Разработка и осуществление мероприятий, направленных на снижение показателей бесплодия у крупного рогатого скота

Размещено на http://www.allbest.ru/

Введение

эндометрит бесплодие корова

В свете текущей внешнеполитической обстановки проблема продовольственной безопасности России особенно обострилась. В настоящее время это тот вызов, который касается практически каждой российской семьи. Россияне ощущают эту проблему в виде роста цен на основные продукты питания, особенно на продукты животноводства - молоко и говядину. С молочными продуктами дороговизна усугубляется ещё и фальсификацией. В виду дефицита коровьего молока производители массово применяют растительные белки и жиры: сою и пальмовое масло [1].

Проблемы животноводства особенно ярко заметны на фоне успехов в птицеводстве и свиноводстве. На текущий момент более 90 % потребности внутреннего рынка свинины удовлетворяет отечественный производитель. Российские птицеводы не только своей продукцией обеспечивают население своей страны, но и налаживают экспортные поставки [2-5].

Несомненные успехи отечественных птицеводов и свиноводов вселяют веру в перспективы российского животноводства. Ведь к их проблемам приковано пристальное внимание руководства государства и регионов. Это внимание объясняется тем, что на сегодняшний день отечественные производители покрывают потребность в молоке и говядине лишь на 55-65 %. А ведь, по мнению диетологов, молочные продукты являются наиболее полноценными продуктами питания [16]. С давних пор в рационе человека были продукты переработки молока - кефир, простокваша, сметана, масло и др. молочные продукты. Говядина - ценный пищевой продукт, содержащий все необходимые для человека питательные вещества животного происхождения. Но ведь для того, чтобы получить продукты животноводства необходимо приложить немало усилий.

Для обеспечения положительных экономических результатов в животноводческом предприятии должен быть налажен процесс восстановления и увеличения поголовья животных путем их размножения и выращивания молодняка, т.е. воспроизводство. Существующие технологии эксплуатации животных, их высокая продуктивность, круглогодичное кормление консервированными кормами, дефицит квалифицированных работников-животноводов, недостаточная материальная заинтересованность и другие факторы негативно влияют на показатели воспроизводства [4].

В сложившихся реалиях выход на 100 коров 95-100 телят за год, для большинства промышленных животноводческих предприятий России, является не достижимым. А ведь в зоотехнических нормах воспроизводства заложены именно такие показатели, с добавлением и более [5].

Недостаток собственных телят вынуждает многие сельхозпредприятия к закупке нетелей. Но такой способ восполнения дефицита ремонтного молодняка в современных условиях не может широко применяться. Так как отечественных телят не хватает, а закупать за границей после девальвации рубля стало очень дорого.

Поэтому разработка и осуществление мероприятий, направленных на снижение показателей бесплодия относится к числу приоритетных.

Самой большой проблемой в хозяйствах наносящей экономический ущерб- бесплодие высокопродуктивных коров, вызванное различными болезнями. Главным следствием бесплодия коров является недополучение телят, мяса и молока, растраты на кормление, содержание и лечение больных животных. Одной из основных причин бесплодия у коров является воспалительные процессы в родовых путях. Послеродовый (пуэрперальных) метрит является самым распространённым заболеванием коров в послеродовой период. По данным многих ученых, изучавших ветеринарное акушерство и гинекологию, послеродовый метрит является главной причиной симптоматического бесплодия коров [6-7].

Если больных животных своевременно не лечить, то в их половых органах возникают структурные и гистохимические изменения эпителия, частичная атрофия маточных желез, дистрофические изменения в строме с нарушением репродуктивных функций. Необратимые процессы в эндометрии впоследствии приводят к бесплодию [8]. Недостаточно эффективная терапия больных также приводит к невозможности оплодотворения, а затем к бесплодию.

Вследствие послеродовой патологии выбраковывают до 24-27% коров [9], кроме того, у коров, переболевших метритом снижается оплодотворяемость на 19-26%, а продолжительность сервис-периода увеличивается на 40-60 дней [10].

Рассматривать этиопатогенез метрита необходимо в комплексном воздействии взаимосвязанных факторов, включающих: нарушение кислотно-щелочного равновесия и обмена веществ в организме коров; эндокринно-иммунобиологические нарушения; нарушение сократительной и секреторно-сорбционной функции матки; эндогенную интоксикацию при наличии в матке высокотоксичных ассоциаций микроорганизмов [11]. При лечении метрита откорректировать такие морфофункциональные изменения довольно трудно. С этой целью приходится применять разнонаправленные фармакологические средства, которые являются дополнительным негативным фактором давления на уже ослабленную защитно-адаптационную систему организма.

Именно поэтому профилактике и лечению данного заболевания уделяется такое внимание как научных сотрудников, так и ветеринаров-практиков [9, 12-15]. В настоящее время ветеринарными специалистами на практике реализуются разнообразные схемы обработок новотельных коров. В данной работе будет проведён сравнительный анализ некоторых из них.



1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Послеродовая патология у коров

Для того чтобы предупредить ряд послеродовых патологий коров необходимо правильное осеменение; соблюдение правильного содержания и кормление беременных самок, а также при отеле коров необходимо оказать верное родовспоможение.

Особенности родов у коров.

Продолжительность беременности

животное	Средняя продолжительность, дней	Возможные колебания, дней
Корова	285	240-311

Отел у коров длится от 1до 12 часов. После разрыва плодных пузырей появляются сильные потуги, изгоняющие плод. Таз у коровы более узок, прохождение плода через родовые пути бывает более затрудненным по сравнению с другими животными. Последовая стадия родов у коров продолжительнее. Это объясняется тем, что соединение плаценты плода с материнской плацентой более тесная. Послед у большинства коров отделяется в течение 3-4 часов, но нередко он задерживается на 5-6 часов.

Под патологией послеродового периода принято понимать болезни, которые возникают после отела коров. К ним относят:

· послеродовой парез;

· задержание последа;

· поедание последа;

· субъинволюцияматки;

· выворот выпадение матки;

· послеродовой некротический метрит;

· послеродовой гангренозный септический метрит;

· послеродовой вульвит, вестибулит и вагинит;

· послеродовой эндометрит;

· бесплодие.

Послеродовой парез

Послеродовой парез - это быстро протекающая тяжелая болезнь, которая сопровождается полупараличом конечностей, глотки, языка. Причины возникновения пареза до сих пор точно и не выяснены.

Признаки послеродового пареза могут появиться до родов, во время родов и после отела в течение 12-72 часов. В начале заболевания у коровы наблюдется снижение аппетита, возбуждение. Корова беспокоится, переступает с ноги на ногу. Если все эти признаки остались незамеченными, то через некоторое время корова падает, один или два раза встает, но снова падает. У коровы расширены зрачки, голова запрокинута назад и из полуоткрытого рта вываливается язык. С развитием болезни животное не реагирует на уколы иглой в кожу, перистальтика кишечника прекращается или замедляется, акт глотания нарушается, мочеотделение и дефекация отсутствует. Из-за этих признаков у животного наблюдается вздутие рубца и переполнение мочевого пузыря.

Заболевшему животному ни в коем случае нельзя заливать в рот жидкие вещества, так как глотка чаще всего парализована. К лечению приступать необходимо немедленно, так как животное может погибнуть от тимпании. Рубец коровы необходимо проколоть троакаром и выпустить скопившийся газ. Из переполненной прямой кишки удаляют каловые массы, а из мочевого пузыря с помощью катетера удаляют мочу. Для лечения применяют 20%-ный раствор кофеина подкожно 20-30 мл, хлорид кальция 300-400 мл, антибиотики. Совместно с этими препаратами применяют метод: аппаратом Эверса накачивают воздух в вымя(20-30 качков). Соски завязывают кусочками марлевого бинта на 20-40 мин. Наполненное воздухом вымя необходимо осторожно массажировать. Корова поднимется через 2 часа, но если улучшения не произошло, то процедуру вдувания воздуха повторить совместно с раствором глюкозы (вводить внутривенно).

Чтобы предупредить возникновение послеродового пареза следует напоить корову после отела теплой подсоленной водой.

Задержание последа

Послед обычно отделяется в течение 3-4часов (до 5-6 часов). Причина, по которой задерживается послед - атония и гипотония матки. Они появляются вследствие плохого кормления (недостаток витаминов, фосфора и так далее), тяжелые роды. Следующей причиной является сращение сосудистой оболочки плода со слизистой оболочкой матки. Чаще это возникает на почве перенесенных самкой хронических эндометритов, а также при бруцеллезе и вибриозе.

Послед у коров нередко свисает из вульвы. Гниение последа и лохий происходит на 2-3 день после отела, ощущается зловонный запах, из половых путей выступает красный или серо-красный тяж. После задержания последа у животных часто диагностируют воспаление матки и бесплодие.

У коров к лечению необходимо приступать спустя 5 часов после отела. Сначала необходимо применять средства, стимулирующие сокращения матки (окситоцин- 7-8 мл; утеротон-10 мл). Для подавления жизнедеятельности микрофлоры матки применяют антибактериальные препараты широкого спектра действия (метромакс, метрикур, палочки с фуразолидоном). Если после введения все этих препаратов послед не отделился, то применяют хирургический метод. У коров послед отделяют через сутки или на второй день. После отделения последа коровам вводят в полость матки антисептические средства.

Для профилактики задержания последа коров необходимо обеспечить полноценным кормлением, нормальными условиями содержания. Так же необходимо применять правильные меры при родовспоможении, по уходу за самкой после родов и по предупреждению различных заболеваний матки.

Поедание последа

У коров после поедания своего последа наблюдается развитие тимпании, профузный понос. Коровы угнетены, у них снижен аппетит, температура повышена.

Для лечения назначают голодную диету на один день, а потом болтушку или сено. Коровам выпаивают воду с 2 ложками соляной кислоты.

Поедание последа обычно считается ненормальным поведением, поэтому отделившейся послед убирают подальше от коров.

Субинволюция матки

Субинолюцией называют замедление инволюции матки.

Заболевание диагностируют с 7-8-го дня после отела.

Существует две формы гипотония (легкая форма) и атония (тяжелая форма). Причинами является задержание последа, неправильное кормление и отсутствие моциона. При легкой форме на 2-й неделе после родов лохии у коров светлеют, а к 14-16 дню прекращаются. Иногда лохии наоборот темнеют, появляется неприятный запах и выделяются продолжительное время после родов. Тяжелая форма возникает в результате распада лохий. У самки снижается аппетит, вялость, учащается дыхание. Матка увеличена и свисает в брюшную полость, не сокращается. При субинволюции матки животное долгое время остается бесплодным.

При острой субинволюции чаще всего используют 10%-ный раствор кальция хлорида в дозе 150 мл в комбинации с глюкозой (250 мл 40%-ного раствора) внутривенно на 1-е и 3-и сутки.

Для усиления сокращений матки применяют маточные средства (питуитрин, 0,1% раствор карбохолина, 1%-ный раствор синестрола), массаж и промывание матки.

Если субинволюция приняла подострое течение, лечение проводят с окситоцином в сочетании с ректальным массажем матки, а также внутримышечно вводят тривит в дозе 10 мл 2-3 раза.

Для профилактики субъинволюции матки самым эффективным является полноценный моцион и правильное кормление.

Выворот и выпадение матки

Выворот матки - это осложнение родов, происходит частичное выпячивание рогов матки. Выпадение матки - это полный выворот матки и выпадение ее наружу.

Причинами выворота матки чаще являются сухие роды, при которых происходит быстрое извлечение плода. Выпадение матки бывает при слишком коротком пупочном канатике. Иногда выпадение матки бывает через 1-2 после легко проходимых родах. Задержание последа может вызвать выпадение матки.

При частичном выпадении матки из вульвы выступает красная масса размером от куриного яйца до гусиного. Вначале выпадение можно заметить только у лежащего животного, но позже при расслаблении паравагинальной клетчатки слизистая оболочка складки не втягивается и у стоящего животного. Частичное выпадение влагалища может повторяться при каждой беременности. Такое выпадение не опасно т.к. выпавшая складка после родов втягивается в тазовую полость и расправляется.

Полное выпадение матки это чаще всего осложнения после частичного выпадения. Другими причинами могут являться сильные схватки и потуги. Признаки полного выпадения влагалища: из наружных половых органов можно увидеть большую массу грушевидной формы сначала ярко красного цвета, но при дальнейшем застое цвет становится темно-синим. Выпавшая матка кровоточит и легко травмируется. Если своевременно не принять меры, то ткани могут подвергнуться гангрене и весь процесс закончится сепсисом.

Первый способ лечения при частичном выпадении матки - животному необходимо скармливать только легкопереваримые корма и для уменьшения внутриутробного давления животное необходимо поместить в станок с наклоном, чтобы таз был выше головы.

Если такой метод не помогает, то необходимо промыть матку перманганатом калия, смазать борным вазелином или другим слабодезинфицирующей мазью и вправить. Матку необходимо закрепить 3-4 швами с валиками.

При полном выпадении влагалища необходимо сразу же вправить и укрепить матку. Тщательно очистив, выпавшее влагалище смазывают раствором йода. Сильно поврежденную слизистую оболочку и ткани орошают вяжущими растворами (0,2% раствор перманганата калия и др.). При вправлении матки очень важно следить за тем, чтобы таз по уровню был выше головы животного. Хороший эффект после вправлении матки получается при наложении на вульву 5-6 швов с валиками

Послеродовой некротический метрит

Некротический метрит - это тяжелое послеродовое заболевание, характеризующееся поражением всех слоев матки.

Слизистая оболочка утолщается в следствии выпотевании фибрионов и отложении на поверхности. Распад тканей может захватить серозную оболочку и мышцы, из половых органов выделяется небольшой экссудат. Животное погибает от септицемии и пиемии. Причинами являются травмы матки и попадание в нее патогенной микрофлоры.

При метрите у животного наблюдается повышение температуры, угнетение, аппетит отсутствует. При ректальном исследовании обнаруживаем матку увеличенной и болезненной. Характерным признаком является примесь к экссудату крошкообразных масс.

Для лечения нельзя применять спринцевание и массаж матки. Необходимо применять ихтиоловую тампонацию и мази [17].

Послеродовой гангренозный септический метрит

Гангренозный метрит - это тяжелое остро протекающее послеродовое заболевание, характеризующиеся гангренозным распадом тканей матки. Возникает вследствие травм матки анаэробной микрофлорой. Температура у животного повышена, пульс и дыхание учащены, аппетит отсутствует. Из наружных половых путей выделяется жидкость буро-красного цвета с неприятным запахом. В начальной стадии экссудат может напоминать кровяную сыворотку с примесью кашеобразных масс.

Для лечения нельзя применять спринцевание и массаж матки. Применяют дезинфицирующие средства.

Послеродовые вульвит, вестибулит и вагинит.

Часто протекают одновременно.

Вульвит - это воспаление половых губ, вестибулит - воспаление предверия влагалища, а вагинит - воспаление влагалища. Развитию воспаления предшествует раны, ссадины, химические ожоги слизистых оболочек половых губ, предверия влагалища и влагалища.

Животное угнетено, тужится, изгибает спину и мочевыделение небольшими порциями. При наружном осмотре половые губы отечны, болезненны, кожа и слизистая оболочка гиперемирована, на корне хвоста и внизу вульвы экссудат. При осмотре слизистой оболочки влагалища нередко находят язвы, царапины, гиперемию, кровоизлияния.

Для лечения необходимо применять этиотропные препараты, пенообразующие, аэрозоли (кубатол, террамицин спрей), мази (мазь Вишневского).

Для профилактики вульвита, вестибулита и вагинита необходимо проводить правильное родовспоможение и правила асептики и антисептики.

Послеродовой эндометрит.

Эндометрит - это воспаление слизистой оболочки матки.

Эндометрит увеличивает послеотельный и сервис - периоды, снижает выход телят, возрастают непроизвольные затраты на лечение и повторное осеменение (статья). В свою очередь эндометриты подразделяются на: острые (катаральные, гнойно-катаральные и фибринозные); хронические (катаральные, гнойно-катаральные и гнойные); субклинический (скрытый).

Этиология. Эндометриты чаще всего возникают по нескольким причинам. Первой причиной может служить неправильное осеменение коров , то есть попадание во влагалище вместе со спермой микрофлоры. Второй причиной служит плохое отделение последа, что приводит к гниению его в матке. Именно эта причина служит возникновению острого эндометрита. Третьей причиной является плохой моцион стельных коров [18].

Признаки катарального и гнойно-катарального острого эндометрита.

Внешне животное выглядит без признаков видимых изменений. Наблюдается незначительное повышение температуры и понижение аппетита, угнетение. В стоячем положении животное изгибает спину и тужится, как при мочеиспускании. При осмотре наружных половых органов самок отмечается, что передняя слизистая оболочка влагалища увеличена и с ярко розовым оттенком. Ректальное исследование показывает, что матка опущена в брюшную полость, стенки дряблые и сократительная функция снижена или отсутствует. Массажируя матку, из влагалища выделяется слизистый экссудат со специфическим запахом.

Признаки фибринозного острого эндометрита.

Как и при катаральном эндометрите наблюдается угнетение, повышение температуры, понижение аппетита и молочной продуктивности. При ректальном исследовании из влагалища выделяется экссудат серо-желтого цвета с хлопьями фибрина.

Признаки хронического эндометрита (катарального, гнойного, катарально-гнойного).

Из половых путей постоянно выделяется слизисто-гнойный, гнойный экссудат. Его можно обнаружить на влагалище, корне хвоста и на подстилке. Половые циклы могут проявляться, но осеменения не происходит. Канал шейки матки при вагинальном исследовании приоткрыт на 1-2 пальца. При ректальном исследовании можно обнаружить увеличение одного или обоих рогов матки. Стенки матки утолщены, сама матка увеличена и опущена в брюшную полость. Хронический эндометрит вызывает бесплодие.

Признаки субклинического (скрытого) эндометрита.

Особо выраженных клинических признаков не выявляется. При ректальном исследовании половых органов выявить какие-либо отклонения не удается. Половые циклы не нарушены, но при полноценной охоте и осеменении качественной спермой , коровы не оплодотворяются. Это объясняется тем, что при латентном периоде в полости матки увеличивается кислотность среды, а в организме образуются антитела против спермиев быка.

Патогенез эндометритов.

В очаге воспаления, могут образовываться различные биологически активные вещества, которые, всасываясь в кровь, влияют на тонус сосудов, процессы эмиграции лейкоцитов, фагоцитоз, размножение клеточных элементов - гистамин и другие. Повышение обмена веществ происходит за счёт легкоокисляемых углеводов. Анаэробный гликолиз прогрессирует, так как накопившееся в результате эмиграции из сосудов лейкоциты расщепляют углеводы преимущественно анаэробным путем; окисление углеводов происходит не до конца.

Жиры, белки в очаге воспаления расщепляются не полностью, а с образованием кетоновых тел, альбумоз, пептонов. Из-за этого накапливаются недоокисленные продукты обмена пировиноградная и молочные кислоты, жирные кислоты, кетоновые тела. Вследствие этого возникает ацидоз, вначале он компенсированный из-за нейтрализации буферными соединениями, позднее возникает Н-гипериония (некомпенсированный ацидоз).

Сосудистые реакции в очаге воспаления характеризуются нарушениями периферического кровообращения. Под действием раздражителя усиливается реакция сосудосуживающих нервов и гладкомышечных клеток артериол, что приводит к кратковременному спазму сосудов. Начальный спазм быстро исчезает, за ним следует расширение сосудов в результате паралича сосудосуживающих нервов и раздражения сосудорасширителей. Это способствует усиленному притоку к очагу воспаления крови и развитию артериальной гиперемии, что усиливает в участке обмен веществ, гиперемию, увеличивает местную температуру. Позднее скорость движения крови снижается, и артериальная гиперемия сменяется венозной. Проявляется потеря тонуса сосудов в результате паралича и нервно-мышечного аппарата. Крупные сосуды расширяются сильнее, а мелкие сужаются.

Внедрившиеся в слизистую оболочку микробы раздражают своими токсинами и ферментами капилляры и рецепторы матки. Это приводит к ответной реакции - непосредственной и рефлекторной, проявляющейся в виде воспалительного процесса в месте внедрения и размножения микробов, что в свою очередь, усиливает защитные реакции в виде фагоцитоза и утолщения защитной зоны. Раздражители вызывают ответную реакцию в виде воспалительной гиперемии с образованием экссудата, эмиграцию лейкоцитов и лимфоцитов, слизистую дистрофию эпителиальной ткани, омертвение и слущивание покровного эпителия. В зависимости от состава экссудата различают серозный, слизистый, гнойный и смешанный катар.

Кроме этого в развитии заболевания большое значение имеют иммунобиологические, защитные механизмы организма, определяющие сопротивляемость его тканей. Это прежде всего связано с кормлением животных.

Большое значение в развитии и течении воспалительного процесса в матке при эндометритах, а также и в выздоровлении животного принадлежит состоянию центральной и вегетативной нервной систем. В опытах на коровах путем оперативного нарушения целостности симпатической нервной системы с последующим введением в матку инфицированного материала был получен у них экспериментальный эндометрит. Это вызвало резкую гиперемию и кровоизлияния в слизистую оболочку матки, ослабляло температурную и лейкоцитарную реакции, способствовало генерализации бурно протекавшего септического процесса, что приводило животных к смерти.

Профилактика эндометрита

Большое значение при профилактике эндометритов имеют меры, которые предупреждают попадание в родовые пути и матку животного микробов. Необходимо создавать коровам при родах и послеродовой период соответствующие санитарно-гигиенические условия. Для этого хозяйство должно иметь благоустроенные родильные отделения. Коров так же необходимо обеспечивать полноценным кормлением, регулярными прогулками в период беременности и послеродовой период. Стоила, где содержаться животные, нужно тщательно дезинфицировать и периодически менять подстилку.

Лечение катарального и гнойно-катарального острого эндометрита.

Для лечения коров, больных катаральным и гнойно-катаральным острым эндометритом применяют ряд лечебных мероприятий. Они обеспечивают удаление из полости матки экссудата, создания в этой полости антисептических условий, стимулирующих сокращение матки. Экссудат из полости удаляют массажем через прямую кишку. Комплексный план лечения: 1) повышение защитных сил организма; 2)восстановление слизистой матки; 3)повышение сократительной способности матки; 4)подавление микрофлоры.

Для восстановления сократительной функции матки применяют Окситоцин-30 мл внутримышечно, Питуитрин- 8-10 мл подкожно, Утеротон - 10 мл внутримышечно- 1 раз в день на протяжении 2-4 дней. Внутривенно вводят 20%-ный раствор глюкозы в дозе 500 мл, так же применяют палочки с фуразолидоном 5-6 штук. При необходимости их можно вводить через 48-72 ч [19-22].

Лечение хронического (катарального, гнойного, катарально-гнойного) эндометрита.

Цель при лечении хронического эндометрита - восстановление нормальных процессов в матке. Для промывание матки используют 1%-ный раствор хлорида натрия. После промывания матки в полость нужно вводить любые антисептические средства по 20-40 мл. кроме промывания матки и ввода антисептических препаратов , необходимо применять маточные средства для повышения тонуса матки и более быстрого удаления экссудата из ее полости .Для начала нужно ввести внутримышечно Тетравит в дозе 10 мл, затем Окситоцин-50 ЕД и Синестрол 2 мл.

Лечение субклинического (скрытого) эндометрита.

Коровам, у которых выявлен скрытый эндометрит, лекарственные препараты необходимо применять во время стадии возбуждения полового цикла или ближе к концу охоты. Полезно назначать препараты такие же как и при хроническом эндометрите.

Все выше перечисленные заболевания послеродового периода могут вызвать бесплодие коров [23, 24].

1.2 Бесплодие

Бесплодие - временное или постоянное нарушение функции размножения самок, то есть неспособность взрослого животного к размножению. Бесплодие у крупного рогатого скота является одной из причин яловости.

Яловость - это отсутствие оплодотворения у коров. Яловыми коровами могут быть те коровы, которые не пришли в охоту или остались неоплодотворенными по истечению трех месяцев после отела.

Бесплодие может возникать по нескольким причинам:

- неправильное кормление;

-неправильное содержание;

-вследствие болезней;

- причине старости;

- чрезмерная эксплуатация;

- из - за врожденных пороков.

Классификация бесплодия по А.П. Студенцову

1.Врожденное-

а) Инфантилизм;

б) Фримартинизм;

в) Гермафродитизм.

2. Старческое -Атрофические процессы в половом аппарате

3. Симптоматическое- Болезни половых и других органов

4.Алиментарное-

а) На почве истощения;

б) Как следствие ожирения;

в) На почве качественной недостаточности рациона;

г) Как следствие недокорма растущих животных;

5. Эксплуатационное - Эксплуатационное истощение животных;

6. Климатическое - Как следствие недостаточной или избыточной инсоляции; неблагоприятного микроклимата и других погрешностей в содержании самок и производителей;

7. Искусственное.

Врожденное бесплодие- это неспособность самок к воспроизводству, обусловленную неправильным образованием половых органов в периоды эмбрионального и фетального развития. Такая форма бесплодие встречается крайне редко.

Врожденное бесплодие так же возникает вследствие инфантилизма, фримартинизма и гермафродитизма.

Инфантилизм - это недоразвитость половых органов и отсутствие половых циклов у самок, достигших половой зрелости. Причинами инфантилизма часто являются неполноценное кормление, скученное содержание, расстройство функций щитовидной и других желез, близкородственное разведение.

Фримартинизм - это недоразвитие некоторых отделов полового аппарата самок и переразвитие клитора. При рождении разнополых двоен (тёлки и бычка) тёлка обычно имеет неполноценные половые органы и впоследствии остается бесплодной. Таких телок называют фримартинами. Взрослая телка-фримартин имеет экстерьер, характерный для быка. Влагалище такой телки укороченное и недоразвитое. Наружные половые органы изменены. Яичники, яйцепроводы, матка и шейка матки недоразвиты или отсутствуют. Таких телок - фримартин обычно выбраковывают.

Гермафродитизм - это аномалия половых органов, характеризующаяся наличием у одного и того же животного признаков мужского и женского пола. Причиной является неправильное образование и развитие половых органов в эмбриональный период.

При осмотре внутренних половых органов можно выявить, что половая щель узкая, клитор недоразвит, клитор темно - красного цвета.

При ректальном исследовании у гермафродитов матка недоразвита, отсутствие яичников или яичник с одной стороны и семенник с другой.

Гермафродитизм вылечить невозможно. Таких животных используют обычно как мясных животных.

Симптоматическое бесплодие - это нарушение воспроизводства вследствие заболевания половых и других органов инфекционными и инвазионными болезнями.

Особенно часто такое бесплодие связано с акушерско-гинекологическими заболеваниями, т.е. болезнями яичников и яйцепроводов, влагалища и матки и молочной железы.

В зависимости от локализации и характера воспалительного процесса сущность бесплодия может быть объяснена четырьмя факторами:

- гибелью спермиев в женской половой сфере вследствие попадания их в неблагоприятную среду или невозможности продвижения к яйцевой клетке;

- гибелью яйцевой клетки или зиготы;

- невозможностью проникновения зиготы в полость матки;

- нарушением полового цикла (отсутствие овуляции, течки, полового возбуждения и охоты).

Алиментарное бесплодие - это нарушение воспроизводства стада вследствие недостатка кормов. Для устранения причин необходимо организовывать правильное кормление животных начиная с малого возраста до полного развития.

Бесплодие вследствие ожирения - причиной является скармливание животным большого количества жома, силоса и жмыхов. При отсутствии моциона и одностороннее кормление вызывает отложение жиров в организме.

При ожирении у животных половые циклы становятся неполноценными, яичники увеличиваются в размерах, отсутствует оплодотворяемость. Иногда наблюдается дряблость стенок матки и уменьшение ее объема.

Бесплодие вследствие истощения - причинами могут служить неправильное хранение кормов, несвоевременный подвоз кормов и их скармливание. При истощении у животных отсутствуют половые циклы и течка. При ректальном исследовании устанавливают, что яичники уменьшены и у них плотная консистенция так же находят крупные желтые тела, но фолликулы отсутствуют.

Бесплодие вследствие неполноценности кормов - в рационах, содержащих небольшое количество кормовых единиц, иногда недостает других компонентов корма таких как, например, каротина, витаминов B, E ,D, солей кальция, натрия, железа, йода, меди, марганца и других.

При недостатке каротина вначале задерживается проявление течки и охоты, снижается оплодотворяемость, а потом наступает перерождение эпителия слизистой оболочки матки.

Недостаток витаминов B,E, D вызывает рождение недоразвитых или мертвых плодов, нарушение половых циклов и нарушение фосфорно-кальциевого обмена.

Недостаток в кормах солей кальция, натрия, железа, йода, меди, марганца и других микроэлементов вызывают в организме различные расстройства.

Для того, чтобы предупредить развитие бесплодия, необходимо создать прочную кормовую базу. Для профилактики гиповитаминозов в рацион животных необходимо включить сено хорошего качества. В кормушках должна быть поваренная соль (лизунец).

Эксплуатационное бесплодие - возникает вследствие чрезмерной эксплуатации животного. К эксплуатационному бесплодию относится и бесплодие коров-первотелок, наблюдающееся после слишком ранней случки телок.

Признаки малоспефичны. У коров отсутствуют половые циклы или наоборот, наступает нимфомания (усиленное или непрерывное половое возбуждение самок). Яичники имеют упруго-плотную консистенцию и уменьшены. Иногда можно обнаружить персистентное желтое тело.

Для предупреждения эксплуатационного бесплодия необходимо не допускать молодых, несозревших телок к осеменению. У дойных коров необходимо удалить персистентное желтое тело.

Климатическое бесплодие -развивается при неблагоприятных климатических условиях; недостатке или избытке солнечных лучей, высокой температуре, большой влажности и загазованности воздуха.

При климатическом бесплодии у коров слабо выраженная течка, яичники уменьшены, можно обнаружить желтое тело и киста.

Искусственное бесплодие -

Искусственно приобретенное бесплодие - возникает вследствие нарушений правил техники искусственного осеменения.

Причины искусственно приобретенного бесплодия самок:

- плохо поставленный учет работы по воспроизводству, вследствие чего осеменение животных проводится без плана; наиболее частая причина несвоевременное осеменение животных, осеменение самок без учета формирования стадии возбуждения и ее феноменов, осеменение без пробника, пропуски охоты;

- низкая квалификация техников по искусственному осеменению, незнание животноводами правил организации методов искусственного и естественного осеменения;

низкое качество используемой спермы, ее микробная и грибная загрязненность, несоблюдение правил техники искусственного и естественного осеменения;

- проведение искусственного осеменения животных в местах их содержания, что обуславливает инфицирование половых органов и инструментов;

- непредоставление покоя животным после осеменения, например: выпуск коров в стадо, прыжки осемененного животного на других, приводящие к тому, что из матки коровы вместе со слизью выдавливается и сперма;

- неумелый выбор производителя (различные формы импотенции), недостаточное количество или отсутствие производителей;

- неправильное использование производителя, например, чрезмерная половая нагрузка;

- неправильный подбор пар: крупный производитель и низкорослая самка или, наоборот, маленький бычок в стаде крупных коров; проба молодых телок и конематок на охоту сильно возбудимым самцом иногда пугает самок, а это тормозит все половые рефлексы на длительное время;

- невыявление неоплодотворившихся маток в первый месяц после осеменения;

- неправильная выбраковка маточного состава, когда без гинекологического исследования отбирают беременных маток (более упитанных) на мясопоставки, а бесплодных оставляют в хозяйстве, вследствие чего искусственно повышается яловость.

Искусственно направленное бесплодие применяют когда, выдержка самок со времени полового созревания до физиологической зрелости организма, с целью получить хорошо развитое маточное поголовье;

выдержка, пропуск половой охоты у самок, с целью получения приплода в наиболее благоприятное время или удлинения лактационного периода;

обеспложивание самок, с целью получения хорошего качества и большего количества мяса.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНЯ

2.1 Материалы и методы

Исследования проводились в 2015-2016 учебных годах на базе кафедры незаразной патологии Бел ГАУ, в испытательной лаборатории Бел ГАУ и колхозе им Горина.

Методика исследований

В колхозе имени Горина, отделение «Бессоновка» было отобрано 20 коров черно-пёстрой молочной породы с продуктивностью 5-6 тыс. кг молока за предыдущую лактацию и сформировано 2 группы (по10 голов в каждой): контрольную и опытную. Группы комплектовались по принципу аналогов. Разница в сроках отеле непревышала 1 месяца между животными в группе и из разных групп. Все коровы были полновозрастные (3-5 лактация) со средней живой массой 557 ± 11,71 кг. Животные находились в одинаковых условиях кормления и содержание. Кормление коров проводилась 3 раза в сутки, доения в родильном отделении - 3 раза в сутки, в доильном зале - 3^х кратное.

Диспансеризацию животных обеих групп в сухостойный период проводили согласно утверждённой в хозяйстве схеме. После отёла коровам контрольной группы были проведены профилактические обработки согласно принятой в хозяйстве схеме, которая включала в себя:

1 день: Эстрофан - 3,0 в/м;

Септометрол - 2 табл. внутриматочно;

Тетравит или Олиговит - 10,0 в/м;

Оксикел - 50,0 в/м;

Биостимульгин - 10,0 п/к.

2 день: Бремафлюксин - 20,0 в/м;

Синестрол - 4,0 в/м.

3 день Оксикел - 50,0 в/м;

Утеротон - 10,0 в/м.

5 день Дексакел - 20,0 п/к;

Утеротон - 10,0 в/м.

7 день Утеротон - 10,0 в/м.

Животные опытной группы были обработаны согласно схеме предложенной нами:

1 день - Цефтиофур- 500 мг/гол («Эфикур» или его отечественные аналоги: «Тиоцефур», «Цефтонит»);

Айнил или Летайнил - 10,0 в/м;

Тетравит или Олиговит - 10,0 в/м;

Кальфосет - 50,0 п\к

Септометрол - 2 табл. внутриматочно;

Окситоцин 50 ЕД - непосредственно перед первым доением.

2 день: Цефтиофур- 500 мг/гол («Эфикур» или его отечественные аналоги: «Тиоцефур», «Цефтонит»)

Синестрол - 4,0 в/м;

Утеротон - 10,0 в/м.

3 день Утеротон - 10,0 в/м.

4 день Утеротон - 10,0 в/м.

7 день Утеротон - 10,0 в/м.

10 день Эстрофан - 3,0 в/м;

Был собран анамнез, проведен клинический осмотр животных с ежедневной термометрией в течении 10 дней после отёла. Клинический осмотр проводили по следующему плану:

· Определение состояния больного животного в момент начала наблюдения за ней - status praesens.

· Общее исследования: выявление габитуса, исследования видимых слизистых оболочек, шерстного (волосяного) покрова, кожи и подкожной клетчатки, лимфатических узлов.

· Измерение температуры тела.

Ректальные исследования проводили на 10 и 30 день после отёла. Целью исследований была диагностика состояния матки для установления отсутствии или наличии эндометрита и его формы.

Для биохимического и клинического исследования кровь отбирали из хвостовой вены перед утренним кормлением. Производили взятие крови на 10 и 30 день после отёла.

Методика отбора крови для серологических исследований

Кровь отбирали из хвостовой вены (v .с occygea), для забора крови использовали вакуумные системы для забора крови производства фирмы DNK ^® (Тайвань). Замкнутая система включает вакуумную пробирку с крышкой, двухстороннюю иглу, иглодержатель (рис 1).

Рис. 1. Вакуумная система для взятия крови

Для биохимических исследований производили забор крови в пробирки с литий-гепарином (с зелёным колпачком), а для клинических - с ЭДТА (сиреневый колпачёк). Цветная кодировка пробирок очень удобна, она сводит к минимуму вероятность ошибки.

Преимущество в применении вакуумных систем для забора крови в сравнении с традиционными способами отбора крови состоит в следующем:

· безопасность и комфорт как для животного, так и для ветеринарного специалиста;

· менее выраженные болевые ощущения;

· вакуумные пробирки герметичны и не бьются;

· время процедуры - около 10 секунд - высокая производительность труда;

· надежная и простая маркировка пробирок;

· удобство при перевозке пробирок;

· отсутствие прямого контакта с кровью.

Методика забора крови из хвостовой вены:

1. Для взятия крови животное фиксировали в стойле.

2. Хвост животного брали рукой в области средней трети и медленно поднимали вверх.

3. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицировали 70 % спиртом.

4. Кровь брали в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.

5. Иглу, фиксированную держателем, вводили под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

6. Прокалывая резиновую пробку, подсоединяли пробирку, после набора крови до метки извлекали систему.

Клинический анализ крови.

Определяли скорость оседания эритроцитов, содержание гемоглобина, количество эритроцитов и лейкоцитов в 1 мкл. крови и проводили определение лейкоцитарного профиля.

Определение количества гемоглобина проводили с использованием гемометра Сали.

Ход определения. В пустую пробирку гемометра, до деления 10, наливали 0,1 н. раствора соляной кислоты. Исследуемую кровь набирали в капиллярную пипетку до метки и вносили в пробирку с кислотой. После чего аккуратным втягиванием и выдуванием верхнего слоя кислоты промывали капиллярную пипетку от остатков крови. Кровь в пробирке тщательно перемешивали, ударяя пальцами по дну пробирки. После перемешивания пробу выдерживали 5 мин. Затем прибавляли небольшими порциями дистиллированную воду, до тех пор пока цвет разбавленной крови не сравнялся со цветом эталона. Цифра на уровне жидкости в пробирки с разбавленной пробой крови соответствует содержанию гемоглобина в г/л.

Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ) методом Вестергрена.

Ход определения. Смешивали 1,6 мл стабилизированной крови с 0,4 мл 3,8 % раствора лимоннокислого натрия. Затем пробу набирали в пробирку длинной 300 мм и 3 мм в диаметре. Пипетку заполняли до нулевой отметки и размещали вертикально в штативе. Определение производится по высоте столбика плазмы, образовавшегося за 1 час.

Подсчёт форменных элементов крови (эритроцитов и лейкоцитов).

Ход определения. Пробы крови в пробирках перемешивали. После чего набирали кровь в соответствующий смеситель до метки. Затем пробу крови разбавляли разводящей жидкостью. Для подсчёта эритроцитов применяли 0,9 % р-р поваренной соли, лейкоцитов - 3 % р-р уксусной кислоты с добавлением 1 % р-р генцианвиолета (1 мл на 100 мл р-ра уксусной кислоты). Разведённую пробу вносили в камеру Горяева и подсчитывали под микроскопом при увеличении 200-300 раз. Количество форменных элементов подсчитывали по формуле

X = (A x 4000 x B) / Б,

где Х - количество форменных элементов в 1 мм³; А - количество форменных элементов в определённом объёме камеры; Б - количество сосчитанных маленьких квадратов; В - разведение крови.

Определение лейкоцитарного профиля.

Ход определения. Готовили мазки крови на предметных стёклах. Мазки высушивали на воздухе и фиксировали в метаноле. Окраску мазков проводили иетодомРомановского-Гимзе.

В сыворотке крови коров определяли уровень общего белка, содержание белковых фракций, мочевины, креатинина и иммуноглобулинов и кетоновых тел. Биохимические исследования проводили на автоматическом анализаторе IDEXX VetTest.

Выбор данного прибора для проведения исследования объясняется простотой выполнения исследовательской процедуры и точностью результатов анализа.

Пробо подготовка: Центрифугировали пробирки при 3000 об./мин. В течении 10 мин. После центрифугирования отбирали плазму для дальнейших исследований.

Выполнение биохимических исследований: В меню анализатора VetTestвыберли команду «NEW SAMPLE» и, следуя подсказкам на экране введите информацию о пациенте. Выполнив запрос вставляли слайды для проведения анализа.

Взяв дозатор из держателя надели на него новый пластиковый наконечник.

Держа дозатор в вертикальном положении, путём нажатия на кнопку, отбирали образец плазмы для исследования. Во время проведения этой процедуры раздавался звуковой сигнал подтверждающий забор образца в наконечник.

После 3-х сигналов - аккуратно, «скручивающим» движением протерали наконечник дозатора безворсовой салфеткой.

Проверяли отобранный образец, чтобы убедиться в отсутствии воздушных пузырей. Помещали дозатор в держатель на анализаторе. Остальная часть анализа происходила автоматически.



2.2 Результаты исследований

В послеотёльный период у животных как опытной, так и контрольной группы не было выявлено тяжёлых послеродовых осложнений (послеродовый парез, выпадение матки, послеродовая горячка и т.д.) сопровождающихся резким изменение общего состояния животного. У всех животных габитус, аппетит и темперамент соответствовал их физиологическому периоду.

При проведении термометрии среди коров опытной группы повышение ректальной температуры до уровня 39,6 С⁰ и выше было зафиксировано у 3 животных. В контрольной группе лихорадка была выявлена у 4 животных.

Всем животным с повышенной температурой были применены противомикробные жаропонижающие препараты согласно протоколов лечения острого послеродового метрита.

Схема лечения острого послеотёльного метрита:

1. Эфикур (Цефтанит, Цефтиосан) 10,0 п/к

2. Айнил (Летайнил) 15,0 в/м

3. Окситоцин 5,0 в/м

4. Эндометромаг Т 200,0 внутриматочно.

Продолжительность курса составляла 3 дня.

Продолжительность периода повышенной температуры среди животных опытной группы составила у 2 голов - 2 дня, у 1 гол. - 3 дня. Контрольной группы - 1 животное - 1 день, 1 - 2 дня, 2 - 3 дня. Чаще повышение температуры фиксировали в период 3-5 сутки после отёла (Рис. 1 и Рис. 2).

Результаты ректальных исследований.

При проведении ректальных исследований на 10 день было выявлено по 2 коровы, в опытной и контрольных группах, с признаками острого метрита: матка увеличена, стенки её напряжённые, при массаже матки - выделяется обильный геморрагический экссудат.

Больным животным было назначено следующее лечение:

1. Эфикур (Цефтанит, Цефтиосан) 10,0 п/к

2. Айнил (Летайнил) 15,0 в/м

3. Эндометромаг Био 200,0 внутриматочно.

Ректальными исследования проводимыми на 30 день была выявлена одна корова с признаками эндометрита из животных контрольной группы: матка увеличена, стенки её напряжённые, при массаже матки - умеренное выделение гнойно-катарального экссудата.

Проведено лечение:

1. Внутриматочно ввели «Метрикур» 1 дозу.

2. Внутримышечно «Эстрофан» 3,0.

Результаты биохимических исследований.

В контрольной и опытной группах коров содержание общего белка в плазме крови находилось в пределах нормы, но в контрольной группе содержание белка было на 1,82 % выше (табл. 1).

При анализе белковых фракций установлено повышенное содержание глобулинов в плазме крови животных обеих групп, при снижении уровня альбуминовой фракции.

Таблица 1. Результаты биохимических исследований плазме крови

Показатели	Опыт	Контроль	Норма
Общий белок, г/л	74,55±1,72	75,91±1,17	56-78
Белковые фракции, %
альбумины	36,26±1,21	33,35±0,96	22-43
глобулины	63,75±1,45	66,62±0,98	43-50
б-глобулины	9,88±0,97	10,32±0,55	12-20
в-глобулины	7,25±0,93	8,91±0,62	10-16
г-глобулины	46,60±1,27	47,42±0,83	25-40
Соотношение альбумины/глобулины	0,55±0,03	0,51±0,02	1,0-2,0
Мочевина, ммоль/л	6,38±0,63	8,73±0,76*	3,0-5,6
Креатинин, мкмоль/л	124,03±3,65	1126,91±2,7	86 -180
Иммуноглобулины, г/л	5,60±0,07	5,76±0,06	5,0-7,0
АЛТ, ед/л	33±4	31±3	8-37
АСТ, ед/л	96±6	87± 7	34-106
Удой, кг/день	19,5	18,2

* р ? 0,05

Увеличение уровня глобулинов мы связываем с повышением содержания иммуноглобулинов. Так, в сыворотке крови повышалось содержание иммуноглобулинов на 2,86%. Это можно объяснить воспалительными процессами в половой системе коров, в результате чего уровень их в плазме крови повышается у больных животных в ответ на наличие и развитие микроорганизмов в матке. В контрольной и опытной группе коров наблюдается повышение содержания всех трех фракций глобулина и снижение уровня альбумина. По этой причине в исследуемых образцах, как опытной, так и контрольной группы наблюдается нарушение соотношения альбуминовой и глобулиновой фракций. В опытной группе уровень глобулиновой фракции на 5,12 % ниже, чем в контроле.

Снижение содержания альбумина в плазме крови новотельных коров можно объяснить как нарушением работы печени, так может быть и следствием всасывания токсических продуктов из очага воспаления в кровь. Увеличение количества б-глобулинов имеет место при острых воспалительных процессах и при обострении болезней с хроническим течением. Увеличение количества в-глобулинов имеет место при хронических воспалительных процессах и токсическом поражении печени. Рост же количества г-глобулинов объясняется токсическим поражением печени, длительным течением септического процесса и иммунологической реакцией организма коров на наличие бактериальной инфекции в организме. В связи с увеличением общего содержания глобулинов и снижением альбумина происходит снижение отношения альбумин / глобулин соответственно на 7,27% по сравнению с контрольной группой (Р <0,05) по сравнению с контрольной группой.

В сыворотке крови всегда содержится мочевина как следствие дезаминирования аминокислот в печени. В опытной группе коров увеличение мочевины составило 23,10%. Рост уровня мочевины в крови больных коров может свидетельствовать о нарушении функции почек, которыми она выводится из организма или об усиленное образование ее в печени при разрушении белка вследствие энергетического дефицита.

Следующий критерий, по которому можно судить о состоянии белкового обмена - креатинина. В контрольной группе наблюдали увеличение его уровня в сыворотке крови по сравнению с опытом на 2,85 %, что можно объяснить почечной недостаточностью и нарушением проходимости мочевыводящих путей, которые возможны при воспалительных процессах в половых органах животных.

Во всех группах животных уровень АЛТ и АСТ не превышает физиологическую норму. В контрольной группе коров активность АЛТ в сыворотке крови снизилась на 6,06%, а АсАТ - на 9,38%.

По результатам контрольной дойки, проведённой на 30 день после отела, была зафиксирована большая молочная продуктивность животных опытной группы. Разница суточного надоя составила 1,3 л (6,7 %). Снижение уровня производительности у коров контрольной группы свидетельствует о субклинических воспалительных процессах и об их негативном влиянии на продуктивность при несвоевременном или недостаточно эффективном диагностике и лечении.

Результаты клинических исследований крови.

Показатели красных клеток крови животных обеих групп находятся в пределах физиологической нормы (Табл. 2). Отмечается умеренный лейкоцитоз в крови животных опытной и контрольной групп. Это объясняется как воспалительными процессами в половых органах новотельных животных, так и перестройкой иммунной системы животных после отёла. У животных группы контроля среднее содержание лейкоцитов в крови на 5,0 % превышало этот показатель в опытной группе.

Также наблюдается повышение скорости оседания эритроцитов в крови животных обеих групп, что также указывает на воспалительные процессы, протекающие в организмах животных.



Таблица 2. Клинические показатели крови животных контрольной и опытной групп.

	Опыт	Контроль	Норма
Эритроциты, млн/мкл	6,5±0,5	6,0±0,4	4,5-7,5
Гемоглобин, г/л	112±5,0	105,0±4,0	108-120
Лейкоциты, тыс/мкл	10,0±0,8	10,5±1,0	6,6-9,5
СОЭ	1,7±0,2	1,9±0,3	0,5-1,5

Лейкоцитарный профиль крови коров характеризируется нейтрофилией, без сдвига формулы влево (Табл. 3). Данные изменения характерны для простого (гипореагенеративного) лейкоцитоза и сопровождаются не столь выраженными изменениями соотношения сегментированных и молодых клеток. Такая картина крови характерна для септических воспалительных процессов.

Таблица 3. Лейкоцитарная формула крови

	Базоф.	Эозиноф.	НЕЙТРОФИЛЫ	Лимф.	Мноцит.
			юные	палочк-ные	сегмент-ные
Опыт	0	5±2	0	6±3	32±5	50±6	7±2
Контроль	0	4±2	0	10±2	40±7	44±5	2±1
Норма	0-2	3-10	0	3-10	10-30	40-77	4-10

Правительство России уделяет большое внимание здоровью россиян. В деле поддержанию здоровья нации экологическая безопасность продуктов питания является важнейшим фактором. Незаменимым компонентом питания, особенно детского, является молоко и молочные продуты. Поэтому разработка и проведение комплекса мероприятий направленных на недопущение попадания в молоко посторонних примесей является первоочередной.