Применение инсектицидов группы неоникотиноидов в ветеринарии

Анализ результатов экспериментальных исследований инсектицидной активности неоникотиноидов для различных видов эктопаразитов животных. Оценка их токсичности для теплокровных, эффективность применения для борьбы с блохами мелких домашних животных.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид статья
Язык русский
Дата добавления 11.12.2020
Размер файла 121,4 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Размещено на http://www.allbest.ru/

Применение инсектицидов группы неоникотиноидов в ветеринарии

Ю.В. Лопатина

О.Ю. Еремина

Аннотация

неоникотиноид инсектицидный эктопаразит блоха

Обобщены данные литературы, посвященные механизму действия инсектицидов группы неоникотиноидов. Обсуждаются результаты экспериментальных исследований инсектицидной активности неоникотиноидов для различных видов эктопаразитов животных. Дана оценка токсичности неоникотиноидов для теплокровных. Рассматривается эффективность применения неоникотиноидов для борьбы с блохами мелких домашних животных.

Abstract

The review is dedicated to neonicotinoid insecticides - active ingredients and preparative forms of neonicotinoids, their using for animal ectoparasites control. The neonicotinoid effectiveness against susceptible and resistant insect populations, mechanisms of action and the place of neonicotinoids in integrated animal protection system are discussed. Using of neonicotinoid insecticides in veterinary practice again fleas of domestic pets (dogs and cats) is considered in detail.

Основная часть

Одной из актуальных проблем ветеринарии является защита животных от эктопаразитов. Для борьбы с членистоногими, паразитирующими на домашних животных, широко применяют препараты на основе различных химических веществ: фосфорорганические соединения (ФОС), карбаматы, пиретроиды, фенилпиразолы. Неоникотиноиды по сравнению с инсектицидами других групп обладают принципиально иным механизмом действия на членистоногих. Так, ФОС и карбаматы ингибируют ацетилхолинэстеразу, пиретроиды изменяют проводимость каналов мембран нервных клеток периферической и центральной нервной системы насекомых для натрия, фенилпиразолы ингибируют ГАМК-рецепторы. Неоникотиноиды действуют на постсинаптические никотин-ацетилхолиновые рецепторы (НАХР). При этом молекулы инсектицида взаимодействуют с НАХР по двум направлениям: положительно заряженный азот пирролидинового кольца-анионная область рецептора; азот пиридинового кольца-катионная область рецептора (рис. 1) (1).

Растительный инсектицид никотин, получаемый из табачной пыли, послужил основой для синтеза новых инсектицидных веществ. Более 30 лет назад японские исследователи показали, что инсектицидная активность неоникотиноидов связана с 3-пиримидилметиламиновым остатком. Дальнейшие исследования в этом направлении привели к созданию сначала нитиазина, затем при введении фрагмента молекулы алкалоида эпибатидина, выделенного у лягушки древолаза Epipedobates tricolor, - имидаклоприда и тиаклоприда. Вскоре были синтезированы соединения, содержащие открытое пирролидиновое кольцо (нитенпирам, ацетамиприд, клотианидин). В ходе экспериментов было показано, что оксидиазины, содержащие кислород, более стабильны в окружающей среде, чем амины, в результате чего был синтезирован тиаметоксам. Большинство неоникотиноидов используют в сельском хозяйстве для защиты растений от вредителей. В мировой ветеринарной практике в настоящее время применяют препараты на основе двух действующих веществ группы неоникотиноидов - нитенпирама и имидаклоприда (рис. 2).

К инсектицидам, используемым в ветеринарии для борьбы с эктопаразитами, предъявляется ряд требований, которым они должны удовлетворять: полностью освобождать животных от паразитических членистоногих; защищать от повторного заражения в течение нескольких недель; обладать низкой токсичностью для теплокровных.

По токсичности неоникотиноиды значительно менее опасны для человека и животных по сравнению с ФОС, карбаматами и фенилпиразолами. По показателям токсичности для теплокровных и по коэффициенту избирательной токсичности неоникотиноиды сопоставимы с пиретроидами (табл.). Высокая токсичность неоникотиноидов в отношении насекомых, сочетающаяся с низкой токсичностью для млекопитающих, позволяет эффективно использовать инсектициды этой группы в системе ротации химических средств защиты животных от эктопаразитов (1-3). Наиболее широко неоникотиноиды применяют в ветеринарной практике для борьбы с насекомыми, паразитирующими на мелких домашних животных - собаках и кошках.

Рис. 1. Схема, отражающая механизм действия инсектицидов на нервную систему насекомых (цит. по 1)

Рис. 2. Химическая структура неоникотиноидов

Массовыми паразитами домашних животных являются блохи (Siphonaptera), доминирующие по частоте встречаемости и численности. В городских условиях с кошками и собаками связаны главным образом синантропные виды сем. Pulicidae - Ctenocephalides canis и С. felis (блохи соответственно собак и кошек). Наиболее распространены блохи C. felis, обитающие в подвалах (чаще с земляными полами) многоэтажных домов. Основной хозяин C. felis - кошка, но нередко эта блоха встречается и у собак.

Оценка токсичности инсектицидов для теплокровных и насекомых (цит. по 1, 5 и 6)

Химическая группа соединений

Действующее вещество

ЛД50, мг/кг

Коэффициент изби-рательной токсичности (КИТ)

Крысы

Рыжие тараканы

Фосфорорганические соединения

Оксидеметонметил

70

0,98

71

Карбаматы

Пиримикарб

150

0,50

300

Фенилпиразолы

Фипронил

100

0,028

3570

Пиретроиды

Цифлутрин

400

0,024

17000

Неоникотиноиды

Имидаклоприд

450

0,062

7300

Тиаметоксам

1560

0,46

3390

Растительные инсектициды

Никотин

50

>5

<10

Мыши

Комнатные мухи

Пиретроиды

Дельтаметрин

34

0,01

3400

Циперметрин

250

0,019

1137

Перметрин

4000

0,73

5493

Неоникотиноиды

Имидаклоприд

168

0,02

8400

Тиаклоприд

147

0,03

4900

Растительные инсектициды

Никотин

7

>50

<0,14

П р и м е ч а н и е. ЛД50 - среднесмертельная доза, вызывающая гибель 50% особей; КИТ - ЛД50 для теплокровных/ЛД50 для насекомых.

В ряде случаев в качестве дополнительного прокормителя блох выступает серая крыса (4). В жилых помещениях блохи C. felis активно нападают на человека. Нередко укусы блох служат причиной возникновения у животных паразитарного дерматоза - аллергической воспалительной реакции кожи на присутствующие в слюне блохи аллергены (7). Блохи не только причиняют постоянное беспокойство животным, но также являются переносчиками различных возбудителей заболеваний - бактерий, вирусов и гельминтов. Блохи служат промежуточными хозяевами огуречного цепня Dipylidium caninum. По данным австрийских исследователей, цистицеркоидами (личинками) огуречного цепня заражены 2,3% блох C. felis, паразитирующих на кошках, 1,2 и 3,1% соответственно C. felis и C. canis - на собаках (8).

Заражение кошек лейкемией происходит в основном при тесном контакте между животными: через кровь, слюну и другие выделения жидкостей. Экспериментальным путем показана способность блох C. felis воспринимать при питании и передавать животным посредством укуса вирус лейкемии кошек (9). В лабораторных условиях выявлена возможность заражения животных бартонеллезом, вызываемым спирохетой Bartonella henselae, через экскременты инфицированной блохи C. felis (10, 11).

Неоднократное выделение у блох C. felis риккетсий Rickettsia felis (возбудителя заболевания группы пятнистых лихорадок) и R. typhi (возбудителя эндемичного сыпного тифа крыс) дает основание предполагать возможную роль блох C. felis как переносчиков в очагах этих инфекций. Кроме того, у блох C. felis был обнаружен возбудитель болезни Лайма - Borrelia burgdorferi (12-16).

По токсичности для блох неоникотиноиды не уступают, а в большинстве случаев и превосходят инсектициды других групп. Так, при топикальном нанесении микрокапель ацетоновых растворов на имаго C. felis летальная доза нитенпирама, имидаклоприда, фипронила, дельтаметрина, циперметрина, фентиона, диазинона, перметрина, малатиона, бендиокарба, ДДТ, пропоксура и карбарила, вызывающая 95% смертность насекомых (ЛД95), составляла соответственно 0,68; 0,81; 0,69; 0,70; 5,40; 8,00; 12,00; 19,00; 29,00; 170,00; 710,00; 1300,00 и более 10000 нг/экз. (17).

Вещества группы неоникотиноидов, используемые в ветеринарии, характеризуются разной растворимостью в воде: нитенпирам - 840 г./л при 25 оС, имидаклоприд - 0,51 г./л при 20 оС. В связи с этим разработаны разные стратегии их применения: перорально в виде таблеток (нитенпирам) и местно - нанесением на кожу (на холку) животного (имидаклоприд). За рубежом в ветеринарии используют две препаративные формы на основе неоникотиноидов: таблетки «Капстар» («Capstar») на нитенпираме (фирма «Новартис», Швейцария), водорастворимый концентрат «Адвантейдж» («Advantage») на имидаклоприде (фирма «Байер», Германия).

Системному действию неоникотиноидов посвящено большое количество работ. Показано, что инсектицидная активность нитенпирама в отношении блох при пероральном введении связана с быстрой абсорбцией препарата кровью животного. Имидаклоприд проникает в тело блохи не с кровью прокормителя, а через межсегментные мембраны насекомого при контакте с обработанным животным, у которого препарат локализуется в водорастворимом жировом слое, шерсти, но не поступает в кровь.

Изучение нитенпирама как перспективного действующего вещества в препаратах системного действия для борьбы с эктопаразитами животных, проведенное на линии лабораторных белых мышей (модельный объект), показало его высокую инсектицидную активность в отношении блох. При пероральном введении мышам нитенпирама в дозах 30, 10 и 1 мг/кг и подсадке на них блох даже при минимальной дозе (1 мг/кг) отмечена высокая эффективность этого соединения: смертность блох была выше 94% (18).

Системное действие нитенпирама в форме таблеток оценивали на собаках и кошках, зараженных блохами. Через 30 мин после приема таблеток блохи начинали покидать животных, через 2 ч 81% последних полностью освобождались от насекомых. Через 6 ч эффективность таблеток, содержащих нитенпирам, достигала 95,2 и 96,7% соответственно для кошек и собак (19).

Rust с соавт. было показано, что нитенпирам в препаративной форме «Капстар» вызывает 100% гибель блох в течение 24 ч после введения (20). При подсадке блох на обработанных животных в интервале 24-48 ч (после применения средства) количество блох сокращалось на 98,6%, а 48-72 ч - на 5%. Нитенпирам вызывает также резкое уменьшение яйцепродукции блох: на 97,0% в течение первых 48 ч после поступления нитенпирама в организм хозяина и на 95,2% в период 48-72 ч. Следовательно, применение нитенпирама обеспечивает эффективную элиминацию блох с прокормителя вплоть до 48 ч после введения, что обусловлено, по-видимому, временем выведения тиаметоксама из организма животных. В ответ на применение «Капстара» у кошек существенно увеличивалось время почесывания, покусывания, облизывания шерсти (в течение 7 ч), а также подергивания тела (5 ч) (20). По данным швейцарских исследователей, применение нитенпирама («Капстар») вызывало в течение 3 ч после обработки 100% гибель блох на кошках и 99,1% - на собаках; через 8 ч эффективность препарата достигала 100% на животных обоих видов (21).

Следующий представитель группы неоникотиноидов, применяемый в ветеринарии, - имидаклоприд также обладает высокой эффективностью при борьбе с эктопаразитами животных. Обработка кошек имидаклопридом приводит к полному исчезновению блох C. felis, хотя и не предотвращает нападение (и питание) последних на кошек в течение первого часа после обработки (22). Эффективность имидаклоприда («Адвантейдж»), нанесенного на шерсть кошек, составляла через 3 и 8 ч после обработки соответственно 26,9 и 82,8%, на шерсть собак - 22,2 и 95,7% (21). По данным Dryden с соавт., однократная обработка 10% имидаклопридом собак и кошек обеспечивала уменьшение количества блох через 7 и 28 сут соответственно на 95,3 и 97,4% (23, 24). При 3-кратной обработке с интервалом 28-30 сут численность блох в течение 90 сут сокращалась на 99,5%, причем в помещении, где обитали обработанные животные, количество насекомых уменьшилось на 99,0%.

Аналогичные данные были получены при обработке имидаклопридом собак (25). На животных на 1, 3, 6, 13, 20, 27 и 33-и сут после обработки имидаклопридом выпускали имаго блох C. felis. Учет эктопаразитов на следующие сутки после заражения показал, что однократная обработка собак 7,5-10,0 мг имидаклоприда (эквивалентно 3,75 мг/кг массы собаки) эффективно действует против блох в течение 34 сут. При нанесении на собак в 3 раза большей дозы имидаклоприда (10 мг/кг) смертность блох, подсаженных на животных через 14 сут после обработки, составляла 97,5-99,1%, а через 29 сут - 99,7-100% (26). Полученные данные свидетельствуют о высокой эффективности имидаклоприда, защитное действие которого сохранялось в течение 2 мес. Кроме того, обработка животных имидаклопридом вызывает гибель не только имаго блох, но и личинок, которые обычно концентрируются в местах, часто посещаемых животными (подстилки, места отдыха). Так, при обработке собак имидаклопридом количество блох в будках было низким в течение 3 мес (26).

Сходные результаты действия имидаклоприда через обработанных животных на преимагинальные стадии блох, развивающихся в помещении, были получены Jacobs с соавт. (27). В эксперименте яйца блох помещали на подстилки, использовавшиеся обработанными имидаклопридом и необработанными (контроль) кошками, и культивировали при стандартных условиях до полного завершения развития. При подсадке блох на подстилки через 1 нед после использования их обработанными животными наблюдалось 100% ингибирование выплода имаго. В последующие недели этот показатель составлял 84, 60 и 74%.

В лабораторных условиях оценивали действие имидаклоприда на неполовозрелых блох C. felis (28). Для этого обработанных инсектицидом кошек помещали на подстилки с яйцами и личинками блох в день обработки, через 1 и 2 сут после обработки и впоследствии 1 раз в 2 нед в течение 6 нед. Время контакта составляло 1 и 6 ч, после чего блох культивировали на этих ковриках при стандартных условиях в течение 35 сут, а затем учитывали выход имаго. Различия между количеством выплодившихся взрослых особей в контрольном и опытном вариантах при контакте 1 ч были достоверны в период с 1-х по 14-е сут, при контакте 6 ч - до 43 сут. Способность имидаклоприда подавлять выплод блох на подстилках при 6-часовом контакте равномерно уменьшалась с 82 до 12% соответственно на 2-е и 43-и сут. При контакте в течение 1 ч численность развившихся до имаго блох варьировала от 0 до 83% в течение 6-недельного периода наблюдений (28).

Высокая эффективность действия имидаклоприда на C. felis выявлена также при нанесении препарата «Адвантейдж» в дозе 10 мг/кг (29). Так, через 1 ч и далее на 3, 7, 14, 21 и 30-е сут после обработки на кошек помещали по 50 блох C. felis. После 1-часового контакта блох вычесывали частым гребнем, часть насекомых исследовали на наличие крови в кишечнике, остальных оставляли на 24 ч и определяли долю погибших особей. Полученные данные свидетельствуют о том, что обработка имидаклопридом не защищала животных от укусов блох в течение первого часа, перед тем как блохи погибали (29).

В натурном эксперименте на кошках, зараженных блохами, определяли инсектицидную активность имидаклоприда (30). При ежемесячной обработке кошек имидаклоприд обеспечивал достаточно высокую степень защиты животных, однако в двух случаях из шести были выявлены одиночные имаго блох. Некоторое количество блох было обнаружено также и в обработанных имидаклопридом помещениях, где жили кошки.

Более детальное изучение действия имидаклоприда на имаго и личинок блох было проведено при использовании препарата «Адвантейдж» (31, 32). При этом было установлено, что гибель блох наступает в течение 20 мин после контакта с инсектицидом. Действие имидаклоприда проявлялось в длительной блокаде никотин-ацетилхолинового рецептора, вызывающей сокращение мышечных волокон после контакта с инсектицидом. У половозрелых особей эффект проявляется в дрожании конечностей, у личинок - в прекращении движения. Репеллентного действия имидаклоприда на имаго и личинок блох не выявлено.

Имеется ряд работ, свидетельствующих об участии монооксигеназ в механизме детоксикации неоникотиноидов в организме насекомых (33, 34). Эти исследования проводили на насекомых - вредителях сельскохозяйственных растений при комнатной температуре (до 25 оС), в частности на белокрылке Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae) (33). В связи со спецификой воздействия инсектицидов на теплокровных животных оценивали возможность применения смеси имидаклоприда и ингибитора монооксигеназ пиперонилбутоксида (ППБ), а также зависимость синергистического эффекта от температурного фактора. Показано, что при 26 оС ППБ усиливает инсектицидную активность имидаклоприда (соотношение соответственно 5:1) для блох C. felis в 16 раз, но не действует как синергист при 35 оС. Оптимальным для проявления синергистического эффекта является интервал температур от 20 до 30 оС. Полученные данные позволяют сделать вывод о нецелесообразности применения имидаклоприда в сочетании с ППБ для борьбы с блохами домашних животных, так как температура тела последних выше 35 оС (34).

Долговременное и зачастую неправильное применение инсектицидов одной группы нередко приводит к формированию популяций блох, резистентных к химическим соединениям различных классов: хлорорганическим (ДДТ, ГХЦГ, дилдрин, метоксихлор), ФОС (хлорпирифос, малатион, фенитротион, фентион, диметоат, ацефат), карбаматам (карбарил), пиретроидам (перметрин, дельтаметрин) (35-38). На примере комаров показано, что перекрестная резистентность к неоникотиноидам у высокоустойчивых рас насекомых отсутствует. Так, при определении резистентности комаров Anopheles gambiae, Culex quinquefasciatus и Aedes aegypti в различных географических точках (Франция, Тайланд, Буркина-Фасо, Кот-Д'Ивуар) выявлены природные популяции, устойчивые к пропоксуру и перметрину (39). При этом механизм формирования резистентности к пиретроидам обусловлен устойчивостью нервной системы (КДР-фактор) и / или высокой активностью монооксигеназ, а к карбаматам - повышением устойчивости ацетилхолинэстеразы. Во всех случаях чувствительность комаров к неоникотиноидам (динотефуран) практически не изменялась. Принципиально новый механизм действия на насекомых неоникотиноидов по сравнению с широко применяемыми пиретроидами, карбаматами и ФОС позволяет использовать соединения этой группы для борьбы с резистентными популяциями эктопаразитов. Следует учитывать, что применение неоникотиноидов наиболее эффективно при ротации инсектицидов, обладающих разным механизмом действия.

Высокая эффективность имидаклоприда выявлена и в отношении эктопаразитов других видов (40). В частности, применение инсектицидного препарата «Адвантейдж» для борьбы со вшами Linognathus setosus (Anoplura: Linognatidae) и пухоедами Trichodectes canis (Mallophaga: Trichodectidae), паразитирующими на собаках, приводит к 100% гибели насекомых на всех стадиях развития. Улучшение клинического состояния собак происходит спустя 2 нед после обработки животных; продолжительность остаточного действия составляет около 6 нед и превышает период развития от яйца до имаго эктопаразитов обоих видов. Вместе с тем постоянный зуд у животных сохраняется в течение 2-4 нед после обработки, уже после гибели насекомых (40).

На лошадях были проведены испытания 10% имидаклоприда против лошадиного пухоеда Werneckiella (Damalinia) equi (Mallophaga: Trichodectidae) методом нанесения на холку в дозе 4 и 8 мл дважды с интервалом 28 сут или 16 мл однократно. В результате все лошади были полностью освобождены от эктопаразитов (41).

Следует отметить высокую репеллентную активность смеси имидаклоприда (10%) с перметрином (50%) в отношении москита Phlebotomus papatasi (Diptera: Phlebotomidae) - переносчика лейшманиоза. Эффективность отпугивания составляла 94,6; 93,3; 80,0; 72,8 и 55,9% соответственно на 1, 8, 15, 22 и 29-е сут, инсектицидная эффективность препарата - соответственно 60,0; 46,2; 42,6; 35,2 и 29,3% (42).

Успешное применение имидаклоприда отмечено при обработке овец препаратом «Адвантейдж» против рунца овечьего Melophagus ovinus (Diptera: Hippoboscidae) (43). Контакт с инсектицидом в течение первых 3-4 мин вызывал у насекомых подергивание конечностей и брюшка, остановку движения, дрожание, а затем гибель. Эффективность однократной обработки сохранялась в течение 1 мес, при этом контакт ягненка с матерью, обработанной имидаклопридом, обеспечивал и ему защиту.

На животноводческих фермах для борьбы с мухами применяют гранулированные приманки на основе 0,5% имидаклоприда - «Квик-байт» и «Максфорс» (фирма «Байер», Германия). В обе приманки помимо имидаклоприда входят аттрактант мускалюр (трикозен) и горькое на вкус вещество битрекс, предотвращающее случайное поедание приманок животными (44).

Известно, что действие имидаклоприда на иксодовых клещей не достаточно эффективно, чтобы использовать препараты на его основе для защиты животных от особей сем. Ixodidae. Однако, по данным рекламного сайта фирмы «Байер» (www.bayeres.com), препарат «K9 Адвантикс» (K9-Advantix) на основе смеси 10% имидаклоприда и 50% перметрина успешно защищает собак от иксодовых клещей (Ixodes scapularis, Amblyomma americanum, Dermacentor variabilis, Rhipicephalus sanguineus), комаров, блох. При этом в течение 2 ч после обработки животного за счет репеллентного действия перметрина коэффициент отпугивающего действия для иксодовых клещей составляет 98,5%. Высокую инсектоакарицидную активность «K9 Адвантикс» авторы связывают с синергистическим действием имидаклоприда и перметрина. Применение препарата разрешено только для обработки собак, для защиты кошек его не используют.

По данным многих исследователей, средство, содержащее смесь имидаклоприда (10%) с перметрином (50%), обладает высокой эффективностью в отношении клещей Ixodes ricinus, Rhipicephalus sanguineus в течение 4 нед после обработки (45, 46, 47, 48). Показано, что в течение 7 сут после обработки «Адвантикс» предотвращает передачу боррелиоза, вызываемого Borrelia burgdorferi, от зараженного клеща Ixodes scapularis собаке (49).

Однако следует отметить, что более 10 лет назад отечественными исследователями, изучавшими репеллентное и акарицидное воздействие пиретроидов на иксодовых клещей при разработке средств, предназначенных для защиты человека (обработка одежды), было убедительно показано, что при использовании перметрина на животных увеличивается двигательная активность и агрессивность клещей, вследствие чего они быстрее присасываются к прокормителю (50). Кроме того, показано, что перметрин не обладает репеллентным действием в отношении иксодовых клещей. В новых акарицидных средствах для защиты человека от клещей (обработка верхней одежды) рекомендуется применять пиретроиды, содержащие циан-группу в спиртовой части молекулы, например альфациперметрин (51).

Большое внимание уделяется разработке новых средств одновременной борьбы с экто - (блохами) и эндопаразитами (гельминтами) кошек и собак. Так, при испытании смеси 10% имидаклоприда и 1% моксидектина (макроциклический лактон), наносимой в виде капель на холку в дозе 1 и 10 мг/кг, эффективность средства составила соответственно 97,2 и 98,3% в отношении личинок и имаго аскарид Toxocara cati (Nematoda: Ascaridae) (52, 53). При полевых испытаниях этой смеси во Франции и Германии удалось добиться освобождения животных от T. cati на 99,96%, от гельминтов сем. Ancylostotomatidae - на 99,91%. Отмечена 100% эффективность смеси в отношении кошачьих блох, а также разных видов гельминтов: личинок Dirofilaria immitis (Filariidae), личинок и взрослой стадии Ancylostoma tubaeforme (Ancylostotomatidae), личинок Uncinaria stenocephala (54, 55).

Смесь имидаклоприда (10%) и моксидектина (1%) испытывали на кошках против ушного клеща плотоядных Otodectes cynotis (Acariformes: Psoroptidae) (доза 0,1 мл/кг). Эффективность однократной обработки составляла 80% через 50 сут, двукратной (с интервалом в 4 нед) - 100% на 22-е сут после второй обработки (56).

Смесь имидаклоприда (10%) и моксидектина (2,5%) использовали при поражении собак чесоточным клещом Sarcoptes scabei var. canis (Acariformes: Sarcoptidae) (доза 0,1 мл/кг массы животного). Через 8 сут после обработки клещи были обнаружены в соскобах кожи двух собак из 15; начиная с 22 сут и далее клещи не выявлены. Отсутствие клещей, полное рассасывание папул и исчезновение корочек, а также заметное сокращение (более чем на 80%) участков поражения кожи (алопеция) наблюдались у 7,1; 92,9 и 100% собак соответственно на 22, 50 и 64-е сут после обработки (57).

В настоящее время в России используют три средства на основе имидаклоприда производства фирмы «Байер»: «Адвантейдж» (10% имидаклоприда) для уничтожения блох, вшей и власоедов, паразитирующих на кошках и собаках; «Адвантикс» (смесь 10% имидаклоприда с 50% перметрином) для уничтожения эктопаразитов собак (иксодовые клещи, блохи, вши, власоеды, комары); «Ультра-гель» (2,15% имидаклоприда) для инсектицидных обработок животноводческих помещений (58).

Ассортимент пестицидов, применяемых для защиты растений от вредителей в сельском хозяйстве в России, включает 11 препаративных форм на основе четырех действующих веществ: имидаклоприд, тиаметоксам, ацетамиприд и тиаклоприд (59).

Для применения в быту и медицинской дезинсекции в нашей стране зарегистрировано 14 средств, содержащих в качестве действующих веществ имидаклоприд или тиаметоксам. Для борьбы с мухами разрешено применение гранулированных приманок: «Квик-байт» (0,5% имидаклоприда) (фирма «Байер»); «Агита» (10% тиаметоксама) (фирма «Новартис»); «Адамант приманка от мух» (1% тиаметоксама) (Россия). Для борьбы с тараканами и муравьями зарегистрированы следующие гели: «Максфорс ИК» (ранее зарегистрированный как «Ультра-гель») и «Блаттанекс-гель» (2,15% имидаклоприда) (фирма «Байер»); «Идеал-гель», «Тройной удар» и другие (Россия), содержащие имидаклоприд или смесь последнего с карбаматами и / или пиретроидами. Зарегистрированы также препараты «Имидаклоприд 95%» (фирма «Нью-Агро БЭЗ», Китай) как субстанция для производства инсектицидных средств и «Конфидант» (20% имидаклоприда) (Россия) для борьбы с комплексом синантропных членистоногих силами профессионального контингента (hhtp://fr.crc.ru/cgi-bin/fr-dez/fr.exe).

Таким образом, отсутствие у неоникотиноидов перекрестной резистентности к широко используемым в ветеринарной практике фосфорорганическим соединениям, пиретроидам и карбаматам в сочетании с высокой инсектицидной активностью и низкой токсичностью для млекопитающих создают все предпосылки для успешного использования этой группы инсектицидов в ветеринарии.

Литература

K a g a b u S. Molecular design of neonicotinoids: past, present and future. Chemistry of crop protection. Progress and prospects in science and regulation. 10-th IUPAC /Ed. G. Voss, G. Ramos. Switzerland, Basel, 2003: 193-212.

M e n c k e N., J e s c h k e P. Therapy and prevention of parasitic insects in veterinary medicine using imidacloprid. Curr. Top Med. Chem., 2002, 2, 7: 701-715.

H o v d a L.R., H o o s e r S.B. Toxicology of newer pesticides for use in dogs and cats. Vet. Clin. North. Am. Small Anim. Pract., 2002, 32, 2: 455-467.

Б о г д а н о в а Е.Н., Л а ч и н о в а Р.И., П о п о в а О.В. Борьба с блохами, нападающими на людей в условиях города. Мат. Всерос. науч. конф., посв. 70-летию НИИД МЗ РФ «Задачи современной дезинфектологии и пути их решения». М., 2003, 2: 9-10.

Д р е м о в а В.П., П у т и н ц е в а Л.С., З а е в а Г.Н. и др. Результаты изучения синтетического пиретроида циперметрина. Сб. науч. тр. «Актуальные вопросы дезинфекции и стерилизации». М., 1984: 54-56.

L e i c h t W. Imidacloprid - ein chloronicotinyl-insektizid: biologische aktivitat und landwirtschaftliche bedeutung. Pflazenschutz-Nachrichten Bayer, 1996, 49, 1: 71-86.

M c D e r m o t t M.J., W e b e r E., H u n t e r S. e.a. Identification, cloning, and characterization of a major cat flea salivary allergen (Cte f 1). Mol. Immunol., 2000, 37, 7: 361-375.

H i n a i d y H.K. The biology of Dipylidium caninum (Part 2). Zentralbl. Veterinarmed. B, 1991, 38, 5: 329-336.

V o b i s M., D' H a e s e J., M e h l h o r n H. e.a. Evidence of horizontal transmission of feline leukemia virus by the cat flea (Ctenocephalides felis). Parasitol. Res., 2003, 91, 6: 467-470.

W e d i n c a m p J. Jr., F o i l L.D. Vertical transmission of Rickettsia felis in the cat flea (Ctenocephalides felis Bouch.). J. Vector. Ecol., 2002, 27, 1: 96-101.

E n g b a e k K., L a w s o n P.A. Identification of Bartonella species in rodents, shrews and cats in Denmark: detection of two B. henselae variants, one in cats and the other in the long-tailed field mouse. APMIS, 2004, 112, 6: 336-341.

T e l t o w G.J., F o u r n i e r P.V., R a w l i n g s J.A. Isolation of Borrelia burgdorferi from arthropods collected in Texas. Am. J. Trop. Med. Hyg., 1991, 44, 5: 469-474.

S o r v i l l o F.J., G o n d o B., E m m o n s R. e.a. A suburban focus of endemic typhus in Los Angeles County: association with seropositive domestic cats and opossums. Am. J. Trop. Med. Hyg., 1993, 48, 2: 269-273.

S c h r i e f e r M.E., S a c c i J.B. Jr., T a y l o r J.P. e.a. Murine typhus: updated roles of multiple urban components and a second typhuslike rickettsia. J. Med. Entomol., 1994, 31, 5: 681-685.

M u m c u o g l u K.Y., I o f f e - U s p e n s k y I., A l k r i n a w i S. e.a. Prevalence of vectors of the spotted fever group Rickettsiae and murine typhus in a Bedouin town in Israel. J. Med. Entomol., 2001, 38, 3: 458-461.

Z a v a l a - V e l a z q u e z J.E., Z a v a l a - C a s t r o J.E., V a d o - S o l i s I. e.a. Identification of Ctenocephalides felis fleas as a host of Rickettsia felis, the agent of a spotted fever rickettsiosis in Yucatan, Mexico. Vector Borne Zoonotic. Dis., 2002, 2, 2: 69-77.

M o y s e s E.W., G f e l l e r F.J. Topical application as a method for comparing the effectiveness of insecticides against cat flea (Siphonaptera: Pulicidae). J. Med. Entomol., 2001, 38, 2: 193-196.

S a n t o r a K.A., Z a k s o n - A i k e n M., R a s a C. e.a. Development of a mouse model to determine the systemic activity of potential flea-control compounds. Vet. Parasitol., 2002, 104, 3: 257-264.

D o b s o n P., T i n e m b a r t O., F i s c h R.D. e.a. Efficacy of nitenpyram as a systemic flea adulticide in dogs and cats. Vet. Rec., 2000, 147, 25: 709-713.

R u s t M.K., W a g g o n e r M.M., H i n k l e N.C. e.a. Efficacy and longevity of nitenpyram against adult cat fleas (Siphonaptera: Pulicidae). J. Med. Entomol., 2003, 40, 5: 678-681.

S c h e n k e r R., T i n e m b a r t O., H u m b e r t - D r o z E. e.a. Comparative speed of kill between nitenpyram, fipronil, imidacloprid, selamectin and cythioate against adult Ctenocephalides felis (Bouche) on cats and dogs. Vet. Parasitol., 2003, 112, 3: 249-254.

J a c o b s D.E., H u t c h i n s o n M.J., F o x M.T. e.a. Comparison of flea control strategies using imidacloprid or lufenuron on cats in a controlled simulated home environment. Am. J. Vet. Res., 1997, 58, 11: 1260-1262.

D r y d e n M.W., P e r e z H.R., U l i t c h n y D.M. Control of fleas on pets and in homes by use of imidacloprid or lufenuron and a pyrethrin spray. J. Am. Vet. Med. Assoc., 1999, 215, 1: 36-39.

D r y d e n M.W., D e n e n b e r g T.M., B u n c h S. Control of fleas on naturally infested dogs and cats and in private residences with topical spot applications of fipronil or imidacloprid. Vet. Parasitol., 2000, 93, 1: 69-75.

A r t h e r R.G., C u n n i n g h a m J., D o r n Н. e.a. Efficacy of imidacloprid for removal and control of fleas (Ctenocephalides felis) on dogs. Am. J. Vet. Res., 1997, 58, 8: 848-850.

R i t z h a u p t L.K., R o w a n T.G., J o n e s R.L. Evaluation of efficacy of selamectin, fipronil, and imidacloprid against Ctenocephalides felis in dogs. J. Am. Vet. Med. Assoc., 2000, 217, 11: 1669-1671.

J a c o b s D.E., H u t c h i n s o n M.J., E w a l d - H a m m D. Inhibition of immature Ctenocephalides felis felis (Siphonaptera: Pulicidae) development in the immediate environment of cats treated with imidacloprid. J. Med. Entomol., 2000, 37, 2, 228-230.

F o u r i e L.J., K o k D.J., P e t e r R.J. Control of immature stages of the flea Ctenocephalides felis (Bouche) in carpets exposed to cats treated with imidacloprid. J.S. Afr. Vet. Assoc., 2000, 71, 4: 219-221.

F r a n c M., C a d i e r g u e s M.C. Antifeeding effect of several insecticidal formulations against Ctenocephalides felis on cats. Parasite, 1998, 5, 1: 83-86.

J a c o b s D.E., H u t c h i n s o n M.J., R y a n W.G. Control of flea populations in a simulated home environment model using lufenuron, imidacloprid or fipronil. Med. Vet. Entomol., 2001, 15, 1: 73-77.

M e h l h o r n H., M e n c k e N., H a n s e n O. Effects of imidacloprid on adult and larval stages of the flea Ctenocephalides felis after in vivo and in vitro application: a light - and electron-microscopy study. Parasitol. Res., 1999, 85, 8-9: 625-637.

M e h l h o r n H., H a n s e n O., M e n c k e N. Comparative study on the effects of three insecticides (fipronil, imidacloprid, selamectin) on developmental stages of the cat flea (Ctenocephalides felis Bouche, 1835): a light and electron microscopic analysis of in vivo and in vitro experiments. Parasitol. Res., 2001, 87, 3: 198-207.

R a u c h N., N a u e n R. Identification of biochemical markers linked to neonicotinoid cross resistance in Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae). Arch. Insect Biochem. Physiol., 2003, 54, 4: 165-176.

R i c h m a n D.L., K o e h l e r P.G., B r e n n e r R.J. Effect of temperature and the synergist piperonyl butoxide on imidacloprid toxicity to the cat flea (Siphonaptera: Pulicidae). J. Econ. Entomol., 1999, 92, 5: 1120-1124.

Vector Resistance to pesticides. Tech. Report Ser. WHO, 1992, 818: 62.

M o u r y a D.T., G e e v a r g h e s e G., G o k h a l e M.D. e.a. Present insecticide susceptibility status of Xenopsylla cheopis from bed district Maharashtra state India. India Entomol., 1998, 23, 3: 211-217.

B o s s a r d R.L., D r y d e n M.W., B r o c e A.B. Insecticide susceptibilities of cat fleas (Siphonaptera: Pulicidae) from several regions of the United States. J. Med. Entomol., 2002, 39, 5: 742-746.

П р о т о п о п я н М.Г. Устойчивость к ДДТ блох - переносчиков чумы в Среднеазиатском пустынном очаге в связи с проблемой полевой дезинсекции. Автореф. докт. дис. Саратов, 1994.

C o r b e l V., D u c h o n S., Z a i m M. e.a. Dinotefuran: a potential neonicotinoid insecticide against resistant mosquitoes. J. Med. Entomol., 2004, 41, 4: 712-717.

H a n s s e n I., M e n c k e N., A s s k i l d t Н. e.a. Field study on the insecticidal efficacy of advantage against natural infestations of dogs with lice. Parasitol. Res., 1999, 85, 4: 347-348.

M e n s c k e N., L a r s e n K.S., E y d a l M. e.a. Natural infestation of the chewing lice (Werneckiella equi) on horses and treatment with imidacloprid and phoxim. Parasitol. Res., 2004, 94, 5: 367-370.

M e n c k e N., V o l f P., V o l f o v a V. e.a. Repellent efficacy of a combination containing imidacloprid and permethrin against sand flies (Phlebotomus papatasi) in dogs. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S108-S111.

M e h l h o r n H., D' H a e s e J., M e n c k e N. e.a. In vivo and in vitro effects of imidacloprid on sheep keds (Melophagus ovinus): a light and electron microscopic study. Parasitol. Res., 2001, 87, 4: 331-336.

P o s p i s c h i l R. Imidacloprid fly bait: a fast-acting formulation against flies in livestock. Proc. 4-th ICUP. Charleston, USA, 2002.

E p e C., C o a t i N., S t a n n e c k D. Efficacy of the compound preparation imidacloprid 10%/permethrin 50% spot on against ticks (I. ricinus, R. sanguineus) and flies (Ct. felis) on dogs. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S122-S124.

M e h l h o r n H., S c h m a c l G., M e n c k e N. e.a. The effects of an imidacloprid and permethrin combination against development stages of Ixodes ricinus ticks. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S119-S121.

Y o u n g D.R., A r t h e r R.G., D a v i s W.L. Evaluation of K9 Advantix vs. Frontline Plus topical treatments to repel brown dog ticks Rhipicephalus sanguineus on dogs. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S116-S118.

H e l l m a n n K., K n o p p e T., K r i e g e r K. e.a. European multicenter field trial on the efficacy and safety of a topical formulation of imidacloprid and permethrin (Advantix TM) in dogs naturally infested with ticks and/or fleas. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S125-S126.

S p e n c e r J.A., B u t l e r J.M., S t a f f o r d K.C. e.a. Evaluation of permethrin and imidacloprid for prevention of Borrelia burgdorferi transmission from blacklegged ticks (Ixodes scapularis) to Borrelia burgdorferi-free dogs. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S106-S107.

A l e k s e e v A.A., C h a n k i n a O.V., D o b r o t v o r s k y A.K. e.a. Susceptibility of taiga tick Ixodes persulcatus Schulze to pirethroids. Exp. Appl. Acarol., 1994, 18, 4: 233-240.

Ш а ш и н а Н.И. Связь акарицидной активности пиретроидов с их химическим строением. Мат. Всерос. науч. конф. «Актуальные проблемы дезинфектологии в профилактике инфекционных и паразитарных заболеваний». М., 2002: 227.

R e i n e m e y e r C.R., C h a r l e s S. Evaluation of the efficacy of a combination of imidacloprid and moxidectin against immature Toxocara cati in cats. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S140-S141.

H e l l m a n K., K n o p p e T., R a d e l o f f I. e.a. The antihelmintic efficacy and the safety of a combination of imidacloprid and moxidectin spot-on in cats and dogs under field conditions in Europe. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S142-S143.

A r t h e r R.G., B o w m a n n D.D., M m C a l l J.W. e.a. Feline advantage heart (imidacloprid and moxidectin) topical solution as monthly treatment for prevention of heartworm infection (Dirofilaria immitis) and control of fleas (Ctenocephalides felis) on cats. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S137-S139.

S a m s o n - H i m m e l s t j e r n a G. Von, E p e C., S c h i m m e l A. e.a. Larvicidal and persistent efficacy of an imidacloprid and moxidectin topical formulation against immature endoparasites in cats and dogs. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S114-S115.

F o u r i e L.J., K o k D.J., H e i n e J. Evaluation of the efficacy of an imidacloprid 10%/moxidectin 1% spot-on against Otodectes cinotis in cats. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S112-S113.

F o u r i e L.J., R a n d Du.C., H e i n e J. Evaluation of the efficacy of an imidacloprid 10%/moxidectin 2,5% spot-on against Sarcoptes scabiei var canis on dogs. Parasitol. Res., 2003, 90, 3: S135-S136.

Лекарственные средства ветеринарного назначения в России (Справочник). М., 2003/2004.

Список пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. Справ. изд. Прилож. к журн. «Защита растений», 2004, 5.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Изучение этиологии, патогенеза ожогов мелких домашних животных и определение наиболее эффективного и экономически выгодного способа лечения. Формирование экспериментальных групп животных, проведение опытов, оценка эффективности лечения ожогов препаратами.

    дипломная работа [704,9 K], добавлен 10.07.2017

  • Ознакомление с патогенезом, клиническими признаками, течением и основными симптомами бешенства у домашних и диких теплокровных животных. Изучение патологоанатомических изменений организма. Дифференциальная диагностика, лечение и профилактика заболевания.

    реферат [24,2 K], добавлен 07.12.2011

  • Дикие предки и родичи домашних животных. Изменение животных под влиянием одомашнивания: величина и формы тела, масть и волосяной покров, плодовитость. Характерные признаки доместикации. Изучение происхождения и эволюции сельскохозяйственных животных.

    реферат [61,7 K], добавлен 01.03.2015

  • Определение времени одомашнивания, содержания и снабжения кормом мелких домашних животных и крупного рогатого скота в странах Передней Азии и Средней Европы. Дикие предки домашних собак, свиней, овец, коз, коров, лошадей, ослов, курей, гусей и голубей.

    реферат [28,8 K], добавлен 30.06.2011

  • Принципы селекции животных. Отбор родительских форм и типы скрещивания животных. Отдаленная гибридизация домашних животных. Восстановление плодовитости у животных. Успехи селекционеров России в создании новых и улучшении существующих пород животных.

    презентация [2,6 M], добавлен 04.10.2012

  • Изучение возможности применения и терапевтическая эффективность операций у собак и кошек при различной этиологии возникновения показаний к операции. Определение болезни. Рекомендации по профилактике патологий родов, приводящих к кесареву сечению.

    курсовая работа [43,8 K], добавлен 18.04.2015

  • Туберкулез - хронически протекающая инфекционная болезнь домашних и диких животных, птиц и человека, ее клинические проявления. Постановка и учёт реакции Манту. Патогенность видов возбудителя туберкулеза для лабораторных животных, его эпизоотология.

    презентация [24,5 M], добавлен 30.03.2015

  • Группы средств для наркоза (обезболивания), преимущества и недостатки. Проведение премедикации животных перед оперативным вмешательством. Классификация ингаляционных и неингаляционных средств, их описание и особенности, применение в ветеринарии.

    контрольная работа [15,4 K], добавлен 24.04.2009

  • Основные болезни иммунных комплексов. Фагоцитоз и определение фагоцитарной активности. Анализ результатов серологических методов диагностики инфекционных заболеваний животных на примере работы ветеринарной лаборатории (районной, областной и межрайонной).

    контрольная работа [179,3 K], добавлен 22.04.2014

  • Ветеринарная офтальмология, анатомия, физиология, методы исследования болезней глаз у животных. Анамнез болезни, возникновение поверхностного гнойного кератита у мелких домашних животных в связи с травматизмом органа зрения, диагностика и лечение.

    история болезни [206,3 K], добавлен 26.12.2011

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.