Імунофізіологічний стан організму птиці у різні вікові періоди та при застосуванні імуномодуляторів
Дослідження функціональної активності Т- і В-системи імунітету у різні критичні періоди постнатального розвитку курчат. Особливості формування гуморальних і клітинних факторів імунітету, рівня неспецифічної резистентності організму курчат різного віку.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | автореферат |
Язык | украинский |
Дата добавления | 26.08.2015 |
Размер файла | 238,5 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
ЛЬВІВСЬКИЙ НАЦІОНАЛЬНИЙ УНІВЕРСИТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЇ МЕДИЦИНИ ТА БІОТЕХНОЛОГІЙ ІМЕНІ С.З. ҐЖИЦЬКОГО
УДК 619:612.017:636.5
ІМУНОФІЗІОЛОГІЧНИЙ СТАН ОРГАНІЗМУ ПТИЦІ У РІЗНІ ВІКОВІ ПЕРІОДИ ТА ПРИ ЗАСТОСУВАННІ ІМУНОМОДУЛЯТОРІВ
03.00.13 - фізіологія людини і тварин
АВТОРЕФЕРАТ дисертації на здобуття наукового ступеня
кандидата ветеринарних наук
КОЛОТНИЦЬКИЙ ВІКТОР АНАТОЛІЙОВИЧ
ЛЬВІВ 2009
Дисертацією є рукопис.
Робота виконана у Львівському національному університеті ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького.
Науковий керівник: доктор ветеринарних наук, професор Стояновський Володимир Григорович, Львівський національний університет ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького, завідувач кафедри патологічної фізіології.
Офіційні опоненти: доктор ветеринарних наук, професор, член-кореспондент УААН Федорук Ростислав Степанович, Інститут біології тварин УААН, завідувач лабораторії екологічної фізіології та якості продукції, заступник директора з наукової роботи;
доктор ветеринарних наук, професор Ніщеменко Микола Прокопович, Білоцерківський національний аграрний університет, завідувач кафедри нормальної та патологічної фізіології тварин.
Захист відбудеться 11.06. 2009 р. о _15-30___ годині на засіданні спеціалізованої вченої ради Д 35.826.01 у Львівському національному університеті ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького за адресою: 79010, м. Львів, вул. Пекарська, 50, аудиторія № 1.
З дисертацією можна ознайомитись у бібліотеці Львівського національного університету ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького за адресою: 79010, м. Львів, вул. Пекарська, 50.
Автореферат розісланий 08.05. 2009 р.
Вчений секретар спеціалізованої вченої ради,
доктор ветеринарних наук, професор Головач П.І
ЗАГАЛЬНА ХАРАКТЕРИСТИКА РОБОТИ
Актуальність теми. На сучасному етапі розвитку птахівництва однією з головних проблем цієї галузі є підвищення життєздатності і резистентності поголів'я птиці з метою збереження їх потенціалу продуктивності. Однак, погіршення екологічної ситуації, збільшення кількості технологічних стрес-факторів, вплив природніх і антропогенних чинників стали причиною зниження резистентності організму птиці, розвитку імунодефіцитних станів, порушення мікробіоценозу кишечника, створення неефективного поствакцинального імунітету (Карпуть И.М., 1995; Могиленко А.Ф., 1996; Супрунов О.В., 2000; Edens F.V., 2001; Гунчак В.М., 2004-2005; Коцюмбас І.Я. зі співавт., 2005). Важливим моментом у вирішенні цієї проблеми є з'ясування імунофізіологічних механізмів, що лежать в основі становлення і функціонування місцевого та системного імунітету організму птиці у критичні періоди постнатального розвитку. Крім цього, імунологічна реактивність сьогодні розглядається як одна із визначальних форм пристосувальних реакцій організму до мінливих умов існування (Маслянко Р.П., 2008).
Окремої уваги заслуговують дослідження з вивчення складу нормальної мікрофлори кишечника, за участю якої стимулюється синтез Ig A, природніх антитіл, активність клітин фагоцитарного ряду, синтез мітогенів для імунокомпетентних клітин, що визначає її стимулюючий вплив на імунний статус організму (Панин А.Н., 1998; Fernandez F., 2002; Neish A.S., 2002; Кочер Э., 2006). За іншими даними, порушення мікробіоценозу кишечника вважається основною причиною зниження рівня природної резистентності, погіршення стану здоров'я, втрати продуктивності та є результатом зниження ефективності вакцинації, що в даний час є серйозною проблемою у птахівництві (Chotinsky D., 2003; Dawson K.C., 2005). Цим зумовлена науково-практична актуальність досліджень поглибленого вивчення процесу становлення видового складу мікрофлори кишечника молодняку птиці у критичні періоди росту і розвитку.
Застосування у птахівництві України імунотропних препаратів для попередження імунодефіцитних та імуносупресорних станів організму, що виникають у птиці раннього віку через низьку природну резистентність і несформованість факторів імунного захисту та численних вакцинацій, викликає необхідність їх наукового обгрунтування. Більшість досліджень такого плану присвячена вивченню впливу пробіотиків на організм птиці з метою підвищення його функціональної активності, життєздатності та продуктивних показників. Що ж стосується імуномодуляторів то, як засвідчують літературні дані, таких досліджень на птиці проводилося значно менше (Guillot J.F., 1997; Erdogan Z., 1999; Каблучеева Т.Н., 2000; Коренева Ж.Б., 2001; Иванова А.Б., 2002; Ніщеменко М.П., 2005-2006; Влізло В.В., 2007; Семен І.С. зі співавт., 2007). Особливо маловивченим залишається питання застосування комплексних препаратів молодняку птиці у ранньому віці, які володіють імуномодулюючими властивостями та забезпечують прискорення імунної відповіді при вакцинації. Вирішення цього питання було покладене в основу дисертаційної роботи.
Зв'язок роботи з науковими програмами, планами, темами. Дисертаційна робота є розділом наукової тематики кафедри патологічної фізіології Львівського національного університету ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З.Гжицького „Вивчити роль функціонального стану органів травлення тварин і птиці у формуванні локального і системного імунітету та розробити способи його корекції при імунодефіцитних станах організму” (номер державної реєстрації 0101U012779).
Мета і завдання дослідження. Мета - зґясувати фізіолого-біохімічні механізми формування та регуляції клітинних і гуморальних факторів імунітету курчат у критичні періоди росту і розвитку та після вакцинації, виявити вікові особливості становлення мікробіоценозу і рівня ферментативних процесів у кишечнику, обгрунтувати застосування нових комплексних імуномодуляторів для попередження імуносупресорних станів організму птиці після вакцинації.
Відповідно до мети були поставлені такі завдання:
- встановити фізіологічний статус та стан природної резистентності організму молодняку птиці у 10-, 30-, 45-, 60-, 90- і 120-добовому віці;
- дослідити функціональну активність Т- і В-системи імунітету у різні критичні періоди постнатального розвитку курчат;
- дослідити видовий склад мікрофлори тонких і товстих кишок молодняку птиці у критичні вікові періоди;
- дослідити активність гідролаз (протеїназ, дипептидаз, амілази і ліпази) вмісту і слизової оболонки тонких кишок, її ультраструктуру у курчат різного віку;
- визначити фізіологічний статус організму, показники природної резистентності та стан Т- і В-системи імунітету курчат різного віку після вакцинації;
- вивчити особливості формування гуморальних і клітинних факторів імунітету, рівня неспецифічної резистентності організму курчат різного віку при згодовуванні метіфену і метіфену з аскорбіновою кислотою на тлі вакцинації.
Об'єкт досліджень: імунофізіологічні процеси в організмі, мікробіологічні та ферментативні процеси в тонких і товстих кишках курчат у критичні періоди онтогенезу, після вакцинації та на тлі згодовування метіфену і разом з аскорбіновою кислотою.
Предмет досліджень: показники фізіологічного стану організму, клітинні і гуморальні фактори природної і специфічної резистентності, мікрофлора кишечника, активність ферментів та ультраструктура слизової оболонки тонких кишок, маса тіла курчат у різні вікові періоди розвитку та при застосуванні метіфену і разом з аскорбіновою кислотою.
Методи досліджень: фізіологічні, клінічні, гематологічні, біохімічні, імунологічні, мікробіологічні, електронномікроскопічні та статистичні.
Наукова новизна одержаних результатів. Вперше проведено комплексне дослідження фізіологічних та імунологічних показників, що характеризують функціональний стан організму, клітинні і гуморальні фактори природної резистентності та імунологічної реактивності молодняку птиці у критичні періоди росту і розвитку, а також при вакцинації та застосуванні метіфену і разом з аскорбіновою кислотою. Зґясовано вікові особливості формування біоценозу кишечника, становлення порожнинного і пристінкового травлення у тонких кишках, досліджено ультраструктуру слизової оболонки кишечника курчат різного віку.
Показано імуносупресорний вплив вакцинації на клітинні і гуморальні фактори імунітету, резистентність та фізіологічний стан організму. Вперше встановлено стимулювальний вплив метіфену з аскорбіновою кислотою на функціональну активність Т- і В-системи імунітету, бактерицидну і лізоцимну активність сироватки крові та фагоцитарну активність нейтрофілів. Встановлено, що комплексна імуномодулююча дія препаратів проявляється на стан рецепторного апарату мембран Т- і В-лімфоцитів, змінюючи їх функціональну активність.
Наукова новизна отриманих результатів підтверджена патентом на корисну модель №36497 „Спосіб підвищення захисту організму молодняку птиці при вакцинації” від 27.10.2008 року.
Практичне значення одержаних результатів. Встановлені особливості формування факторів імунітету та природної резистентності організму молодняку птиці у критичні вікові періоди дозволили визначити нові підходи до оцінки життєздатності і захисного потенціалу курчат у ранній період росту і розвитку. Отримані дані щодо становлення мікрофлори кишечника, а також рівня ферментативних процесів у вмісті та слизовій оболонці тонких кишок розширюють і поглиблюють сучасні знання про роль травної системи у формуванні місцевого та системного імунітету у критичні вікові періоди ремонтного молодняку птиці. Матеріали дисертаційної роботи використано для розробки патенту на корисну модель №36497 „Спосіб підвищення захисту організму молодняку птиці при вакцинації” від 27.10.2008 року. імунітет курча гуморальний клітинний
Основні положення дисертаційної роботи використовуються в наукових дослідженнях та в навчальному процесі кафедр Національного університету біоресурсів і природокористування України, Південного філіалу Національного університету біоресурсів і природокористування України “Кримський агротехнологічний університет”, Дніпропетровського державного аграрного університету, Сумського національного аграрного університету. Результати виконаних досліджень апробовані в умовах птахофабрик КТ ” ЕГО“ Жовківського району Львівської області, ТзОВ “Західагропродукт” Теребовлянського району Тернопільської області, ФГ “Захід-Птиця” Пустомитівського району Львівської області, ДП ”Авангард-Агро” ЗАТ “Авангард” Тисменецького району Івано-Франківської області.
Особистий внесок здобувача. Автор особисто провів аналіз літератури за темою дисертації, виконав весь обсяг запланованих досліджень, самостійно провів статистичну обробку отриманих результатів, їх узагальнення та інтерпретацію й виклав у вигляді наукових положень дисертаційної роботи. Аналіз та узагальнення наукових положень і висновків дисертаційної роботи здійснено з допомогою наукового керівника.
Апробація результатів досліджень. Матеріали дисертації доповідались на: міжнародній науково-практичній конференції ”Сучасні проблеми біохімії, фізіології та функціональної морфології продуктивних тварин” (Дніпропетровськ, 24-25 листопада 2007 року), науково-практичній конференції молодих науковців і аспірантів "Сучасний стан тваринництва та перспективи його розвитку" (Львів,7-8 грудня 2006 року), науково-практичній конференції Всеукраїнського товариства ветеринарних патологів з міжнародною участю “Сучасні проблеми здоров'я і патології тварин” (Львів, 4-6 жовтня 2006 року), міжнародній науково-практичній конференції “Інноваційність розвитку сучасного аграрного виробництва” (Львів, 18-19 жовтня 2007 року; 23-24 жовтня 2008 року), міжнародній науково-практичній конференції „Молоді вчені у вирішенні проблем аграрної науки і практики” (Львів, 12-13 червня 2008 року).
Публікації. За матеріалами дисертаційної роботи опубліковані 9 наукових праць, серед яких 8 статей у фахових виданнях, що входять до переліку, затвердженого ВАК України, отримано патент України на корисну модель.
Структура і обсяг роботи. Дисертація викладена на 192 сторінках комп'ютерного тексту, який формують такі розділи: вступ, огляд літератури, матеріали та методи досліджень, результати власних досліджень, аналіз і узагальнення, висновки, пропозиції виробництву, список літературних джерел та додатки, містить 31 таблицю та 14 фотографій. У список літератури включено 362 джерела, з них 211 - українською і російською та 151 іноземними мовами.
ОСНОВНИЙ ЗМІСТ РОБОТИ
Загальна методика і основні методи досліджень.
Дисертаційна робота виконана протягом 2004-2007 років на кафедрі патологічної фізіології Львівського національного університету ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З.Гжицького. Кількісний склад мікрофлори кишечника визначали на базі філіалу кафедри - в лабораторії бактеріологічного контролю якості та безпечності ветеринарних препаратів Державного науково-дослідного контрольного інституту ветеринарних препаратів та кормових добавок. Імунологічні показники організму птиці визначали на базі філіалу кафедри - у лабораторії імунології Інституту біології тварин УААН. Дослідження ультраструктури слизової оболонки тонких кишок птиці виконано у лабораторії електронної мікроскопії Львівського національного університету імені І.Я.Франка.
Досліди виконані на клінічно здоровому молодняку птиці кросу ISA BROWN в умовах птахофабрики КТ ”ЕГО“ (с.Гряда Жовківського району Львівської області). Умови утримання і годівлі птиці відповідали загальноприйнятій технології. Проведено дві серії дослідів.
Перша серія включала один дослід, метою якого було вивчити особливості фізіологічного стану організму, фактори клітинного і гуморального імунітету, зміни кількісного складу основних мікроорганізмів кишечника, активність ферментів порожнинного і пристінкового травлення, ультраструктуру слизової оболонки тонких кишок птиці у критичні періоди онтогенезу.
Для проведення досліду було підібрано групу ремонтного молодняку птиці 10-добового віку у кількості 350 голів в яких семикратно у різні вікові періоди (10-, 30-, 45-, 60-, 90-, 120- і 365-та доба) відбирали матеріал для досліджень. Для досліджень використовували кров, вміст та слизову оболонку тонких і товстих кишок. Зразки матеріалу отримували від пґяти голів кожного вікового періоду після забою птиці. Окремо відбирали зразки слизової оболонки кишечника для дослідження ультраструктури. Отримані показники різних вікових груп курчат порівнювали з показниками дорослої птиці. Перед початком і у період проведення дослідів проводили клініко-фізіологічне обстеження птиці.
Метою другої серії досліджень було вивчити вплив метіфену і метіфену з аскорбіновою кислотою на формування імунного захисту організму курчат після вакцинації проти хвороби Ньюкасла. Для цього було сформовано три групи молодняку птиці (контрольну і дві дослідні, по 90 голів у кожній), яким у 10 добовому віці інтраназально вводили живу вірус вакцину штаму “Ла Сота”, вироблену на Сумській біофабриці. Дослідні перша і друга групи курчат, починаючи з 3-ї до 30-ї доби життя додатково з основним раціоном отримували відповідно метіфен (280 мг/кг корму) та метіфен з аскорбіновою кислотою (280 мг/кг і 50 мг/кг корму) у дозах запропонованих В.М.Гунчаком (2005).
Для досліджень відбирали зразки крові від пґяти голів курчат у 10-, 30-, 45-, 60-, 90- і 120-добовому віці після забою.
У крові визначали: кількість еритроцитів - фотоелектроколориметричним методом (Гаврилець Є.С., Демчук М.В., 1966); вміст гемоглобіну - за методом Л.М. Піменова (1975); кількість лейкоцитів - у камері з сіткою Горяєва (Васильева А.В., 1948); концентрацію білка - за методом Лоурі (1951); концентрацію глюкози - глюкозооксидазним методом (1964); активність аспартатамінотрансферази (АсАТ) (К.Ф.2.6.1.1.) і аланінамінотрансферази (АлАТ) (К.Ф. 2.6.1.2.) (Капетанакі К.Г., 1962); фагоцитарну активність (ФА) нейтрофілів - за методом В.С. Гостева (1950); фагоцитарний індекс (ФІ); фагоцитарне число (ФЧ) або інтенсивність фагоцитозу; загальну кількість Т-лімфоцитів (Е-РУЛ) - визначали в реакції спонтанного розеткоутворення з еритроцитами вівці (Jondal М., 1972), їх субпопуляції - Т-хелпери (Суровас В.М., 1980); кількість "активних" РУЛ (Wansbrough-Jones M. et al, 1979); кількість Т-клітин з переважно супресорною активністю Т-супресори (ТФЧ Т-лімфоцити); В-лімфоцити (ЕАС-РУЛ) - в реакції комплементарного розеткоутворення з еритроцитами вівці (Чернушенко Е.Ф. и соавт., 1979). При підрахунку кількості Т- і В-лімфоцитів та їх регуляторних субпопуляцій на фіксованих і фарбованих мазках крові визначали лімфоцити з низькою, середньою і високою щільністю рецепторів.
У сироватці крові визначали: лізоцимну активність (ЛАСК) - фотонефелометричним методом (Дорофейчук В.Г., 1968); бактерицидну активність (БАСК) за методом Ю.М. Маркова (1968); циркулюючі імунні комплекси (ЦІК) середньої молекулярної маси (Чернушенко Е.Ф. и соавт., 1981), загальні імуноглобуліни - за методом И.П. Кондрахина (1985).
У вмісті кишечника визначали загальну амілолітичну активність за методом Сміта-Роя (1949), протеїназну - за методом Кунітца (1973), ліполітичну - за методом Тітца (1997), кількісний склад мікрофлори кишечника за загальноприйнятими методиками та ідентифікували за визначником Бергі (1980). У слизовій оболонці тонких кишок визначали дипептидазну активність - за методом Тарвид, Кушак (1983) та її ультраструктуру.
Статистичну обробку отриманих результатів проводили на персональному комп'ютері за ліцензованою програмою MS Excel 97. Оцінку вірогідності здійснювали за критерієм Стьюдента (t). Вірогідною вважали різницю при р<0,05-0,001 порівняно з дорослою птицею, а в другій серії - з вихідним віковим періодом.
РЕЗУЛЬТАТИ ДОСЛІДЖЕНЬ ТА ЇХ ОБГОВОРЕННЯ
Фізіологічний стан та резистентність організму птиці у критичні вікові періоди.
Встановлено, що загальний стан організму курчат, їх поведінка і рухова активність у різні критичні періоди росту були адекватними для даного віку птиці.
Основні показники фізіологічного стану організму птиці засвідчили, що у крові 10-добових курчат кількість еритроцитів була меншою на 12 % (р<0,025), а у 60- і 90-добовому віці на - 15 % (р<0,01) більшою, ніж у однорічних курей. Вміст гемоглобіну в крові курчат не мав вірогідних відхилень. Кількість лейкоцитів у крові курчат 10-, 30- і 45-добового віку була меншою відповідно на 21, 19 і 15 % (р<0,01-0,05) порівняно з дорослою птицею. Вміст загального білка у крові курчат на 10 добу життя був на 17 % (р<0,001) нижчий, а на 30 добу на 20 % (р<0,01) вищий у порівнянні з його рівнем у крові однорічних курей. Активність трансаміназ (АсАТ і АлАТ) підвищувалася у крові курчат 10-90-добового віку у 2,4-1,8 раза (р<0,001-0,05), а на 120 добу знаходилася в межах величин дорослої птиці.
Таблиця
Вікова динаміка показників природної резистентності організму курчат, (М±m, n=5)
Вік, доба |
ЛАСК, % |
БАСК, % |
ФА, % |
ФІ, од |
ФЧ, од |
|
10 |
19,97±1,07* |
19,83±0,97 |
21,18±1,42* |
10,96±0,74 |
2,34±0,20* |
|
30 |
17,26±1,03*** |
18,10±0,84** |
24,20±1,42 |
11,49±0,67 |
2,76±0,14 |
|
45 |
15,67±1,06**** |
20,86±0,96 |
31,75±1,36* |
9,89±0,24** |
3,20±0,14 |
|
60 |
23,25±1,49 |
22,15±1,08 |
34,21±1,65*** |
9,76±0,53* |
3,40±0,24 |
|
90 |
24,83±1,24 |
23,68±1,18 |
36,62±1,17**** |
11,11±0,40 |
4,01±0,25*** |
|
120 |
25,10±1,35 |
24,84±1,16 |
37,40±1,50**** |
10,68±0,52 |
4,07±0,14**** |
|
365 |
23,74±1,18 |
22,58±1,14 |
26,20±1,59 |
11,22±0,34 |
2,93±0,15 |
Примітка: *р - < 0,05; **р - < 0,025; ***р - < 0,01; ****р - < 0,001
На початку постнатального онтогенезу встановлено послаблення неспецифічної резистентності організму молодняку птиці, яке супроводжувалося зниженням ЛАСК з 10 до 45 доби життєвого періоду на 16-37 % (р<0,05-0,001), БАСК з 10 до 30 доби - на 13-20 % (р<0,025), а також ФА і ФЧ нейтрофілів у 10-добових курчат - на 20 % (р<0,05) порівняно з однорічними курми, що підтверджує наявність другого і третього критичних імунологічних періодів (Бабина М.П., 1998; Сімонов М.Р., 2006). У 60- і 120-добовому віці ЛАСК і БАСК курочок були в межах величин дорослої птиці, а ФА і ФЧ нейтрофілів вищими на 39 і 42 % (р<0,001) відповідно.
Проведені дослідження показують, що у крові курчат 10-добового віку відносна кількість Т- і В-лімфоцитів була такою, як у крові однорічної птиці. Стан рецепторного апарату плазматичної мембрани Т-лімфоцитів та їх субпопуляцій у курчат 10-добового віку свідчить про меншу на 16 % (р<0,01) кількість Т-хелперів з низькою і більшою на 10 % (р<0,001) кількістю з середньою щільністю рецепторів на мембрані клітини, порівняно з дорослими курми. Водночас у крові курчат даного віку була більша на 48 % (р<0,025) кількість теофілін-чутливих Т-лімфоцитів, ніж у 365-добових курей. Зниження кількості Т-хелперів при зростанні кількості Т-супресорів в крові курчат даного віку може свідчити про зниження антитілогенезу і розвиток імунодепресивного стану (ІДС) організму птиці. На це вказує також зниження на 17 % (р<0,05) кількості низькоавідних В-лімфоцитів у крові 10-добових курчат.
Такий стан рецепторного апарату плазматичних мембран Т-лімфоцитів та їх регуляторних субпопуляцій і В-лімфоцитів спостерігався також у курчат 30- і 45-добового віку. Зокрема, у ці вікові періоди загальна кількість В-лімфоцитів у крові курчат була меншою від 365-добової птиці на 29 % (р<0,001), а кількість клітин з низькою щільністю рецепторів на мембрані - на 43 % (р<0,01). Це свідчить про знижену здатність організму птиці до активного синтезу захисних антитіл, що зокрема підтверджує нижчий вміст у крові загальних імуноглобулінів - на 73 % (р<0,001) та ЦІК - на 33 % (р<0,025), ніж у наступні вікові періоди.
У 60- і 120-ти добовому віці встановлено відносно вищий рівень клітинних і гуморальних факторів імунітету у крові молодняку птиці та зміну функціональної активності рецепторного апарату Т- і В-лімфоцитів у бік збільшення кількості загальних і низькоавідних форм клітин у порівнянні до їх рівня у дорослих курей. Оскільки В-лімфоцити є попередниками плазматичних клітин (імуноцитів), які продукують антитіла, то збільшення їх загальної кількості у крові курчат впродовж 60-120 доби життєвого періоду вказує на підвищений синтез гуморальних факторів захисту, насамперед антитіл, що нами виявлено у курчат даного віку.
Отже, на підставі аналізу отриманих результатів можна зробити висновок про те, що початкові критичні періоди постнатального розвитку організму курчат зумовлені низьким рівнем первинних факторів захисту та порушенням афідності рецепторного апарату імунокомпетентних клітин, яке призводить до виникнення фізіологічного імунодефіциту. Наступні критичні періоди розвитку молодняку птиці (60-120-доба життя) супроводжуються стабільно високим рівнем гуморальних і клітинних факторів резистентності організму, збільшенням кількісного складу імунокомпетентних клітин та перерозподілом афідності рецепторного апарату Т- і В-лімфоцитів.
Кількісний і видовий склад мікрофлори кишечника молодняку птиці у критичні періоди постнатального онтогенезу.
Дослідження видового складу мікроорганізмів проксимального відділу тонких кишок показало, що у 10-добових курчат кількість Е.coli була на два порядки вищою, ніж мікробів роду Lactobacillus і на п'ять порядків вищою порівняно з вмістом не ідентифікованих мікроорганізмів. Починаючи з 30-ї до 90-ї доби життя птиці кількість Е.coli вірогідно зростає від 2,72·108 до 5,16·108, а на 120 добу - до 14,42·109 (р<0,001) мікроорганізмів і фактично з четвертого місяця життя її вміст стабілізується.
Подібно до кишкової палички змінювався вміст мікроорганізмів роду Lactobacillus. На 30 добу життя курчат їх кількість становила 2,20·105, на 45 добу - 1,28·106, на 60 добу - 2,16·106, на 90 добу - 2,04·106 і на 120 добу - 5,02·107 (р<0,001) лактобацил після чого процес наростання вказаних мікроорганізмів припинявся, досягаючи у 365-добовому віці 5,16·107 колонієутворюючих одиниць у 1см3 вмісту.
У проксимальному відділі тонких кишок 30-добових курчат вперше появляються мікроорганізми роду Bacillus - 12,60±1,34 у 1см3 вмісту. У наступні вікові періоди (45-120 діб) їх кількість зростала від 50,20±1,09 до 78,80±1,30 (р<0,001) і процес обсіменіння продовжувався до 365-добового віку 1,14·102 колонієутворюючих одиниць у 1 см3 вмісту.
Кількість не ідентифікованих мікроорганізмів у 10-30-добових курчат становила 2,14·102 - 3,12·102 мікробів у 1 см3 вмісту, на 45-60 добу життя їх кількість зростала на порядок і дорівнювала відповідно 2,33·103 і 3,54·103 (р<0,001), а на 90-120 добу - на два порядки - відповідно 3,72·104 і 6,04·104 (р<0,01), порівняно з початком досліду та відповідала їх вмісту у 365-добової птиці, що свідчить про закінчення процесу формування мікрофлори кишечника.
У дистальному відділі тонких кишок збільшення загальної кількості мікроорганізмів у 30-добових курчат відбувалася за рахунок наростання Е.coli, де їх кількість становила (3,24±0,08)·108 проти (1,28±0,08)·107, мікробів роду Lactobacillus - (4,72±0,13)·105 проти (2,96±0,11)·105 і роду Bacillus - (2,75±0,05) ·10, а також не ідентифікованих мікроорганізмів - (3,12±0,23)·102 проти (1,79±0,14)·102 у курчат 10-добового віку. У 45-60-добових курчат кількість мікробів зростала в основному за рахунок лактобацил (4,94·106 - 4,24·107), бацил (2,60·102 - 2,08·102) та не ідентифікованих мікроорганізмів (5,07·103 - 4,99·103), у 90-добових птахів кількість мікроорганізмів дещо зменшувалася порівняно з 60 добою. У 120-добовому віці їх кількість у кишечнику курочок становила: Е.coli - 18,50·109 проти 17,62·109, рід Lactobacillus - 5,36·107 проти 6,06·107, рід Bacillus 1,32·102 проти 1,40·102, не ідентифіковані - 5,86·104 проти 6,89·104 колонієутворюючих одиниць у 1 см3 вмісту у 365-добових курей.
Основними мікроорганізмами товстих кишок 10-добових курчат були Е.coli, рід Lactobacillus і не ідентифіковані мікроби, де їх кількість становить відповідно (4,32±0,13)·106, (1,06±0,05)·106 і (2,11±0,15)·103 в 1 см3 вмісту. Наростання кількості мікроорганізмів у 30- добових курчат відбувалося за рахунок лактобацил і бацил та, в меншій мірі, за рахунок кишкової палички і не ідентифікованих мікроорганізмів, а на 45 добу - за збільшення кількості бацил та не ідентифікованих мікроорганізмів і, в меншій мірі, Е.coli та роду Lactobacillus, де їх виявилось відповідно (4,94±0,16)·107 і (3,60±0,18)·108 мікроорганізмів в 1 см3 вмісту, а у 120-добовому віці - за рахунок інтенсивного розмноження Е.coli (6,44±0,08)·109, роду Lactobacillus (2,34±0,42)·1010 і роду Bacillus (4,36±0,11)·103. Ще більшу їх кількість виявлено у вмісті товстих кишок однорічних курей, зокрема кишкової палички - (8,12±0,13)·109, лактобацил (14,30±0,12)·109, бацил (4,72±0,13)·103 і не ідентифікованих мікроорганізмів (6,99±0,17)·105 колонієутворюючих одиниць в 1 см3 вмісту.
Отже, на підставі проведених досліджень встановлено, що формування мікробіоценозу у порожнині проксимального і дистального відділів тонких кишок стабілізується на 120 добу життя молодняку птиці, тоді як у товстих кишках відбувається впродовж всього онтогенезу.
Активність основних ферментів травлення та ультраструктура слизової оболонки тонких кишок молодняку птиці у критичні вікові періоди.
Одержані дані свідчать про те, що у ранньому постнатальному періоді (10 діб) у курчат добре виражене порожнинне травлення білків, про що свідчить активність протеїназ вмісту тонких кишок, яка знаходиться на рівні величини дорослої птиці, зокрема у дванадцятипалій кишці - 19,89±1,90 проти 17,73±0,84; у порожній - 17,16±2,91 проти 15,01±2,00; у клубовій - 15,47±1,33 проти 11,77±1,73 мккат/г білка. На 30-90 добу інтенсивність гідролізу білка у тонких кишках курочок вірогідно зростала порівняно з 10-добовою птицею і була вищою як у дорослих курей. Найвищу протеїназну активність спостерігали у курчат 45-60-добового віку. У ці вікові періоди активність протеїназ вмісту дванадцятипалої кишки зростала проти попереднього періоду досліджень на 18 % (р<0,025), а у порожній і клубовій кишках - на 30 % (р<0,01). У 120-добових курочок відзначено таку ж протеїназну активність вмісту тонких кишок як у дорослої птиці.
Інтенсивність пристінкового гідролізу дипептидів, на відміну від порожнинного травлення білків, у курчат 10-добового віку значно нижча, ніж у однорічної птиці: у дванадцятипалій кишці - на 29 % (р<0,001), у порожній - на 39 % (р<0,001) і клубовій - 21 % (р<0,001). Починаючи з 30 доби життя курчат дипептидазна активність слизової оболонки тонких кишок різко підвищувалася проти попереднього вікового періоду, а у дванадцятипалій кишці досягала рівня дорослої птиці. Однак, у порожній і клубовій кишках вона була нижчою, ніж у однорічних курей - на 19 % (р<0,001). У наступні вікові періоди (45-120 доба) активність дипептидаз слизової оболонки порожньої і клубової кишок поступово підвищувалася і у 120-добовому віці була на рівні активності у дорослої птиці.
Інтенсивність гідролізу полісахаридів у порожнині тонких кишок курчат раннього постнатального онтогенезу (10-30 доба) виявилася значно нижчою, ніж у дорослої птиці. Зокрема, у 10-добових курчат амілолітична активність вмісту дванадцятипалої кишки нижча на 46 % (р<0,01), у 30-добових - на 31 % (р<0,05), порожньої кишки відповідно - на 47 % (р<0,001) і 37 % (р<0,025), а клубової - на 51 % (р<0,01). У наступні 45-120 діб життя амілолітична активність вмісту тонких кишок знаходилася на рівні однорічної птиці, що може свідчити про підвищену потребу організму курчат у метаболічній енергії в звґязку з його функціональною адаптацією у дані критичні періоди онтогенезу.
Динаміка активності ліпази вмісту тонких кишок курчат у ранньому постнатальному періоді розвитку була подібною до активності амілази. У курчат 10-30-добового віку нами встановлено нижчу ліполітичну активність вмісту дванадцятипалої кишки відповідно на 57 і 54 % (р<0,001), порожньої - на 42 і 44 % (р<0,001), клубової - на 59 і 56 % (р<0,001), порівняно з однорічною птицею. Починаючи з 45-добового віку, активність ліпази вмісту тонких кишок підвищувалася порівняно з попереднім віковим періодом і у курчат 90-добового віку вона була найвищою: у дванадцятипалій і порожній кишках - на 28 % (р<0,05), а у клубовій - на 71 % (р<0,001), що свідчить про достатньо високий рівень гідролізу жирів у порожнині тонких кишок молодняку птиці.
Електронномікроскопічні дослідження слизової оболонки тонкого кишечника птиці 10-, 60- і 120-добового віку показали, що на апікальній поверхні циліндричних клітин знаходиться вузька щіткова облямівка товщиною 1-3 мкм, яка утворена великою кількістю мікроворсинок. Висота кожної мікроворсинки коливалася в межах 1,5-2,0 мкм, з діаметром - 0,08-0,15 мкм. На одному квадратному мікроні поверхні однієї клітини виявлено до 100-150 мікроворсинок (фото 1).
Ультраструктура ентероцитів дванадцятипалої і порожньої кишок мала, характерну для птиці, велику кількість мітохондрій, які розміщені дифузно по всій цитоплазмі (фото 1). Розміри більшості досліджуваних мітохондрій складають від 0,2 до 1 мкм в ширину і до 7 мкм в довжину. Кількість мітохондрій в розрізі ентероцитів дорівнювала в середньому 30-40 шт, проте вона може змінюватись у зв'язку з функціональним станом клітин. Нами встановлено, що у птиці даного віку загальна товщина трьохшарових мембран мітохондрій становить 0,06 мкм. Внутрішні мембрани побудовані у вигляді багаточисельних тонких канальців, які утворені шаром обмежуючої мембрани.
Крім циліндричних клітин, в епітелії тонких кишок птиці різного віку знаходяться келихоподібні клітини, які беруть участь у внутрішньоклітинних процесах утворення і виділення секрету (фото 2). У епітелії слизової оболонки дванадцятипалої та порожньої кишок курей різних вікових груп вони витягнуті вздовж осі клітини. В апікальній частині келихоподібних клітин накопичуються "зрілі" секреторні гранули (фото 3). Їх секреторна поверхня часто збільшується за наявності дуже глибоких складок, які утворені плазматичною мембраною.
Нами виявлено, що по мірі утворення секреторних гранул, мітохондрії, які розміщені в базальній частині клітини, на початку секреторного циклу набухають і перетворюються в гранули зимогену (фото 4). Кількість секреторних келихоподібних клітин в епітелії слизової оболонки тонких кишок молодняку птиці 120-добового віку значно більша, ніж у 10-добових курчат.
Фото 1 Повздовжній переріз епітелію слизової оболонки порожньої кишки 10-добових курчат Ч 4000
Фото 2 Повздовжній переріз епітелію слизової оболонки порожньої кишки 60-добових курчат (процес утворення секрету) Ч 4000
Фото 3 Повздовжній переріз епітелію слизової оболонки дванадцятипалої кишки 120-добових курчат (накопичення зрілих секреторних гранул) Ч 4000
Фото 4 Повздовжній переріз епітелію слизової оболонки порожньої кишки 120-добових курчат (процес утворення секрету) Ч 4000
Фізіологічний статус і резистентність організму курчат при згодовуванні метіфену і метіфену з аскорбіновою кислотою на тлі вакцинації.
Введення вакцини суттєво змінювало поведінку птиці у першу добу досліду, що проявлялося пригніченням загального стану організму, зниженням рухової активності, неохочим поїданням корму. Згодовування курчатам окремо метіфену і разом з аскорбіновою кислотою на тлі вакцинації не проявляло помітного впливу на їх поведінку і загальний стан організму.
Встановлено, що через 20 діб після вакцинації в крові курчат різко знижувалися показники, які характеризують гуморальні і клітинні фактори первинної ланки захисту організму, зокрема ЛАСК і БАСК - на 33 % (р<0,001), ФА, ФІ та ФЧ - відповідно на 29, 21 і 40 % (р<0,01) порівняно з періодом до вакцинації. Імуносупресорна дія вакцинації у ранній період онтогенезу птахів проявлялась на Т-систему імунітету: відносна кількість Т-хелперів у крові 30- і 45-добових курчат зменшувалась на 10 % (р<0,05), а Т-супресорів - збільшувалась відповідно на 66 і 132 % (р<0,001) порівняно з вихідним періодом, що вказує на зниження активності клітинних факторів поствакцинального імунітету. Навпаки, кількість В-лімфоцитів у крові курчат даного віку збільшувалась відповідно на 10 і 16 % (р<0,001), що може свідчити про адекватну імунну відповідь В-системи поствакцинального імунітету на дію антигену та підтверджується високим вмістом загальних імуноглобулінів у крові птиці даного віку.
У наступні вікові періоди (60-120 доби) показники природної резистентності організму та функціональна активність імунокомпетентних клітин Т- і В-системи імунітету були аналогічні, як у вихідний період.
Згодовування курчатам метіфену і метіфену разом з аскорбіновою кислотою покращує фізіологічний стан їх організму на 30 і 45 добу життя, про що свідчить вірогідне зростання кількості еритроцитів і вмісту гемоглобіну в крові. Найхарактернішими ці зміни були у крові курчат другої дослідної групи: кількість еритроцитів і гемоглобіну у них зростали відповідно на 15 і 39 % (р<0,01) порівняно з птицею 10-добового віку.
Отже, отримані результати дозволяють стверджувати про підвищену гемопоетичну функцію кісткового мозку та киснево-транспортну функцію крові при згодовуванні стосованих препаратів, що узгоджується з даними літератури (Гунчак В.М., 2004).
Встановлено, що кількість лейкоцитів, які здійснюють захисну функцію організму, за згодовування препаратів на тлі вакцинації, вірогідно зростала у крові курчат 30-добового віку першої дослідної групи на 7 %, другої - на 22 % (р<0,01), а впродовж 60-120 діб їх кількість була більшою у двох дослідних групах на 22 % (р<0,01) порівняно з початковим віковим періодом.
При згодовуванні курчатам першої і другої дослідних груп стосованих препаратів на тлі вакцинації спостерігалося підвищення ЛАСК відповідно на 17-31 % і 33-52 % (р<0,01) і БАСК - на 33-20 % і на 41-25 % (р<0,05) проти величин активності вихідного періоду.
Клітинні фактори природної резистентності організму молодняку птиці за згодовування метіфену на тлі вакцинації активізувалися на 45-120 доби, тоді як за комплексного введення метіфену з аскорбіновою кислотою - вже на 30-120 доби життя курчат, при цьому ФА нейтрофілів підвищувалася в середньому на 28-63 % (р<0,05-0,001), ФІ - на 27-23 % (р<0,001) і ФЧ -на 44-60 % (р<0,05-0,01) порівняно з 10 добою. Такий синергічний вплив метіфену і аскорбінової кислоти на фактори природної резистентності організму птахів можливо пояснюється їх дією на процеси, які забезпечують ендогенне дихання і фагоцитоз нейтрофілів та посилюють білоксинтезуючу і дезінтоксикаційну функцію печінки.
Комплексне згодовування метіфену і аскорбінової кислоти на тлі вакцинації позитивно впливає на Т- і В-систему імунітету організму курчат різного віку, про що свідчить високий вміст загальних імуноглобулінів, які у крові курчат 30-120-добового віку зростали в середньому у 4,4 і 6,6 раза відповідно, а також підвищенням рівня ЦІК - у 1,5 раза лише на 30 і 45 доби життя, з наступним їх зниженням до рівня вихідного періоду.
Інші результати, одержані в даній серії досліджень, вказують на те, що згодовування курчатам самого метіфену на тлі вакцинації збільшує у 1,12 раза відносну кількість активної субпопуляції Т-лімфоцитів у крові на 45 і 120 доби життя переважно за рахунок середньоавідних клітин. Характерним було збільшення в крові курчат 30-, 45- і 120-добового віку загальних Т-лімфоцитів в середньому у 1,25 раза (р<0,01), та у 30-, 90- і 120-добової птиці Т-хелперів - у 1,27-1,33 раза (р<0,05-0,01) - переважно за рахунок середньоавідних форм клітин тоді як кількість низькоавідних - знижувалася у 1,1 раза (р<0,025) лише у 45-добової птиці. При цьому, нами також виявлено високий вміст Т-лімфоцитів супресорів у крові курчат 10-, 30- і 45-добового віку порівняно з наступними віковими періодами, що може свідчити про недостатній вплив одного метіфену на активність клітинних факторів поствакцинального імунітету. Водночас, відносна кількість В-лімфоцитів при згодовуванні метіфену на тлі вакцинації була значно більшою у крові птиці 30-60- і 120-добового віку, ніж у 10-добових курчат, переважно за рахунок низькоавідних клітин - відповідно у 1,42 і 1,23 раза (р<0,025) і меншою мірою за рахунок високоавідних клітин лише у курчат 30- і 45-добового віку - у 1,4 і 1,45 раза (р<0,025), що може свідчити про стимулюючий вплив метіфену на функціональну активність В-системи імунітету.
Згодовування молодняку птиці метіфену разом з аскорбіновою кислотою на тлі вакцинації сприяло збільшенню у крові курочок 30-, 45-, 90- і 120-добового віку відносної кількості активних Т-лімфоцитів на 9-16 % (р<0,025-0,001) порівняно з 10 добою життя, переважно за рахунок середньоавідних клітин, кількість яких у крові птиці збільшувалась у 1,4-1,8 раза (р<0,01).
Відносна кількість загальних Т-лімфоцитів зростала в крові курчат всіх вікових груп за рахунок збільшення середньоавідних клітин на 44-67 % (р<0,001) та зниження низькоавідних загальних Т-лімфоцитів, яких було менше, ніж на 10 добу на 15-20 % (р<0,025-0,001). Разом з тим, нами відзначено значне збільшення у крові птиці всіх вікових груп відносної кількості теофілін-резистентних Т-лімфоцитів на 24-40 % (р<0,001) порівняно з 10-добовими курчатами, що виникало за збільшення на 16-37 % (р<0,01) Т-хелперів з середньою щільністю рецепторів. Встановлено, що кількість теофілін-чутливих Т-лімфоцитів у крові курчат 30-120-добового віку знижувалась в середньому на 26-50 % порівняно з 10-добовими курчатами.
Комплексне застосування стосованих препаратів на тлі вакцинації сприяє активації В-системи імунітету організму, про що свідчить вірогідне збільшення відносної кількості В-лімфоцитів на 12-23 % (р<0,025) за рахунок збільшення на 20-48 % кількості клітин з низькою і на 20-38 % (р<0,001) з високою щільністю рецепторів на їх мембрані, у порівнянні з птицею 10-добового віку. Отже, аналіз наведених даних доповнює наш попередній висновок про те, що комплексне застосування метіфену з аскорбіновою кислотою, завдяки своїй антиоксидантній і детоксикаційній дії, нормалізує метаболічні умови для функціонування імунокомпетентних клітин організму молодняку птиці у різні періоди після вакцинації.
Загалом, отримані результати цієї серії досліджень дозволяють стверджувати, що згодовування метіфену з аскорбіновою кислотою на тлі вакцинації сприяє підвищенню життєздатності молодняку птиці у критичні періоди постнатального онтогенезу, попереджує виникнення імуносупресорного стану організму після імунізації та забезпечує високий рівень поствакцинального імунітету, що підтверджують прирости маси тіла курчат, які у першій дослідній групі були вищими на 9 % при збереженості поголівґя 97 %, а у другій - на 11,4 % і збереженості поголівґя 99 %, порівняно з вакцинованою птицею без препаратів при збереженості поголівґя 94 %.
Підсумовуючи одержані нами результати, можна зробити висновок, що комплексне застосування метіфену і аскорбінової кислоти володіє не тільки антиоксидантною, але й імуномодулюючою дією, що проявляється через вплив на рецепторний апарат імунокомпетентних клітин Т- і В-систем імунітету організму молодняку птиці.
ВИСНОВКИ
У дисертації відповідно до поставленої мети і завдань досліджень отримано нові дані, які комплексно характеризують фізіологічний стан організму молодняку птиці, рівень неспецифічної резистентності та імунологічної реактивності, зміну кількісного і видового складу основних мікроорганізмів, активність гідролаз та ультраструктуру слизової оболонки кишечника курочок у критичні періоди постнатального розвитку. Досліджено імунофізіологічний статус молодняку птиці у різні вікові періоди після вакцинації проти хвороби Ньюкасла та встановлено стимулюючий вплив метіфену спільно з аскорбіновою кислотою на функціональну активність Т- і В-системи імунітету.
Молодняк птиці 10-45-добового віку характеризується помірною лейкопенією (р<0,001), нижчою лізоцимною і бактерицидною активністю сироватки крові (р<0,01), низьким рівнем фагоцитозу (р<0,025), меншим вмістом в крові загальних імуноглобулінів (р<0,001) і циркулюючих імунних комплексів (р<0,025), малою кількістю активних (р<0,025) і теофілін-резистентних (р<0,01) Т-лімфоцитів та В-лімфоцитів (р<0,01). На 60-120 доби життя ці показники наближалися до рівня дорослої птиці.
Найбільше заселення мікроорганізмами тонких кишок курочок спостерігається з 45- до 90-добового віку: у проксимальній ділянці кишечника воно зростає на один порядок (р<0,001), а у дистальній - на два порядки (р<0,001), в основному за рахунок збільшення роду Lactobacillus, Bacillus та не ідентифікованих мікроорганізмів. У 120-добовому віці формування біоценозу тонких кишок в основному завершується. У товстих кишках склад мікроорганізмів відрізняється кількісно від такого у тонких кишках. Найменша їх кількість виявлена у курочок 10-45-добового віку, на 60 і 90 добу вона зростає на один порядок, переважно за рахунок Е.соlі та роду Lactobacillus, а у 120-добовому віці - Е.соlі, роду Lactobacillus і Bacillus, проте у однорічної птиці їх кількість виявилась ще більшою, в основному за наростання не ідентифікованих мікроорганізмів.
У критичні періоди онтогенезу птиці неоднаково змінюються темпи порожнинного і пристінкового травлення у тонких кишках, про що свідчить активність ферментів вмісту і слизової оболонки:
- у курчат 10-добового віку протеїназна активність вмісту дванадцятипалої, порожньої та клубової кишок суттєво не відрізняється від активності дорослих курей, а на 30-90 добу життя курочок вона перевищує її на 18-40 % (р<0,001);
- дипептидазна активність слизової оболонки тонких кишок 10-добових курчат нижча на 29-39 % (р<0,001), ніж у дорослої птиці, а з 30 доби вона поступово підвищується, досягаючи у 120-добовому віці активність дорослих курей;
- активність амілази і ліпази вмісту тонких кишок курчат 10-30-добового віку нижча відповідно на 31-46 % і 50-57 % (р<0,001), на 45-60 доби життя вона знаходиться на рівні, а у 90-120-добових курчат перевищує його на 28 і 40 % (р<0,001) у дорослої птиці.
Електронномікроскопічними дослідженнями слизової оболонки тонких кишок курчат 10-, 60- і 120-добового віку встановлено, що на одному мікроні поверхні циліндричної клітини знаходиться від 100 до 150 мікроворсинок, висотою 1,5-2,0 мкм і діаметром - 0,08-0,15 мкм. Кількість мітохондрій в ентероцитах дванадцятипалої і порожньої кишок курчат дорівнює в середньому 30-40 шт, розміри яких складають 0,2 - 1,0 мкм в ширину і до 7,0 мкм в довжину. У молодняку птиці 120-добового віку виявлено значно більшу кількість секреторних клітин епітелію слизової оболонки тонких кишок, ніж у 10-добових курчат.
Одноразова інтраназальна вакцинація курчат 10-добового віку проти хвороби Ньюкасла викликає у них імуносупресорний стан організму на 30 і 45 добу життя, що призводить до виникнення лейкоцитозу, зниження лізоцимної і бактерицидної активності сироватки крові (р<0,001), фагоцитарної активності нейтрофілів (р<0,01), зменшення у крові відносної кількості Т-лімфоцитів хелперів (р<0,05) при одночасному збільшенні кількості Т-лімфоцитів супресорів (р<0,001), В-лімфоцитів (р<0,01) і загальних імуноглобулінів (р<0,001), однак не сприяє створенню стійкого поствакцинального імунітету в організмі птиці у наступні вікові періоди. Збереженість курчат становила 94 %.
Згодовування курчатам метіфену на тлі вакцинації викликає на 30 і 45 добу життя підвищення лізоцимної та бактерицидної активності сироватки крові (р<0,01), фагоцитарної активності нейтрофілів (р<0,001), сприяє збільшенню в крові вмісту загальних імуноглобулінів (р<0,001) і циркулюючих імунних комплексів (р<0,025), кількості Т-лімфоцитів загальних (р<0,01), теофілін-резистентних з середньою щільністю рецепторів (р<0,05-0,01) і В-лімфоцитів з середньою (р<0,025) і низькою щільністю рецепторів на мембрані клітин (р<0,01) проте не забезпечує створення ефективного поствакцинального імунітету в організмі курчат 60-120-добового віку. Середньодобовий приріст маси тіла курчат даної групи був на 9 % вищий, ніж у вакцинованих курчат без препарату. Збереженість птиці становила 97 %.
Комплексне застосування метіфену з аскорбіновою кислотою попереджує імуносупресорний вплив імунізації на організм курчат 30- і 45-добового віку та сприяє створенню поствакцинального імунітету. У крові птахів всіх вікових груп підвищується лізоцимна і бактерицидна активність сироватки крові (р<0,001), інтенсивність фагоцитозу (р<0,001), збільшується вміст загальних імуноглобулінів (р<0,001) і циркулюючих імунних комплексів (р<0,025), відносна кількість активних (р<0,025-0,001), загальних (р<0,001) і теофілін резистентних (р<0,001) Т-лімфоцитів, а також В-лімфоцитів (р<0,025) при одночасному зниженні Т-лімфоцитів супресорів (р<0,001) та підвищується їх функціональна активність за рахунок збільшення рецепторної здатності клітин. Прирости маси тіла курчат даної групи були на 11,4 % вищі, ніж у вакцинованих курчат без препаратів. Збереженість поголів`я птиці становила 99 %.
ПРОПОЗИЦІЇ ВИРОБНИЦТВУ
1. З метою підвищення життєздатності молодняку птиці та попередження імунодепресивних станів у критичні періоди росту і розвитку, усунення імуносупресорної дії вакцинації на організм, рекомендується згодовувати курчатам з 3-ї до 30-ї доби життя метіфен у дозі 280 мг/кг корму разом з аскорбіновою кислотою у дозі 50 мг/кг корму.
2. Одержані результати з оцінки функціонального стану імунної системи і життєздатності організму птахів у різні критичні періоди онтогенезу пропонується використовувати в навчальних програмах для студентів вищих навчальних закладів ветеринарного і біологічного профілю та для спеціалістів позадипломної освіти з курсу “Ветеринарна імунологія”, “Ветеринарна мікробіологія” та “Ультраструктура і особливості функціонування травної системи у птахів”.
СПИСОК ПРАЦЬ, ОПУБЛІКОВАНИХ ЗА ТЕМОЮ ДИСЕРТАЦІЇ
1. Пасічна Ю.Я.Активність гідролаз травних органів курей-несучок при внесенні у раціон біомаси дріжджів Phaffia rhodozyma та ферментного препарату „Ровабіо” / Ю.Я.Пасічна, В.А.Колотницький, В.Г.Стояновський // Вісник Дніпропетровського державного аграрного університету. Дніпропетровськ, 2005. №2. С. 152-156. (Дисертант брав участь в організації та проведенні досліду, написанні статті, провів статистичну обробку даних та їх аналіз).
2. Колотницький В.А. Вікові особливості порожнинного і пристінкового травлення у тонких кишках ремонтного молодняку птиці / В.А.Колотницький, В.Г.Стояновський // Сільський господар. Львів, 2006. №3-4 (121-122). С. 14-17. (Дисертант організував дослід, провів дослідження, обробку даних та їх аналіз, брав участь в написанні статті).
Подобные документы
Огляд методів визначення статі молодняку свійської птиці. Визначення статі добового молодняку птиці японським методом (вентсексинг). Визначення статі курчат за швидкістю росту оперення (федерсексинг). Порівняльний аналіз різних методів сексування курчат.
курсовая работа [2,9 M], добавлен 14.04.2011Роль екологічних факторів у садівництві: світло, грунт, рельєф, температура, вода. Вікові періоди життя плодових культур та загальні принципи їх вирощування. Стан та перспективи розвитку плодівництва в Україні. Особливості агротехніки інтенсивних садів.
курсовая работа [62,8 K], добавлен 26.07.2011- Організація вирощування ремонтного молодняку в умовах ПП "Радівське" с. Радівка Калинівського району
Закономірності росту органів у різні вікові періоди тварин і використання їх при вирощуванні ремонтного молодняку. Фізіологічні особливості відтворювальної здатності телиць. Первинна обробка молока в господарстві. Механізація основних виробничих процесів.
курсовая работа [559,4 K], добавлен 07.06.2013 Надходження поживних речовин в рослини і їх винос з врожаєм сільськогосподарських культур. Ставлення рослин до умов живлення в різні періоди росту. Фізіологічні основи визначення потреби в добривах. Складання системи добрив під культури в сівозміні.
дипломная работа [73,6 K], добавлен 20.11.2013Опис практичного досвіду селекції молочного скотарства. Аналіз основних показників ознак молочної продуктивності корів голштинської породи залежно від типу інтенсивності формування організму. Вплив прискорених процесів під час росту на продуктивність.
статья [25,9 K], добавлен 07.11.2017Дослідження волосяного покриву, шкіри, її похідних і окремих систем організму. Проведення епізоотологічних, клінічних та лабораторних досліджень у курки. Аналіз хвороби "кнемідокоптоз птиці": діагностика, лікування, заходи боротьби та профілактики.
история болезни [31,8 K], добавлен 31.01.2012Характеристика молочних порід корів. Особливості відтворення поголів'я. Технологія виробництва молока у спеціалізованих господарствах. Складання раціонів годівлі корів на зимовий та літній періоди. Визначення потреби в кормах на періоди годівлі.
курсовая работа [74,8 K], добавлен 25.11.2015Особливості визначення епізоотичної ситуації та аналіз динаміки рівня антитіл у курей АТЗТ "Лисичанська птахофабрика" після щеплення інактивованою вакциною проти МПВІ на фоні циркуляції епізоотичного штаму вірусу. Обґрунтування необхідності вакцинації.
доклад [220,7 K], добавлен 01.02.2010Умови виникнення інфекційних хвороб тварин, залежність сприйнятливості тварин до інфекції від стану імунітету та неспецифічних чинників захисту. Вірусний трансмісивний гастроентерит свиней. Респіраторні кишкові захворювання в промисловому виробництві.
контрольная работа [218,9 K], добавлен 20.07.2015Біологічні особливості качок і індиків: яйцекладка, породні групи. Способи вирощування каченят і індиченят на м’ясо (догляд, годування). Розрахунок роботи птахофабрики: продуктивність на середню несучку, вихід курчат, використання кормів в раціонах.
курсовая работа [66,2 K], добавлен 25.03.2011