Размещено на http://www.allbest.ru/

План

• Краткая характеристика хозяйства
• Устройство вирусологической лаборатории
• Правила взятия и пересылки материала для вирусологического исследования
• Стерилизация лабораторной посуды
• Образцы бланков, заполняемых при отправке патологического материала в лабораторию
• Список использованной литературы

Краткая характеристика хозяйства

ЗАО «Рязанский конный завод», расположенный в поселке ВНИИК, Рыбновского района рязанской области, включает в себя молочно-товарную ферму и племенную конеферму.

Общая площадь хозяйства составляет 23 га. Площадь конефермы - 4 га, молочно-товарной фермы - 5 га.

В состав молочно-товарной фермы входит 4 коровника, на 200 голов каждый, для телок, дойных и стельных сухостойных коров, родильное отделения с телятником и бойня.

На молочно-товарной ферме содержится 800 голов крупного рогатого скота черно-пестрой породы (голштинизированные). Из них дойных коров - 405, стельных сухостойных - 35, телок - 260, телят - 100.

В состав конефермы входит конюшня для лошадей тракененской породы, рассчитанная на 100 голов, маточник для лошадей тракененской породы на 100 голов, конюшня для пони шетлендской породы на 50 голов и круг для тренинга.

На племенной конеферме разводят лошадей тракененской породы (гросс-тракены) и пони шетлендской породы. Всего лошадей тракененской породы - 200 голов, шетлендских пони - 50 голов. Из них племенных маток тракененской породы - 100, шетлендских пони - 25; племенных жеребцов тракененской породы - 8, шетлендских пони - 7; ремонтного молодняка тракененской породы - 92, шетлендских пони - 18.

Зоогигиенические нормы содержания животных не соответствуют нормам по всем параметрам.

Хозяйство неблагополучно по бруцеллезу и демодекозу.

Вирусологические исследования проводятся вне хозяйства (в областной лаборатории).

Устройство вирусологической лаборатории

Отбор проб костей.

От мелкого животного можно отрезать небольшой кусочек ребра или трубчатой кости, предварительно освободив их от мышечной и хрящевой тканей от крупных животных можно наскоблить ножом или скальпелем ткань красного мозга из любой трубчатой кости, лопатки, позвонков, грудных концов ребер. Для этого нужно обнажить суставную поверхность, срезать хрящ и концом ножа или скальпеля, вращая их, наскрести и поместить во флакон необходимое количество (5 - 10 г) костно-мозговой ткани.

Целую кость, освобожденную от мышц, посылают в герметически заклеенном пластиковом мешке.

Отбор проб мозга.

Отделить голову от туловища и хорошо зафиксировать. Снять кожу и мышцы с черепной коробки, сделав надрезы между глазными впадинами и от них в сторону затылка. С помощью пилы, топора, ножниц и пинцета снять черепную коробку. Отделить основные нервы, изъять мозг и поместить его на кювету или доску. Отобрать пробы коры больших полушарий и основания спинного мозга.

Для исследования на бешенство необходимо брать пробы аммоновых рогов. Для этого нужно рассечь продольными разрезами каждое центральное полушарие на расстоянии 2 см (для собак) от средней линии мозга, удалить верхние части до щели (пространства), в котором находятся аммоновы рога, представляющие собой полуцилиндрические тела белого цвета.

Нужно взять несколько кусочков аммоновых рогов и основания спинного мозга. Общий вес каждой пробы должен быть 5--10 г. Пробы мозга для исследования на бешенство обычно консервируют глицерином и маркируют с пометкой «Бешенство».

Отбор проб при заболеваниях с поражением эпителиальных покровов (везикулярные поражения).

При заболеваниях, которые вызывают поражение эпителиальных покровов, образование язв и абсцессов (ящур, везикулярный стоматит, оспа, бугорчатка и др.), от живых животных берут пробы крови и эпителий с участков поражения. От павших или убитых животных посылают образцы крови, лимфоузлов, кости и кусочков кожи на границе здоровых и пораженных участков.

Правила отбора, консервирования, и пересылки образцов остаются такими же.

Отбор проб при подозрении на заболевания с признаками поражения нервной системы.

При заболеваниях, сопровождающихся признаками поражений нервной системы (болезнь Тешена, Ауески, отит, риккетсиоз, спорадический энцефаломиелит крупного рогатого окота, бешенство и др.), берут пробы мозга, кости, лимфоузлы, кровь и, при наличии поражений, другие органы.

Следует высылать также кровь от переболевших животных для обнаружения антител в серологических реакциях. Для получения убедительных результатов желательно пересылать пробы крови от большого числа переболевших животных (до 10 проб).

Правила отбора, консервирования и пересылки образцов, если нет подозрения на бешенство, остаются такими же, как было указано ранее.

При подозрении на бешенство необходимо, когда это возможно, присылать целую голову, не прибегая к отбору проб мозга и других образцов. Если в лабораторию посылают целую голову, ее следует завернуть в бумагу, дополнительно упаковать в пластиковый мешок, поместить в не протекающее ведро или жестяную банку и доставить в более короткие сроки.

Отбирать пробы мозга можно только при создании гарантированной безопасности специалистов, работающих с этим материалом, с последующей дезинфекцией рабочего места. Пробы мозга может отбирать только специалист, у которого нет никаких ранений на руках, обязательно резиновых перчатках. Персонал, не участвующий в этой операции, должен находиться на удалении от этого места работы.

В хозяйстве регулярно проводятся диагностические исследования на лейкоз КРС.

Взятие и подготовка материала для диагностического исследования на лейкоз.

Для гематологического исследования кровь берут из яремной вены в пробирки с антикоагулянтом - 10%-ным раствором динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА, трилон В) из расчета 0,02 мл раствора на 1 мл крови. Не разрешается брать кровь от животных за 15 дней до отела и 15 дней после него. Для серологического исследования кровь берут от животных в возрасте 6 месяцев и старше. В лабораторию в термосе со льдом направляют 5-6 мл сыворотки. Для гистологического исследования кусочки пораженных органов (селезенки, лимфоузлов, грудной кости, печени, почек, легких, сердца и правого ушка сердечной мышцы, стенки сычуга, матки и скелетных мышц) посылают в свежем виде в термосе со льдом или в 10%-ном растворе формалина.

Стерилизация лабораторной посуды

Стерилизация - обеспложивание; уничтожение в каком-либо материале патогенных и непатогенных микроорганизмов в вегетативной и споровой формах.

Подготовка посуды для стерилизации. Лабораторная посуда должна быть чисто вымытой и простерилизованной. Для мытья используют растворы мыла или химические моющие средства. Новую посуду предварительно кипятят в 1-2%-м растворе соляной кислоты, во избежание последующего выщелачивания стекла. Вымытую в проточной воде посуду ополаскивают дистиллированной водой и высушивают.

Бактериологические пробирки. Конические, матровые колбы закрывают ватно-марлевыми пробками, состоящими из плотно скрученных валиков ваты, покрытых слоем марли. Для бактериологических пробирок также разработаны металлические пробки в виде наружных колпачков. Следует учитывать, что стерилизация ватных пробок при высокой температуре приводит к выделению из ваты веществ, ингибирующих рост некоторых чувствительных бактерий, например бруцелл.

При монтаже пипеток в верхний конец вставляют ватный тампон. У пипеток Пастера должен быть запаян капилляр. Каждую мерную пипетку заворачивают длинной полоской бумаги шириной 4-5 см, начиная с носика, винтообразно по всей длине. Пипетки Пастера заворачивают в бумагу по 10-20 штук, пробирки - по 15-20 штук. Все виды пипеток лучше хранить до и после стерилизации в специальных металлических пеналах. Пробки на колбах дополнительно покрывают колпачками из бумаги.

Чистые чашки Петри в собранном виде перед стерилизацией заворачивают в бумагу по 3 - 4 штуки. После стерилизации бумага предохраняет стерильную посуду от загрязнения микрофлорой.

Посуду перед стерилизацией размещают в сушильном шкафу не слишком плотно, чтобы обеспечить циркуляцию воздуха, и следят, чтобы температура не превышала 180?С, так как при более высокой температуре бумага и вата будут обугливаться. После окончания стерилизации сушильный шкаф не открывают до тех пор. Пока температура в нем не снизится до 70-80?С, поскольку резкий перепад температур может привести к разрушению стекла.

Если посуда предназначена для стерилизации в ней питательных сред автоклавированием под давлением не менее 1 атм., то ее предварительно не стерилизуют. При стерилизации сред текучим паром или в автоклаве под давлением не более 0,5 атм. необходимо использовать стерильную посуду.

Стерилизация сухим нагретым воздухом. Метод применяют для стерилизации чистой стеклянной посуды. Для этого используют печь Пастера - специальный сушильный шкаф с двойными стенками. Снаружи он облицован теплонепроницаемым материалом. В верхней его части находится термометр. Между теплонепроницаемой обшивкой и внутренним металлическим корпусом на дне помещен автоматический электронагревательный элемент. При включении сушильного шкафа в электросеть воздух внутри него нагревается. По достижении заданной температуры отмечают время начала стерилизации. Режим стерилизации: при температуре 155-160?С - экспозиция 2 ч, при 165-170?С - 1-1,5 ч, при 180?С - 1 ч. По истечении времени стерилизации нагревание прекращают.

Автоклавирование. Это стерилизация паром под давлением в сочетании с высокой температурой в специальном аппарате - автоклаве. При встрече насыщенного пара с более холодным объектом пар конденсируется, превращаясь в воду, в результате чего выделяется большое количество тепла. Кроме того, уменьшается объем пара, что способствует его проникновению во внутренние части стерилизуемого материала. Обязательное условие - поступление действительно насыщенного пара, чтобы его соприкосновение с холодным предметом вело к немедленной конденсации и нагреванию. Промышленность выпускает вертикальные и горизонтальные автоклавы.

Вертикальный автоклав - это двустенный металлический котел цилиндрической формы, закрываемый герметично крышкой. Между стенками через специальный кран с воронкой заливают воду до определенного уровня. Внутренняя стенка котла в верхней части снабжена отверстиями, в нижней - краном, через который при нагревании воды пар вытесняет воздух из котла. Сверху на автоклав надевают металлический защитный каркас, причем между ним и самим автоклавом должно быть свободное пространство. Автоклав нагревают включением в электросеть.

Автоклав загружают стерилизуемым материалом, закрывают крышку и кран, через который заливали воду, нижний кран временно отваляют открытым. Нагреваемая вода между стенками автоклава кипит, образующийся пар поднимается вверх и через верхние отверстия внутренней стенки проходит внутрь котла, толчками вытесняя воздух через нижний открытый кран. Когда воздух весь вытеснен, и пар начинает выходить ровной струей, нижний кран закрывают. В результате давление пара внутри автоклава повышается. Началом стерилизации считают момент, когда давление достигает заданной величины (по показателям манометра). Нагрев регулируют на протяжении всей стерилизации, поддерживая давление пара на одном уровне. При чрезмерном повышении давления внутри автоклава предусмотрен предохранительный клапан, через который избыток пара автоматически выходит наружу.

При повышении давления пара соответственно повышается и температура в автоклаве.

Манометр показывает давление пара без учета окружающего атмосферного давления (760 мм рт. ст.). По истечении времени стерилизации автоклав отключают. После остывания при нулевом показании манометра открывают кран для спуска пара.

Горизонтальный автоклав отличается от вертикального конструкцией, но принцип действия у него такой же.

вирусологический стерилизация патологический животное

Образцы бланков, заполняемых при отправке патологического материала в лабораторию

1. Кравченко А. Т. «Принципы организации и режим работы вирусологических и риккетсиозных лабораторий»

2. Т. С. Костенко и др. «Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии». Москва, «Колос», 2001 г.

Размещено на Allbest.ru