Цитогенетичні ефекти дії нітрозоетилсечовини у пшениці озимої

Використання хромосомних аберацій для моніторингу мутагенних ушкоджень на рівні хромосомного апарату клітини. Аналіз хромосомних аберацій на препаратах мітозів верхівок первинних коренів сортів озимої пшениці на пізній стадії метафази та ранній анафазі.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид статья
Язык украинский
Дата добавления 12.12.2023
Размер файла 106,7 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Дніпровський державний аграрно-економічний університет

ЦИТОГЕНЕТИЧНІ ЕФЕКТИ ДІЇ НІТРОЗОЕТИЛСЕЧОВИНИ У ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ

Горщар В.І. - к.с.-г.н.,

доцент кафедри рослинництва,

Назаренко М.М. - д.с.-г.н.,

професор кафедри селекції і насінництва

Анотація

Використання хромосомних аберацій для моніторингу мутагенних ушкоджень на рівні хромосомного апарату клітини має досить довгу історію як у плані дослідження цитогенетичної активності окремих препаратів, так і для моніторингу впливу різних антропогенних чинників, передусім пов'язані з різними типами хімічних і радіаційних забруднень. Насіння 8 сортів пшениці озимої Балатон, Боровиця, Зелений Гай, Золото України, Каланча, Нива Одеська, Полянка, Почайна обробляли розчином хімічного мутагену нітрозоетилсечовини (НЕС) у концентраціях 0,01 та 0,025%. Методом світлової мікроскопії проводили аналіз хромосомних аберацій на препаратах мітозів верхівок первинних коренів сортів озимої пшениці на пізній стадії метафази та ранній анафазі. В цілому цитогенетична активність даного мутагену була доволі високою. Досліджували такі показники як загальна частота, фрагменти (одинарні та подвійні), мости (також одинарні - хроматидні - та подвійні - хромосомні), більш рідкісні аберації як мікроядра, відстаючі хромосоми. Окремо враховувалися клітини з множинними хромосомними абераціями (комплексними). Значимо підвищення концентрації вплинуло на всі показники, різниця по генотипу дії була значущою лише для кількості інших аберацій. Кількість клітин з двома і більше абераціями зазвичай є вкрай надійним і достовірним параметром, який відображає підвищення концентрації (дози) мутагену. За модельними ознаками для генотипів відрізняються лише присутності рідкісних типів аберацій (мікроядер, що відстають хромосом). Очевидно, саме ця частина спектра і зумовила зміни за загальною частотою цитогенетичних порушень, які вплинули на відмінності двох сортів від інших за характером мінливості на клітинному рівні. Сайт-специфічні можливості мутагену проявляються саме таким чином, а не через індукцію фрагментів і мостів, які мають більш загальний характер. При цьому в цілому не варто очікувати особливо високих параметрів мінливості на рівні організму, також мутаген у своїх концентраціях, що застосовуються, не досяг значних летальних величин для даних генотипів. Дослідження цитогенетичних параметрів активності навіть порівняно непогано вивчених мутагенних факторів має сенс в аспекті їх взаємодії, менш ушкоджуючи речовини деколи показують досить значні ефекти з точки зору як індукції загальної частоти перебудов, так і їх співвідношень у спектрі.

Ключові слова: пшениця озима, нітрозоетилсечовина, цитогенетика, хромосомні аберації.

Annotation

Horshchar V.I., Nazarenko M.M. Cytogenetic effects of nitrosoethylurea action for winter wheat

The use of chromosomal aberrations to monitor mutagenic damage at the level of the chromosomal apparatus of the cell has a long history, both in terms of studying the cytogenetic activity of individual substances and for monitoring the impact of various anthropogenic factors, primarily related to various types of chemical and radiation pollution. Seeds of 8 winter wheat varieties Balaton, Borovytsia, Zeleny Gai, Zoloto Ukrainy, Kalancha, Niva Odeska, Polyanka, Pochayna were treated with a solution of the chemical mutagen nitrosoethylurea (NES) in concentrations of 0.01 and 0.025%. Analysis of chromosomal aberrations was performed using light microscopy on preparations of mitoses of the tips of primary roots of winter wheat varieties at the late stage of metaphase and early anaphase. In general, the cytogenetic activity of this mutagen was quite high. We studied such indicators as the total rate, fragments (single and double), bridges (also single - chromatid - and double - chromosomal), rarer aberrations such as micronuclei, lagging chromosomes. Cells with multiple chromosomal aberrations (complex) were taken into account separately. A significant increase in concentration affected all indicators, the difference by genotype was significant only for the number of other aberrations. The number of cells with two or more aberrations is usually an extremely reliable and reliable parameter that reflects an increase in the concentration (dose) of the mutagen. Only the presence of rare types of aberrations (micronuclei lagging behind chromosomes) differ according to the model features for the genotypes. Obviously, it was this part of the spectrum that led to changes in the general frequency of cytogenetic disorders, which affected the differences of the two varieties from others in the nature of variability at the cellular level. The site-specific capabilities of the mutagen are manifested in this way, and not through the induction of fragments and bridges, which are more general in nature. At the same time, in general, one should not expect particularly high parameters of variability at the level of the organism, and the mutagen in its applied concentrations did not reach significant lethal values for these genotypes. The study of the cytogenetic parameters of the activity of even relatively well-studied mutagenic factors makes sense in terms of their interaction, less damaging substances sometimes show quite significant effects from the point of view of both the induction of the overall frequency of rearrangements and their ratios in the spectrum.

Key words: winter wheat, nitrosoethylurea, cytogenetics, chromosomal aberrations.

Постановка проблеми

Використання хромосомних аберацій для моніторингу мутагенних ушкоджень на рівні хромосомного апарату клітини має досить довгу історію як у плані дослідження цитогенетичної активності окремих препаратів, так і для моніторингу впливу різних антропогенних чинників, передусім пов'язані з різними типами хімічних і радіаційних забруднень [2, 9]. Методологічно, розробка протоколу застосування певного чинника для індукції мутацій не може проходити без тесту його цитогенетичної активності для визначення загального рівня мінливості при впливі, встановлення порогових значень з точки зору летальних порушень у функціонуванні спадкового апарату [1, 3].

Аналіз останніх досліджень і публікацій

При первинному дослідженні характеру впливу хімічного мутагенного чинника мають значення такі показники як загальна частота хромосомних перебудов, співвідношення окремих типів аберацій, наявність рідкісних типів змін [4, 5]. Також за динамікою частоти перебудов можна судити по пороговому значенню даного чинника з точки зору практичного застосування для генетичного поліпшення даного сорту/гібриду [6, 8].

Хоча безпосередньо неможливо ув'язати певні типи перебудов із змінами у господарсько-цінних ознак, проте, правильний підбір (який починається з тестів цитогенетичної активності) генотипу в залежності від механізмів генетично-обумовленої толерантності до мутагенного впливу, відмінностями в геномі (що призводить до змін ступеня спорідненості до хімічного супермутагену та різної активності окремих ділянок, виникнення нових асоціацій генів) призводить до активізації корисних змін [7, 9].

Постановка завдання

Насіння 8 сортів пшениці озимої Балатон, Боровиця, Зелений Гай, Золото України, Каланча, Нива Одеська, Полянка, Почайна обробляли розчином хімічного мутагену нітрозоетилсечовини (НЕС) у концентраціях 0,01 та 0,025%. Для кожної обробки були використані 1000 зерен пшениці озимої. Експозиція дії мутагену становила 18 годин.

Методом світлової мікроскопії проводили аналіз хромосомних аберацій на препаратах мітозів верхівок первинних коренів сортів озимої пшениці на пізній стадії метафази та ранній анафазі. Після обробки НЕС частини верхівок коренів культивували в чашках Петрі на фільтрувальному папері з дистильованою водою в термостаті за температури - 20-22°С. Після цього частину зразків довжиною 0,8-1,0 см зрізали та фіксували протягом 24 годин у розчині Кларка, який складається з 3 частин 96% етилового спирту та 1 частини очної кислоти. Для кожного варіанту готували близько 25-30 коренів. Цитологічні дослідження забезпечували тимчасовими препаратами, забарвленими ацетокарміном. Зразки оцінювали за допомогою світлового мікроскопа Micromed XS-3330 (множення в 600 разів) з камерою 5М. У кожному варіанті міститься приблизно 1000 рослинних клітин на відповідних стадіях. Статистичний аналіз дат проводився програмою Statistica 10.0. Відмінності між відборами визначали за допомогою однофакторного аналізу (ANOVA) і вважали надійними при Р < 0,05. Відмінності між зразками оцінювали за допомогою тесту Тьюкі HSD.

озимий пшениця хромосомний аберація

Виклад основного матеріалу дослідження

Загальна частота хромосомних аберацій (таблиця 1) показала, що в цілому фактор генотипу не вплинув значною загальною вибіркою (F = 2,44; F0,05 = 2,76; P = 0,07), тоді як послідовне збільшення концентрації підвищило загальний рівень перебудов ( F = 363,82; F0,05 = 3,73; P = 8,54 * 10-13). Однак окремі генотипи все ж значимо виділилися при попарному порівнянні. Це стосується сорту Зелений Гай (F = 6,32; F0,05 = 2,48; P = 0,01) та сорту Боровиця (F = 2,56; F0,05 = 2,48; P = 0,05), які виявилися відповідно менш та більш стійкими ніж інші. Частота хромосомних аберацій варіювала від 5,58% (сорт Зелений Гай) до 7,94% (сорт Боровиця) при дії НЕС 0,01%, за дії НЕС 0,025% від 7,28% (сорт Зелений Гай) до 10,35% (сорт Боровиця). Таким чином, в цілому цитогенетична активність даного мутагену була доволі високою.

Щодо спектру перебудов хромосомного апарату клітини (таблиці 2 та 3) досліджували такі показники як фрагменти (одинарні та подвійні, які в цілому більш характерні для дії хімічних супермутагенів), мости (також одинарні - хроматидні - та подвійні - хромосомні), а також інші, більш рідкісних аберацій таких як мікроядра, відстаючі хромосоми. Окремо враховувалися клітини з множинними хромосомними абераціями (комплексними), які є досить потужним інтегративним показником впливу мутагену.

Для сумарної частоти фрагментів і подвійних фрагментів суттєвої різниці за фактором генотип не виявлено (F = 2,12; F0,05 = 2,76; P = 0,08), за фактором концентрація різниця достовірна (F = 117,13; F0,05 = 3,73; P = 3,19 * 10 ). Однак попарне порівняння показало, що хоча перша концентрація значуще діяла в порівнянні з контролем, при переході між окремими концентраціями різниця була достовірна не завжди (сорти Золото України, Каланча). Загалом, кількість фрагментів варіювала від 26 (сорт Зелений Гай) до 49 (сорт Полянка) при дії НЕС 0,01%, при концентрації НЕС 0,025% від 34 (сорт Зелений Гай) до 57 (сорт Полянка).

Таблиця 1

Частота хромосомних аберацій при дії НЕС (x ± SD, n = 25)

Сорт

Варіант

Мітозів, шт.

Хромосомних аберацій

шт.

%

Балатон

вода

1002

10

1,00 ± 0,12a

Балатон

НЕС 0,01%

1001

67

6,69 ± 0,21b

Балатон

НЕС 0,025%

1000

101

10,10 ± 0,34c

Зелений Гай

вода

1005

9

0,89 ± 0,32a

Зелений Гай

НЕС 0,01%

1004

56

5,58 ± 0,24b

Зелений Гай

НЕС 0,025%

1003

73

7,28 ± 0,29c

Золото України

вода

1001

8

0,80 ± 0,21a

Золото України

НЕС 0,01%

1004

75

7,47 ± 0,21b

Золото України

НЕС 0,025%

1008

93

9,23 ± 0,30c

Нива Одеська

вода

1009

8

0,79 ± 0,23a

Нива Одеська

НЕС 0,01%

1001

62

6,19 ± 0,21b

Нива Одеська

НЕС 0,025%

1005

79

7,86 ± 0,27c

Боровиця

вода

1001

7

0,70 ± 0,20a

Боровиця

НЕС 0,01%

1008

80

7,94 ± 0,26b

Боровиця

НЕС 0,025%

1005

104

10,35 ± 0,34c

Каланча

вода

1000

10

1,00 ± 0,15a

Каланча

НЕС 0,01%

1004

69

6,87 ± 0,25b

Каланча

НЕС 0,025%

1005

84

8,36 ± 0,37c

Полянка

вода

1007

6

0,60± 0,26a

Полянка

НЕС 0,01%

1003

75

7,48 ± 0,29b

Полянка

НЕС 0,025%

1005

92

9,15 ± 0,37c

Почайна

вода

1005

8

0,80 ± 0,06a

Почайна

НЕС 0,01%

1002

65

6,49 ± 0,20b

Почайна

НЕС 0,025%

1003

90

8,97 ± 0,27c

Примітка: різниця статистично достовірна за факторним аналізом ANOVA за концентраціями при Р0,05

Для випадку з мостами хроматидними та хромосомними суттєвої різниці за фактором генотип знов не виявлено (F = 2,03; F0,05 = 2,76; P = 0,09), за фактором концентрація різниця достовірна (F = 55,90; F = 0,05 = 3,73; P = 1,76 * 10-4). Однак попарне порівняння показало, що хоча перша концентрація значуще діяла в порівнянні з контролем, при переході між окремими концентраціями різниця була достовірна не завжди (сорти Зелений Гай, Золото України, Нива Одеська, Полянка). Загалом, кількість мостів варіювала від 13 (сорти Нива Одеська, Полянка, Почайна) до 25 (сорт Золото України) при дії НЕС 0,01%, при концентрації НЕС 0,025% від 37 (сорт Балатон) до 13 (сорт Нива Одеська).

Таблиця 2

Спектр хромосомних аберацій при дії НЕС. Перша група (x, n = 25)

Варіант

Фрагменти

Мости

фрагменти/ мости

інші

комплексні

шт.

%

шт.

%

шт.

%

шт.

%

Балатон

4a

40,0

4a

40,0

1,0

1a

10,0

0a

0,0

Балатон, НЕС 0,01%

35b

52,2

22b

32,8

1,6

10b

14,9

15b

22,4

Балатон, НЕС 0,025%

51c

50,5

37c

36,6

1,4

13b

12,9

22c

21, 8

Зелений Гай

4a

44,4

3a

33,3

1,3

2a

22,2

0a

0,0

Зелений Гай, НЕС 0,01%

26b

46,4

19b

33,9

1,4

11b

19,6

13b

23,2

Зелений Гай, НЕС 0,025%

34c

46,6

22b

30,1

1,6

17c

23,3

18c

24,7

Золото України

5a

62,5

3a

37,5

1,7

0a

0,0

0a

0,0

Золото України, НЕС 0,01%

40b

53,3

25b

33,3

1,6

10b

13,33

13b

17,3

Золото України, НЕС 0,025%

47b

50,5

32b

34,4

1,5

14b

15,1

23c

24,7

Нива Одеська

4a

50,0

3a

37,5

1,3

1a

12,5

1a

12,5

Нива Одеська, НЕС 0,01%

38b

61,3

13b

20,9

2,9

11b

17,7

14b

22,6

Нива Одеська, НЕС 0,025%

50c

63,3

13b

16,5

3,9

16c

20,3

23c

29,1

Примітка: різниця статистично достовірна за факторним аналізом ANOVA за концентраціями при Р0,05

Таблиця 3

Спектр хромосомних аберацій при дії НЕС. Друга група (x, n = 25)

Варіант

Фрагменти

Мости

фрагменти/ мости

інші

комплексні

шт.

%

шт.

%

шт.

%

шт.

%

Боровиця

3a

42,9

3a

42,9

1,0

1a

14,3

0a

0,0

Боровиця, НЕС 0,01%

48b

60,0

16b

20,0

3,0

16b

20,0

13b

16,3

Боровиця, НЕС 0,025%

56c

53,9

25c

24,0

2,2

23c

22,1

26c

25,0

Каланча

4a

40,0

5a

50,0

0,8

1a

10,0

0a

0,0

Каланча, НЕС 0,01%

41b

59,4

14b

20,3

2,9

14b

20,3

14b

20,3

Каланча, НЕС 0,025%

45b

53,6

20c

23,8

2,3

19c

22,6

22c

26,2

Полянка

2a

33,3

2a

33,3

1,0

2a

33,3

0a

0,0

Полянка, НЕС 0,01%

49b

65,3

13b

17,3

3,8

13b

17,3

11b

14,7

Полянка, НЕС 0,025%

57c

61,9

16b

17,4

3,6

19c

20,7

20c

21,7

Почайна

3a

37,5

5a

62,5

0,6

0a

0,0

0a

0,0

Почайна, НЕС 0,01%

38b

58,5

13b

20,0

2,9

14b

21,5

11b

16,9

Почайна, НЕС 0,025%

46c

51,1

22c

24,4

2,1

22c

24,4

19c

21,1

Примітка: різниця статистично достовірна за факторним аналізом ANOVA за концентраціями при Р0,05

Що стосується інших типів хромосомних перебудов, таких відстаючі хромосоми та мікроядра, то для них фактор генотипу виявився значним (F = 2,92; F0,05 = 2,76; P = 0,05), проте суттєвим було і підвищення даного типу аберацій при підвищенні концентрації (F = 67,11; F0,05 = 3,73; P = 3,16 * 10 ). При попарному порівнянні варіантів знаходимо, що всіх варіантів є статистично достовірні відмінності, крім сортів Балатон та Золото України. Також значні відмінності від контролю у всіх випадках. Кількість інших аберацій варіювала від 10 (сорти Балатон та Золото України) до 16 (сорт Боровиця) при дії НЕС 0,01%, при концентрації НЕС 0,025% від 13 (сорт Балатон) до 23 (сорт Боровиця).

Кількість клітин з двома і більше абераціями зазвичай є вкрай надійним і достовірним параметром, який відображає підвищення концентрації (дози) мутагену. У той же час, вплив генотипу на цей процес незначний (F = 2,03; F0,05 = 2,76; P = 0,09), збільшення концентрації веде до значного зростання частоти комплексних змін (F = 129,16; F0,05 = 3,73; P = 2,13 * 10 ). Число клітин з двома і більше абераціями при дії НЕС 0,01% від 11 (сорти Почайна та Полянка) до 15 (сорт Балатон), при концентрації НЕС 0,025% від 18 (сорт Зелений Гай) до 26 (сорт Боровиця). При попарному порівнянні варіантів знаходимо, що всіх варіантів є статистично достовірні відмінності, без винятку. Також значні відмінності від контролю у всіх випадках.

Факторний аналіз показав (таблиця 4), що значущими збільшення концентрації НЕС були для всіх вивчених параметрів, крім кількості мостів, генотип ж вплинув лише зміни кількості інших аберацій.

Таблиця 4

Результати факторного аналізу

Параметр

Концентрація

Сорт

Загальна частота

0,993167*

0,513157

Фрагментів

0,961450*

0,343113

Мостів

0,506745

0,463154

Інші аберації

-0.811343*

0,712215*

Комплексні

0,967259*

0,263153

Варіативність пояснена

3,668541

1,634532

Не пояснена

0,917135

1,017930

Примітка: * - статистично достовірно при P < 0,05

Для визначення характеру впливу цитогенетичної активності залежно від факторів генотипу об'єкта впливу та концентрації мутагену було проведено дискримінантний аналіз (таблиця 5, таблиця 6, рисунок 1). Як видно, у випадку з генотипом дискримінантний аналіз показав значущість для генотипу лише одного параметра моделі -інші типи аберацій.

Таблиця 5

Результати дискримінантного аналізу

Параметр

Генотип

Концентрація

Лямбда Уїлкса

Fкритичне

(4,14)

p

Лямбда Уїлкса

Fкритичне

(2,66)

p

Загальна частота

0,298

2,17

0,11

0,029

9,06

0,01

Фрагментів

0,275

2,39

0,11

0,026

4,83

0,01

Мостів

0,314

1,72

0,12

0,225

1,78

0,07

Інші аберації

0,016

5,33

0,03

0,021

4,76

0,01

Комплексні

0,183

3,12

0,10

0,040

26,03

0,01

Рис. 1 Класифікація в факторному просторі

У разі концентрації картина характерна для дії хімічних супермутагенів (у модельні не увійшов параметр наявність мостів). Таким чином, якщо роздільна здатність ознак достатня лише у разі збільшення концентрації для побудови моделі достатня (Рис. 1). Однак це не означає неможливість моделювання та класифікації випадків для окремих сортів.

Таким чином, за модельними ознаками для генотипів відрізняються лише присутності рідкісних типів аберацій (мікроядер, що відстають хромосом). Більше значних відмінностей немає. Очевидно, саме ця частина спектра і зумовила зміни за загальною частотою цитогенетичних порушень, які вплинули на відмінності двох сортів від інших за характером мінливості на клітинному рівні. У той самий час зміни концентрації були значно більш впливовими, проте, лише для параметрів характерних для хімічного мутагенезу. Можна зробити висновок, що сайт-специфічні можливості мутагену проявляються саме таким чином, а не через індукцію фрагментів і мостів, які мають більш загальний характер. При цьому в цілому не варто очікувати особливо високих параметрів мінливості на рівні організму, також мутаген у своїх концентраціях, що застосовуються, не досяг значних летальних величин для даних генотипів.

Висновки і пропозиції

Результати наших досліджень знову показали не тільки, що дослідження цитогенетичних параметрів активності навіть порівняно непогано вивчених мутагенних факторів має сенс в аспекті їх взаємодії, але й те, що навіть порівняно менш ушкоджуючи речовини деколи показують досить значні ефекти з точки зору як індукції загальної частоти перебудов, так і їх співвідношень у спектрі, що залежить насамперед від особливостей архітектури ДНК конкретних сортів. У нашому випадку це показали значні відмінності двох сортів, реакція на дію НЕС досить сильно відрізнялася від інших об'єктів впливу. При цьому, навіть не дивлячись на порівняно низьку ушкоджувальну здатність, активності даного супермутагена достатньо, щоб між окремими варіантами були статистично значущі відмінності по дії на рівні хромосомного апарату клітини. Дослідження показали, що значні ефекти з точки зору як загальної індукції цитогенетичних порушень, так і в плані співвідношення різних їх типів досить сильно відрізняються в плані зміни концентрації, ніж за їх особливостями у прояві в залежності від генотипу об'єкту.

Список використаної літератури

1. Abaza G., Awaad A., Attia M., Abdellateif S., Gomaa A., Abaza S., Mansou, E. Inducing potential mutants in bread wheat using dif-ferent doses of certain physical and chemical mutagens. Plant Breeding and Biotechnology. 2020. 8(3). Р. 252-264.

2. Beiko V., Nazarenko M. Early depressive effects of epimutagen in the first generation of winter wheat varieties. Agrology. 2022. 5(2). Р. 252-264.

3. Beiko V., Nazarenko M. Occurrence of cytogenetic effects under the epimutagen action for winter wheat. Regulatory Mechanisms in Biosystems. 2022. 13(3). Р. 252-264.

4. Bezie Y., Tilahun T., Atnaf M., Taye M. The potential applications of sitedirected mutagenesis for crop improvement: A review. Journal of Crop Science and Biotechnology. 2020. 24. P. 229-244.

5. Horshchar V., Nazarenko M. Inhibition of mutagenic effect in winter wheat as a result of ethylmethansulfonat action. Agrology. 2022. 5(3), P. 75-80.

6. Horshchar V., Nazarenko M. Winter wheat cytogenetic variability under the action of a chemical supermutagen. Regulatory Mechanisms in Biosystems. 2022. 13(4). P. 373-378.

7. Hase Y., Satoh K., Seito H., Oono Y. Genetic consequences of acute/chronic gamma and carbon ion irradiation of Arabidopsis thaliana. Frontiers in Plant Science. 2020. 11. 336.

8. Gharib M., Qabil N., Salem A., Ali M., Awaad H., Mansour E. Characterization of wheat landraces and commercial cultivars based on morpho-phenological and agronomic traits. Cereal Research Communication. 2021. 49, P. 149-159.

9. Oney-Birol S., Balkan A. Detection of cytogenetic and genotoxic effects of gamma radiation on M1 generation of three varieties of Triti-cum aestivum L. Pakistan Journal of Botany. 2019. 51(3). P. 887-894.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.