Оценка продолжительности культивирования регенерирующих каллусных тканей проса in vitro
Исследование признаков регенерирующих каллусных тканей растений проса в процессе длительного культивирования in vitro. Перевод растений-регенерантов в нестерильные условия. Разработка способов оптимизации пересадки каллусных тканей на свежие среды.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 25.12.2020 |
Размер файла | 27,0 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru
1
Оценка продолжительности культивирования регенерирующих каллусных тканей проса in vitro
С.В. Бобков
Аннотация
Исследовали признаки регенерирующих каллусных тканей растений проса в процессе длительного культивирования in vitro. Разрабатывали способ оптимизации пересадки каллусных тканей на свежие среды с переводом корнесобственных растений-регенерантов в нестерильные условия. Предложена формула для определения необходимого количества пересадок в зависимости от заданного числа растений-регенерантов.
Summary
ESTIMATION OF DURATION OF CULTIVATION OF REGENERATING CALLUS TISSUES OF MILLET IN VITRO
S.V. Bobkov
The author investigated the determinants of regenerating callus tissues of millet during long-term cultivation in vitro.The way of optimization of callus tissues transfer on fresh media with adaptation of scion-rooted plants-regenerants to nonsterile conditions was developed. The formalization of dynamic characteristics in long-term cultivated in vitro regenerating callus tissues was shown, that permit to develop on this basis the quantitative models for cloning of millet plants. The formula was proposed for determination of essential number of planting to nonsterile conditions in connection with established number of plants-regenerants.
Основная часть
Эмбриогенные каллусные ткани и корнесобственные регенеранты проса (Panicum miliaceum L.) были получены в культурах незрелых соцветий и зародышей, зрелых семян, сегментов листьев и стеблей при использовании в качестве регулятора роста 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-Д) (1, 2). Регенерационный процесс наблюдался после перенесения эмбриогенных каллусных тканей на среды без регуляторов роста или при уменьшении содержания 2,4-Д, причем он продолжался в течение короткого периода времени. Последовательный перенос эмбриогенных каллусов на среды R1 и МС обеспечивал непрерывную регенерацию и пролиферацию каллусов (3, 4). При оптимальном сочетании этих процессов продолжительность культивирования каллусной ткани in vitro может быть существенно увеличена, что позволяет выделять корнесобственные регенеранты и высаживать их в нестерильные условия. В связи с этим возникла необходимость анализа признаков и показателей регенерирующих каллусных тканей в динамике, что и явилось целью настоящей работы.
Методика. Объектом исследования служили три длительно культивируемых каллусных клона, полученных в культуре пыльников гибридов проса F3: gm1 (Могарообразное 2009 Соргообразный карлик 2010); aml29 (Регенерант 20 № 10 Соргообразный карлик 1959); am26 (Соргообразный карлик 2010 Могарообразное 2009). Каллусные клоны были получены на средах, содержащих соли среды MS (5), витамины среды В5 (6), L-глутамин или L-глутаминовую кислоту (500 мг/л), глицин (2 мг/л), мио-инозитол (500 мг/л) и 2,4-Д (2 мг/л). Для индукции регенерационного процесса использовали среду R1, содержащую миоинозитол, глицин, 6-бензиламинопурин (6-БАП), -нафтилуксусную кислоту (-НУК) в концентрации соответственно 100, 2, 10, 0,5 мг/л, а также соли среды MS и витамины среды В5. Регенерирующие каллусные ткани культивировали на среде MС с периодическими пересадками и переводом растений-регенерантов в нестерильные условия (3). Продолжительность культивирования на среде MС для клонов gm1, am129 и am26 составляла соответственно 895, 775 и 805 сут. На 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, 50-е сут культивирования in vitro определяли массу и объем каллусной ткани, а также число растений-регенерантов, длина которых была больше 1,5 см. Для статистической обработки данных использовали компьютерную программу двухфакторного дисперсионного анализа.
Результаты. Между средними показателями массы и объема каллусных тканей, а также числа растений-регенерантов в зависимости от времени культивирования на среде MС была выявлена высокая степень корреляции (табл. 1). На 20-е сут после пересадки участков регенерирующих каллусных тканей на свежие среды показатели всех трех признаков существенно возрастали; максимальные значения отмечены на 35-е сут культивирования, после чего масса и объем каллусных тканей находились в пределах статистической ошибки. В нестерильных условиях число растений-регенерантов, длина которых была больше 1,5 см, уменьшалось.
Таблица 1 Масса, объем каллусной ткани и число растений-регенерантов проса в зависимости от времени культивирования на среде MС
Продолжительность культивирования in vitro, сут |
Масса каллусной ткани, г |
Объем каллусной ткани, см3 |
Число растений-регенерантов |
|
5 |
0,07 |
0,13 |
0,18 |
|
10 |
0,16 |
0,45 |
0,30 |
|
15 |
0,28 |
0,54 |
0,42 |
|
20 |
0,56 |
1,33 |
0,49 |
|
25 |
0,93 |
2,43 |
1,00 |
|
30 |
0,91 |
2,71 |
0,58 |
|
35 |
1,93 |
5,10 |
2,17 |
|
40 |
1,73 |
2,71 |
1,48 |
|
50 |
l,69 |
4,45 |
1,51 |
|
НСР05 |
0,32 |
0,72 |
0,39 |
|
Примечание: rмасса-объем = 0,96; rмасса-число раст. = 0,93; rобъем-число раст. = 0,94. |
На 35-е сут культивирования средняя масса и объем каллусных тканей составляли соответственно 1,93 г и 5,10 см3. На каждый стаканчик в среднем приходилось по 2,17 шт. растений-регенерантов длиной более 1,5 см, пригодных для перевода в нестерильные условия. Различия между регенерирующими каллусными клонами проявлялись по числу растений и объему каллусной ткани (табл. 2). По массе каллусных тканей клоны не различались.
Таблица 2 Масса, объем каллусной ткани и число растений-регенерантов проса в зависимости от клона
Клон |
Масса каллусной ткани, г |
Объем каллусной ткани, см3 |
Число растений-регенерантов |
|
gml |
0,92 |
2,3 |
0,69 |
|
am129 |
0,88 |
2,8 |
0,74 |
|
am26 |
0,91 |
1,5 |
1,28 |
|
НСР05 |
0,19 |
0,42 |
0,23 |
На основе оценки динамики развития регенерирующих каллусных тканей растений проса трех клонов (gm1, am129, am26) нами была разработана оптимальная схема культивирования и пересадки в нестерильные условия с целью получения наибольшего числа корнесобственных растений-регенерантов с наименьшими затратами времени и расходных материалов (табл. 3).
Таблица 3 Схема пересадки в нестерильные условия регенерирующих каллусных тканей растений проса
Продолжительность культивирования in vitro, сут |
Число растений-регенерантов |
Число периодов продолжительностью 5 сут |
Среднее число растений-регенерантов |
|
5 |
0,18 |
1 |
0,18 |
|
10 |
0,30 |
2 |
0,15 |
|
15 |
0,42 |
3 |
0,14 |
|
20 |
0,49 |
4 |
0,12 |
|
25 |
1,00 |
5 |
0,20 |
|
30 |
0,58 |
6 |
0,10 |
|
35 |
2,17 |
7 |
0,31 |
|
40 |
1,48 |
8 |
0,19 |
|
50 |
1,51 |
10 |
0,15 |
Исследование динамики изменения числа растений проводили с 5-суточным интервалом, причем в расчет принимали число периодов продолжительностью 5 сут, приходящихся на время культивирования каллусных тканей in vitro (5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, 50-е сут). Подсчитывали число растений, полученных в течение 5 сут культивирования в каждом варианте: максимальное число растений отражало оптимальное время для пересадки (см. табл. 3). Наибольшее число регенерантов, полученных в пересчете на период продолжительностью 5 сут, приходилось на 35-е сут культивирования, то есть оптимальный срок культивирования перед пересадкой каллусных тканей составляет 35 сут. Если клонированию подлежат регенеранты из одного стаканчика и для пересадки берут два участка регенерирующей каллусной ткани, то можно определить число регенерантов (un) на n-м этапе клонирования. При этих условиях зависимость между показателями можно представить в виде геометрической прогрессии: un = 2,172n-1. Если принять в расчет все регенеранты, имеющиеся на начало клонирования, тогда обобщенная формула принимает вид un = aqn-1, где а -- число регенерантов, пригодных к переводу в нестерильные условия в начале клонирования; q -- число участков из одной регенерирующей каллусной ткани. По правилу суммирования членов геометрической прогрессии находим общее число регенерантов, получаемых на n-м этапе клонирования:
Sn = u1 + u2 + u3 ...+ un + ..., или
Sn = . [1]
Преобразуем эту формулу с целью определения необходимого количества этапов клонирования для получения запланированного числа регенерантов:
Sn(l - q) = a(l - qn);
[2]
n = .
Этапы клонирования представляют все члены геометрической прогрессии, включая начальный клоновый материал. Следовательно, число пересадок (р) на единицу меньше числа членов:
p = n - 1, или
. [3]
Как правило, число пересадок, рассчитанное по формуле [3], не является целым, поэтому для получения заданного числа регенерантов выполняют все полные пересадки, а для последней берут только часть имеющегося в наличии материала. Исходное число регенерантов (a1) для проведения последней неполной пересадки определяют по следующей формуле:
, [4]
где Sn -- запланированное число регенерантов на этапе клонирования
n = = р + 1;
Snn -- сумма растений-регенерантов на последнем полном этапе клонирования
n = р + 1,
где р -- целое число. Величину Snn рассчитывают по формуле [1]. Для последней пересадки берут такое количество единиц культуральной посуды, в котором было бы представлено число регенерантов, равное а1.
Итак, процесс получения регенерантов в культуре пыльников проса включает три этапа: формирование эмбриогенных каллусных тканей; стимулирование интенсивного регенерационного процесса; длительное культивирование непрерывно регенерирующих каллусных тканей на среде без регуляторов роста (3). При этом для клонов gml, am129 и am26 средняя продолжительность первых двух этапов составляет 75 сут, а период длительного культивирования непрерывно регенерирующих каллусных тканей -- 825 сут. Продолжительность третьего этапа по отношению ко всему периоду культивирования занимает 91,7 % времени. Практически все растения-регенеранты отбирают на этапе длительного культивирования регенерирующих каллусных тканей. При этом перевод корнесобственных регенерантов в нестерильные условия совпадает с переносом участков регенерирующих каллусных тканей на свежие среды.
Предложенный способ оптимизации пересадок растений-регене-рантов в нестерильные условия основан на перерасчете числа регенерантов на определенный промежуток времени. Перерасчет можно вести и на одни сутки культивирования, что в принципе не меняет сути дела. Максимальное число регенерантных растений, приходящееся на единицу времени, отражает оптимальный срок пересадки. Разработанная формула для определения числа пересадок, исходя из запланированного числа растений-регенерантов, позволяет охватить весь период культивирования регенерирующих каллусных тканей. Необходимым условием при использовании этой формулы является наличие данных по начальному количеству регенерантов и числу пересаживаемых участков, приходящихся на одну регенерирующую каллусную ткань.
каллусный ткань просо культивирование
Заключение
Таким образом, нами показана возможность формализации динамических характеристик длительно культивируемых in vitro регенерирующих каллусных тканей, что позволяет на этой основе разрабатывать количественные модели клонирования растений проса.
Литература
Heyser J.W., Nabors M.W. Regeneration of proso millet from embryogenic calli derived from various plant parts. Crop Science, 1982, 22, 5: 1070-1074.
Rangan T.S., Vasil I.K. Somatic embriogenesis and plant regeneration in tissue cultures of Panicum miliaceum L. and Panicum miliare Lamk. Z. Pflanzenphysiology, 1983, 109: 49-53.
Бобков С.В. Получение корнесобственных регенерантов в культуре пыльников проса. Вест. РАСХН, 2000, 5: 41-43.
Бобков С.В. Получение корнесобственных регенерантных растений проса в культуре незрелых соцветий и пыльников. С.-х. биол., 2002, 5: 65-68.
Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioasseys with tobacco tissue cultures. Physiology Plant, 1962, 15, 13: 473-497.
Gamborg О., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of gluconases in cultures of wheat and barley. Can. J. Biochem., 1968, 46, 5: 417-421.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Разъединение тканей в процессе хирургической операции. Создание наиболее благоприятных условий для заживления раны. Инструменты для разъединения тканей. Техника фиксации тканей при разрезе и способы их рассечения. Инструменты для операции на костях.
курсовая работа [845,2 K], добавлен 08.12.2011Обработка почвы под просо, уход за посевами. Защита растений от головни и бактериозов. Технологические и конструктивные характеристики агрегата (картофелесажалка и фрезерный культиватор), сферы из применения. Отличие проса посевного от проса сорного.
курсовая работа [34,8 K], добавлен 12.06.2013Месторасположение, экономическое состояние, агроклиматические и почвенные условия Приднестровской Молдавской Республики. Ботаническая и биологическая характеристика проса. Размещение культуры в севообороте. Система удобрений. Сроки, способы уборки урожая.
курсовая работа [255,6 K], добавлен 05.11.2015Технология производства проса. Самые распространенные сорта проса, биологические особенности, технология возделывания, вредители. Особенности послеуборочной обработки зерна, зерноочистительные машины. Температурные режимы сушки и хранения зерна.
курсовая работа [297,7 K], добавлен 25.09.2011Природно-географические условия РФ. Биологические и агротехнические особенности растений закрытого и открытого грунта. Проекты оранжереи для выгонки форзиции и парника для выращивания каллистефуса. Технология культивирования георгин в открытом грунте.
курсовая работа [986,3 K], добавлен 04.06.2009Особенности возбудителей ранней пятнистости. Патологический процесс, симптомы заболеваний, вызванных грибами, токсины. Системная приобретенная устойчивость. Выделение гриба в чистую культуру и подготовка растений к инокуляции и инокуляция растений.
курсовая работа [44,1 K], добавлен 27.02.2011Разработка приемов выращивания овощных растений. Преимущества семенного размножения овощных культур. Чистота и всхожесть семян. Особенности вегетативного размножения (клубнями, корневищами, луковицами, черенкованием, прививкой, культурой тканей) растений.
реферат [15,7 K], добавлен 05.10.2009Виды и общая характеристика закрытых повреждений мягких тканей: ушиб, гематома, лимфоэкстравазат, растяжение, разрыв, сдавливание и сотрясение. Основные клинические признаки, способы диагностики и методы лечения закрытых повреждений мягких тканей.
реферат [25,6 K], добавлен 18.12.2011Изучение анатомической структуры покровных тканей однолетних стеблей, наружных почечных чешуй и содержания крахмала. Признаки зимостойсти у разных культурных сортов растений. Приспособительные особенности структур, которые у растений играют защитную роль.
презентация [1,8 M], добавлен 13.03.2019Систематическое положение вредителей и диагностика болезней. Биоэкология возбудителей болезней. Методика учета распространенности и степени развития болезней. Меры борьбы против гельминтоспориоза проса, гельминтоспориоза, мучнистой росы, склеротиниоза.
курсовая работа [644,7 K], добавлен 19.04.2012