Интегральный метод диагностики метаболических нарушений у коров
Изучение интегрального метода диагностики метаболических нарушений у коров. Определение содержания в плазме и эритроцитах крови веществ низкой и средней молекулярной массы, описание рутинных биохимических методов. Методы корректировки кормового рациона.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 24.11.2020 |
Размер файла | 107,5 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
ИНТЕГРАЛЬНЫЙ МЕТОД ДИАГНОСТИКИ МЕТАБОЛИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ У КОРОВ
И.П. СТЕПАНОВА, И.В. ВЛАСОВА, Л.М. ДМИТРИЕВА
Проводили сравнительную оценку интегрального метода диагностики метаболических нарушений у коров, основанного на спектрофометрическом определении содержания в плазме и эритроцитах крови веществ низкой и средней молекулярной массы, и рутинных биохимических методов. Обсуждается возможность широкого использования на практике интегрального метода, что позволит корректировать кормовой рацион животных с целью профилактики нарушений обмена веществ.
INTEGRATE METHOD OF DIAGNOSTICS OF METABOLIC DISTURBANCES IN THE СOWS
I.P. Stepanova, I.V. Vlasova, L.M. Dmitrieva
S u m m a r y
For early diagnostics of cow metabolism the integrate method for estimation of metabolic status based on definition of the contents of substances of low and average molecular weight in plasma and erythrocytes of blood can be widely used in practice. It was shown, that this method is repeated good and give the large information, if the conventional blood analyses will be reduced.
Ранняя диагностика метаболических нарушений позволяет повышать продуктивность, снижать заболеваемость и падеж скота. В медицинской практике для выявления обменных нарушений широко используют показатель, основанный на спектрофотометрическом определении веществ низкой и средней молекулярной массы (ВНСММ) в биологических средах (1, 2). К этим соединениям относится более 200 веществ разной биологической активности с относительной молекулярной массой 500-5000, в частности, инсулин, брадикинин, серотонин, гистамин, ангиотензины, нейропептиды, нейромедиаторы, мочевина, креатинин, мочевая кислота и др. Концентрация этих соединений в норме невелика и строго контролируется. Предполагается, что незначительное увеличение концентрации соединений этой фракции является компенсаторной реакцией организма, так как некоторые ее компоненты оказывают позитивное воздействие на отдельные звенья гомеостаза, например, они способны стимулировать фагоцитарную активность, иммунитет в целом, а также влиять на сосудистый тонус с компенсацией развивающихся расстройств. Однако дальнейшее повышение содержания ВНСММ оказывает негативное действие, так как образуются полипептиды с низкой и средней молекулярной массой, которые могут ингибировать эритропоэз, фагоцитарную активность лейкоцитов, пролиферацию фибропластов, синтез гемоглобина, запускать ряд иммунологических реакций, вызывать вторичную иммунодепрессию, изменять проницаемость клеточных мембран, нарушать трансмембранный транспорт (в том числе, ингибируя Na+- и К+-зависимую АТФазу), нарушать микроциркуляцию (3). Кроме того, некоторые компоненты фракции ВНСММ угнетают тканевое дыхание, разобщают окисление и фосфорилирование, проявляют цитотоксическое действие, влияют на свертываемость крови и фибринолиз, перекисное окисление липидов и обмен моноаминов в головном мозге, ингибируют ряд ферментов (лактатдегидрогеназу, пируваткиназу, транскетолазу).
В результате биологического воздействия фракции ВНСММ наблюдаются следующие нарушения физиологических функций: пониженная толерантность к бактериальной и вирусной инфекции, недостаточность клеточного и гуморального иммунитета, анемия, ухудшение нервно-мышечной проводимости, гипертонус миокарда, гиперкатаболизм, дисметаболизм аминокислот, гипогликемия, нарушение липидного состава крови и т.д. (1-3). В животноводстве аналогичный показатель используют для оценки метаболического статуса коров (4-6). В то же время сравнение диагностических возможностей оценки азотистого обмена интегральным и рутинными биохимическими методами не проводили, что и явилось целью наших исследований.
Описание методики. Научно-хозяйственный опыт ставили на базе ЗАО им. Ф. Энгельса Любинского района Омской области. В опытную группу входило 130 коров красной степной породы в возрасте 2-3 лет с аналогичными показателями живой массы и молочной продуктивности, которых содержали в условиях поточно-цеховой системы. Было сформировано четыре технологические группы здоровых коров (25 гол. в каждой) на основе следующих физиологических периодов: производство молока (I), сухостой (II), отел (III), раздой и осеменение (IV). Продолжительность сухостойного периода и периода раздоя после отела составляла соответственно 60 и 100 сут; исследования проводили в стойловый период. Все животные получали одинаковый по структуре и питательности рацион, соответствующий детализированным нормам. Группа коров с клиническими признаками нарушений обмена веществ (отставание в росте, низкая живая масса, потеря шерстного покрова и т.д.) состояла из 30 гол.
Содержание ВНСММ определяли методом Малаховой, принцип которого состоит в осаждении крупномолекулярных частиц плазмы крови и эритроцитов раствором трихлоруксусной кислоты и спектральном анализе водного раствора супернатанта в диапазоне длин волн от 238 до 310 нм (1). Для оценки результатов исследований определяли площадь усредненных спектрограмм плазмы и эритроцитов крови с использованием программы Origin 41. Содержание общего белка, альбуминов, мочевины, креатинина, билирубина, сыворотки крови, активность ферментов аспартатаминотрансферазы (АСАТ), аланинаминотранферазы (АЛАТ) и -глутамилтранспептидазы (ГГТ) определяли унифицированными методами с помощью наборов реактивов фирмы «Lachema» (Чехия). Математическую обработку данных проводили по критерию Стьюдента, сравнение средних величин выборок -- на основе критерия Фишера.
Профили спектрограмм плазмы и эритроцитов крови животных всех изучаемых групп имели приблизительно одинаковый вид. При = = 238-246 нм оптическая плотность была равна нулю. Начиная с = 250 нм, оптическая плотность возрастала; максимумы поглощения отмечены при = 2748 и = 2864 нм -- соответственно для плазмы и эритроцитов крови (рис. 1). У коров I, II, III и IV групп средняя высота пиков спектрограммы плазмы составляла соответственно 0,144; 0,121; 0,074; 0,106 усл. ед., эритроцитов -- 0,383; 0,301; 0,228; 0,209 усл. ед.
О содержании ВНСММ в биологических жидкостях позволяет судить площадь фигуры, ограниченная спектральной кривой и осью абсцисс. Этот показатель у животных I, II, III и IV групп составлял для плазмы крови соответственно 6,683,81; 4,262,23; 2,530,63; 3,491,39 усл. ед.2, для эритроцитов -- 13,516,64; 12,506,61; 8,814,05; 7,712,80 усл. ед2.
Содержание ВНСММ в плазме и эритроцитах крови в периоды производства молока и за 60 сут до отела не различалось, в периоды отела и раздоя наблюдалось достоверное снижение этого показателя (Р < 95), что, возможно, вызвано повышенной потребностью организма в таких важнейших соединениях, как НАД+, НАДФН, рибозо-5-фосфат, глутатион, необходимых для синтеза и детоксикации. Это предположение основано на том, что вышеперечисленные соединения поглощают световое излучение в исследуемом диапазоне длин волн (1).
По данным статистической обработки, сравнение площадей спектрограмм плазмы и эритроцитов крови можно проводить только по трем парам сравниваемых групп коров (табл. 1).
1. Сравнительная оценка площадей спектрограмм плазмы и эритроцитов крови коров по физиологическим периодам
Критерий оценки |
Сравниваемые группы животных |
||||||
I--II |
I--III |
I--IV |
II--III |
II-- IV |
III--IV |
||
П л о щ а д ь с п е к т р о г р а м м ы п л а з м ы к р о в и (Sпл.) |
|||||||
Fэксп. |
2,03 |
10,74 |
2,78 |
21,95 |
4,82 |
3,89 |
|
Fтабл. |
2,20 |
3,90 |
3,60 |
3,90 |
3,60 |
5,40 |
|
tэксп. |
2,16 |
-- |
1,80 |
- |
- |
3,41 |
|
tтабл. |
2,75 |
- |
2,75 |
- |
- |
2,83 |
|
П л о щ а д ь с п е к т р о г р а м м ы э р и т р о ц и т о в (Sэр.) |
|||||||
Fэксп. |
1,78 |
2,46 |
4,20 |
4,37 |
7,48 |
1,71 |
|
Fтабл. |
2,20 |
3,90 |
3,40 |
3,90 |
3,40 |
4,80 |
|
tэксп. |
0,911 |
4,57 |
- |
- |
- |
1,29 |
|
tтабл. |
2,75 |
2,75 |
- |
- |
- |
2,82 |
|
П р и м е ч а н и е. Прочерк в таблице означает, что площади спектрограмм сравнить невозможно. F и t -- критерии соответственно Фишера и Стьюдента. |
В связи с тем, что площади спектрограмм в пределах одной группы животных значительно различались, мы с целью повышения воспроизводимости метода использовали интегральные индексы для плазмы крови (ИИпл.) и эритроцитов (ИИэр.). По аналогии с площадью всей спектрограммы ИИпл. и ИИэр. представляют собой площадь спектральной фигуры, ограниченной длинами волн в диапазоне соответственно 266-282 и 282-294 нм, в котором находятся максимумы поглощения спектров плазмы и эритроцитов крови всех животных: ИИпл. = 4D(266-282), ИИэр. = = 4D(282-294), где D -- оптическая плотность (усл. ед.) (табл. 2).
2. Интегральные индексы (ИИ) и относительный показатель (ИПотн.) плазмы и эритроцитов крови коров по физиологическим периодам
Индекс |
Группа животных |
||||
I |
II |
III |
IV |
||
ИИпл., усл. ед.2 |
1,23-4,37 |
1,08-3,44 |
1,80-2,24 |
1,29-1,53 |
|
ИИэр., усл. ед.2 |
3,48-11,24 |
3,23-8,17 |
3,45-4,35 |
3,77-4,95 |
|
ИИотн. |
2,40-4,06 |
2,43-3,13 |
2,36-2,92 |
1,73-2,31 |
|
ИПотн. |
1,92-2,39 |
2,91-2,94 |
2,50-4,08 |
2,16-2,32 |
Введение ИИпл. и ИИэр. позволяет сравнивать большее число групп животных (во втором случае почти все) и повышает воспроизводимость метода (табл. 3).
корова нарушение метаболический корм
3. Сравнительная оценка интегральных индексов плазмы и эритроцитов крови коров по физиологическим периодам (усл. ед.2)
Критерий оценки |
Сравниваемые группы животных |
||||||
I--II |
I--III |
I--IV |
II--III |
II-- IV |
III--IV |
||
И н т е г р а л ь н ы й и н д е к с п л а з м ы к р о в и (ИИпл.) |
|||||||
Fэксп. |
1,82 |
4,89 |
2,09 |
8,89 |
3,31 |
2,33 |
|
Fтабл. |
2,20 |
3,90 |
3,60 |
3,90 |
3,60 |
5,40 |
|
tэксп. |
2,28 |
- |
1,15 |
- |
2,63 |
3,48 |
|
tтабл. |
2,75 |
- |
2,75 |
- |
2,75 |
2,83 |
|
И н т е г р а л ь н ы й и н д е к с э р и т р о ц и т о в (ИИэр.) |
|||||||
Fэксп. |
1,96 |
1,95 |
2,87 |
3,82 |
5,64 |
1,47 |
|
Fтабл. |
2,20 |
3,90 |
3,14 |
3,90 |
3,40 |
4,80 |
|
tэксп. |
1,79 |
2,92 |
4,13 |
3,56 |
- |
1,01 |
|
tтабл. |
2,75 |
2,75 |
2,75 |
2,75 |
- |
2,82 |
|
П р и м е ч а н и е. Прочерк в таблице означает, что сравнить индексы невозможно. F и t -- критерии соответственно Фишера и Стьюдента. |
Биохимические показатели азотистого обмена здоровых животных, оцениваемые рутинными методами, находились в пределах нормы, соответствующей каждому физиологическому периоду. Так, для группы коров в период производства молока, сухостоя, отела и раздоя концентрация в сыворотке крови общего белка составляла соответственно 85,34,5; 84,76,0; 80,82,3; 78,65 г/л; альбуминов -- 26,42,1; 27,63,2; 24,52,7; 25,42,2 г/л; мочевины -- 5,40,8; 5,20,6; 4,00,7; 4,20,6 ммоль/л; креатинина --0,1740,052; 0,1420,048; 0,1350,071; 0,1380,063 ммоль/л; билирубина -- 2,10,2; 4,10,4; 3,80,03; 2,30,2 мкмоль/л; активность АСАТ -- 1,700,14; 1,680,15; 1,730,14; 1,750,15; АЛАТ -- 1,370,15; 1,380,14; 1,420,15; 1,410,14 нмоль/(сл); ГГТ -- 1,020,11; 1,030,12; 1,050,11 1,050,12 мкмоль/(сл).
При нарушении обмена веществ характер спектрограмм изменялся, так как повышалась концентрация ВНСММ в крови. На начальной стадии нарушений обмена веществ повышалась оптическая плотность спектрограмм при длинах волн, соответствующих максимуму, при глубоких нарушениях изменялось расположение спектрограмм в целом. Кроме того, при глубоких нарушениях метаболизма смещались полосы максимумов спектрограмм и появлялись отличные от нуля показатели оптической плотности при длинах волн в диапазоне 238-246 нм, когда регистрируются вещества катаболического происхождения, ксенобиотики, продукты распада клеток микробной природы и т.д. У здоровых животных эти вещества в норме имеются в незначительных концентрациях, ниже порога чувствительности метода (D = 0).
Установить степень нарушения обмена веществ позволяет относительный интегральный индекс (ИИотн.), который рассчитывают по формуле: ИИотн. = ИИэр./ИИпл.; в норме ИИотн. = 1,734,06 (см. табл. 2). На ранних стадиях метаболических нарушений увеличивалась сорбционная емкость эритроцитов, так как последние за счет белка гликофорина адсорбируют на поверхности вещества разных классов, в том числе, и средней молекулярной массы. В то же время концентрация ВНСММ в плазме крови практически не изменялась, в результате чего значения ИИотн. были выше, чем в норме. На спектрограммах, соответствующих второй стадии нарушений метаболизма, наблюдалось умеренное увеличение содержания ВНСММ как в плазме крови, так и в эритроцитах, причем значения ИИотн. начинали снижаться. На третьей стадии нарушений обменных процессов увеличивалось содержание ВНСММ как в плазме крови, так и в эритроцитах, причем больше в плазме. Следовательно, при патологии ИИотн. резко снижается, что позволяет судить о степени нарушения обмена веществ и повышает информативность и значимость этого показателя (рис. 2).
Высокой информативностью обладает также относительный интегральный показатель (ИПотн.), который рассчитывают по формуле ИПотн. = /, где и -- площадь спектрограммы соответственно эритроцитов и плазмы крови; в норме ИПотн. = 2,053,47 (см. табл. 2). Характер зависимости ИПотн. от стадий метаболических нарушений аналогичен таковому ИИотн. (см. рис. 2).
В то же время биохимические показатели рутинных методов не всегда позволяют выявлять нарушения обмена веществ на ранней стадии. Так, у животных с клиническими признаками нарушений обмена веществ концентрация общего белка в сыворотке крови составляла 63,42,2; альбуминов -- 23,753,8 г/л; мочевины -- 5,80,9 ммоль/л; креатинина --0,1820,067 ммоль/л; билирубина -- 3,900,4 мкмоль/л; активность АСАТ -- 1,760,16 нмоль/(сл); АЛАТ -- 0,430,15 нмоль/(сл); ГГТ -- 1,040,12 мкмоль/(сл).
Таким образом, интегральный метод оценки метаболического статуса коров, основанный на спектрофотометрическом определении содержания веществ низкой и средней молекулярной массы, является хорошо воспроизводимым, простым и сохраняет информативность по биохимическим показателям при сокращении числа общепринятых анализов крови. Следовательно, этот метод может быть широко использован на практике для диагностики метаболических нарушений, что дает возможность корректировать кормовой рацион животных и проводить профилактические мероприятия.
Л И Т Е Р А Т У Р А
М а л а х о в а М.Я. Метод регистрации эндогенной интоксикации. СПб, 1995.
О б о л е н с к и й С.В., М а л а х о в а М.Я. Лабораторная диагностика интоксикаций в практике интенсивной терапии. СПб, 1991.
С и м б и р ц е в С.А., Б е л я к о в Н.А. Патофизиологические аспекты эндогенных интоксикаций. Тез. докл. междунар. симп. «Эндогенные интоксикации». СПб, 1994: 5-9.
С т е п а н о в а И.П. Диагностическая ценность определения ВНСММ в плазме крови и эритроцитах коров. Зоотехния, 2001, 12: 14-15.
С т е п а н о в а И.П. Интегральная оценка метаболического статуса крупного рогатого скота. В сб.: Достижения ветеринарной медицины -- XXI веку. Мат. междунар. науч. конф., посвященной 40-летию Института ветеринарной медицины АГАУ. Барнаул, 2002: 179-180.
С т е п а н о в а И.П. Сравнительный анализ методов оценки метаболического статуса коров в разные физиологические периоды. Тез. докл. 4-го съезда физиологов Сибири. Новосибирск, 2002: 269.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Причины яловости и бесплодия коров и телок: плохое кормление и микроклимат, отсутствие моциона, недостаточная активность желез внутренней секреции, заболевания половых органов. Характеристика кормового рациона и условий содержания крупного рогатого скота.
реферат [30,1 K], добавлен 28.06.2013Организация и расчет кормления 650 полновесных коров живой массой 600 кг., средней упитанности при среднем удое на фуражную корову 4500 кг. Особенности рациона стельных сухостойных коров и кормления лактирующих коров. Организация кормления кроликов.
курсовая работа [68,8 K], добавлен 08.12.2010Выявление среди поголовья коров клинического и субклинического кетоза и изучение клинических и биохимических показателей при кетозе. Разработка лечебных мероприятий кетоза коров. Биохимический анализ крови. Разработка профилактических мероприятий.
курсовая работа [100,8 K], добавлен 30.03.2015Рассмотрение использования технических средств, снижающих частоту осложнений родов и сокращающих послеродовой период и сроки бесплодия коров. Определение биохимических, гематологических и иммунобиологических показателей крови, шеечной слизи и молока.
курсовая работа [43,5 K], добавлен 14.04.2014Воздействие имуномодулятора на показатели периферической крови глубокостельных коров. Нахождение эффективного метода коррекции естественной резистентности организма и внутриутробно развивающегося потомства. Воздействие тимогена на организм коров.
статья [10,1 K], добавлен 15.12.2009Диагностика маститов у коров в период лактации, признаки ее клинической выраженности. Диагностика по молоку из каждой четверти вымени. Бактериологическое исследования молока. Лечение коров, больных маститами, особенности профилактики заболевания.
дипломная работа [105,8 K], добавлен 03.12.2011Понятие о норме кормления коров как показателе физиологической потребности животного в отдельных питательных веществах. Структура кормового рациона. Соотношение отдельных видов кормов. Основные компоненты полноценного питания крупного рогатого скота.
курсовая работа [64,6 K], добавлен 14.03.2015Химический состав и структура рациона дойных коров ОАО "Племзавод Чикский", определение наличия в нем токсических элементов. Изучение влияния цеолита на биохимические показатели сыворотки крови коров при остеодистрофии, меры по профилактике болезни.
курсовая работа [214,3 K], добавлен 25.06.2013Кормление стельных сухостойных коров, рекомендуемые количества питательных веществ. Компоненты рациона молочных коров - грубые корма, концентраты, сенаж, пастбищное содержание. Витаминная питательность кормов, содержание витаминов в основных кормах.
курсовая работа [47,8 K], добавлен 11.03.2013Научные основы кормления коров при поточно-цеховой технологии производства молока. Основные факторы, определяющие норму кормления. Определение нормы и составление предлагаемого рациона животных в хозяйстве. Расчет годовой потребности в кормах для коров.
контрольная работа [29,1 K], добавлен 15.12.2011