Гематологические показатели и продуктивность яичных кур кросса Радонеж, дебикированных в разном возрасте

Размещено на http://www.allbest.ru/

Гематологические показатели и продуктивность яичных кур кросса Радонеж, дебикированных в разном возрасте

В.Т. Лымарь, Ф.Ф. Алексеев, Д.В. Аншаков

Аннотация

У яичных кур кросса Радонеж оценивали стрессовое состояние после дебикирования в разном возрасте по физиологическим критериям и последующей продуктивности. Показано, что гематокритное число, концентрация глюкозы в крови, а также прирост живой массы молодняка, яйценоскость и масса яиц являются показателями, характеризующими стресс-реакцию на дебикирование и продолжительность адаптационного синдрома. Дебикирование как хирургическая операция оказывает воздействие на состояние птицы, поэтому ее следует проводить в 1- или 28-суточном возрасте.

Ключевые слова: птицеводство, куры яичной породы, молодняк, каннибализм, дебикирование, стресс, гликолиз, гематокритное число, прирост живой массы, продуктивность.

HEMATOLOGICAL PARAMETERS AND PRODUCTIVITY IN EGG HENS OF THE RADONEZH CROSS AFTER DEBEAKING AT THE VARIOUS AGES

V.T. Lymar', F.F. Alekseev, D.V. Anshakov

Summary

The stress state of birds after debeaking at the various ages was investigated with the help of estimation of physiological parameters and following productivity in egg hens of the Radonezh cross. It was shown that packed cell volume, glucose concentration in blood and also live weight gain in young birds, egg-laying qualities and egg mass are the parameters which characterize the stress-reaction on debeaking and the duration of adaptation syndrome. The debeaking as surgical procedure influences on bird state, therefore it must be make taking into account the rational hen age.

Птицеводство в Российской Федерации является динамично развивающейся высокотехнологичной и эффективной отраслью (1). В то же время при промышленном содержании птицы одной из проблем остается каннибализм (расклев), наносящий большой экономический ущерб. Иногда гибель по этой причине составляет более 30 % от общего числа павших особей. В той или иной степени расклев наблюдается во всех стадах и технологических группах птицы (2).

Подбор условий содержания и рационов кормления птицы не снижает актуальность проблемы. К действенным методам профилактики расклева относят дебикирование, или обрезку клюва раскаленным ножом дебикира (2-6). Отсечение части клюва, коагуляция и тепловая дезинфекция раны представляют собой хирургическую операцию, сопровождающуюся стрессом, который, безусловно, оказывает влияние на рост, развитие и продуктивность птицы (5). Продолжительность стрессового состояния может зависеть от возраста, в котором проводилось дебикирование (7). Неоднозначность данных литературы о сроках осуществления этого приема требует дальнейшего изучения проблемы.

Совокупность неспецифических изменений в организме под действием любого раздражителя называется адаптационным синдромом (стресс-реакция), который возникает при любых неблагоприятных условиях (8). Со стрессом связано такое понятие, как гомеостаз, или относительное динамическое постоянство внутренней среды (кровь, лимфа, тканевая жидкость) и устойчивость основных физиологических функций (кровообращение, дыхание, терморегуляция, обмен веществ и т.д.) организма. В общем виде в развитии адаптационного синдрома различают три последовательные стадии (8, 9). Первая стадия (тревоги) продолжается от нескольких суток до 2 нед: сначала при угрозе нарушения гомеостаза происходит мобилизация всех защитных сил организма (фаза шока), затем восстанавливается нарушенное равновесие (фаза противошока). На второй стадии (резистентности) мобилизованное состояние организма позволяет ему с меньшей ответной реакцией преодолевать воздействие того же и иных раздражителей или стрессоров. При интенсивном или многократном действии раздражителя в течение короткого отрезка времени организм не справляется с нагрузкой и развивается третья стадия (истощения). Установлено, что гибель организма может наступить в стадии тревоги или в стадии истощения.

При воздействии стрессора от нервных рецепторов сигнал поступает в гипоталамус, где вырабатывается рилизинг-фактор, активирующий переднюю долю гипофиза, которая выделяет адренокортикотропный гормон (АКТГ). Достигая мозгового слоя надпочечников, АКТГ вызывает выброс гормона адаптации -- адреналина в кровяное русло. Ответная реакция на раздражитель мгновенная или занимает секунды.

В фазе шока активируются многочисленные ферменты и медиаторы катаболизма, направленного на расщепление белков, липидов и углеводов на соединения, необходимые для преодоления произошедших нарушений. Первостепенная роль принадлежит синтезу макроэргических молекул аденозинтрифосфата (АТФ) (10).

Следует отметить, что если бы новые порции адреналина выделялись в кровь, то гибель организма от перенапряжения мышц (сердечной, скелетных) и спазма сосудов была бы неизбежной уже на стадии тревоги. Поэтому адреналин дезактивируется антагонистами: катехол-метил-трансферазой, моноаминооксидазой и холинэстеразой, но до этого активирует медиатор -- циклический аденозинмонофосфат (ц-АМФ), который поддерживает гликогенолиз и гликолиз при действующей концентрации 106 моль/клетка и менее (7, 10-12).

В задачу нашей работы входило изучение стрессового состояния птицы после дебикирования в разном возрасте на основании оценки физиологических показателей и последующей продуктивности. При выборе показателей, характеризующих стрессовую реакцию птицы после дебикирования, исходили из того, что методики определения гормонов, медиаторов и ферментов, как правило, требуют наличия дорогостоящих импортных автоматических анализаторов и наборов реактивов. Поэтому мы использовали достаточно простые и доступные физиологические критерии -- содержание глюкозы в крови и гематокритное число.

Методика. Опыты проводили на яичных курах кросса Радонеж в условиях ОНО «Загорское ЭПХ ВНИТИП». У молодняка опытных групп в 1- и 7-суточном возрасте дебикировали ? верхней и кончик нижней части клюва, а в 30-, 60-, 90- и 120-суточном возрасте -- ? верхней и ? нижней части клюва. Для этого использовали специальное устройство фирмы ОАО «Вертязин» и ВНИТИП (Патент РФ № 2206986, приоритет от 15.12.2000 г.) В контроле молодняк не дебикировали. Птицу в опыте и контроле выращивали в клеточной батарее БКМ-3, кормили одинаковыми комбикормами с учетом возраста.

Для определения гематокритного числа и концентрации глюкозы отбирали пробы крови у пяти произвольно выбранных особей опытных и контрольной групп: у 1- и 7-суточных цыплят -- после декапитации (отсечения головы), в остальных случаях -- из вены крыла. Время отбора проб для оценки концентрации глюкозы после дебикирования определяли на основании данных по изменению этого показателя в крови молодняка 1- и 90-суточного возраста разных сроков вывода.

Принцип метода определения глюкозы заключается в ее окислении глюкозооксидазой с образованием перекиси водорода, которая под действием пероксидазы в свою очередь окисляет ортотолидин с появлением синего окрашивания. Обе реакции протекают одновременно при рН 4,8. Концентрацию глюкозы в сыворотке крови определяли с использованием отечественного набора реактивов «Глюкоза-ФКД» и фотоэлектроколориметра ФЭК-М (завод ЗОМЗ, г. Сергиев Посад) при = 500 нм в кюветах с оптическим путем 10 мм. Окрашивание опытных и калибровочных проб стабильно более 4 ч. Концентрацию глюкозы рассчитывали по формуле как отношение оптической плотности в опытной пробе к таковой в калибровочной пробе, умножая на концентрацию глюкозы в калибраторе; чувствительность метода -- 1 ммоль/л (13).

Для определения гематокритного числа пробы крови, отобранные через 2, 5, 8, 11 и 15 сут после дебикирования молодняка, центрифугировали в стеклянных капиллярах в течение 10 мин при 6000 об/мин. Для предотвращения разрыва столбика крови капилляры предварительно обрабатывали гепарином, который закрепляли при 105 оС в течение 7-10 мин. Гематокритное число рассчитывали по отношению длины столбика эритроцитов к длине столбика пробы крови и выражали в процентах. Относительная ошибка метода -- до 10 % (14).

В ходе исследования сначала отрабатывали методики дебикирования птицы, определения концентрации глюкозы в крови молодняка 30-суточого возраста, а также в течение 15 сут наблюдения уточняли пределы варьирования концентрации глюкозы, отбирая пробы крови до и после кормления птицы. дебикирование продуктивность глюкоза кровь

Статистическую обработку полученных результатов проводили общепринятым методом с помощью Microsoft Excel.

Результаты. После кормления концентрация глюкозы в крови цыплят в среднем составляла 15 ммоль/л, до кормления -- около 12 ммоль/л. Нижняя граница поддерживалась за счет запасов гликогена, так как известно, что его резерв равен 1 % от массы мышц и 6 % от массы печени. В первую очередь расходуется мышечный гликоген, которого в организме в целом больше (12).

При оценке динамики концентрации глюкозы у 1- и 90-суточных цыплят после дебикирования было показано, что у птицы в возрасте 90 сут через 1 мин этот показатель повышался, что указывает на проявление гликогенолиза в ответ на стресс-реакцию, а затем снижался. У цыплят 1-суточного возраста через тот же промежуток времени (1 мин) наблюдалось достоверное снижение концентрации глюкозы, свидетельствующее об использовании в гликолизе в первую очередь глюкозы, содержащейся в крови. Исходя из этого отбор проб крови проводили через 1 мин после дебикирования. Следует отметить, что через 1 сут концентрация глюкозы в крови повышалась и составляла 90 % от исходного показателя.

м

Рис. 1. Концентрация глюкозы в крови молодняка кур кросса Радонеж, дебикированного в разном возрасте: I и II -- соответственно контроль (без дебикирования) и опыт (дебикирование).

Данные о концентрации глюкозы в крови молодняка одного срока вывода, дебикированного в 1-, 7-, 30-, 60-, 90- и 120-суточном возрасте, представлены на рисунке 1. Результаты свидетельствуют о достоверном (P = 0,05) снижении концентрации глюкозы до 2-месячного возраста, после чего проявляется гликогенолиз и этот показатель повышается (табл. 1). В возрасте 2 мес реакция на стрессовый раздражитель усиливалась, так как при живой массе молодняка в пределах 500-600 г факт забора крови вызывал снижение концентрации глюкозы в контроле. Стресс вызывал повышение концентрации глюкозы в крови в среднем до 16 ммоль/л и более у молодняка 90- и 120-суточного возраста (см. рис. 1 и 2). Таким образом, у птицы с живой массы около 1 кг стресс-реакция сопровождается немедленным использованием накопленных запасов глюкозы. Следовательно, дебикирование предпочтительнее осуществлять в период до 30-суточного возраста. При этом как антистрессовый препарат рекомендуется добавлять в корм глюкозу в дозе 0,53; 1,02 и 3,67 г/(гол • сут) для молодняка, дебикированного соответственно в возрасте 1, 7 и 30 сут (табл. 2).

1. Статистический анализ достоверности различий между концентрацией глюкозы в крови молодняка кур кросса Радонеж, дебикированных в разном возрасте, и контролем (без дебикирования) (n = 5)

2. Расчет количества глюкозы, добавляемой в корм в качестве антистрессового препарата для дебикировананного молодняка кур кросса Радонеж в возрасте до 30 сут

Рис. 2. Нормативная живая масса молодняка кур кросса Радонеж в процессе выращивания.

На обоснованность такого заключения указывают и результаты оценки гематокритного числа у молодняка кур, дебикированного до 2-месячного возраста (рис. 3). Этот показатель в контроле был постоянным и составлял в среднем 31 %, но после дебикирования он возрастал (хотя и недостоверно при P = 0,05) у молодняка всех опытных групп, что указывало на происходящую в организме цыплят перестройку. Существенное увеличение количества эритроцитов у цыплят, дебикированных в 1- и 7-суточном возрасте, регистрировали на 2-е сут, к норме показатель возвращался на 5-е сут. В том случае, когда дебикировали молодняк 30- и 60-суточного возраста, значительное повышение гематокритного числа отмечали на 8-е сут.

Рис. 3. Гематокритное число у молодняка кур кросса Радонеж, дебикированного в разном возрасте (А), и в контроле (без дебикирования) (Б): 1, 2, 3 и 4 -- возраст дебикирования птицы соответственно 1, 7, 30 и 60 сут.

Как оказалось, обнаруженное увеличение гематокритного числа было связано не только с дебикированием, но и с проводимыми профилактическими прививками. Действительно, вакцинацию молодняка против болезней Марека и Гамборо осуществляли соответственно при рождении и в возрасте 6 сут, а ревакцинацию против болезни Ньюкасла и инфекционного бронхита кур -- на 35-е и 65-е сут. Ответная реакция наблюдалась на 3-4-е сут, что соответствовало описанным выше 2-м и 8-м сут после дебикирования, когда отбирались пробы крови. Иными словами, гематокритное число было показателем, который характеризовал стресс-реакцию птицы на сочетанное действие дебикирования и профилактических прививок.

Результаты оценки живой массы кур кросса Радонеж подтверждают зависимость роста и развития птицы от возраста, в котором проводили дебикирование. Так, молодняк при дебикировании в 1- и 30-суточном возрасте и при прижигании клюва в возрасте 1 сут (без его отсечения) достигал живой массы птицы в контроле к 8-недельному возрасту, а дебикированный в 7-суточном возрасте -- к возрасту 20 нед (рис. 4).

Рис. 4. Живая масса молодняка кур кросса Радонеж при дебикировании в разном возрасте и прижигании клюва: 1, 2, 3 и 4 -- дебикирование соответственно в возрасте 1, 7, 30 сут и прижигание клюва в 1-суточном возрасте; 5 -- контроль.

Наблюдение за развитием молодняка, дебикированного в 1-суточном возрасте, показало, что при достижении состояния молодок (к 17 нед выращивания) у птицы формировался клюв, размер которого составлял 72-85 % от такового у цыплят в контроле. Нами также выявлено, что дебикирование яичных кур кросса Радонеж в возрасте до 30 сут (с учетом результатов в 1- и 28-суточном возрасте) с целью профилактики каннибализма (при отсутствии массового проявления в стаде) не оказывало отрицательного влияния на половое созревание молодок, яйценоскость и массу яиц (табл. 3). Возраст молодок при снесении 1-го яйца в группах варьировал в пределах 118-119 сут; при яйценоскости 25, 50 и 75 % -- соответственно 129-132; 136-139 и 143-156 сут.

3. Продуктивность кур кросса Радонеж при дебикировании в разном возрасте и прижигании клюва

Итак, гематокритное число, концентрация глюкозы в крови, а также прирост живой массы молодняка яичных кур кросса Радонеж являются показателями, характеризующими стресс-реакцию на дебикирование, а также продолжительность адаптационного синдрома. Эти показатели свидетельствуют о том, что дебикирование как хирургическая операция и сопряженные с ним профилактические прививки оказывают воздействие на состояние птицы, поэтому его следует проводить с учетом рационального возраста молодняка, то есть в 1- или 28-суточном возрасте.

Литература

1. Ф и с и н и н В.И. Об основных итогах работы птицеводства и проекте Федеральной целевой программы развития птицеводства в 2003-2005 г.г. и на период до 2010 г. В кн.: Птицеводство России. М., 2004: 13-29.

2. К о ж е м я к а Н., В а с и л ь е в А. Каннибализм птицы и меры борьбы с ним. Птицеводство, 1992, 2: 20-21.

3. П е т р а ш М. Предупреждение расклева. Птицеводство, 1987, 7: 32-33.

4. К о с и н ц е в Ю. Профилактика каннибализма. Птицеводство, 1992, 2: 19-20.

5. М у х а м е т ш и н а А.Р. Дебикирование птицы. Животноводство России, 2000, 10: 34-35.

6. G e n t l e M.J., H u g h e s B.O., F o x A. e.a. Behavioral and anatomical consequence of two beak trimming methods in 1 and 10-day old domestic chiks. British Poultry Sci., 1997, 38: 453-463.

7. К в и т к и н Ю.П. Стресс сельскохозяйственной птицы. М., 1977.

8. С е л ь е Г. Очерки об адаптационном синдроме /Под ред. М.Г. Дурмишьяна. М., 1960.

9. К и т а е в - С м ы к Л.А. Психология стресса. М., 1983.

10. А л б е р т с Б., Б р а й Д., Л ь ю и с Дж. и др. Сигнализация с участием рецепторов клеточной поверхности и вторых посредников циклического АМФ и ионов кальция. В кн.: Молекулярная биология клетки /Под ред. Г.П. Георгиева. М., 1987, т. 3: 261-270.

11. Г о ф м а н Б. Катехоламины и средства, влияющие на адренергическую передачу В кн.: Клиническая фармакология по Гудману и Гилману /Под общей ред. А.Г. Гилмана. М., 2006: 177-187.

12. К о м а р о в Ф.И., К о р о в к и н Б.Ф., М е н ь ш и к о в В.В. Метаболизм углеводов и диагностическое значение исследования отдельных показателей углеводного обмена. В кн.: Биохимические исследования в клинике. М., 2001: 60-80.

13. Б а л а х о в с к и й И.С. Углеводы и родственные соединения /Под ред. В.В. Меньшикова. В кн.: Лабораторные методы исследования в клинике. М., 1987: 232-233.

14. Методические рекомендации по определению числа и концентрации эритроцитов в крови птиц /Подг. Н.А. Харитонов, И.И. Кочиш. Загорск, 1978.

Размещено на Allbest.ru