих исследуемых ферментов наблюдалось в гипофизе (рис.1-2), отделе, синтезирующем ряд гормонов, в том числе лютеинизирующий (ЛГ) и фолликулостимулирующий (ФСГ) гормоны [18]. Повышение концентрации агонистов н-ХР в мозге при парентеральном введении никотина, по-видимому, в первую очередь затрагивает гипофиз и надпочечники. Есть данные об участии н-холинергической системы в контроле тонической секреции гонадотропинов у самок [6]. Изменение активности исследуемых карбоксипептидаз в гипофизе крыс согласуется с изменением секреции ФСГ в присутствии никотина [6]. Возможно, что изменение активности исследуемых ферментов, которые участвуют в процессинге предшественников гонадотропных гормонов гипофиза, является одним из механизмов снижения синтеза и секреции ЛГ и ФСГ никотином.

Известно, что гонадотропин-рилизинг-фактор (ГнРФ) синтезируется в виде высокомолекулярного предшественника - препрогонадотропин-рилизинг-фактора (препроГнРФ) [18]. Последний состоит из сигнального пептида (23 аминокислотных остатка), ГнРФ (10 аминокислотных остатка), остатка глицина, сайта процессинга из двух аминокислотных остатка - Lys-Arg и гонадолиберин-ассоциированного пептида (56 аминокислотных остатка). В ходе посттрансляционной модификации происходит отщепление сигнального пептида, а также разделение ГнРФ и гонадолиберин-ассоциированного пептида в сайте процессинга [19, 20]. Субстратная специфичность обеих исследуемых карбоксипептидаз позволяет предположить их участие в процессинге препроГнРФ. Поскольку никотин снижает синтез и секрецию ГнРФ [6], то снижение активности КПН и ФМСФ-ингибируемой КП в гипоталамусе крыс может являться одним из способов регуляции ГнРФ н-холинреактивными нейронами.

Полученные в работе данные позволяют предположить, что вызванные введением никотина изменения в активности основных карбоксипептидаз являются одним из факторов, обуславливающих изменения в уровне регуляторных пептидов.

Список литературы

1. Morrison C. F. // Int. J. Neuropharmacol. 1967. N 6. P.229.

2. Morrison C. F. // Psychopharmacologia. 1969. N 21. P.35.

3. Лукомская Н.Я. Физиологическая роль ацетилхолина и изыскание новых лекарственных веществ. Л.: Медицина. 1957.226 с.

4. Харкевич Д.А. Фармакология. М.: Гэотар медиа. 2000.664 с.

5. Крылов С.С., Ливанов Г.А., Петров А.Н., Семенов Е.В., Спринц А.М., Бучко В.М. Клиническая токсикология лекарственных средств. Холинотроп-ные препараты. Санкт-Петербург.: Лань, 1999.160 с.

6. Andersson K., Eneroth P., Fuxe K., Harfstrand A. // Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 1998. V 337, N 2. P.131-139.

7. Gower W. R., Dietz J. R., McCuen R. W., et al. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2003, V 284, N 1. P.68-74.

8. Chen H., Hansen M. J., Jones J. E., Vlahos R., Bozinovski S., Anderson G. P., Morris M. J. // American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 2006, N 173, P.1248-1254

9. Funabashi T., Sano A., Mitsushima D., Kimura F. // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2005. V 90. N 7. P.3908-3913

10. Wang X., Bacher B., Hцllt V. // Clin Investig. 1994. V 72. N 11. P.925_933

11. Finch C. K., Andrus M. R., Curry W. A. Nicotine Replacement Therapy-associated Syndrome of Inappropriate Antidiuretic Hormone // South Med J. 1997. N 3. P.322-324

12. Kilpatrick D. L. Release of enkephalins and enkephalin-containing polypeptides from perfused beef adrenal glands // Neurobiology. 1980. V 77. N 12. P.7473-7475

13. Генгин М.Т. Особенности структурно-функциональной организации и физико-химические свойства нелизосомальных пептидгидролаз мозга животных: Автореф. дис. … док. биол. наук. Москва. 2002. - 35 с.

14. Fricker L. D., Snyder S. H. // J. Biol. Chem. 1983. V 258. N 18. P.10950-10955.

15. Генгин М.Т., Соловьев В.Б. // Нейрохимия. 2007. Т.24. № 2. С.138-142.

16. Lowry O. H., Rosebrought N. J., Farr A. G., Randall R. J. Protein measurement with Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. № 1. P.265-275.

17. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. - 352 с.

18. Бабичев В.Н., Миронов С.Ф. // Пробл. эндокринол. 1981. № 3. С.78_85.

19. Гомазков О.А. // Биологические науки. 1986. № 2. С.13-23.

20. Азарян А.В. Пептидгидролазы нервной системы и их биологические функции. Ереван: Айастан. 1989.208 с.

Effect of single nicotine administration on the activities of basic carboxypeptidases in rat brain regions and adrenal glands

V. B. Solovev, M. T. Gengin

Department of Biochemistry, Penza State Pedagogical University

E-mail: solowew@rambler.ru

The effect of a single nicotine administration on the activities of basic carboxypeptidases taking part in the final stage of formation of biologically active neuropeptides from precursors was studied. Changes in the enzymes' activities after administration were evident during at least 72 h. The results suggest that one of possible mechanisms of changing of neuropeptides levels by nicotine is revising of activity of enzymes taking part in there metabolism - carboxypeptidase H and phenylmethylsulphonilfluoride-inhibited carboxypeptidase.

Дисперсионный анализ влияния времени на активность карбоксипептидазы Н при введении никотина (значения отношения Фишера Fф и значения критерия Шеффе Fш по методике сравнения Ньюмена-Кейлса). Здесь и в таблице 2: * - р < 0,05, ** - р < 0,01, *** - р < 0,001 относительно дисперсионных групп в порядке сравнения.

Таблица 1.

Отделы нервной системы

Fф

Fш

2-1

3-2

3-1

4-3

4-2

4-1

гипофиз

3,26

-

-

-

-

-

-

обонятельный мозг

0,94

-

-

-

-

-

-

четверохолмие

1,27

-

-

-

-

-

-

продолговатый мозг

1,05

-

-

-

-

-

-

гипоталамус

0,65

-

-

-

-

-

-

гиппокамп

6,34*

9,62**

4,58*

5,03*

2,49

2,09

7,5**

стриатум

2,24

-

-

-

-

-

-

надпочечники

30,2**

6,41**

9,17**

2,41

10,4**

19**

12**

Дисперсионный анализ влияния времени на активность ФМСФ-КП при введении никотина (значения отношения Фишера Fф и значения критерия Шеффе Fш по методике сравнения Ньюмена-Кейлса).

Таблица 2.

Отделы нервной системы

Fф

Fш

2-1

3-2

3-1

4-3

4-2

4-1

гипофиз

2,82

-

-

-

-

-

-

обонятельный мозг

3,27

-

-

-

-

-

-

четверохолмие

4,78*

1,42

6,59**

4,78*

1,39

4,82*

3,22

продолговатый мозг

0,84

-

-

-

-

-

-

гипоталамус

9,41**

8,12**

7,55**

0,16

2,51

10,1**

2,49

гиппокамп

2,42

-

-

-

-

-

-

стриатум

2,03

-

-

-

-

-

-

надпочечники

43,1**

12,4**

10,9**

23,3**

2,13

8,75**

21**


Подобные документы

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.