Ясно, что воздействие пробиотиков на усвоение кальция и фосфора корма, а стало быть, и на их уровень в крови, реализуется по механизмам, описанным выше, а повышение общего уровня этих макроэлементов в организме гусей влечет за собой общеизвестные положительные сдвиги в метаболизме, в конечном итоге выражающиеся в повышении продуктивных качеств.

Гораздо более интересным, с точки зрения глобальности воздействия пробиотиков, является изменение количественного состава микроэлементов сыворотки крови. Так, например, уровень цинка в сыворотке крови гусей всех групп повышался, но данный факт важен не столько с точки зрения собственного повышения количества данного атомовита, сколько с точки зрения последствий данного увеличения, потому что цинк является эссенциальным микроэлементом и входит в состав активного центра ряда ферментов, стимулирует регенерацию тканей, обладает бактериостатическим действием, а также регулирует функции иммунной системы - от модуляции проницаемости кожных покровов до влияния на дифференцировку иммунокомпетентных клеток (Гуревич К.Г., 2001; Панченко Л.Ф. с соавт., 2004; Beerli R.R. et al., 2000; China S.E. et al., 2000; Davis C.D. et al., 2000; Ekmekcioglu С., 2001; Rink L. et al., 2000; Wellinghausen N. et al., 1998, 2001; Yang Т.Н. et al., 2000).

Таблица 5 - Воздействие пробиотиков на содержание микроэлементов в сыворотке крови гусей, мг/л

На уровень меди пробиотики оказывали селективное действие. Так, лактоамиловорин и лактомикроцикол повышали, а микроцикол несколько снижал концентрацию данного микроэлемента в сыворотке крови гусей. Анализируя данные литературы, Панченко Л.Ф. с соавт. (2004) пришли к выводу, что медь - это эссенциальный элемент, входит в состав антиоксидантных ферментов и участвует в транспорте железа, а дефицит и избыток меди сопряжены с риском поражения некоторых внутренних органов.

Количество железа в сыворотке крови под воздействием микроцикола повышалось, тогда как использование лактоамиловорина и лактомикроцикола оказывало обратное действие. По данным Кудрина А.В. с соавт. (2000), в определенной степени медь и железо являются антагонистами, и, вероятно, штамм Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 способствует в большей степени усвоению меди и тем самым несколько ослабляет использование железа, тогда как штамм Escherichia coli S 5/98 оказывает обратный эффект. При этом необходимо отметить, что особых видимых последствий данного селективного воздействия мы не наблюдали, что дает основание полагать, что уровни данных микроэлементов не понижались ниже физиологического оптимума, а данная вариабельность имела не столь значительный размах, чтобы оказать негативное воздействие. Тем не менее, данный факт требует пристального внимания, поскольку установленное нами селективное воздействие пробиотиков на количество микроэлементов возможно в последующем использовать с целью коррекции минерального статуса организма птицы, например, в регионах с повышенным содержанием железа или меди в рационе или, наоборот, с пониженным. В качестве гипотезы можно предложить еще и следующий вариант объяснения данного феномена. Так, Yokoyama K. et al. (2000) в своих исследованиях отмечают, что концентрации некоторых микроэлементов в сыворотке крови имеют циркадные ритмы. Максимум концентрации меди и железа отмечается в 9 часов утра, а минимум в 6 часов вечера. В наших исследованиях кровь всегда брали в 6 часов утра, то есть до утреннего кормления, и возможно, что использование пробиотиков сдвигает вышеупомянутые циркадные циклы данных микроэлементов за счет изменения активности пищеварения, и в одно и то же время мы наблюдали одну и ту же картину содержания железа и меди, тогда как возможно в другое время зависимость могла быть иной. Сущность следующей гипотезы заключается в том, что к фракции в-глобулинов относится трансферрин, который является основным белком, запасающим железо в плазме крови, а в опытной группе под воздействием лактоамиловорина и лактомикроцикола процентное содержание в-глобулинов несколько ниже, чем в контроле.

Таким образом, использование лактомикроцикола влечет за собой увеличение количества кальция на 4,14-18,36 %, фосфора - на 2,83-5,84 %, цинка - на 2,24-5,35 % и меди - на 3,7-8,0 %, при этом количество железа снижается на 1,47-3,69 % (р?0,05). Применение лактоамиловорина увеличивает в сыворотке крови содержание кальция на 5,25-51,25 %, фосфора - на 6,7-62,5 %, цинка - на 3,47-20,68 %, меди - на 7,02-10,2 %, однако содержание железа уменьшается на 4,55-18,23 % (р?0,05). Воздействие микроцикола выражается в повышении количества кальция в сыворотке крови на 4,7-12,89 %, фосфора - на 2,6-14,29 %, железа - на 1,24-3,43 % и цинка - на 1,74-4,17 %, но сопровождается уменьшением концентрации меди на 3,39-3,85 % (р?0,05).

Некоторые исследователи считают, что активность такого фермента, как церулоплазмин, может служить критерием обеспеченности организма минеральными веществами (Кузнецов С.Г., 1989, 1991, 1997; Кузнецова Т.С., 1999; Микулец Ю.И. с соавт., 2002; Freiden Е., 1974, 1981). При введении в комбикорм лактомикроцикола увеличивается активность церулоплазмина на 2,44-15,82 %, кислотная емкость - на 3,69-6,88 %, количество глюкозы - на 5,88-12,14 %, однако снижается количество общих липидов на 23,66-28,64 % и холестерола на 8,41-28,03 % (р?0,05). Применение лактоамиловорина повышает активность церулоплазмина на 6,2 %, увеличивает содержание глюкозы в сыворотке крови на 12,75-13,14 % и кислотной ёмкости крови на 9,83 %, но уменьшает уровни общих липидов и холестерола на 22,69-36,57 % и 12,6-32,67% соответственно (р?0,05). Использование микроцикола повышает активность церулоплазмина на 7,63-33,07 %, кислотную емкость крови - на 4,03-5,06 %, количество глюкозы - на 6,94 % (р?0,05) и не изменяет концентрации общих липидов и холестерола.

3.6 Антиоксидантный статус организма гусей при применении пробиотиков

На начальных этапах проведения экспериментов с лактоамиловорином было установлено, что применение данного препарата способствует активации церулоплазмина. Анализ литературы показал, что данный фермент обладает четко выраженными антиоксидантными свойствами. Это позволило предположить, что пробиотики могут тем или иным образом оказывать регулирующее действие на антиоксидантный статус макроорганизма. Проведенные эксперименты подтвердили правильность данной гипотезы (табл. 6).

В любом макроорганизме важная роль принадлежит свободнорадикальному окислению и генерации активных форм кислорода, поскольку свободнорадикальное окисление является эволюционно сложившимся естественным механизмом деструкции с целью последующего обновления клеток и тканей, а также для их приспособления к изменяющимся условиям окружающей среды, кроме этого происходит защита организма от различных агентов вирусной и инфекционной природы и образуются активные формы кислорода. Антиоксидантная система макроорганизма в определенной мере служит ликвидатором последствий активации свободнорадикального окисления и таким образом поддерживает биорадикальный гомеостаз (Владимиров Ю.А. с соавт., 1992; Галочкин В.А., 2001; Немцова Е.Р. с соавт., 2006; Beauchamp С.O. and Fridovich I., 1973; Feter J. et al., 1987; Halliwell B. et al., 1990; Kono Y. and Fridovich I., 1982; Slater T.F., 1984; Stocks J., 1982).

В наших исследованиях было установлено, что использование пробиотиков влечет за собой повышение активности супероксиддисмутазы и, как следствие, увеличение ферментативной активности каталазы и глутатионпероксидазы. Вероятно, это связано в первую очередь с оптимизацией минерального статуса организма гусей, поскольку, исходя из канонов кинетики ферментативных реакций, становится ясным, что в относительно замкнутой системе, а мы определяли активность данных ферментов в системе in vitro, их активность может зависеть от ряда факторов, а именно: от температуры, рН, концентрации субстрата и наличия активаторов. Поскольку температура, рН и концентрация субстратов во всех пробах были одинаковыми, то их влияние мы вполне обоснованно можем исключить.

В этом случае на кинетику изучаемых ферментов будет действовать только один фактор - наличие и количество активаторов. Активаторами супероксиддисмутазы, каталазы и глутатионпероксидазы являются различные микроэлементы, а поскольку их уровень в сыворотке крови опытных гусей возрастал, то и закономерно возрастала активность ферментов антиокислительной защиты. Следствием этого явилось снижение уровня малонового диальдегида, который является одним из основных продуктов перекисного окисления липидов различными свободными радикалами (табл. 7). Антиокислительная активность плазмы крови зависит от наличия в ней различных антиоксидантов, ферментных систем обезвреживания перекисей и свободных радикалов, SH-соединений, стероидных гормонов, б-токоферола, церулоплазмина, трансферрина и др. (Клебанов Г.И., 1988; Al-Timini D.J. et al., 1977; Stocks J. et al., 1974). Гуси опытных групп имели солидное преимущество над контрольными по данному показателю.

Таблица 6 - Воздействие пробиотиков на состояние ферментативного звена антиоксидантного статуса организма гусей

Повышение антиокислительной активности плазмы крови является закономерным следствием активации ферментативного звена антиоксидантного статуса организма гусей, что, однако, не исключает и возможное влияние других вышеуказанных факторов неферментного происхождения.

Таблица 7 - Содержание малонового диальдегида и общая антиоксидантная активность плазмы крови гусей при использовании пробиотиков

Также здесь стоит учитывать и данные, полученные в результате определения активности церулоплазмина, поскольку данный фермент также обладает антиоксидантной активностью (Ажипа Я.И., 1983; Ярополов А.И. с соавт., 1986; Berry E.B., 1992; Gutteridge J., 1983; Sergeev A.G., 1993; Yamashoji S. et al., 1993). Непосредственно в организме гусей активация могла происходить и за счет того, что свободные радикалы выполняют и защитную функцию, а повышенный уровень микрофлоры в кишечнике за счет применения пробиотиков на каком-то из этапов развития гусей мог служить причиной активации данных ферментов. Стоит также отметить, что возрастные особенности антиоксидантного статуса организма гусей также были подвержены изменениям, а пиковые ситуации наблюдались после перевода птицы из птичника на пастбище и после проведения прижизненной ощипки. Таким образом, нами впервые изучено влияние пробиотиков на антиоксидантный статус организма гусей, что позволяет расширить знания по данному вопросу, а в некоторых случаях использовать пробиотики с целью коррекции антиоксидантных процессов в организме птицы и животных.

3.7 Воздействие инактивированного штамма Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 на неспецифическую резистентность организма гусей

В экспериментах с инактивированным штаммом Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 мы попытались изучить еще один возможный механизм реализации положительного влияния лактоамиловорина и лактомикроцикола на иммунный статус организма гусей. Методом групп-аналогов было сформировано две группы суточных гусят по 300 голов в каждой (опыт № 6).

Исследования показали, что введение инактивированного штамма Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 не оказало видимого отрицательного воздействия на состояние здоровья гусят. Более того, в опытной группе наблюдалось повышение сохранности птицы, а также незначительное повышение живой массы (табл.8). Данные факты свидетельствуют о том, что инактивированный штамм Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 оказывает положительное действие на организм гусей.

Таблица 8 - Сохранность и живая масса гусей

Результаты исследований косвенно подтверждают нашу гипотезу об иммуномодулирующем действии пептидогликанов, входящих в состав клеточной стенки штамма Lactobacillus amylovorus БТ 24/88. Это подтверждается в ряде исследований (Бондаренко В.М. с соавт., 2003; Онищенко Г.Г. с соавт., 2002; Парфенов А.И., 2000; Шендеров Б.А., 2001; Clemmesen J., 1989; Cross M.L. et al., 2002; Oda M. et al., 1983; Henderson B. et al., 1996; Perdigon G. et al., 2001; Schell M.A. et al., 2002; Tannock G.W., 2001), в которых авторы считают одним из наиболее значимых механизмов иммуностимуляции организма-хозяина лактофлорой именно за счет наличия пептидогликанов.

Наши исследования показали, что использование инактивированного штамма Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 в кормлении гусят позволяет стимулировать бактерицидную активность сыворотки крови, повышать уровень сывороточного лизоцима и увеличивать активность бета-лизина (табл.9).

Таблица 9 - Показатели неспецифической резистентности

3.8 Репродуктивные качества гусынь при использовании пробиотиков

В экспериментах на гусынях (опыт № 7) биологическое действие лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола было аналогично таковому в опытах на гусятах (табл.10), но наблюдавшиеся изменения в физиолого-биохимическом статусе гусынь-несушек были несколько меньшими.

Это объясняется тем, что в желудочно-кишечном тракте взрослой птицы микробиоценоз уже является вполне стабильным, и возможность колонизации и размножения в нем различных микроорганизмов, как патогенных, так и входящих в состав пробиотиков гораздо ниже, чем у суточного молодняка. Кроме этого, активность собственных пищеварительных ферментов также высока, что и не позволяет пробиотикам в этом возрасте проявлять максимальный эффект на организм птицы. Тем не менее все три препарата стимулировали функции гемо- и эритропоэза, а также повышали уровень неспецифической резистентности и концентрации кальция и фосфора в сыворотке крови. При этом воздействие лактоамиловорина и лактомикроцикола было более выраженным на уровень кальция, а микроцикола - на содержание фосфора.

Под влиянием микроцикола количество лейкоцитов повышалось, а при использовании лактоамиловорина и лактомикроцикола снижалось. Эта же тенденция наблюдалась и по отношению к общим липидам. Наблюдавшиеся изменения физиолого-биохимического статуса повлекли за собой во всех трех группах увеличение сохранности и повышение живой массы птицы, особенно выраженным это было в группах, где использовали лактоамиловорин и лактомикроцикол.

Таблица 10 - Биохимические и морфологические показатели крови гусынь

Однако в группе, где применяли лактоамиловорин, отмечено снижение репродуктивных качеств гусынь-несушек и полученного от них инкубационного яйца (табл. 11, 12). Первой видимой причиной такого снижения может являться увеличение живой массы птицы, что вполне согласуется с тем, что у гусей, чем выше живая масса, тем ниже репродуктивные качества.

Второй причиной может служить некоторое снижение количества каротиноидов в желтке, определяющих инкубационные качества яиц, по причине деконъюгации желчных кислот.

Таблица 11 - Влияние пробиотиков на продуктивные качества гусынь

Таблица 12 - Инкубационные качества яиц

Кроме этого, лимитирующим фактором могло явиться снижение количества общих липидов, и в частности холестерола, поскольку холестерол является предшественником половых гормонов (Баранова Е.И. с соавт., 2004; Климов А.Н. с соавт., 1999; Нагорнев В.А. с соавт., 1998; D'Angelo A. et al., 1997; Grundy S.M., 1999; Hansson G.K., 2005; Harpel P.C. et al., 1996; Harvey S. et al., 2003; Hirsch A. et al., 2004; Jacobsen D.W., 1998; Scott T.M. et al., 2004; Wright C.B.et al., 2004).

Вероятно, сниженный уровень холестерола в крови молодняка птицы все же остается в тех пределах, которые не снижают количества половых гормонов, регулирующих в том числе и соотношение катаболизма и анаболизма в организме гусей, однако снижение уровня половых гормонов в крови гусынь-несушек в репродуктивный период уже влечет за собой снижение продуктивных качеств. В то же время микроцикол не оказывает антихолестеринемического воздействия на организм гусей, что в свою очередь не влияет на уровень половых гормонов и не приводит к снижению репродуктивных качеств гусынь-несушек. Повышение репродуктивных показателей в этой группе, по-видимому, является следствием общей интенсификации метаболизма в организме птицы под воздействием пробиотика.

3.9 Воздействие обработки пробиотиками гусиных яиц на их инкубационные качества, выводимость и жизнеспособность молодняка

Создание надлежащей санитарной обстановки при инкубации яиц является одной из приоритетных задач при воспроизводстве птицы. В настоящее время с этой целью используют прединкубационную аэрозольную дезинфекцию яиц и инкубаторов. Этот прием, обычно проводимый с использованием высокоэффективных бактериоцидов, приводит к уничтожению как патогенной, так и естественной микрофлоры поверхности яйца, а вылупившийся молодняк не получает нормальной микрофлоры пищеварительного тракта матерей, и его кишечник впоследствии колонизируется случайным образом нередко потенциально патогенными бактериями (энтеротоксигенные и геморрагические эшерихии, сальмонеллы, протеи, клебсиеллы, кампилобактеры и другие бактерии). Это приводит к заболеваниям и гибели птицы от колибактериоза (до 55% от общих потерь) и сальмонеллеза.

Чтобы установить степень и характер воздействия обработки пробиотиками лактоамиловорином, лактомикроциколом и микроциколом на выводимость гусиных яиц и последующую сохранность и продуктивность вылупившегося молодняка, был проведен опыт № 8.

Для этого отобрано 1200 яиц от гусынь итальянской белой породы, которые методом групп-аналогов подразделили на четыре группы по 300 яиц в каждой. Перед закладкой в инкубатор яйца подвергали плановым ветеринарным мероприятиям. Триста яиц служили контролем, а яйца 1-й, 2-й и 3-й опытных групп перед закладкой в инкубатор погружали на 1 минуту в водные растворы лактоамиловорина, лактомикроцикола и микроцикола соответственно.

После вывода молодняк сортировали. При этом обращали внимание на внешний вид, активность молодняка, его устойчивость на ногах. Слабых и калек сразу же отсаживали в отдельные ящики. Здоровый молодняк передавали на выращивание не позднее 8 ч после выборки. Гусят, выведенных из яиц контрольной, 1-й, 2-й и 3-й опытных групп, сформировали в четыре соответствующие группы.

Наиболее вероятной причиной повышения выводимости молодняка является образование защитной пленки на поверхности яйца, состоящей из бактерий, входящих в состав пробиотиков (табл. 13). защитная пленка не позволяет развиваться патогенным бактериям на поверхности яйца, а также препятствует их проникновению внутрь яйца.

Таблица 13 - Инкубационные качества яиц при обработке их пробиотиками

Полученный из опытных яиц молодняк обладал высокой скоростью роста (табл. 14). В момент вылупления гусят их желудочно-кишечный тракт является стерильным, и первым объектом, с которым контактирует молодняк, является внутренняя и внешняя стороны яичной скорлупы.

Таблица 14 - Динамика живой массы гусят, г

Поскольку мы обрабатывали пробиотиками внешнюю сторону скорлупы перед переносом яиц в выводной шкаф, то в их кишечник обязательно поступают бактерии, входящие в состав пробиотика, тогда как у гусят, вылупившихся из необработанных яиц, в кишечник могут попадать потенциально патогенные микроорганизмы. Пробиотические бактерии, попавшие в желудочно-кишечный тракт молодняка, быстро развиваются, предотвращая его заселение патогенами, и благоприятно влияют на становление естественной резистентности и метаболических процессов в организме птицы. Это и проявляется в повышении сохранности и живой массы птиц.

3.10 эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой в раннем возрасте

Из суточных гусят итальянской белой породы методом групп-аналогов были сформированы две группы по 100 голов в каждой (опыт № 9). В комбикорм для гусят опытной группы вводили микробно-ферментный инокулянт (МФИ) из расчета 500 г на 10 кг комбикорма.

Для приготовления МФИ, в состав которого входили кишечный химус, содержащий нормальную микрофлору, микробные и собственные ферменты гусей, а также измельченная кишечная стенка, забивали клинически здоровых гусаков, проводили анатомическую разделку и лигировали кишечник от мышечного желудка до клоаки. Затем кишечник вырезали, измельчали его вместе с содержимым с помощью бытовой мясорубки и полученный фарш тут же смешивали с комбикормом, который немедленно скармливали гусятам в течение первых трех суток их жизни.

Исследования показали, что включение в комбикорм МФИ в первые три дня жизни гусят не оказало неблагоприятного воздействия на их рост и развитие. Птица была активной и хорошо потребляла корм. При этом скармливание добавки положительно сказалось на сохранности гусят, которая в опытной группе в течение первого критического месяца жизни составила 98%, тогда как в контроле только 90%. В целом за 6-месячный период выращивания в группе птицы, получавшей МФИ, пало всего лишь 4 гусенка, а в контрольной группе - 15 голов (табл. 15).

Использование МФИ привело не только к снижению падежа гусей, но и стимулировало прирост их живой массы. Начиная с 10-дневного возраста и на протяжении всего эксперимента живая масса гусей опытной группы превосходила (P<0,05) таковую контрольной группы. В конце 1, 2 и 3-й декад выращивания гусята, которым скармливали МФИ, превышали по массе своих сверстников из контрольной группы на 15,3; 34,4 и 18% соответственно, а в конце выращивания они весили в среднем на 605 г, или на 12,4%, больше, нежели контрольная птица.

Среди причин положительного действия на рост и развитие гусей кратковременного применения МФИ можно отметить несколько, но главной, по нашему мнению, является своевременная инокуляция гусят полным комплексом отселекционированной микрофлоры желудочно-кишечного тракта взрослых гусей. Это приводит к быстрой колонизации пищеварительного тракта облигатной микрофлорой и тем самым препятствует его заселению условно-патогенными и патогенными бактериями, поступающими в организм птицы из внешней среды с кормом и водой. Адгезируясь на слизистой кишечника, микрофлора способствует активации созревания иммунной системы и принимает участие в переваривании питательных веществ.

Таблица 15 - Сохранность и показатели роста и продуктивности гусей

В этом ей активно помогают содержащиеся в МФИ пищеварительные ферменты, как микробного происхождения, так и синтезированные собственными железами гусаков, а образованные в результате переваривания корма в кишечнике взрослой птицы метаболиты (содержащиеся в добавке) легко усваиваются организмом молодняка и тем самым облегчают адаптацию птицы к новым условиям обитания после вылупления.

Экспериментальные данные, полученные при анализе крови, свидетельствуют, что добавка МФИ в первые три дня после вылупления способствовала активизации обменных процессов в организме гусей. Так, в крови гусят опытной группы в течение двух месяцев сохранялась повышенная концентрация гемоглобина, общего белка, кальция и фосфора (P<0,05), достоверно возрастала бактерицидная активность сыворотки крови, а также увеличивалась лизоцимная активность и содержание бета-лизина (табл. 16).

Таким образом, полученные данные позволяют констатировать, что высокая сохранность и стимуляция роста и продуктивности птицы обеспечивались при даче МФИ за счет активации иммунной системы, в частности ее гуморального звена, и повышения уровня обменных процессов в организме гусей.

Таблица 16 - Морфологические и физиолого-биохимические параметры крови гусей

3.11 Результаты производственных испытаний

Производственные испытания проведены в ОАО «Спутник» Соль-Илецкого района Оренбургской области, а также на базе ЗАО «Птицефабрика Оренбургская» и СПК «Птицефабрика «Гайская». Все три препарата повышали сохранность птицы. Увеличивались средний и валовой выход перопухового сырья при проведении прижизненной ощипки. Так, при использовании микроцикола сохранность возрастает на 2,92 %, валовой выход перопухового сырья на 5,65 %, живая масса одной головы при убое - на 4,86 %, при этом возрастает количество протеина в мясе на 1,81 %; под воздействием лактомикроцикола увеличивается сохранность птицы на 4,0 %, валовой выход перопухового сырья на 12,59 %, живая масса одной головы при убое - на 7,73 %, при этом увеличивается содержание протеина в мясе на 5,03 % и снижается количество жира и холестерола на 2,58 и 25,98 % соответственно; при использовании лактоамиловорина живая масса одной головы при убое возрастает на 12,53 %, сохранность увеличивается в среднем на 4,2 %, валовой выход перопухового сырья - на 7,09 %, при этом количество протеина в мясе возрастает на 5,72 %, однако снижается количество холестерола и жира на 49,59 и 3,0 %, что повышает диетическую ценность мяса.

Наилучшие результаты получены в экспериментах с лактоамиловорином, что вполне согласуется с результатами физиолого-биохимических исследований.

Выводы

1. В физиологических и производственных опытах изучено влияние пробиотиков лактомикроцикола, лактоамиловорина и микроцикола на здоровье, обмен веществ и продуктивность гусят итальянской белой породы. Установлены оптимальные дозы пробиотических препаратов, обеспечивающие стимуляцию неспецифической резистентности молодняка, активацию обменных процессов, улучшение использования питательных веществ, повышение продуктивности и качества продукции. Выявлены особенности действия каждого из изученных пробиотиков.

2. Включение в комбикорм для гусят в первый месяц их жизни лактоамиловорина в дозе 7 г/100 кг и выпаивание в первые 3 дня его с водой увеличивает потребление корма, повышает переваримость и усвоение протеина, клетчатки, БЭВ и минеральных веществ, тогда как усвоение липидов снижается. В крови повышается уровень гемоглобина, величины гематокрита, но отмечается снижение числа лейкоцитов на 2,3-5,4 %. В сыворотке крови возрастают концентрации общего белка за счет альбуминов и г-глобулинов, кальция, фосфора, цинка и меди, а содержание железа уменьшается на 4,6-18,2 %. Активность церулоплазмина, содержание глюкозы в сыворотке крови и кислотная ёмкость крови увеличиваются, тогда как уровни общих липидов и холестерола снижаются на 12,6-32,7 %. На этом фоне бактерицидная активность сыворотки крови возрастает на 2,2-12,5 %, содержание лизоцима - на 13,5-35,2 % и активность бета-лизина - на 8,3-34,9 %.

Принципиально важным является и тот факт, что при исключении пробиотика из рациона гусей его стимулирующее действие на подавляющее большинство физиолого-биохимических показателей сохраняется до 6-месячного возраста, что может свидетельствовать о приживлении и функционировании штамма L. amylovorus БТ - 24/88, используемого для приготовления лактоамиловорина, в пищеварительном тракте птицы.

3. Применение лактомикроцикола оказывает на организм гусей аналогичное лактоамиловорину биологическое действие. Потребление корма увеличивается на 3,6 %, усвоение большинства питательных веществ корма возрастает, а использование липидов снижается в среднем на 21 %. В крови повышается количество гемоглобина, эритроцитов и величина гематокрита, но снижается количество лейкоцитов на 1,4-2,4 %. Сыворотка крови содержит больше общего белка за счет альбуминов и г-глобулинов, а также кальция, фосфора, цинка и меди, тогда как количество железа снижается на 1,5-3,7 %. Активность церулоплазмина, кислотная ёмкость и количество глюкозы увеличиваются, а концентрации общих липидов и холестерола снижаются на 8,4-28,0 %. При этом увеличивается БАСК на 5,2-10,2 %, количество лизоцима - на 12,3-16,6 % и активность бета-лизина - на 9,2-13,8 %.

4. Скармливание микроцикола, как и пробиотиков с лактобациллой, оказывает существенное влияние на обмен веществ в организме гусей, но имеются некоторые особенности. Переваримость и использование питательных веществ корма несколько снижаются, в крови повышается содержание железа, но снижается на 3,4-3,9 % концентрация меди. На этом фоне возрастают активность церулоплазмина, кислотная ёмкость крови и уровень глюкозы, тогда как содержание общих липидов и холестерола не изменяется. Применение микроцикола, как и других пробиотиков, стимулировало неспецифическую резистентность гусей (р?0,05).

5. Производственные испытания показали, что применение пробиотиков при выращивании гусей существенно повышает их продуктивность. При включении в комбикорм лактоамиловорина, лактомикроцикола и микроцикола сохранность возрастает на 4,2; 4 и 2,9 %, живая масса одной головы при убое - на 12,5; 7,7 и 4,9 %, а валовой выход перопухового сырья - на 7,1; 12,6 и 5,7 % соответственно. В мясе гусей, получавших лактоамиловорин и лактомикроцикол, снижается количество жира и холестерола на 3 и 2,6 %; 49,6 и 26 %, а содержание протеина возрастает на 5,7 и 5 % соответственно, что повышает его диетическую ценность.

6. Установлено, что применение пробиотиков оказывает модулирующее действие на антиоксидантную систему организма гусей. Все изученные пробиотические препараты стимулируют активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и каталазы. При этом общая антиоксидантная активность плазмы крови увеличивается, а концентрация малонового диальдегида снижается. Наиболее существенные изменения в антиоксидантном статусе организма гусей отмечаются при использовании лактоамиловорина.

7. Биологическое действие пробиотических препаратов на гусынь-несушек сходно с таковым на организм гусят, но интенсивность данного воздействия выражена слабее. Тем не менее, применение микроцикола оказывает положительное влияние на репродуктивные функции гусынь и инкубационные качества яиц. Сохранность птиц возрастает на 0,7 %, яйценоскость на среднюю несушку на 2,6 %, а количество некондиционного яйца уменьшается на 0,5 %. Вывод и выводимость молодняка повышаются на 1,6 и 0,7 % соответственно, а его сохранность - на 0,5 %.

8. Показано, что обработка гусиных яиц пробиотиками перед закладкой на инкубацию и при переносе в выводной шкаф положительно влияет на их инкубационные качества и последующую продуктивность вылупившихся гусят. При этом максимальную эффективность проявляет лактомикроцикол, повышая вывод и выводимость молодняка на 7,0 и 8,9 % соответственно и живую массу гусят в 50-дневном возрасте на 11,5 %.

9. Установлено, что эффективным приемом при выращивании гусей является их инокуляция в первые три дня жизни микробно-ферментным инокулятом от здоровой взрослой птицы. Скармливание инокулята повышает сохранность молодняка на 11 %, стимулирует неспецифическую резистентность, активирует синтез гемоглобина, общего белка и обмен макроэлементов в крови, на 12,4 % увеличивает живую массу гусей в 6-месячном возрасте и валовой выход перопухового сырья на 21,2 %.

10. Подтвержден ранее установленный факт иммуномодулирующего действия инактивированных лактобактерий на иммунную систему. Использование убитого нагреванием штамма L. amylovorus БТ-24/88, входящего в пробиотики лактоамиловорин и лактомикроцикол, сопровождалось стимуляцией неспецифической резистентности гусят как в период месячного применения препарата, так и в течение месяца после его отмены, но в последующем наблюдавшаяся разница в показателях гуморального иммунитета нивелировалась. Сохранность гусят с 86 % в контроле повышалась до 91 % в группе, получавшей неактивный лактоамиловорин.

Практические предложения

1. Для стимуляции репродуктивных качеств гусынь-несушек и повышения инкубационных качеств полученных яиц целесообразно скармливать им в течение всего продуктивного периода микроцикол в дозе 10 г/100 кг комбикорма. Это позволяет повысить сохранность гусынь, их яйценоскость, выход инкубационного яйца, а также увеличить вывод и выводимость молодняка гусей.

2. С целью повышения вывода и выводимости гусят предлагается перед закладкой в инкубатор погружать инкубационные яйца на 1 минуту в водный раствор лактомикроцикола с концентрацией 11 г/л, а перед переносом яиц в выводной шкаф процедуру повторять. Это позволяет повысить эффективность инкубирования гусиных яиц, увеличить сохранность и живую массу молодняка гусей.

3. С целью повышения продуктивности и качества продукции предлагается использовать лактоамиловорин в дозе 7 г/ 100 кг комбикорма в течение первого месяца жизни и в первые три дня после вылупления дополнительно вводить в питьевую воду 0,7 г пробиотика в расчете на 10 л. Это обеспечивает лучшую сохранность молодняка, повышает скорость роста гусят и улучшает диетические качества мяса.

Список опубликованных работ

Монографии, рекомендации, учебно-методические пособия

1. Ройтер Я.С. Научные и практические аспекты разведения гусей: монография / Я.С. Ройтер, А.Ф. Лукьянов, В.В. Герасименко. - М.: Изд. «Весь Сергиев Посад», 2004, - 204 с.: ил. - ISB № 5-93585-042-7.

2. Родионова Г.Б. Методы физиолого-биохимических исследований крови: монография/ Г.Б. Родионова, В.В. Герасименко. - Оренбург: Издательский центр ГНУ ВНИИМС, РАСХН, 2005. - 148 с.

3. Никулин В.Н. Биологические основы применения пробиотических препаратов в сельском хозяйстве: монография/ В.Н. Никулин, Б.В. Тараканов, В.В. Герасименко. - Оренбург: Издательский центр ОГАУ, 2007. - 111 с.: ил. - ISB № 978-5-88838-427-5.

4. Лукьянов А.Ф. Рекомендации по кормлению и использованию пробиотических препаратов при выращивании гусей: методические рекомендации, рассмотрены и одобрены администрацией Оренбургской области департаментом аПК / А.Ф. Лукьянов, В.В. Герасименко. - Оренбург: Изд-во ОГАУ, 2004. - 40 с.: ил.

5. Герасименко В.В. Использование пробиотика лактоамиловорина в животноводстве и ветеринарии: методические рекомендации, одобрены и рекомендованы к изданию ученым советом ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных и на заседании секции физиологии и биохимии Россельхозакадемии / ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных; разр. В.В. Герасименко и др.; под общей редакцией засл. деятеля науки РФ, д.б.н., профессора Б.В. Тараканова. - Боровск: Изд-во ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных, 2007. - 24 с.

6. Герасименко В.В. Основы аналитической химии: учебное пособие, допущено МСХ РФ для студентов выс. уч. завед. / В.В. Герасименко, Е.В. Яковлева. - Оренбург: Издательский центр ОГАУ, 2005. - 204 с.: ил. - ISB № 5-88838-254-Х.

7. Герасименко В.В. Биохимия мяса и молока: практическое руководство: учебное пособие, допущено МСХ РФ для студентов выс. уч. завед./ В.В. Герасименко. - Оренбург: Издательский центр ОГАУ, 2005. - 128 с.: ил. - ISB № 5-88838-268-Х.

8. Герасименко, В.В. Тесты по химии: программный продукт/ В.В. Герасименко. - Оренбург: ОГАУ, 2003, 786 кбайт.

Статьи в периодических научных изданиях, рекомендуемых для публикаций основных результатов диссертации на соискание учёной степени доктора наук, патентные документы

9. Тараканов Б.В. Обмен веществ и продуктивность гусей при добавлении в рацион пробиотика лактоамиловорин/ Б.В. Тараканов, В.В. Герасименко, В.Н. Никулин // Сельскохозяйственная биология. - 2004. - №4. - С. 52-58.

10. Тараканов Б.В. Использование пробиотика при откорме гусят на мясо/ Б.В. Тараканов, В.Н. Никулин, В.В. Герасименко, А.Ф. Лукьянов // Птицеводство. - 2004. - №5. - С. 24-25.

11. Герасименко В.В. Морфокинетическое действие микрофлоры желудочно-кишечного тракта на организм гусей/ В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2005. - №2. - С. 132-136.

12. Тараканов Б.В. Неспецифическая резистентность и продуктивность гусей при использовании лактоамиловорина/ Б.В. Тараканов, В.Н. Никулин, В.В. Герасименко // Ветеринария. - 2005. - № 2. - С. 55-58.

13. Герасименко В.В. Воздействие лактобацилл на обмен кальция в организме/ В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2005. - № 2. (Биоэлементология). - С. 21-22.

14. Герасименко В.В. Характеристика возрастных изменений содержания цинка в сыворотке крови гусей при кратковременном использовании лактомикроцикола/ В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12(62). (Биоэлементология). - С. 62-64.

15. Патент 2270580 Российская Федерация, МПК А23К 1/165, А61К 38/43. Способ снижения содержания свинца в теле кур / Герасименко В.В. [и др.]; заявитель и патентообладатель Госуд. образ. учрежден. высш. проф. образ. «Оренбургский государственный университет». - № 2004110916/13; заявл. 09.04.04; опубл. 27.02.06, Бюл. № 6. - 4 с.: ил.

16. Никулин В.Н. Влияние пробиотического препарата микроцикола на некоторые показатели минерального обмена кур-несушек/ В.Н. Никулин, В.В. Герасименко, О.В. Герасимова // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12(62). (Биоэлементология). - С. 172-174.

17. Никулин В.Н. Метаболизм фосфора в организме гусей под воздействием микроцикола/ В.Н. Никулин, В.В. Герасименко, Б.В. Тараканов // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12(62). (Биоэлементология). - С. 175-176.

18. Ширяева, О.Ю. Влияние пробиотика и препаратов йода на минеральный обмен птицы/ О.Ю. Ширяева, В.Н. Никулин, В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12(62). (Биоэлементология). - С. 296-298.

19. Герасименко В.В. Воздействие E.coli 5/98 на метаболизм витамина А в организме птицы/ В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 13(63). - С. 125.

20. Герасимова О.В. Влияние пробиотика микроцикола на минеральный статус птицы/ О.В. Герасимова, П.А. Кабешева, Е.С. Глухова, В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 13(63). - С. 126-127.

21. Патент 2271173 Российская Федерация, МПК А61D 7/00. Способ снижения уровня холестерина в организме/ Герасименко В.В. [и др.]; заявитель и патентообладатель Госуд. образ. учрежден. высш. проф. образ. «Оренбургский государственный университет». № 2004126075/14; заявл. 25.08.2004; опубл. 10.03.2006, Бюл. № 7. - 5 с.: ил.

22. Ширяева О.Ю. Влияние комплексного применения препаратов иода и лактоамиловорина на специфическую защиту организма/ О.Ю. Ширяева, К.А. Кряжев, В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 13(63). - С. 195-196.

23. Тараканов Б.В. Лактомикроцикол при выращивании гусей/ Б.В. Тараканов, В.В. Герасименко // Птицеводство. - 2007. - № 8. - С. 28.

24. Никулин В.Н Экологические аспекты влияния лактобактерий на переваримость питательных веществ корма сельскохозяйственной птицы при повышенном содержании йода в рационе/ В.Н. Никулин, В.В. Герасименко, Т.В. Синюкова // Вестник Оренбургского государственного университета. -2007. - № 75. - С. 244-245.

25. Тараканов Б.В. Эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой в раннем возрасте/ Б.В. Тараканов, Я.С. Ройтер, В.Н. Никулин, В.В. Герасименко // Ветеринарная патология. - 2007. - № 3(22). - С. 145-149.

26. Патент 2292733 Российская Федерация, МПК А64К 1/00. Способ скармливания ферментного препарата курам-несушкам/ Герасименко В.В. [и др.]; заявитель и патентообладатель Госуд. образ. учрежден. высш. проф. образ. «Оренбургский государственный университет». № 2004136100/13; заявл. 9.12.2004; опубл. 10.02.2007, Бюл. № 4. - 4 с.: ил.

27. Тараканов Б. Влияние пробиотиков на выводимость гусиных яиц, последующую сохранность и продуктивность молодняка/ Б. Тараканов, В. Никулин, В. Герасименко, А. Лукьянов // Птицеводство. - 2008. - № 2. - С. 17-18.

28. Тараканов Б.В. Использование микроцикола при выращивании гусей/ Б.В. Тараканов, В.В. Герасименко // Зоотехния. - 2008. - № 4. - С. 18-19.

Статьи в других периодических изданиях

29. Тараканов Б.В. О целесообразности применения лактоамиловорина при выращивании гусей/ Б.В. Тараканов, В.Н. Никулин, А.Ф. Лукьянов, В.В. Герасименко // Био. - 2002. - №10 (25). - С. 17-18.

30. Герасименко В.В. Лактоамиловорин - высокоэффективное средство регуляции обменных процессов и повышения продуктивности гусей/ В.В. Герасименко, В.Н. Никулин, Б.В. Тараканов // Био. - 2004. - №5(44). - С. 6-8.

31. Никулин В.Н. Пробиотики и содержание железа в сыворотке крови гусей/ В.Н. Никулин, А.Ф. Лукьянов, В.В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2004. - №3. - С. 153-154.

32. Герасименко В.В. Лактоамиловорин - высокоэффективное средство регуляции обменных процессов и повышения продуктивности гусей/ В.В. Герасименко, В.Н. Никулин, Б.В. Тараканов // Био. - 2004. - №6(45). - С. 13-14.

33. Герасименко В.В. Холестерин макроорганизма и пробиотики/ В.В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2004. - №3. - С. 154-156.

34. Герасименко В.В. Возрастные изменения показателей естественной резистентности гусей при использовании пробиотиков/ В.В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2005. - № 2(6). - С. 37-39.

35. Герасименко В.В. Возрастная динамика содержания общего белка и белковых фракций в сыворотке крови гусей/ В.В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2005. - № 4(8). - С. 101-103.

36. Герасименко В.В. Опыт использования лактомикроцикола при промышленном выращивании гусей на мясо/ В.В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2006. - № 1(9). - С. 94-96.

37. Тараканов Б.В. Резистентность и продуктивность гусей при скармливании лактоамиловорина/ Б.В. Тараканов, В.Н. Никулин, В.В. Герасименко // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2006. - № 10. - С. 61-65.

38. Герасименко В.В. Влияние микроцикола на факторы персистенции энтеробактерий/ В.В. Герасименко, В.Н. Никулин, А.Г. Гудков, О.Л. Карташова, Б.В. Тараканов // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2006. - № 1(9). - С. 98-100.