В период новорожденности организм телят имеет физиологически незрелую иммунную систему, вследствие отсутствия антигенной стимуляции, обусловленной особенностями строения плаценты матерей [1. - С.51; 2-С.36]. Однако, некоторые механизмы естественной резистентности такие, как системы комплимента и пропердина, фагоцитоз, бактерицидная (БАСК) и лизоцимная (ЛАСК) активность сыворотки крови формируются в процессе внутриутробного развития [3. - С.40]. Формирование колострального иммунитета полностью зависит от поступления в кровеносную систему новорожденных иммуноглобулинов с материнским молозивом [4. - С.3; 5. - С.404].

Состояние незащищенности организма телят в первые дни после рождения против различных патогенов требует разработки методов иммунокоррекции, способствующих эффективному функционированию комплекса "мать - плод - новорожденный". Ветеринарная фармакология располагает значительным арсеналом средств, обладающих иммунотропным действием. Препараты этого ряда активируют клеточный и гуморальный иммунитет, ослабляют действие стресс-факторов, усиливают обмен веществ. Одним из таких препаратов является тимоген синтетический пептид тимуса глютамилтриптофан (С₁₆Н₂₀N₃О₅), положительными свойствами которого кроме выше названных, являются ускорение процесса дифференцировки лимфоидных клеток, индукция экспрессии антигенов на лимфоцитах, нормализация количества и соотношения Т-хелперов/Т-супрес-соров. Эффективно применение иммуномодуляторов стельным коровам, для которых характерно иммунодефицитное состояние в связи с супрессивным влиянием беременности на иммунный статус организма [6. - С.100; 7. - С.50].

Цель работы - изучение влияния иммуномодулятора тимогена на иммунологические показатели организма у стельных коров и получаемого от них приплода.

Исследования проводили на 20 стельных черно-пестрых голштинских коровах класса элита-рекорд/элита со средней продуктивностью по последней законченной лактации 5554 кг молока и содержанием жира 3,69%, разделенных по принципу аналогов на опытную и контрольную группы по 10 голов в каждой. Животным опытной группы иммуномодулятор вводили за 60…45 суток до отела внутримышечно три дня подряд с интервалом в 24 часа в дозе 500 мкг на животное, а коровам контрольной группы инъецировали равное количество изотонического раствора хлорида натрия. Кровь у коров отбирали до введения препаратов и за 5-3 суток до отела, у телят - в возрасте 1, 3, 15 и 25 суток. Оценивали морфологию крови, показатели гуморального и клеточного иммунитета общепринятыми в клинической практике методами, а также профилактическую эффективность тимогена в отношении заболеваемости новорожденных телят.

Результаты гематологических исследований показали, что фоновое количество эритроцитов в крови коров опытной группы составляло 5,110, 1910¹²/л, содержание в них гемоглобина - 105,93±2,45 г/л, лейкоцитов - 5,60 0,22 10⁹/л. У контрольных животных соответственно 5,060,1510¹²/л, 105,76±2,41г/л и 5,580,28 10⁹/л. В течение опыта (за 5-7 суток до отела) число эритроцитов в крови опытных животных повысилось до 5,140,1810¹²/л, содержание в них гемоглобина до 106,11±2,29 г/л, тогда как в контроле эти показатели оставались на том же уровне. Что касается лейкоцитов, то количество этих клеток в крови у коров опытной группы по сравнению с контролем было выше на 1,44% (5,640, 2010⁹/л против 5,560,2510⁹/л).

У подопытных коров по сравнению с контрольными перед отелом наблюдали увеличение БАСК на 32,5%, ЛАСК - на 4,43% (Р<0,05). Количественное содержание в сыворотке крови иммуноглобулинов G - и M-изотипов с приближением отела у всех животных понижалось, что обусловлено селективным переходом в основном IgG₁ из сыворотки крови в образующееся молозиво. Уровень IgG у обработанных животных в этот период составлял 26,56±0,21 г/л, контрольной-25,60±0,55 г/л, что ниже фоновых значений соответственно на 2,26 г/л и 3,06 г/л (табица 1).

Клеточные факторы защиты организма коров до начала опыта отличались незначительно. В течение опыта абсолютное число лимфоцитов у животных опытной группы повысилось с 3,4±0,28 до 3,57±0,18*10⁹/л, в контроле - с 3,30±0,81 до 3,43±0, 19*10⁹/л. Количество Т-лимфоцитов у коров, получавших тимоген, по сравнению с контрольной группой было выше на 9,5%. Функциональная активность В-лимфоцитов за 3-5 суток до отела более значительно возрастала у животных опытной группы. Так, абсолютное число В-клеток повысилось с 0,55±0,04*10⁹/л до 0,66±0,03*10⁹/л, что в 1,7 раза выше чем у контрольных животных (Р<0,001). Индекс Т/В у коров опытной группы после введения тимогена уменьшался с 3,04 до 2,80, а в контроле он увеличился до 4,45.

В течение опыта наблюдали снижение и лейко-Т-клеточного индекса (ЛТИ): на 0,30 у опытных животных и на 0,25 контрольной группы (рисунок 1).

Под влиянием иммуномодулятора более заметно изменялся лейко-В-клеточный индекс (ЛВИ). Если его фоновые значения были в пределах 10,38 (опытная группа) и 16,66 (контроль), то перед отелом у опытных коров ЛВИ понизился на 1,77 (с 10,38 до 8,11), а в контрольной группе - на 1,62 (с 16,66 до 15,04) (рисунок 2).

Период сразу после рождения телят, как указывалось выше, является наиболее критическим, так как до приема молозива в их крови нет иммунологически активных белков. Введение коровам в последний период стельности тимогена оказало положительное влияние на иммунологические показатели приплода в течение всего периода наблюдений. Анализ результатов исследований показал, что БАСК была выше с рождения до 25-суточного возраста и достоверно превышала показатели контрольной группы (таблица 1). Аналогичную картину имела и ЛАСК, хотя разница между показателями опытных и контрольных животных не всегда была достоверной. Уровень IgG в сыворотке крови у телят опытной группы в возрасте 1, 3, 15, 25 суток превышал показатели контроля соответственно на 1,7; 5,7; 3,91 и 2,22 г/л (Р<0,01).

Таблица 1 - Оценка иммунологического статуса коров и полученного от них приплода

Примечание. В числителе приведены показатели опытных животных, в знаменателе - контрольных. *Р<0,05; **Р<0,01.

Рисунок 1 - Изменение ЛТИ у коров в течение опыта

Рисунок 2 - Показатели ЛВИ у подопытных коров

Абсолютное количество лимфоцитов, Т-клеток у телят опытной группы по сравнению с контролем в суточном возрасте было выше соответственно на 6,4% и 32,09%, 3-суточном - 15,8% и 31,8%, 15-суточном - 16,2% и 32,6%, 25-суточном - 30,4% и 39,2%. Причем следует отметить, что эти различия были статистически достоверны.

При подсчете абсолютного количества В-лимфоцитов в крови опытных и контрольных телят выявлена следующая динамика: в возрасте 1 суток разница в показателях составила 0,39*10⁹/л, 3 суток - 0,10*10⁹/л, 15 суток - 0,37*10⁹/л, 25 суток - 0,52*10⁹/л.

Расчет лейко-Т-клеточного индекса показал, что у телят суточного возраста он был равен 3,37 (опыт) и 3,55 (контроль). Через 25 суток ЛТИ у животных опытной группы снизился до значения в 3,07, контрольной - до 3,3 (рис.3).

Изменение ЛВИ в течение опытного периода представлено на рисунке 4. Фоновые его значения колебались в пределах от 10,38 до 16,66 соответственно у телят опытной и контрольной групп. К концу периода наблюдений отмечали снижение этого показателя у животных опытной группы на 1,77 в контроле на 1,62.

Повышение неспецифической резистентности организма телят опытной группы позволило им легче преодолеть первичный возрастной иммунодефицит, что сказалось на проявлении желудочно-кишечных болезней, сопровождающихся диарейным синдромом. Анализ заболеваемости (%), сохранности (%), начало болезни (сут), ее продолжительность (сут) показал, что у телят, полученных от коров, которым вводили иммуномодулятор, эти показатели соответствовали следующим значениям: 65,5%, 100%, 3 сутки, 2,5 суток, в контроле - 80%, 90%, 1,3 суток, 4,1 суток.

коррекция иммунный статус корова тимоген

Рисунок 3 - Показатели ЛТИ у подопытных телят

Рисунок 4 - Показатели ЛВИ у подопытных телят

Выявление критических периодов в жизни новорожденных телят с высоким генетическим потенциалом продуктивности имеет большое практическое значение. Снижение концентрации иммуноглобулинов в крови телят обусловлено их катаболизмом. Известно, что период полураспада иммуноглобулинов, пассивно приобретенных с материнским молозивом, составляет для IgG от 16 до 32 суток, для IgM - 4 суток [8. - С.492]. При снижении в крови уровня материнских иммуноглобулинов до минимальных значений наступает второй критический период. В наших исследованиях его регистрировали на 25 сутки жизни телят. Аналогичные данные приводят в своей работе и Ю.Н. Федоров с соавт. (2007 г.), которые указывают на наличие иммунодефицита в 20-40-суточном возрасте. Активный же синтез собственных иммуноглобулинов в организме телят стабилизируется лишь к 2-месячному возрасту [9. - С.110].

Полученные нами данные подтверждают сведения о том, что телята рождаются с достаточно зрелой в количественном отношении системой Т-клеток, которые, как известно, выполняют функцию надзора и регуляции иммунологического гомеостаза организма. Для Т-лимфоцитов после рождения характерна более высокая функциональная активность, возможно, за счет Т-супрессоров в связи с тем, что количество и активность В-клеток понижены, а это свидетельство несовершенства кооперативных, регуляторных взаимоотношений между иммунокомпетентными клетками.

Таким образом, применение тимогена с целью фармакоррекции иммунного статуса коров в последний период стельности позволило получить приплод с более высокими показателями резистентности организма.

Список использованных источников

1. Кенигсберг, Я.Э. Влияние дибазола и метилурацила на иммунитет / Я.Э. Кенигсберг // Научные труды ВАСХНИЛ. - М.: Агропромиздат, 1985. - С.50-52.

2. Жучаев, К.В. Генетическая характеристика иммунореактивности и естественной резистентности сельскохозяйственных животных / К.В. Жучаев // С-х. биология. - 1992. - №6. - С.36-46.

3. Емельяненко, П.А. Иммунная система жвачных / П.А. Емельяненко // Проблема ветеринарной иммунологии. - М., 1985. - С.40-46.

4. Федоров, Ю.Н. Иммунопрофилактика болезней новорожденных телят / Ю.Н. Федоров // Ветеринария. - 1996. - №11. - С.3-6.

5. Watson, D. L. Immunological functions of the mammary gland and its secretion.comparative review / D. L. Watson // Aust. J. Biol. Sci. - 1980. - V.33. - P.403-422.

6. Андреева, Н.Л. Общность действия иммуностимуляторов, адаптогенов, антистрессовых средств / Н.Л. Андреева // Новые фармакологические средства в ветеринарии: Мат-лы 9-й межгос. межвуз. научн. - практ. конф. - СПб., 1997. - С.100-101.

7. Соколов, В.Д. Иммуностимуляторы в ветеринарии / В.Д. Соколов, Н. Л Андреева, А.В. Соколов // Ветеринария. - 1992. - №7-8. - С.49-50.

8. Husband, A.J. Absorption and endogenous production of immunoglobulins in calves / A. J. Husband, M. R. Brandon, A. K. Lascelles // Austr. J. Biol. Med. Sci. - 1972. - V.50. - P.491-498.

9. Федоров, Ю.Н. Иммуноглобулиновые профили биологических жидкостей у коров-матерей и полученных от них телят / Ю.Н. Федоров, Е.В. Борзенко, Т.А. Чеботарева, О.А. Верховский // С-х. биология. - 2007. - №6. - С.108-112.

Размещено на Allbest.ru