Динамика изменения антибиотикочувствительности у возбудителей заболеваний молодняка крупного рогатого скота
Изучение динамики чувствительности микроорганизмов к антибиотикам с различным спектром действия. Волнообразный характер изменения в отношении различных антибиотиков с доминированием препаратов аминогикозидного и хинолонового/фторхинолонового рядов.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 28.04.2017 |
Размер файла | 111,2 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
динамика изменения антибиотикочувствительности у возбудителей заболеваний молодняка крупного рогатого скота
Шкиль Николай Николаевич
к.в.н., доцент
Изучение динамики чувствительности микроорганизмов показало волнообразный характер изменения в отношении различных антибиотиков с доминированием препаратов аминогикозидного и хинолонового / фторхинолонового рядов
Ключевые слова: АНТИБИОТИКОЧУВСВТИТЕЛЬНОСТЬ, МИКРООРГАНИЗМ, ТЕЛЯТА, АНТИБИОТИК, АМИНОГЛИКОЗИДЫ, ХИНОЛОНЫ\ФТОРХИНОЛОНЫ, ЭНРОФЛОКСАЦИН
Респираторные и желудочно-кишечные заболевания полиинфекционной природы телят в ранний постнатальный период остаются основной причиной недополучения ремонтного молодняка в скотоводстве. Падёж от них может достигать от 10 до 35 % новорожденного поголовья. Установлено также снижение уровня продуктивность животных [5,6].
Основным методом лечения животных остаётся широкое использование антибиотиков с различным спектром действия, в зависимости от чувствительности возбудителя и этиологии заболевания. Это привело к формированию устойчивости микроорганизмов к применяемым антибактериальным препаратам и в целом отрицательно отразилось на эффективности терапии.
Изменение биологических свойств возбудителей инфекционных заболеваний (в том числе и антибиотикочувствительность) осуществляется за счёт передачи информации внутри сообщества микроорганизмов. В настоящее время выделяют несколько способов передачи информации о биологических свойствах микроорганизмов. Первый - за счёт кольцевой ДНК - плазмиды, второй - посредством химических соединений и ферментных структур микроорганизмов, третий - физический или энергополевой, без непосредственного контакта микроорганизмов [1,3,7,18]. Так, гибнущая от хлорамфеникола культура Vibirio costisola посылает сигнал стимулирующего роста другой культуре [9]. Также, установлен факт повышения резистентности к антибиотикам у Bacillus carbonifillus посылаемой культуры как одного, так и разных видов микробов в условиях разделения испытуемых культур сплошным слоем. Предполагается, что передача сигнала обеспечивается электромагнитными или ультразвуковыми волнами. чувствительность антибиотик аминогикозидный хинолоновый
Установлено, что уровень чувствительности микроорганизмов к антибиотикам может быть обусловлен широким кругом химических и лекарственных веществ (гормоны, витамины, минеральные соли, органические и неорганические соединения) [1, 2, 11]. Так, на фоне применения животным тетрациклинов и хлорамфеникола отмечено приобретение устойчивости (мультирезистентности) микроорганизмов не только к этим препаратам, но и к в - лактамам и хинолонам [10]. Установлено, что культивирование E.coli в присутствии апромицина, представителя аминогликозидного ряда в концентрации 18 мкг/мл, вызывает утрату R - плазмиды, отвечающей за резистентность к в - лактамам [2, 14-15, 19].
изучение закономерностей передачи свойств антибиотикоустойчивости открывает широкие перспективы управления инфекционным процессом и, как следствие, создаёт предпосылки для повышения эффективности лечения и профилактики инфекционных заболеваний.
Цель исследования - провести анализ динамики изменения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам и её закономерностей.
Материалы и методы. Выделение возбудителей инфекционных заболеваний телят осуществляли в течение 2001-2010 гг. ежегодно из хозяйств Новосибирской, Кемеровской, Томской областей и Алтайского края. При исследовании 224 проб от мёртвых, абортированных плодов и телят от 1 дневного до 6 месячного возраста патологический или биологический материал высевали на МПА, среды Эндо, Китта - Тарроцци. Для выделения микоплазм и уреаплазм использовали специальные питательные среды производства НИИПОИ г.Омск. Для индикации выделенных культур посевы из биоматериала от мышей проводили на МПА. Типирование и биохимические свойства выделенных культур изучали по методическим рекомендациям системы СИБ «Новые ускоренные методы индикации патогенных микроорганизмов» (ИМБИО г. Н-Новгород).
Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам определяли дискодиффузионным методом [8] с дисками мономицина, тетрациклина, стрептомицина, левомицетина, полимиксина, неомицина, гентамицина, окситетрациклина, амоксиклава, синулокса, левомицетина, кламоксила, апромицина, ампициллина, тилана, канамицина, нетилмицина, бензилпенициллина, энрофлоксацина, ципрофлоксацина, линкомицина, эритромицина, цефуроксима.
Коэффициент резистентности к антибиотикам рассчитывали для каждого изолята по следующей формуле: K = R/N, где К - коэффициент резистентности, R - число антибиотиков, к которым исследуемый изолят резистентен, N -- общее количество тестируемых антибиотиков для данного изолята [4].
Результаты исследований. Исследованы 21 (9,4 %) проба от абортировавших и мертвых плодов телят, 71 (31,8 %) - от телят профилакторного периода, 67 (30,0 %) - от телят от 10 дн. до 1 мес. возраста, 47 (21,0 %) - от 1-3 мес. телят, 18 (8,0 %) - старше 3 мес. В 32 % случаев патогенную микрофлору выделяли от телят с клиническими признаками желудочно-кишечных заболеваний. Респираторный синдром отмечали у 68% телят.
В 54,5 % пробах выделяли бактерий родов Enterococcus и Streptococcus. Семейство Enterobacteriaceae было представлено микроорганизмами родов Escherichia в 38,0 % пробах патологического материала, Proteus - в 23,2 %, Klebsiella - в 21,4 %, Salmonella - в 5,4 %. Представители рода Pasteurellаcaea были выявлены в 4,9 % пробах. Микроорганизмы других родов (Citrobacter, Enterobacter, Clostridium, Listeria, Shigella, Bordetella, Pseudomonas, Staphylococcus, Mycoplasmatalis, Neiseriae) выделяли в 21,4 % случаях. Выделенная микрофлора в 81,5 % случаев обладала патогенностью для белых мышей.
При проведении исследований выявлены наиболее часто встречаемые ассоциации микроорганизмов родов Escherichia, Enterococcus и Streptococcus, что послужило основанием для рассмотрения динамики коэффициента антибиотикоустойчивости (рис.1-2).
Рис.1 Динамика коэффициента антибиотикорезистентности микроорганизмов родов Streptococcus и Escherichia.
Проведённые исследования показали волнообразный характер изменения антибиотикочувствительности микроорганизмов родов Streptococcus и Escherichia, причём период спада показателя у одного из родов сопровождается ростом у другого.
Рис.2 Динамика коэффициента антибиотикорезистентности микроорганизмов родов Salmonella, Klebsiella и Proteus.
Среднее значения коэффициента антибитикоустойчивости у микроорганизмов в течение 2001 - 2010 гг. отмечали у микроорганизмов рода Proteus - 0,91 + 0,03, Streptococcus - 0,89 + 0,02, Escherichia - 0,87 + 0,05, Salmonella - 0,86 + 0,04, Klebsiella - 0,84 + 0,05.
Результаты исследований показали, что наибольшая чувствительность выявлена к антибиотикам хинолонового/фторхинолонового (энрофлоксацин, офлоксацин, ципрофлоксацин) и аминогикозидного (гентамицин, левомицетин, неомицин, нетилмицин) рядов. При анализе динамики изменения чувствительности возбудителей инфекционных заболеваний телят выявлены общие закономерности для всех изучаемых родов микроорганизмов, а именно волновой характер изменчивости показателя. Отмечено, что повышенная чувствительность к определённому ряду антибиотика соответствует снижению аналогичного показателя в этот же год, при этом смена повышенной чувствительности в течение нескольких лет сменяется понижением показателя в течении ряда последующих лет (рис. 2 - 7). Так, 2001г. характеризовался высокой чувствительностью микрофлоры к препаратам аминогликозидного ряда, однако с 2002 по 2005-2006гг. отмечен стабильным рост показателя к препаратам хинолонового/фторхинолонового ряда, с последующим снижением к 2010г. Также установлено, что степень проявления этой закономерности у разных родов микрофлоры неодинаковая.
В группе микроорганизмов (род Proteus, Escherichia, Salmonella), которые чаще выделялись при заболеваниях желудочно-кишечного тракта телят, отмечены характерные изменения (рис.3-5). В 2001г. в группе родов Proteus, Escherichia и Salmonella установлена высокая чувствительность к аминогликозидам у 27,1, 50,0 и 75,0 % выделенных изолятов соответственно.
Последующие годы характеризуются резким ростом показателя к препаратам хинолонового/фторхинолонового ряда с максимальными значениями в 2005 и 2006 гг. у рода Proteus 80,0 и 100,0 % и рода Escherichia 62,5 и 66,0 % соответственно. Однако в 2007г. эти показатели выравниваются с препаратами аминогликозидного ряда, а в течение 2009 и 2010 гг. отмечается к ним максимальная чувствительность из всего спектра изучаемых антибактериальных препаратов. В 2009 г. у микроорганизмов рода Proteus и Escherichia отмечен максимальный показатель к аминогликозидам у 33,3 и 50,0 % при полной устойчивости к антибиотикам хинолонового/фторхинолонового ряда. В течение 10 лет мониторинга чувствительности микроорганизмов рода Proteus к антибиотикам аминогликозидного и хинолонового/фторхинолонового ряда составила - 18,1 + 11,3 и 38,9 + 25,3 % соответственно.
Рис.3 Динамика чувствительности микроорганизмов рода Proteus к антибиотикам
Средняя чувствительность в период диагностических исследований у микроорганизмов рода Escherichia к антибиотикам аминогликозидного и хинолонового/фторхинолонового ряда составила - 33,1 + 13,5 %, 29,4 + 18,0 % соответственно.
Рис.4 Динамика чувствительности микроорганизмов рода Escherichia к антибиотикам
Динамика изменения антибиоткочувствительности у микроорганизмов рода Salmonella отличается отсутствием резких колебаний показателя в течении 2002-2010 гг. наблюдения. Уровень чувствительности к препаратам аминогликозидного ряда в период его доминирования у микроорганизмов рода Salmonella был выше аналогичного показателя к препаратам хинолонового/фторхинолонового ряда. Так, в 2001 г. он составлял - 75,0 %, в 2006 - 43,0 , в 2007 - 59,0 , в 2008 - 57,0 , в 2009 - 57,6, в 2010 - 46,0 %. Чувствительность к хинолонового/фторхинолоновому ряду в 2002 - 2005 гг. варьировала от 40,0 - 48,18 %. Средняя чувствительность в период диагностических исследований у микроорганизмов рода Salmonella к антибиотикам аминогликозидного и хинолонового/фторхинолонового ряда составила - 41,4 + 18,0 и 36,5 + 8,1 % соответственно.
Рис.5 Динамика чувствительности микроорганизмов рода Salmonella к антибиотикам
Изучение изменения чувствительности у микроорганизмов родов Enterococcus, Streptococcus и Klebsiella выделенных преимущественно при заболеваниях респираторного тракта на протяжении периода наблюдения не показал абсолютного превалирования антибиотиков одного из рядов (6-7).
Наибольшую чувствительность микроорганизмов родов Enterococcus и Streptococcus к препаратам хинолонового/фторхинолонового ряда отмечали в 2002 - 2005 гг. с последующим снижением в 2006 - 2010гг. Период роста чувствительности микроорганизмов к препаратам аминогликозидного ряда в 2001, 2007 - 2010 гг. характеризуется более выраженным доминированием над препаратами хинолонового/фторхинолонового ряда. Так, в период 2001г., 2006 - 2010 гг. показатель чувствительности составлял - 34,6; 28,5; 42,86; 34,21; 31,25; 46,15 % соответственно. Средняя чувствительность в период диагностических исследований у микроорганизмов рода Enterococcus и Streptococcus к антибиотикам аминогликозидного и хинолонового/фторхинолонового ряда составила - 33,15 + 6,8 и 23,8 + 12,8 % соответственно.
Рис.6 Динамика чувствительности микроорганизмов родов Enterococcus и Streptococcus к антибиотикам
Чувствительность микроорганизмов рода Klebsiella характеризуется более быстрым изменением показателя чувствительности от хинолонового/фторхинолонового ряда, который наблюдали в 2002 - 2003 гг., с периодом одинаковой чувствительности с препаратами аминогликозидного ряда в 2004 - 2005 гг., к росту показателя к аминогликазидному ряду в 2006 - 2010 гг. (рис.7). Кроме того, род Klebsiella характеризуется наименьшей чувствительностью к антибиотикам сопоставляемых рядов, максимальное значение, которого установлено в 2006г. - у 31,25 % выделенных изолятов к препаратам аминогликозидного ряда.
Рис.7 Динамика чувствительности микроорганизмов рода Klebsiella к антибиотикам
Средняя чувствительность в период диагностических исследований у микроорганизмов рода Klebsiella к антибиотикам аминогликозидного и хинолонового/фторхинолонового ряда составила - 21,6 + 4,5 и 17,6 + 5,9 % соответственно.
Заключение
1. результаты диагностических исследований чувствительности микроорганизмов родов Escherichia, Salmonella, Proteus, Klebsiella, Enterococcus и Streptococcus к антибиотикам аминогликозидного и хинолонового/фторхинолонового рядов показали, что чаще всего рост показателя в одной группе препаратов сопровождается падением этого показателя в другой группе препаратов.
2. Наиболее резкие изменения показателей антибиотикоустойчивости с наличием абсолютных значений, отмечены у микроорганизмов рода Escherichia, что видимо, связано с наиболее развитым механизмом формирования резистентности, как способа адаптации (ген micF вызывает положительную модуляцию транскрипции, продукт которого, антисмысловая РНК, ингибирует синтез пориновых белков на уровне трансляции положительно воздействуя на содержание в клетках фактора множественной стрессорной устойчивости o5) к фторхинолонам [11, 12] в 2008 - 2010 гг.
3. микроорганизмы рода Salmonella показали более высокий уровень чувствительности к препаратам аминогликозидного ряда и доминировали по аналогичному показателю над препаратами хинолонового/фторхинолонового ряда. Так, в 2001 г. он составлял - 75,0 %, в 2006 - 43,0, в 2007 - 59,0, в 2008 - 57,0, в 2009 - 57,6, в 2010 - 46,0 %. Чувствительность к хинолонового/фторхинолоновому ряду в 2002 - 2005 гг. варьировала от 40,0 до 48,18 %.
4. Выявлена наиболее выраженная устойчивость микроорганизмов родов Enterococcus и Streptococcus к препаратам хинолонового/фторхинолонового ряда в сравнении с антибиотиками аминогликозидной группы, которую обеспечивают соответствующие области генов gyrA, gyrB, parC и parE, определяющими устойчивость к хинолонам (QRDR - quinolone resistance determining region) [13].
5. результаты диагностических исследований в течение 2001-2010 гг. чувствительности к антибиотикам микроорганизмов родов Escherichia, Salmonella, Klebsiella, Enterococcus и Streptococcus показали максимальную чувствительность к антибиотикам аминогликозидного ряда, который варьировал от 33,1 + 13,5 %, 41,4 + 18,0, 21,6 + 4,5, 33,1 + 6,8 % соответственно. Наименьший показатель чувствительности к этому ряду установили у микроорганизмов рода Proteus - 18,1 + 11,3 %.
6. Оценка динамики коэффициента антибиотикорезистентности микроорганизмов показала его определённую связь между ростом и падением показателя чувствительности к препаратам аминогликозидной и хинолонового/фторхинолонового групп. Так, наименьший показатель коэффициента у всех изучаемых микроорганизмов отмечен в 2006 - 2008 гг., что соответствует моменту снижения чувствительности к препаратам хинолонового/фторхинолонового ряда и ростом этого показателя к антибиотикам аминоглигозидной группы.
7. Уровень и коэффициент антибиотикочувствительности отражают общий уровень «агрессивности» возбудителей и характеризуют патогенный потенциал микроорганизмов. Изучение уровня коэффициента антибиотикорезистентности показало, что наибольшим показателем обладали микроорганизмы рода Proteus 0,91 + 0,03, а наименьшим рода Klebsiella - 0,84 + 0,05, что совпадает с общей чувствительностью этих микроорганизмов к изучаемым антибиотикам (от 0 - 100,0 % и 4,17 - 31,25 %) соответственно.
Литература
1. Бухарин О.В. Проблема персистенции патогенов в инфектологии / О.В. Бухарин // ЖМЭИ. - № 4. - 2006. - С. 4 - 8.
2. Волчанская О.А. Апромицин и проблема плазмидной резистентности бактерий / О.А. Волчанская, О.П. Татарчук // Российский ветеринарный журнал.- № 1.- 2006 г. - С. 8 - 9.
3. Габидулина З.Г. Характеристика свойств определяющих персистенцию моно- и ассоциированных культур условно патогенных энтеробактерий / З.Г. Габидулина, Ю.З. Габидулин, А.А. Ахтариева // ЖМЭИ.-№4. - 2006. - С. 62 - 64.
4. Гостев В.В. Антибиотикорезистентность микрофлоры ран открытых переломов (II сообщение) / В.В. Гостев, З.С. Науменко, И.И. Мартель // Травматология и ортопедия России.- №1(55), - 2010. - С. 33 - 37.
5. Джупина С.И. Этиология и профилактика массовых желудочно-кишечных болезней телят / С.И. Джупина // Ветеринарная патология. 2003. № 2. С. 28-30.
6. Сидоров М.А. Иммунный статус и инфекционные болезни новорожденных телят и поросят / М.А. Сидоров, Ю.Н. Федоров, О.М. Савич // Ветеринария. 2006. № 11. С. 3-5.
7. Карасевич Ю.Н. Экспериментальная адаптация микроорганизмов М., «Наука», 1975 г., - 179с.
8. Методы бактериологического исследования в клинической микробиологии / Методические рекомендации (утв. Минздравом СССР от 17.01.1983).
9. Николаев Ю.А. Диктантные взаимодействия между клетками бактерий // Микробиология. 1992. Т. 61. №6. С.1066 - 1071.
10. Сидоренко С.В. Механизмы резистентности микроорганизмов / БИО, - М.: - № 5 (56), - 2005. - С. 2 - 4.
11. Ткаченко А.Г. Роль полиаминов в формировании множественной антибиотикочувствительности Е.coli в условиях стрессорных воздействий / А.Г. Ткаченко, О.Н. Пожидаева, М.С. Шумков // Биохимия. - 2006. - № 9 (Т.71). - С. 1287 - 1297.
12. Решедько Г.К. Аминогликозиды: перспективы клинического использования в стационарах России / Г.К. Решедько // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2008. - № 3 (Т.10). - С. 260 - 270.
13. Федорчук В.В. Роль мутаций в ДНК-гиразе и топоизомеразе IV в устойчивости Streptococcus pneumoniae к фторхинолонам / В.В. Федорчук, С.А. Грудинина, Л.А. Кротова, Е.А. Черкашин, С.В. Сидоренко, В.И. Тишков // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. - 2002. - № 6 (43) . - С. 349 - 352.
14. DeNap J.C., Thomas J.R., Musk D.J., Hergenrothor P.J. Combating drag-resistant bacteria: small molecule mimics of plasmid incompatibility as antiplasmid compounds/ J. Am. Chem. Soc., 2004, 126, 47, - P. 15402-15404.
15. Gomes-Lus R. Evolution of bacterial resistance to antibiotic during the last decades / Int. Microbiol. , 1998, №1, P. 279-284.
16. Matsuhash M., Pancrushina A.N., Endoh K. et.al. Bacillus carbonifillus cells respond to growth-promoting physical signals from cells of gomologus and heterologus bacteria // J.Gen.Appl.Microbiol. 1996. V.42. P.315-32.
17. Matsuhash M. et.al. Cellular signals regulating antibiotics sensitivities of bacteria // Microbiol. Drag Res. 1996. V.2 N.1 P.91-93.
18. Montagnier L. Electromagnetic signals are produced by aqueous nanostructures derived from bacterial DNA sequences / L. Montagnier, J. Aissa, S. Ferris // Interdiscip Sci Comput Life Sci (2009) 1: 81-90.
19. Rice L.B., Bonomo R.A. Genetic and biochemical mechanisms of bacterial resistance to antimicrobial agents/ In Lorian V. Antibiotics in laboratory medicine. Wiliams&Wikins, NY, 1996, P.453-501.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Основные причины, способствующие возникновению вирусных желудочно-кишечных болезней молодняка крупного рогатого скота. Эпизоотологические особенности вирусных желудочно-кишечных болезней молодняка крупного рогатого скота, их клинические признаки.
курсовая работа [43,7 K], добавлен 15.04.2012Изучение современного состояния отрасли животноводства. Природные и экономические характеристики хозяйства. Определение полноценности кормления и мясной продуктивности откармливаемого молодняка крупного рогатого скота в возрасте свыше 6 месяцев.
дипломная работа [90,2 K], добавлен 26.04.2012Нормы кормления телок и племенных бычков. План роста и потребность молодняка в основных элементах питания. Кормление телят в молочный период. Гигиена скармливания молочных кормов. Кормление молодняка крупного рогатого скота старше 6-месячного возраста.
реферат [32,0 K], добавлен 13.12.2011Воспаление околосердечной сумки у крупного рогатого скота. Регистрация больного животного. Дифференциальная диагностика различных перикардитов. Патологоанатомические изменения при нетравматическом перикардита. Неправильный уход и эксплуатация животных.
курсовая работа [181,6 K], добавлен 13.05.2015Тейлериоз крупного рогатого скота, вызываемый Theileria annulata и Theileria sergenti. Цикл развития заболеваний, эпизоотология, патогенез, клинические симптомы, патологоанатомические изменения. Лечение заболевания. Ветеринарно-санитарная экспертиза.
реферат [29,2 K], добавлен 05.01.2011Понятие о конституции, экстерьере и интерьере крупного рогатого скота. Способы оценки крупного рогатого скота по экстерьеру и конституции. Линейный метод оценки телосложения молочного крупного рогатого скота. Метод глазомерной оценки, фотографирование.
курсовая работа [701,9 K], добавлен 11.02.2011Кормление и содержание новорожденных телят в профилактории. Требования к условиям выращивания молодняка крупного рогатого скота до шестимесячного возраста. Роль в рационе молока и растительных кормов. Правила использования заменителей цельного молока.
курсовая работа [711,4 K], добавлен 19.06.2011Потребность телят и молодняка в энергии, питательных и биологически активных веществах. Оценка влияния кормления на здоровье телят, молодняка крупного рогатого скота и их последующую продуктивность. Режимы кормления телят в молозивный и молочный периоды.
курсовая работа [29,7 K], добавлен 08.01.2014Анализ продуктивности молодняка рогатого скота разных пород: динамика помесячной прибавки веса, потребление кормов, убойные качества и морфологический состав туш. Влияние генотипа на рост и развитие бычков. Экономическая эффективность разведения животных.
дипломная работа [241,6 K], добавлен 25.09.2010Историческая справка о парагриппе-3, его распространение и причиняемый им экономический ущерб. Свойства вируса и пути заражения крупного рогатого скота, эпизоотологические данные. Патологоанатомические изменения в ходе болезни, ее диагностика и лечение.
реферат [15,7 K], добавлен 15.02.2012