Токсикология карбаматных пестицидов

Размещено на http://www.allbest.ru/

2

Курсовая работа

на тему "Токсикология карбаматных пестицидов"

Выполнила студентка

4 курса очного отделения

Мещанинова Евгения

Научный руководитель:

докт. вет. наук, профессор

Рахматуллин Эмиль Касымович

Введение

Водная токсикология - наука о токсичности водной среды как среды обитания водных организмов. Изучает закономерности реакций водных организмов разного систематического положения и разного уровня организации (от клетки до сообщества, экосистемы) на токсическое воздействие водной среды, которая приобретает токсические свойства в результате деятельности человека или жизнедеятельности обитающих в воде организмов. [Строганов Н.С.] Токсикология водная разрабатывает предельно допустимые концентрации (ПДК) ядовитых веществ в водной среде, классификацию сточных вод по их токсичным свойствам, диагностику отравлений гидробионтов, выяснения механизма действия токсикантов и их метаболизма в организме гидробионтов.

Вода - драгоценный дар природы, один из наиболее существенных природных компонентов большого биологического круговорота, на котором находится вся экологическая система. Токсиканты промышленных сточных вод, коммунально-бытовых и сельскохозяйственных стоков, пестициды, попадая в водоемы, загрязняя их, губительно действуют на гидробионты и в первую очередь на молодь и икру рыб, уничтожают нерестилища, ограничивают миграцию, вызывают болезни гидробионтов, ухудшают качество рыбной продукции.

К особой категории загрязнителей водоемов относятся тяжелые металлы, способные накапливаться в различных звеньях экосистемы. Пестициды, попадая в водоемы из почвы с талыми, дождевыми и грунтовыми водами могут накапливаться не только в донных отложениях, но и в гидробионтах, передаваться по трофическим цепям и представлять опасность для человека, употребляющего в пищу рыбу и другие гидробионты из отравленных водоемов.

В связи с этим возрастает роль ветеринарной и ихтиопатологической служб, призванных обеспечить ветеринарное благополучие рыбохозяйственных водоемов и высокое качество рыбной продукции.

1. Пестициды

Пестициды - собирательный термин, охватывающий химические соединения различных классов, применяемые в сельском хозяйстве, здравоохранении, промышленности, нефтедобыче и др.

Карбаматные пестициды - производные карбаминовой кислоты- используются в сельскохозяйственном производстве - ТМТД (тетраметилтиурамдисульфид) цирам, цинеб, карбатион, байгон, беномил, дикрезил, севин, ацилат и др. Все эти пестициды довольно быстро разрушаются в объектах окружающей среды, не обладают выраженным кумулятивным действием, среднетоксичны.

2. Поведение пестицидов в окружающей среде

В результате циркуляции пестицидов в окружающей среде они присутствуют в атмосфере, почве, растениях и воде. Благодаря персистентности и кумулятивным свойствам ряда пестицидов (ДДТ, ГХЦГ, гептахлор, алдрин, дилдрин и др.) они могут накапливаться в объектах внешней среды в значительных количествах. Так, хлориндан и ДДТ обнаруживаются в почве через 12-15 лет после однократного внесения. Период полураспада ДДТ в почве составляет 7 лет. Алдрин и дилдрин, примененные в дозе 11,2 кг/га, сохраняют свою токсичность 8 лет, гептахлор-6 лет и при более низких дозах (2,5-6 кг/га)-4 года. Гексахлоран также довольно стоек и разрушается в почве 3-4 года. От нескольких месяцев до двух лет сохраняются в почве севин, линдан. Тиофос обнаруживается в почве спустя шесть месяцев, токсафен- в течение года.

Молекулы синтезированных ядов под влиянием внешних условий могут изменяться и образовывать метаболиты, в результате чего даже сравнительно малотоксичные яды могут превращаться в сильнотоксичные соединения. Например, хлорофос в щелочной среде превращается в высокотоксичный диметилдихлорвинилфосфат (ДДВФ). Алдрин превращается в дилрдрин. Через несколько лет после обработки алдрином почва содержит его метаболит- дилдрин, причем в 6-12 раз больше, чем было внесено первоначально алдрина. Кроме того, дилдрин медленнее разлагается, чем алдрин. Так же гептахлор превращается в эпоксид. Известны и метаболиты ДДТ.

Важнейшей составной частью внешней среды являются водоёмы. В них используется вода, идущая на производственные и бытовые нужды населения.

Продукция водоемов используется пищевой промышленностью во все возрастающих количествах. В этом плане следует рассмотреть и оценить возможные пути поступления пестицидов в водоёмы. Основным источником загрязнения водоёмов пестицидами является сток талых, дождевых и грунтовых вод с обработанных площадей. Пестициды могут попадать в водоёмы при сносе их воздушной волной во время обработки объектов, находящихся вблизи водоёмов, либо при внесении их в воду в качестве инсектицидов с целью уничтожения развития водных фаз кровососущих насекомых.

В последние годы особенно усиленно используются способы воздействия на водную среду с целью избирательной элиминации определенных гидробионтов. Для этого применяют альгициды, гербициды, ихтиоциды, моллюскоциды, бактерициды и др. В результате циркуляции пестицидов в водоеме они могут накапливаться в рыбе, иле, грунтах, зоофитопланктоне, водорослях и водных растениях. Из литературы известно, что хлорорганические пестициды аккумулируются у рыб в основном в висцеральном жире и пилорических придатках; жабры и мышцы содержат меньше ядохимикатов.

В дальнейшем по мере потребления жира, например во время миграции или зимовки, яд может попадать в более чувствительные органы и быть причиной отравления. Следует заметить, что токсическое действие хлорорганических пестицидов на рыб проявляется независимо от температуры воды. Mack (1964) обнаружил ДДТ в организме 16 видов рыб, выловленных в реках штата Нью-Йорк, загрязненных пестицидами при непосредственной обработке их в борьбе с гнусом и от попадания воздушной волны пестицидов при обработке близлежащих лесов и лугов. В теле рыб (окунь, лососевые, сельдь, щука, минога, сом, карп и др.) содержание ДДТ колебалось от 0,2 (у окуней) до 6,2 мг/кг (у лососевых).

Максимальное количество ДДТ (до 38,4 мг/кг) найдено в половых продуктах и висцеральном жире, много его в икре. В литературе имеются сведения, что ДДТ обнаруживается в мясе форели в количестве 0,14-3,4 мг/кг при содержании его в воде 0,012-0,02 мг/л, а при содержании в воде 0,02 мг/л в теле рыб накапливалось до 3-4 мг/кг препарата. При обработке Черного озера (США) против комаров содержание ДДТ в воде составляло не более 0,02 мг/л, тогда как в рыбе обнаруживалось 2500 мг/кг, в планктонных организмах-5,3, в водоплавающей птице--1465-2134 мг/кг. При содержании ДДТ в воде дренажных систем 0,03 мг/л в рыбе обнаруживался препарат и его метаболит в количестве 12,7 мг/кг; в водных растениях--до 2,3 мг/кг.

Такая же закономерность по кумуляции наблюдается и при применении других стойких препаратов. При содержании эндрина в воде в концентрации 0,04 мг/л отмечается сравнительно быстрое его накопление в рыбе (до 1 мг/кг), в водных растениях (до 0,55 мг/кг), иле (до 80 мг/кг). Подобным образом накапливается аналог ДДТ-ДДД. При обследовании рыб в одном водоёме Калифорнии, вода которого содержала 0,02 мг/кг ДДД, было найдено в планктоне до 5 мг/кг препарата, а в тканях различных рыб- от 100 мг/кг до нескольких тысяч.

При характеристике степени кумуляции пестицида при переходе из одной среды в другую представляется целесообразным определить коэффициент накопления как отношение концентрации пестицида в среде к концентрации его в воде. Таким образом, в результате широкого применения стойких и способных кумулироваться пестицидов ими загрязняются водоёмы (ил, флора, фауна). При переходе пестицидов из воды в другие звенья биологической цепи увеличивается их содержание в сотни и даже тысячи раз. Рыба из таких водоемов представляет потенциальную опасность для человека при употреблении ее в пищу. Исключительная опасность пестицидов для пресных вод определяется тем, что они токсичны для гидробионтов при малых концентрациях, особенно при хронических воздействиях; склонны накапливаться водными животными; передаются по трофическим цепям; обладают особой избирательной активностью по отношению к воспроизводительной системе водных животных.

Хроническое воздействие малых концентраций различных пестицидов на водных животных имеет в целом довольно однозначные последствия: патоморфологические и патофизиологические нарушения в крови, глубокие нарушения функций и гистологических структур печени, задержки и деформации в процессе эмбрионального и постэмбрионального развития, появление уродств в потомстве, замедление и диспропорция роста, подрыв воспроизводительной функции и т.п. Мировая статистика заморов указывает на то, что случаи массовой гибели рыб за последние 10-15 лет в значительной мере связаны с воздействием пестицидов, однако их роль часто маскируется другими факторами; иногда они действуют на рыб совместно, например, дефицит кислорода, как правило, резко усиливает токсическое действие пестицидов; аналогично действует высокая температура и другие природные факторы.

Наиболее токсичны для водной фауны хлорорганические соединения, особенно эндрин, дилдрин, алдрин, ДДТ, гептахлор, хлордан, метоксихлор, линдан, ГХЦГ. Они оказывают тормозящее и дегенерирующее влияние на эмбриональное развитие рыб и беспозвоночных, ухудшают качество потомства и снижают выживаемость молоди, подавляют воспроизводительные функции. В сельском хозяйстве в значительных количествах применяют сложные эфиры фосфорных, особенно фосфорной, тио- и дитиофосфорных кислот. Все эти соединения называются фосфорорганическими (ФОС). Они менее токсичны для рыб.

Исследование токсичности многих фосфорорганических соединений позволило установить некоторые закономерности, касающиеся зависимости токсичности этих веществ от химического строения. Было установлено, что токсичность препаратов уменьшается при замене в радикалах этильных групп метильными, однако инсектицидная и акарицидная активность веществ почти не понижается. Поэтому для рыб безопасно применение таких веществ, как метилпаратион, хлортион, диптерекс, резистокс.

Большинство гербицидов малотоксичны для рыб, однако динитрофеноловые соединения, хлорированные бензолы токсичны для рыб. Токсичность хлор- и фосфорорганических соединений во многих случаях превосходит токсичность наиболее ядовитых соединений неорганической природы. Следует также отметить, что гидробионты, в первую очередь рыбы, менее устойчивы к пестицидам, чем млекопитающие. Устойчивость рыб к некоторым инсектицидам падает с возрастом.

Токсическое влияние пестицидов на рыб проявляется как в прямом токсическом действии, так и в косвенном--в изменении экологических условий водоёма (снижение содержания растворенного в воде кислорода ниже пороговых величин, постепенное загрязнение водоёма вследствие отмирания высших водных растений и нитчатых водорослей, появление нитритов, избыточной углекислоты сероводорода). Изменение сапрофитной микрофлоры и зоопланктона также указывает на изменения в биотической среде обитания рыб.

3. Хлоорганические соединения

ДДТ (дихлодифенилтрихлорэтан) применялся в борьбе с плодожоркой и листогрызущими вредителями в саду. Инсектицид как контактного, так и внутрисистемного действия. Использовался также в качестве ларвицида на водоёмах. ДДТ практически нерастворим в воде, поэтому применяется в виде дустов и на масляной основе (соляровое масло). Обладает персистентностью и кумулятивными свойствами. Длительное время сохраняется в почве и объектах водоёма. В организме рыб кумулируется в основном в висцеральном жире, пилорических придатках и половых продуктах. В жабрах и мышцах содержится в меньших количествах. Действует на рыб, как нервный яд. Симптомы отравления выражаются в беспокойстве, нарушении равновесия и кругообразном плавании. Затем возникают сильные судороги и параличи, приводящие к гибели. Обратимость отравления незначительная.

Концентрация ДДТ 1 мг/л летально действует на всех прудовых рыб через 1-2 дня. При обработке прудов ДДТ в концентрации 0,25 мг/л через несколько дней погибает половина рыб. В лабораторных опытах с золотыми рыбками при 20є ДДТ вызывал гибель рыб в концентрации 0,1 мг/л, радужная форель погибала при концентрации 0,2, щука--при 0,05, а зеркальный карп- при 0,057 мг/л.

Установлено, что концентрация ДДТ выше 0,07 мг/л убивает всех подопытных рыб через 3 дня, а 0,03 мг/л не вызывает гибели рыб. При концентрации ДДТ свыше 0,125 мг/л через 3 дня погибает 100% гамбузии и при 0,0125-0,006 мг/л--лишь часть рыб. Концентрация 0,5 мг/л при 96-ти часовой экспозиции убивает всех подопытных рыб через 7 дней; 0,25 мг/л в течение 5 дней не вызывает гибели рыб. Концентрация 0,14 мг/л убивает рыб рода Lepomis.

От 5%-ного дуста ДДТ в течение 10-14 дней при 11,5-12є и концентрации 1,25 и 0,95 мг/л гибнет 100% рыб; от 0,5 мг/л-75% (чувствительные рыбы--форель,окунь и др.); от 0,25 мг/л-35,2%; от 0,125 мг/л-20%; от 0,05 мг/л-18%. Инсектицид сохраняется в прудах при трёхкратной обработке более 30 дней и частично удерживается в пруду после спуска воды. При содержании в воде ДДТ 0,01 мг/л погибает исключительно молодь рыб; при 0,05 мг/л--большой процент молоди рыб; при 0,1-0,2 мг/л--вся молодь, в то время как взрослые особи выживают; при 0,5 мг/л гибнет вся подопытная рыба (рода Lepomis).

В опытах с молодью рыб концентрация ДДТ 0,01-0,05 мг/л была токсична в течение трёх недель, 0,1 мг/л--в течение четырех и 0,5 мг- в течение семи недель. Опытами установлено, что концентрация 0,4 мг/л порошкообразного ДДТ была летальной лишь для выклюнувшихся пимефалес, в то время как 2 мг/л летальны для всех подопытных рыб через 48 часов. Усачи погибали при концентрации ДДТ 1,0 и 0,2 мг/л и температуре 15-20є через 7-8 дней; концентрация 0,1 мг/л не действовала летально. При опылении с самолета пруда площадью около 50 га эмульсией ДДТ из расчета 2,24 кг/га у речных рыб (около 20 видов) отмечалось у одних слабое, у других сильное поражение, причем наибольшая гибель наблюдалась в первые 48 часов. Большой процент гибели был среди рыб рода Lepomis (79-97%).

В опыте при применении ДДТ на соляровом масле из расчета 1,12 кг/га большая часть ДДТ (280 г/га) осталась на поверхности воды. В результате погибло около половины рыб пруда. Отмечено высокое токсическое действие на водные организмы ДДТ в форме масляной эмульсии. При применении ДДТ в виде аэрозоля в метилированном нафталине из расчета 113 г/га не был получен ожидаемый результат. При опылении водоёмов дустом ДДТ с целью образования устойчивой пленки яда на поверхности водоёма применяли от 2,5 до 24 кг 10-12%-ного ДДТ и гексахлорана на 1 га водной поверхности. Результаты гидрохимических анализов воды показали, что опыление водоемов указанными дозами инсектицидов не вызывало заметных сдвигов в таких показателях, как активная реакция воды, содержание в ней кислорода и свободной углекислоты, нитратов, нитритов и аммиака, окисляемость воды и ее солевой состав. Прямого отрицательного действия на зоопланктон ДДТ и гексахлорана в указанных дозировках не наблюдалось. Лишь применение гексахлорана в дозе 24 кг/га вызывало уменьшение количества зоопланктона. Гибели донной фауны (олигохет, пиявок, моллюсков, личинок тендипедид) также не наблюдалось.

Пороговой концентрацией ДДТ в воде по запахуявляется 2 мг/л. Эта концентрация не влияет на динамику БПК, кислородный режим и не вызывает изменений активной реакции воды. Чрезвычайно чувствительны к ДДТ дафнии, насекомые и их личинки. ДДТ действует на этих животных, как нервный яд, вследствие чего нарушается механизм движения, наблюдаются судороги, нарушение равновесия и параличи. Концентрация ДДТ 1 мг/л убивает дафний менее чем за 32 часа. Токсической концентрацией ДДТ для дафний считают 0,1 мг/л при экспозиции 24 часа. В опытах установлено, что концентрация ДДТ 0,001 мг/л смертельна для большей части дафний в период от 16-17 часов до нескольких дней; для большинства водной флоры концентрация 0,01 мг/л смертельна через 2-7 дней.

Вследствие высокой чувствительности к ДДТ водной флоры последняя (моллюски, ракообразные) применяется в качестве чувствительных тестобъектов для выявления инсектицидов. При отравлении ДДТ у дафний сначала наблюдаются вращательные движения, позднее--адинамическая фаза, затем стремительное вращательное движение. Погибают они с постепенным прекращением движения. Отравление рыб контактными инсектицидами (ДДТ, ГХЦГ и др.) можно установить с помощью тестов с мухами. Для этого у отравленных рыб отпрепаровывают мозг, печень, селезенку и половые продукты, растирают с небольшим количеством сахара и скармливают комнатным мухам. Отравление ДДТ подтверждается, если все комнатные мухи погибают с типичными признаками судорог и параличей.

Менее чувствительны к ДДТ циклопы: концентрация 0,1 мг/л безвредна для них и концентрация 1 мг/л смертельна для них через 3 дня. Ракообразные погибают при концентрации ДДТ 0,001-0,002 мг/л через несколько дней; концентрация 0,01 мг/л летальна для всех животных через 1-3 дня. Американские рачки погибают при концентрации 1,0-0,2 мг/л через 1-2 дня и при 0,1 мг/л--через 5 дней. Личинки насекомых, против которых обрабатывают водоем ДДТ из расчета 112 г/га, оказались более чувствительны к инсектициду, чем рыбы.

Так, концентрация ДДТ на ацетоне 0,00008 мг/л убивает более чем 95% личинок комаров. Яйца комаров, наоборот, к ДДТ устойчивы. Личинки хирономид гибнут при концентрации 0,01-0,004 мг/л, личинки поденок при 0,01-0,002 мг/л--через 20 часов и при 0,001 мг/л--через 30 часов; водяные клопы погибают при 0,002 мг/л через 1-3 дня. Высшие водные растения (элодея и др.), зелёные и сине-зеленые водоросли ДДТ не повреждаются.

Аналоги ДДТ (ДДД или ТДЕ, пертан, DFDF, метоксихлор и некоторые галогеновые соединения дифенилэтана) представляют собой кристаллические вещества, почти нерастворимые в воде, но растворяющиеся в минеральных маслах, спирте, ацетоне и др. Хотя аналоги ДДТ и заменяют его, но не могут с ним конкурировать по экономическим показателям. ДДД (дихлордифенилдихлорэтилен) менее токсичен, чем ДДТ. Опыление этим веществом водоёмов из расчета 28 и 56 г/га практически не вызывало гибели рыб на глубине 1 м. Применение ДДД в количестве 112 г/га вызывало гибель рыб после 14 обработок. DFDF (дифтордифенилтрихлорэтан)по токсичности равен ДДТ. Клиника отравления рыб аналогична. Для водной фауны он менее токсичен, чем ДДТ. Повреждающей концентрацией DFDF при 3-дневной экспозиции для золотых рыбок является 0,2 мг/л и для гамбузий--0,035 мг/л. Личинки комара погибают при концентрации 0,0012 мг/л инсектицида. Метоксихлор (диметоксидифенилтрихлорэтилен, хлорэтилен) по токсичности близок к ДДТ.

Технический гексахлорциклогексан--это смесь стереоизомеров, называемых гексахлораном. Яд контактного и системного действия. Имеет девять различных изомеров. Наиболее токсичен гамма-изомер: в техническом ГХЦГ содержится его около 12-25%. Гексахлоран применяют в виде 12%-ного дуста, 25%-ного порошка на фосфатной муке, 20%-ной минеральномасляной эмульсии. Используют его в лесной промышленности для предохранения древесины от поражения насекомыми и в качестве антисептической добавки к ней.

Гамма- изомер ГХЦГ токсичнее гексахлорана в 4-10 раз. Кумулятивные свойства гексахлорана резко выражены: поступив в организм, он длительное время задерживается в жировой ткани. На рыб ГХЦГ действует, как нервный яд: рыбы вначале возбуждены, дыхательный ритм ускорен, они стремятся выпрыгнуть из воды, затем наблюдаются судороги, потеря равновесия, несогласованность работы плавников, опрокидывание на бок, сильные судороги, повышенная реакция на раздражение, снижение дыхательного ритма и через некоторое время паралич дыхания.

Симптомы отравления в общем сходны с отравлением от ДДТ, однако гексахлоран для гидробионтов менее токсичен, чем ДДТ. Отмечено отравление рыб при поедании отравленных кормовых организмов. Для золотых рыбок гамма-изомер токсичен в концентрации 1 мг/л, для радужной форели--в концентрации 0,05 мг/л, для рыб рода Lepomis--в концентрации 0,054 мг/л. концентрация 0,5-0,75 мг/л гамма-изомера токсична для молоди карпов через 2,5 часа и 0,33 мг/л карпы переносят без вреда 4 дня. Витальные и летальные концентрации отличаются для разных видов и возрастных групп рыб. Так, икра плотвы выдерживает концентрацию гексахлорана до 2,5 мг/л, в то время как пределы витальных концентраций для взрослых форм--около 0,01 мг/л ГХЦГ. Гидроизоляционная замазка на основе петролатума с добавлением гексахлорана, применяемая для предохранения древесины от гниения, по-видимому, в какой-то степени связывает ядовитые свойства гексахлорана. Растворы замазки петролатума с добавкой гексахлорана в концентрации 5 мг/л не влияли заметно на исследуемые водные организмы.

Экспериментальные исследования на трёх поколениях дафний показали, что гексахлоран в неокисленном петролатуме значительно токсичнее, чем в окисленном. Простейшие, пиявки, улитки к гексахлорану сравнительно устойчивы: они переносят концентрацию 0,1-0,5 мг/л без вреда. Токсическая граница гамма-изомера гексахлорана для водяных осликов лежит ниже 0,025 мг/л, для ракообразных- 0,05 мг/л. Токсическая граница для американских рачков - 1 мг/л и для хирономид--0,1 мг/л. Дафнии к гексахлорану чрезвычайно чувствительны. При отравлении у них наблюдаются типичные вращательные движения, позднее наступает адинамическая фаза, затем стремительное кругообразное движение.

Пестициды (гексахлоран и полихлорпинен) находят также применение в лесной промышленности для предохранения древесины от поражения насекомыми и в качестве антисептической добавки к гидроизоляционным замазкам. Поступая в воду со сплавной древесиной, эти вещества могут отрицательно воздействовать на водоёмы и населяющую их фауну. Кумулятивные свойства полихлорпинена выражены слабее, чем у ДДТ, гексахлорана и препаратов диенового синтеза. Выявлена высокая токсичность полихлорпинена для рыб и водных беспозвоночных (табл.1).

Таблица 1 Токсичность полихлорпинена для рыб (по Бурмакину)

4. Гербициды

В связи с использованием гербицидов для борьбы с сорняками в прудах, водохранилищах, оросительных каналах было установлено, что токсичность гербицидов при внесении их в водоем для рыб и других гидробионтов зависит от природы гербицида, формы препарата, его дозы, вида и возраста рыб, температуры воды и содержания в ней кислорода и солей. Молодь рыб более чувствительна к препаратам, с повышением температуры воды и уменьшением содержания в ней кислорода токсичность гербицидов увеличивается.

Большинство гербицидов действует на рыб, как нервный яд. При этом у рыб отмечаются ясно выраженная пугливость, вздрагивание, стремительные плавательные броски, нарушение равновесия, опрокидывание на бок и веерообразное расширение плавников.

Наиболее чувствительны к ядохимикатам этой группы разные виды форели, очень чувствительны окунь и ёрш, чувствительны щука и плотва, менее чувствительны карп, линь и карась. Данные об отрицательном действии на водную фауну были получены в отношении производных мочевины. При использовании небурона и монурона в концентрациях 1-10 мг/л наблюдалось уменьшение численности донных организмов, а такие представители, как ручейники, нимфы и личинки стрекоз, исчезали совершенно. К опасным для рыб гербицидам, применяемым для борьбы с водными сорняками, относятся арсенит натрия, акролеин, а также ароматические растворители. Арсенит натрия вызывает патологические изменения в почках, печени и яичниках рыб. Акролеин токсичен в концентрации 1-5 мг/л.

Для гольца и окуня ушастого токсичен акварол (эндотал). По мнению Спрингетта, дикват и паракват не ядовиты для рыб в гербицидных концентрациях. При концентрациях этих препаратов 1-3 мг/л гибели рыб не происходит, но у окуня изменяется состав крови, отмечаются патологические изменения некоторых органов, снижается вес половозрелых рыб. Карп выносит концентрацию параквата 20 мг/л, а при концентрации 200 мг/л погибает в течение 1,6 дня. Курон (пропиленгликольбутиловый эфир, 2,4,5-ТП, фенопроп) в концентрации 3 мг/л вызывает дегенеративные изменения в печени рыб, а в концентрации 3 и 10 мг/л-производство незрелых сперматозоидов. Токсичность курона для окуня ушастого заметно увеличивается в жёсткой воде. Гибель рыб от дихлорбенила (касорона) наблюдалась лишь при высоких концентрациях препарата. Высокотоксичен для водных организмов, особенно для рыб, пентахлорфенолят натрия.

Считают, что динитрофеноловые соединения и хлорированные бензолы представляют определенную опасность для гидробионтов.

Масляные эмульсии гербицидов в общем более опасны для рыб, чем смачивающиеся порошки. Такие препараты, как далапон, амитрол, амитрол+симазин и амитрол+ТХА+2,4-Д, могут быть использованы для обработки водной растительности, за исключением прудов, в которых проводят искусственное разведение рыбы (табл.2).

Допускаемая концентрация препаратов, используемых при обработке канав и прудов

Рекомендованные предельные концентрации гербицидов не оказывали заметного влияния на воспроизводительные функции рыб. При обработке участков, примыкающих к рыбохозяйственным водоемам, предпочтительно применять соли, а не эфиры этих кислот.

5. Влияние токсикантов на поведение рыб

Как уже отмечалось, с помощью метода условных рефлексов доказана чрезвычайно высокая чувствительность рыб к химическим раздражителям. Например, рыбы способны воспринимать фенол концентрацией 0,01мг/л, а некоторые особи -- 0,0005МГ/л. Летальные концентрации фенола для разных видов рыб составляют от 10до 20мг/л, следовательно, метод условных рефлексов чувствительнее метода рыбной пробы в десятки и сотни раз. Теоретический анализ влияния токсических веществ на рыб, а также результаты экспериментального изучения механизма действия фенолов позволили нам высказать идею использования метода условных рефлексов в ихтиотоксикологии для выявления токсического эффекта малых концентраций ядов, поступающих в рыбохозяйственные водоемы, и установления их ПДК.

Экспериментальную проверку этой идеи осуществлял Б.А.Флеров. На первом этапе этих исследований мы ограничились относительно простыми показателями нарушения условно-рефлекторной деятельности рыб (увеличение латентного периода проявления рефлексов, снижение числа положительных условных рефлексов или их полное выпадение, растормаживание Дифференцировки, изменение скорости угасания условных рефлексов).

Патологические сдвиги в условно-рефлекторной деятельности подопытных рыб (растормаживание дифференцировки, частичное выпадение положительных рефлексов, изменение латентного периода рефлекса) наступает уже при концентрации фенола 1мг/л, которая в 20--25раз ниже минимальной летальной концентрации, вызывающей гибель рыб при длительной экспозиции. Иными словами, нарушение условно-рефлекторной деятельности подопытных рыб наступает задолго до появления выраженных симптомов отравления рыб и при концентрациях, значительно более низких, чем это имеет место при остром и подостром отравлении.

Этот основной вывод, вытекающий из результатов предварительных опытов на карасях, был впоследствии многократно подтвержден при изучении условно-рефлекторной деятельности различных видов рыб, подвергнутых влиянию фенола и многих других токсикантов.

Обстоятельное исследование, выполненное В.Е.Матей на модели фенольной интоксикации гуппи. Ею установлено, что низкие концентрации фенола (3,12мг/л) оказывают временный стимулирующий эффект на высшую нервную деятельность рыб, хотя в ряде случаев при этом отмечается некоторое ослабление реакций и увеличение их латентного периода.

Увеличение концентрации фенола всего лишь вдвое (6,25мг/л) приводит к значительному угнетению условно-рефлекторной деятельности, а полное ее подавление наступает приего концентрации 12,5мг/л. На 2е сутки после помещения рыб в раствор фенола этой концентрации отмечено резкое увеличение латентного периода положительных рефлексов (двигательно-пищевые), падение процента проявления условных реакций и их силы, почти полное растормаживание дифференцировочных рефлексов. После 30-суточной экспозиции в растворе фенола наступал полный срыв высшей нервной деятельности подопытных гуппи.

Для сравнения отметим, что гибель гуппи в растворе фенола более высокой концентрации (25мг/л) наступает лишь на 34-е сутки, а глубокие нарушения высшей нервной деятельности при концентрации фонола (125мг/л) на 2-е сутки. Новые подтверждения высокой разрешающей способности условно-рефлекторной методики получены при исследовании нефтяного и фосфорного отравлений рыб. Исследованиями Р.Ю.Касимова и его сотрудников показано, что сублетальные концентрации нефти вызывают глубокие нарушения пищевых и оборонительных рефлексов у молоди осетровых рыб. При 18-- 20 часовом контакте рыб с нефтью в широком диапазоне концентраций (от 1до 50мг/л) происходит почти полное угнетение пищевых условных рефлексов у молоди севрюги и русского осетра.

Начало восстановления стереотипа условно-рефлекторных реакций отмечено только на 3-й сутки после переноса рыб в чистую воду. Иные по содержанию нарушения высшей нервной деятельности отмечены при фосфорном отравлении рыб. Под влиянием низких концентраций элементарного фосфора повышается возбудимость центральной нервной системы, нарушаются силовые взаимоотношения на стадии уравнительной фазы, вследствие чего выраженность условно-рефлекторной реакции и ее латентный период оказываются одинаковыми как на сильные, так и на слабые условные раздражители.

Отмечено также замедление скорости угасания рефлексов на свет и звук, а также резкое сокращение времени растормаживания дифференцировки (с 75до 4,5с). Автор особенно подчеркивает то обстоятельство, что методом условных рефлексов токсическое действие фосфора выявляется уже на 2-е сутки, т.е.задолго до наступления таких признаков отравления, как пучеглазие (на 10 --15-е сутки), вздутие тела, ерошеиие чешуи (на 20--25-е сутки) и гибель рыб (на 30--40-е сутки). Уже эти первые экспериментальные данные полностью подтвердили высказанное нами предположение о том, что форма и степень нарушения условно-рефлекторной деятельности (поведения) рыб под влиянием минимальных концентраций различных веществ может служить тонким и высокочувствительным показателем токсического действия этих веществ и что сам метод условных рефлексов должен занять достойное место среди других методов определения ПДК различных групп ядов с выраженным центральным действием. Исходя из этого, мы предложили метод условных рефлексов в качестве стандартного метода ихтиотоксикологических исследований.

Наряду с уже указанными показателями нарушения условно-рефлекторной деятельности под влиянием токсических веществ для повышения разрешающих способностей этого метода следует использовать более сложные формы нарушения 34аналитико-синтетической деятельности: динамический стереотип, двусторонняя переделка сигнального значения положительных и дифференцировочных условных раздражителей, условный тормоз, следовые рефлексы. Особый интерес в этом плане должны представить опыты по выявлению влияния малых концентраций ядов на процесс формирования и упрочения динамического стереотипа. К сожалению, предложенное нами использование метода условных рефлексов в качестве стандартного метода ихтиотоксикологических исследований встретило ничем не аргументированное негативное отношение со стороны некоторых гидробиологов. Не имея личного опыта работы в области высшей нервной деятельности рыб, они, естественно, не смогли привести ни одного факта, который хотя бы косвенно свидетельствовал о бесперспективности этого метода в ихтиотоксикологии. Напротив, работы последнего десятилетия принесли новые доказательства чрезвычайно больших возможностей метода условных рефлексов в ихтиотоксикологии.

Приведем результаты некоторых из них. В опытах на золотых рыбках продемонстрирована возможность использования метода условных рефлексов для выявления токсического эффекта низких концентраций солей мышьяка, селена, свинца и ртути. Токсический эффект ртути, например, проявлялся при концентрации 0,003 мг/л и выражался в угнетении условных рефлексов с преимущественным поражением тормозных процессов.

Широкое использование метода условных рефлексов в ихтиотоксикологических исследованиях началось за рубежом в 70-х годах. Большая часть работ выполнена с различными пестицидами, в первую очередь с ДДТ.В исходных опытах Д.Андерсена с М.Петерсоном и X. Принсом, проведенных на ручьевой форели, подвергнутой сублетальному воздействию ДДТ, установлено влияние этого пестицида на формирование и сохранение простых условных рефлексов. 24-часовая экспозиция рыб в сублетальном растворе ДДТ препятствовала формированию оборонительной реакции (движение хвостовым плавником в ответ на раздражение электрическим током) на условный раздражитель (свет электрической лампочки) в течение ближайших 7сут.

В другой серии опытов, выполненной по этой же схеме, у 10 из 16подопытных рыб, выдержанных в течение 1сут. в сублетальной концентрации ДДТ, вообще не удалось выработать условные рефлексы даже после 100сочетаний, а у 6других рыб они образовывались лишь после 76сочетаний (от 60до 100). У 14из 16контрольных особей условный рефлекс вырабатывался в среднем за 49сочетаний. Только в одной серии опытов не было выявлено угнетающего действия ДДТ на высшую нервную деятельность 35рыб, поскольку не удалось обнаружить различий в скорости образования условных рефлексов у подопытных и контрольных рыб. Болеетого, скармливание радужной форели таблеток, содержащих 0,03мг/л ДДТ, приводило к увеличению скорости образования условных рефлексов в течение ближайших 3сут.

Аналогичные данные получены и в опытах на молоди атлантического лосося (Salmosalar), находившейся в течение 24ч в растворе ДДТ концентрацией 0,07мг/л. Выработка оборонительных условных рефлексов на удар электрического тока у подопытных рыб проходила достоверно лучше, чем у контрольных. Правда, стимулирующий эффект оказался краткосрочным, поскольку уже на следующие сутки отмечено полное угнетение условной реакции у большинства подопытных рыб.

Результаты этих двух последних работ, выполненных с ДДТ, подтвердили установленный ранее факт стимулирующего влияния фенола на высшую нервную деятельность гуппи. Но этот краткосрочный эффект обнаруживается лишь при определенных концентрациях токсикантов, и его следует воспринимать как фазу токсического действия того или иного вещества. В случае увеличения времени контакта рыб с ядом или концентрации токсиканта неизбежно выявляется его повреждающее действие на условно-рефлекторную деятельность рыб, причем задолго до проявления клинических признаков отравлен.

6. Влияние токсикантов на вегетативные функции рыб

Определяя первоочередные задачи разработки физиологических аспектов ихтиотоксикологии, стоит указать на необходимость изучения не только поведенческих реакций рыб (условные и безусловные рефлексы), но и важнейших вегетативных функций, таких, как дыхание и кровообращение, чувствительность которых к низким концентрациям токсических веществ не уступает поведенческим реакциям.

Весьма показательны в этом отношении рекомендации некоторых авторов изучать роль хеморецепции рыб, ее разрешающие способности методом кардиографии.

Использование этого метода для определения чувствительности рыб (карась и карп) к некоторым химическим веществам показало, что они реагируют на уксусную кислоту (210-6 мг/л) и аммиак (210-5 мг/л).

Что касается дыхания, которое обычно оценивается по частоте движения оперкулярных крышек, то его изменения наступают у рыб, отравленных, например, фенолами, одновременно с изменениями двигательной активности (одной из наиболее чувствительных поведенческих реакций) или даже несколько ранее.

Учитывая важное функциональное значение дыхания и кровообращения, которые вместе с гемоглобином крови являются основными звеньями физиологической системы обеспечения кислородного режима организма, предложено использовать электрографический метод в качестве стандартного метода ихтиотоксикологических исследований для быстрого определения токсичности низких концентраций химических веществ. Показателями токсичности при этом служат изменение частоты и силы дыхательных движений оперкулярных крышек, изменение частоты и силы сердечных сокращений, изменение структуры электрокардиограммы. Широкое использование этого метода позволило выявить высокую чувствительность физиологической системы обеспечения организма кислородом, которая раньше других реагирует на многие экзогенные воздействия и потому может быть использована для ранней диагностики отравления рыб или выявления токсического эффекта малых концентраций различных веществ, таких, как соли тяжелых металлов, различные пестициды, фенолы, поверхностно-активные вещества.

Анализ полученных данных показывает, что изменение сердечного ритма, частоты дыхания и структуры дыхательного цикла, объема вентиляции, а также нарастание сердечно-дыхательной синхронии наступают задолго до гибели рыб и отражают особенности их функционального состояния в экстремальных условиях.

Важным звеном физиологической системы обеспечения кислородного режима организма является гемоглобин крови, определяющий ее кислородную емкость. Учитывая это, использовались некоторые гематологические показатели (концентрация гемоглобина крови, число эритроцитов, осмотическая резистентность эритроцитов) в ихтиотоксикологических иссле дованиях в середине 60-х годов. Оказалось, что под влиянием ядов органического ряда у некоторых видов осетровых (русский осетр, севрюга) наряду с нарушением деятельности органов дыхания и кровообращения происходят серьезные гематологические изменения. Например, количество гемоглобина снизилось с 7--9 г% у здоровых рыб до 2,8г% у отравленных, причем у некоторых рыб количество гемоглобина падало до 1,1 --1,2г%, т.е.в 5 --7раз в сравнении с нормой. Резко снижалось и число эритроцитов у подопытных рыб, которое варьировало от 0,65до 1,2млн., на 1мл при норме у здоровых севрюг 1,6--2,0млн. на 1мл. Нужно сказать, что гематологические показатели, такие, как число эритроцитов, величина их поверхности и объем (гематокрит), осмотическая резистентность эритроцитов, а также рН и окислительно-восстановительный потенциал крови использовались и ранее в отдельных работах по ихтиотоксикологии.

Однако, начиная со второй половины 60-х годов интерес ихтиотоксикологов к различным показателям функционального состояния системы крови заметно возрос, и они стали широко использоваться в опытах с различными группами токсикантов: фенолами, пестицидами, нефтью, диспергентами, солями тяжелых металлов. Если раньше использовались только показатели красной крови, то в современных ихтио токсикологическихисследованиях значительное внимание уделяется качественному составу и количественным показателям белой крови.

Анализ экспериментальных данных показывает, что изменения в системе крови под влиянием токсикантов различной химической природы выявляются задолго до развития выраженных симптомов отравления. Патология крови проявляется в нарушении морфологии форменных элементов, расстройстве деятельности кроветворных органов, изменении количественного содержания отдельных форменных элементов красной и белой крови. Многие пестициды вызывают у рыб снижение числа эритроцитов (анемию), обусловленное либо их интенсивным распадом в кровяном русле, либо функциональной недостаточностью эритропоэза.

И в том и в другом случае нарушается динамическое равновесие процессов кроветворения и кроверазрушения, что ведет к изменению количества эритроцитов в периферической крови. Однако, как справедливо подчеркивает Г.В.Попова, с помощью одних лишь количественных показателей не всегда удается уловить изменения в системе крови рыб, подвергшихся токсическому воздействию. Здесь важное значение приобретает морфологический анализ крови, позволяющий получать точные данные о состоянии гемопоэза и выявлять изменения качественного состава форменных элементов, которые обнаруживаются подчас раньше изменения их численности и даже в отсутствие таких изменений.

При действии многих токсических веществ на рыб, в том числе и пестицидов, наступают различные эритроцитарные нарушения, причем многие из них имеют необратимый характер (пикноз, кариолиз, хроматолиз и др.). Наряду с красной кровью сложные патологические изменения под влиянием токсикантов претерпевает белая кровь. Чаще всего они проявляются в изменении общего количества лейкоцитов и лекоцитарной формулы. На первых этапах токсического воздействия на рыб происходит усиление лейкопоэза, выражающееся в увеличении незрелых форм и молодых гранулоцитов. По мере дальнейшего развития токсического процесса отмечается нарастание числа моноцитов, а количество полиморфно-ядерных лейкоцитов остается все еще большим. На фоне продолжающегося увеличения общего количества гранулоцитов заметно снижается число эозинофильных миэлоцитов ивыявляется тенденция к лекопении.

Вскоре после этого, у отравленных рыб резко снижается количество гранулоцитов и полиморфно-ядерных клеток и развивается лекопения при ярко выраженном моноцитозе. В клетках белой крови развиваетсявакуолизация цитоплазмы, фрагментация и вакуолизация ядра. Наряду с нормоцитами в периферическом русле появляются макро- и микроциты. Выявленные в последнее десятилетие сложные морфологические и функциональные изменения системы крови рыб под влиянием различных токсикантов в общих чертах сходны с изменениями, наблюдающимися у теплокровных животных. В связи с этим необходимо широкое использование гематологических методов в ихтиотоксикологии наряду с другими физиологическими методами исследований особенно, если учитывать многогранную физиологическую роль системы крови, в первую очередь ее дыхательную (красная кровь) и защитную (белая кровь) функции. Защитная функция крови в совокупности с защитной функцией паренхиматозных органов лежит в основе иммунитета рыб к различным инфекционным и инвазионным заболеваниям.

Нормальное течение защитных реакций организма обеспечивает его резистентность, т.е.устойчивость в сложных отношениях с биотическими факторами (вирусы, бактерии, грибки, паразиты) водной среды, а угнетение или подавление защитных реакций неизбежно приводит к снижению устойчивости организма к возбудителям грибковых, инфекционных или инвазионных заболеваний. Исходя из этих представлений, в начале 60-х годов было высказано предположение о том, что токсические вещества, "нарушая или угнетая иммунобиологические реакции рыб, снижают их иммунитет к разнообразным инфекционным заболеваниям, что может само по себе привести к массовой гибели рыб. Именно в этом можно искать разрешение загадки, почему в рыбохозяйственных водоемах вспыхивают эпидемии инфекционных и инвазионных заболеваний". В связи с этим была сформулирована задача: изучать влияние токсикантов на отдельные стороны иммунитета и устойчивость организма к возбудителям заболеваний, а также выявлять возможность использования иммунобиологических реакций для оценки токсического эффекта различных групп веществ.

На модели фенольной интоксикации различных видов рыб (карась, плотва, густера) удалось показать, что перенесенное отравление снижает устойчивость рыб к другим патогенным воздействиям, в частности к грибковым (поражение сапролегнией). Этот вывод был подвержден в опытах с фенолом и полихлорпиненом на примере устойчивости карпов и гуппи к ихтиофтириозу. Предварительное 48-часовое воздействие остротоксичной концентрации полихлорпинена (1,5мг/л) вызывало резкое снижение устойчивости (от 2до 33раз) выживших рыб к экспериментальному заражению Ichtyophthirius multifilus.

Противоречивые данные получены при изучении характера влияния токсикантов на восприимчивость и течение инфекционных заболеваний. Хлорофос, например, концентрацией 10--50 мг/л практически не оказывал сколько-нибудь значительного влияния на устойчивость карпов к бактериальной форме краснухи (аэромоноз). Детергент "Лотос-71" (10 --50мг/л) вообще не влиял на иммунитет рыб к возбудителю этого заболевания. Что касается полихлорпинена, то его низкие концентрации (0,05мг/л) несколько увеличивали процент гибели отравленных рыб в сравнении с контрольными при заражении вирулентной культурой Aeromonas punctata (10--50млн. бактерий на 1г живой массы рыб).

Однако более высокие концентрации токсиканта (0,3--0,5мг/л) не оказывали влияния на иммунитет. Несомненный интерес представляют единичные данные по влиянию токсикантов на иммунологическую реактивность рыб, в частности на антителогенез. Работы этого плана необходимо продолжить, расширив при этом перечень показателей иммунологической реактивности за счет клеточных (фагоцитоз, плаэмоцитарная реакция) и гуморальных (комплемент, пропордин, лизоцим) факторов врожденного и приобретенного иммунитета. Завершая краткий аналитический обзор полученных за последние десятилетия экспериментальных данных, можно сделать вывод о том, что разработка физиологических аспектов ихтиотоксикологии велась весьма продуктивно. Можно не сомневаться в том, что физиологические экспресс-методы оценки токсичности различных групп веществ займут в ихтиотоксикологии такое же почетное место, какое они заняли в общей и санитарной токсикологии.

7. Обнаружение и избегание рыбами токсических веществ

Изучение способности рыб обнаруживать и избегать растворенные оксические вещества было начато в начале текущего столетия. В.Щелфорд и В.Али были, по-видимому, первыми, кто в экспериментальных условиях изучал способность рыб обнаруживать и избегать воду с ненормально низким содержанием кислорода. Продолжая эту линию исследований, В.Щелфорд определял реакцию рыб на аммиак и аммиачные соли, сульфиды, нафталин, фенол и крезол, а также ряд других соединений из стоков газовых заводов.

На основе методически несовершенных опытов он пришел к выводу, что рыбы относятся индифферентно к этим растворам. Повторные исследования, выполненные в те годы, не внесли должной ясности в этот вопрос, и к 30-м годам способность рыб избегать токсические вещества теоретически считалась вероятной, но не получила убедительного экспериментального подтверждения. Между тем необходимость решения этого вопроса вполне очевидна, если учесть, что многие загрязнения рек носят временный или локальный характер, а в водоеме происходит неполное смешение ядовитых сточных вод поблизости от стоков. Казалось, интерес исследователей к этой проблеме стал гаснуть, но во второй половине 40-х годов Д.Джонс выполнил серию работ на высоком методическом уровне и с широким ассортиментом веществ. Установка, использованная в опытах Д.Джоноем, выгодно отличалась от градиентного бака Шелфорда большей контролируемостью условий проведения опытов, в ней можно было точно регулировать концентрацию вещества и скорость течения токсического раствора.

По мнению Д.Джонса, исследованные им виды рыб (форель, колюшка, гольян) обладают хорошей способностью различать и избегать токсические растворы свинца, причем в таких концентрациях, которые человек на вкус не ощущает, а также сульфатные и сульфитные соединения, содержащиеся в сточных водах бумажной фабрики, кислоты и щелочи. Им обнаружена парадоксальная реакция избегания: рыбы избегают относительно высокие концентрации токсического вещества и привлекаются относительно низкими. Основное внимание следует уделить расширению ассортимента веществ, способных привлекать рыб или отпугивать их от загрязненных стоков промышленных предприятий, поскольку работы в этом плане имеют важное значение не только для токсикологии рыб, но и при решении практических вопросов, связанных с привлечением рыб в рыбоподъемники и отпугиванием от гидротехнических сооружений.

Весьма интересные данные по зависимости реакции избегания рыб от видовых особенностей и химических свойств токсиканта получены в опытах с хлорорганическими пестицидами. Так, толстоголовый гольян (Cypri nodonvariegatus) избегает ДДТ и эндрин, но не уходит из растворов ПХБ. Ушастый окунь (Lepomis cyanellus) индифферентен к лйндану, но избегает хлордан. Гамбузии (Gambusia affinis) избегают ДДТ, но не реагируют на эндрин. В противоположность этим данным, полученным в опытахна рыбах нормальной устойчивости,особи этого же вида из резистентнойпопуляции индифферентны к ДДТ, но избегают повреждающие концентрации эндрина.

М.М.Калабина и Ц.И.Роговская пришли к выводу о том, что рыбы уходят из загрязненных фенольными сточными водами рек в более чистые места при концентрациях фенола, значительно меньших, чем минимальные летальные (0,2--10 мг/л). Засоление и загрязнение водоемов промышленными отходами приводят, как правило, к резкому изменению видового состава, снижению числа видов и численности рыбв сравнении с тем, что имело место до загрязнения. Исчезновение высокочувствительных видов рыб в загрязненных водах обусловлено не только их "поголовным вымиранием", но и, прежде всего, активным уходом из этих вод, которые, в свою очередь, заселяются высокоустойчивыми "сорными" видами рыб. Естественно, загрязнение рыбохозяйственных водоемов влияет на все стороны поведения рыб, нарушает их стереотипные связи со средой и если рыбы не в состоянии вовремя выйти из опасной зоны, то рано или поздно это приведет к угнетению жизненно-важных физиологических функций, гибели особи и нарушению структуры популяции до ее вымирания в загрязненном водоеме.

пестицид токсикант ветеринарный рыбохозяйственный

Заключение

Отравления рыб диагностировать довольно сложно, так как вызываются многочисленными ядовитыми веществами, часто возникают внезапно и проявляются недостаточно специфичными признаками. Поэтому диагноз ставят комплексно, на основании данных токсикологического обследования водоема, клинико-анатомических и разнообразных лабораторных исследований. Токсикологическое обследование водоемов, проведение клинических исследований и патанатомического вскрытия рыб проводят теми же методами, что и при других болезнях рыб.

В группу обязательных относят также органолептические, гидрохимические и химико-технологические исследования воды, грунта, органов рыб, беспозвоночных животных и растительности на наличие предполагаемого ядовитого вещества. В зависимости от показаний дополнительно проводят биологические, гематологические, биохимические, бактериологические, вирусологические и паразитологические исследования. Они необходимы для установления характера паталогического процесса и дифференциальной диагностики токсикозов от заразных болезней рыб. При оценке результатов и проведении комплексных диагностических исследований следует учитывать следующие особенности токсикозов рыб.