Исследование системы крови животных. Определение количества лейкоцитов

Обзор особенностей подсчета форменных элементов крови у птиц, методов и клинического значения определения количества лейкоцитов. Анализ морфологии лейкоцитов крови у животных разных видов, способов подсчета количества тромбоцитов, фиксации мазков крови.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид реферат
Язык русский
Дата добавления 23.12.2011
Размер файла 24,5 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Размещено на http://www.allbest.ru/

ИССЛЕДОВАНИЕ СИСТЕМЫ КРОВИ

План

1. Методы и клиническое значение определения количества лейкоцитов

2. Показания к исследованию и методы подсчета количества тромбоцитов

3. Особенности подсчета форменных элементов крови у птиц

4. Изготовление, фиксация и окрашивание мазков крови

5. Морфология лейкоцитов крови у животных разных видов

1. Методы и клиническое значение определения количества лейкоцитов

Лейкоциты, или белые кровяные тельца, в организме выполняют прежде всего защитную функцию. В зависимости от форм они участвуют в фагоцитозе, выработке интерферона, лизоцима, прпердина, гистамина и других биологически активных веществ. Лимфоциты играют основную роль в специфических защитных реакциях - формировании клеточного и гуморального иммунитета.

Для подсчета лейкоцитов предложены два метода:

1. Подсчет в счетной камере (ошибка метода +7%).

2. Подсчет в автоматических счетчиках (ошибка +2%).

При подсчете лейкоцитов используют ту же камеру с сеткой Горяева, что и для эритроцитов. Разводят кровь жидкостью Тюрка в меланжере или в пробирке. Состав жидкости Тюрка: 100 мл 3%-го р-ра уксусной к-ты и 1 мл 1%-го р-ра генциан фиолетового или метиленового синего. Ее назначение состоит в том, чтобы разрушить эритроциты и окрасить лейкоциты.

При разведении в меланжере набирают кровь в смеситель для лейкоцитов до метки "0,5" или "1", а до метки "11" - жидкость Тюрка и перемешивают в течение 2-3 мин. Получают разведение соответственно в 10 или 20 раз. Для разведения пробирочным методом в пробирку отмеривают 0,4 мл жидкости Тюрка и в нее вносят 0,02 мл крови, которую набирают капилляром Сали. Содержимое пробирки тщательно перемешивают.

Заполнение счетной камеры проводят также как и при подсчете эритроцитов. Через 1-2 мин., после оседания лейкоцитов на дно камеры, проводят подсчет лейкоцитов в 100 больших неразграфленных квадратах. Расчет абсолютного количества клеток производят по формуле:

X = А.Б/В.Г, где

X - количество лейкоцитов в 1 мкл крови;

А - количество лейкоцитов, подсчитанное в 100 больших квадратах;

Б - степень разведения крови (20);

В - количество маленьких квадратиков в 100 больших квадратах (1600);

Г - объем счетной камеры над маленьким (1/4000 мм3).

Таким образом, формула имеет вид:

X = А*50.

Например, подсчитано 180 лейкоцитов, тогда в абсолютных единицах получаем 9 000 клеток в 1 мкл крови. Для пересчета количества клеток в 1 л (сист. ед. СИ) необходимо результат умножить на 106, т.е. 9 000*106= 9*10%.

Принцип подсчета лейкоцитов посредством автоматических счетчиков такой же как и при определении числа эритроцитов.

В крови здоровых животных и птицы содержится следующее количество лейкоцитов: крупный рогатый скот - 4,5-12,0; овцы - 6,0-14,0; козы - 8,0-17,0; лошади - 7,0-12,0; свиньи - 8,0-16,0; собаки - 8,5-10,5; куры - 20,0-40,0 на 109/л.

Увеличение количества лейкоцитов в крови - лейкоцитоз - может быть физиологическим, медикаментозным и патологическим. Физиологический лейкоцитоз бывает при беременности, после физических нагрузок, после приема корма у плотоядных, при стрессе. Медикаментозный лейкоцитоз наблюдается после парентерального введения животным белковых препаратов, вакцин, сывороток, алкалоидов и т.д.

Патологический лейкоцитоз отмечается при гнойно-воспалительных процессах, сопровождающих целый ряд внутренних болезней: бронхопневмонию, пневмонию, плеврит, перикардит, ретикулоперитонит и др. Выраженный лейкоцитоз наблюдается при многих инфекционных болезнях, лейкозах, хирургической инфекции. Возникает он и при отравлении животных ртутью, мышьяком, передозировке камфары.

Снижение числа лейкоцитов - лейкцитопения - является результатом угнетения органов кроветворения, их истощения, пониженной реактивности организма. Лейкоцитопения развивается в результате инфекционных заболеваний (классическая чума свиней, инфекционный энцефаломиелит лошадей, сальмо- неллез, стахиботриотоксикоз и др.), радиационных поражений, передозировки препаратов (сульфаниламидов, левомецитина, синтомицина и др.). Выявление лейкоцитопении при заболеваниях, для которых характерен лейкоцитоз, указывает на сниженную естественную резистентность организма и тяжелое течение болезни.

2. Показания и методы подсчета количества тромбоцитов

Тромбоциты (кровяные пластинки) участвуют, главным образом, в свертывании крови и защитных реакциях организма. Показаниями для подсчета тромбоцитов является нарушения свертывающей системы крови, а также воздействие ионизирующих излучений на организм животных.

Определение числа тромбоцитов в крови можно проводить следующими методами:

1. Подсчет в камере.

2. В автоматических счетчиках.

Подсчет в камере проводят по методу Хауке. Для этого 0,5 мл 1%-го раствора трилона Б смешивают с 0,5 мл крови (разведение 1:1). Затем в лейкоцитарный меланжер набирают кровь до метки "1", а до метки "11" - 1%-й раствор аммония оксалата (получается разведение крови 1:20). Смеситель встряхивают и оставляют не менее чем на 20 мин для гемолиза эритроцитов. Счетную камеру заправляют общепринятым способом, подсчет тромбоцитов ведут через 5-7 мин в 5 больших квадратах, расположенных по диагонали, которые разделены на 16 маленьких квадратиков. Расчет проводят по формуле:

А*20

X = =А*1000/мкл = А* 10%

80*1/4000

Подсчет тромбоцитов в мазке крови (метод Фонио) проводится на 1000 эритроцитов. Кровь для мазков берут у животных из краевых вен уха. Предварительно на место укола наносят каплю 14%-го раствора магния сульфата для предотвращения склеивания тромбоцитов. Выделившуюся каплю крови смешивают с раствором и изготавливают мазки, которые затем окрашивают по Романовскому. Подсчет производят под иммерсионной системой микроскопа, одновременно считаются тромбоциты и эритроциты. Зная абсолютное количество эритроцитов производят расчет и тромбоцитов. Например: при подсчете на 1000 эритроцитов встретилось 60 тромбоцитов, количество эритроцитов.

В крови здоровых животных и птицы содержится следующее количество тромбоцитов: крупный рогатый скот - 260-700; лошади - 200-500; свиньи - 180300; куры - 32-100 на 10%.

Уменьшение числа тромбоцитов - тромбоцитопения - выявляется при геморрагических диатезах. Данный симптом является ведущим геморрагического синдрома.

Геморрагический диатез (кровоточивость) - выраженная тенденция организма к повторным кровоизлияниям или кровотечениям, наступающим как самопроизвольно, так и под влиянием незначительных травм. При этом кровоточивость может быть как основным проявлением болезни (гемофилия), так и осложнением какого-либо заболевания. Геморрагический диатез - это по сути группа заболеваний и патологических состояний, в основе которых лежат нарушения различных звеньев системы гемостаза: коагуляционного (плазменного), тромбоцитарного и сосудистого.

Наследственные геморрагические диатезы у животных встречаются (или диагностируются) редко, преимущественно у собак, свиней и лошадей. Приобретенные дефекты в системе гемостаза, как правило, множественные и обусловлены разными заболеваниями и патологическими воздействиями: иммунные поражения сосудистой стенки и тромбоцитов, токсико-инфекционные поражения кровеносных сосудов, заболевания печени, действие лекарственных веществ и др. Приобретенные дефекты в системе гемостаза меняются с изменением течения основного заболевания и при разрешении болезни исчезают. При всех геморрагических диатезах ведущим клиническим проявлением является геморрагический синдром, который охватывает все виды синдрома: кровоизлияния различного характера и величины в кожу, подкожную клетчатку, в слизистые оболочки, ткани и полости организма; гематомы и кровотечения при незначительных травмах и хирургических вмешательствах; тромбоцитопения; понижение свертываемости крови (удлинение времени кровотечения). Геморрагический диатез, обусловленный недостаточностью аскорбиновой кислоты (скорбут, цинга), проявляется кровоточивостью десен, образованием на них язв, расшатыванием зубов, опуханием суставов.

Геморрагический синдром развивается при гемофилии, кровопятнистой и лучевой болезнях, остром токсическом и хроническом гепатитах, подпеченоч- ной желтухе, авитаминозах А, С, К, Р, при ряде бактериальных и вирусных инфекций (сибирская язва, пастереллез, чума свиней и плотоядных и др.); при токсикозах и аллергических заболеваниях.

Тромбоцитоз, или увеличение числа тромбоцитов, наблюдается реже и может быть при пневмонии, плеврите, в стадию выздоровления при инфекционных заболеваниях и после хирургических операций.

3. Особенности подсчета форменных элементов крови у птиц

Методы, используемые при подсчете лейкоцитов и тромбоцитов у млекопитающих животных, непригодны для исследования крови у птиц. Связано это с тем, что эритроциты у них содержат ядро и не разрушаются под действием уксусной кислоты. Поэтому предложены методы, которые основаны на окраске лейкоцитов и тромбоцитов, а эритроциты остаются неокрашенными.

Для подсчета эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в камере разводить кровь лучше в 100 раз. Чаще используют жидкость, состоящую из 0,1 г азура II и 1000 мл 0,9%-го раствора натрия хлорида. В качестве разбавляющей и красящей жидкости можно использовать и растворы, в составе которых имеется метилвиолет. Разбавленную кровь перемешивают в течение не менее 5 минут, чтобы окрасились лейкоциты и тромбоциты.

Подсчет эритроцитов и расчет их абсолютного количества производят в камере точно так же, как у млекопитающих. В том же препарате проводят подсчет и лейкоцитов. Их учет ведут в 100 больших неразграфленных квадратах сетки. Лейкоциты при этом округлой формы, окрашены в серо-синий цвет. Расчет количества лейкоцитов ведут по формуле:

А*100

X = = А*250/мкл или А*250*106

1600*1/4000

Подсчет тромбоцитов в крови птицы проводят в той же счетной камере, что и другие клетки. Учитывают тромбоциты во всех больших квадратах сетки Горяева, каждый из которых разделен на 16 маленьких квадратиков. Таких квадратов всего 25. Тромбоциты при этом овальной формы (в отличии от лейкоцитов), и окрашены в интенсивно синий или фиолетовый цвет (в отличие от эритроцитов). Расчет ведут по формуле:

А*100

X = = А*1000/мкл, или А* 10%

400*1/4000

Существует и другой метод определения количества форменных элементов крови у кур. Он предусматривает сначала подсчет общего количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в счетной камере. Затем готовятся мазки крови, окрашиваются и в них определяют процент эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов. При этом ведется подсчет 1000 клеток. Метод довольно трудоемкий, требует значительных затрат времени и не нашел широкого применения в практике.

кровь тромбоцит лейкоцит животное

4. Изготовление, фиксация и окрашивание мазков крови

При исследовании крови не ограничиваются только подсчетом абсолютного количества форменных элементов. Необходимо также определять величину, форму, структуру ядра и цитоплазмы, наличие разных включений в цитоплазме клеток. Важным представляется и определение соотношения между различными формами отдельных клеток крови.

Для этого следует хорошо знать морфологию форменных элементов крови, а также схему кроветворения. Дело в том, что при целом ряде заболеваний в крови животных появляются как морфологически измененные, так и незрелые клетки. Особенно важное значение приобретают эти знания при исследовании костномозгового пунктата.

Изготовление, фиксация и окрашивание мазков крови

Изготовление мазков крови (очень кратко).

Фиксация мазков (цель, чем фиксируются).

Окраска мазков. Следует помнить, что основа успешного исследование морфологических особенностей клеток - это правильно и четко окрашенный мазок крови. Посредством окраски четко выявляется структура как ядра, так и цитоплазмы клетки. Принцип методов окраски мазков крови открыт русским ученым-паразитологом Д.Л.Романовским в 1891 г. Он заключается в том, что структуры клетки избирательно, по-разному поглощают три краски: азур I, метиленовую синь и эозин. Именно эти краски составляют основу способа окраски мазков крови по Романовскому, который часто называют способом Романовского-Гимзы.

Известно, что структуры и органеллы клетки обладают кислой, щелочной и нейтральной реакцией. Согласно законов химии кислые компоненты хорошо взаимодействуют со щелочными красителями, щелочные - с кислыми, а нейтральные и с теми, и с другими.

В процессе окраски, ядро клетки, богатое нуклеопротеидами и нуклеиновыми кислотами, окрашивается основными красками базофильно (фиолетово-красный или синий цвет) с избирательным поглощением азура. Цитоплазма молодых клеток богата, как правило, нуклеиновыми кислотами и поглощает преимущественно метиленовую синь. Цитоплазма зрелых клеток (в основном нейтрофилов и эозинофилов) щелочная и окрашивается эозином в розово-красный цвет.

Однако для получения именно такой окраски необходимо соблюдать ряд условий. Прежде всего, дистиллированная вода, используемая для разбавления краски должна иметь строго нейтральную реакцию, а лучше всего использовать буферные растворы (фосфатный). Требуется точно выдерживать время окраски и, при этом, следить за температурой в помещении. И еще, рабочий раствор краски Романовского из концентрата следует готовить непосредственно перед употреблением.

Кроме окраски мазков крови по Романовскому можно использовать и другие способы, которых предложено великое множество.

Окраска по Лейшману (состав краски - 1 г смеси в равных соотношениях азура I, метиленовой сини и эозина желтого на 100 мл метанола). При этом окрашивают нефиксированный мазок, на который наливают 2 мл краски, затем через 3-5 мин. добавляют равное количество нейтральной воды и докрашивают еще 5-10 мин. Этим способом хорошо окрашивается зернистость цитоплазмы и слабо красится ядро. Поэтому мазки лучше потом еще докрасить по Романовскому. Способ чаще используют при окрашивании мазков крови птиц.

Окраска по Май-Грюнвальду (состав краски - по 0,5 г эозина и метиленовой сини, 100 мл метанола, 50 мл глицерина). Раствор наносят на нефиксированный мазок на 3 мин., затем к нему приливают равное количество нейтральной дистиллированной воды и еще красят 10-15 мин. Эритроциты и зернистость гранулоцитов при этом окрашиваются в розово-красный цвет, ядра прокрашиваются плохо и имеют слабо-голубой цвет. Поэтому лучше использовать двухмоментный способ окраски, который, по автору, называется методом Паппенгейма. Им мы и будем пользоваться на ЛПЗ.

При этом, на нефиксированный мазок крови наносят 2,0 мл неразбавленной краски Май-Грюнвальда. Через 3 минуты к краске на мазке добавляют 2 мл дистиллированной воды. Через 1 минуту краску с препарата сливают сразу же на мазок, не высушивая, наносят разбавленный в 10 раз фосфатным буфером концентрат краски Романовского. Мазок докрашивают в течение 10-13 мин. Затем промывают под слабой струей водопроводной воды и высушивают (можно фильтровальной бумагой).

С целью обнаружения различных изменений и включений в клетках крови используют и другие методы: по Браше и Фельгену - для выявления нуклеиновых кислот; по Шабодашу - для выявления гикогена; по Гольдману - для выявления липидов; по Гомори - для выявления кислой и щелочной фосфатазы и др. Но в заключение вопроса должен заметить, что механизм окраски клеток до настоящего времени еще полностью не изучен.

5. Морфология лейкоцитов крови у животных разных видов

В зависимости от свойств цитоплазмы и характера зернистости лейкоциты разделяют на гранулоциты (зернистые) -- базофилы, эозинофилы и нейтрофилы, и агранулоциты (незернистые) -- лимфоциты и моноциты.

Базофилы круглой или немного овальной формы, имеют величину 10-14 мкм. У зрелых форм ядро полиморфное, плохо заметное, с неясными очертаниями, окрашено в слабо-фиолетовый цвет с бордовым оттенком или в фиолетовый цвет. Цитоплазма слабо окрашена в розовый или бледно-фиолетовый цвет вследствие выхождения вещества гранул, которые разрушаются при окраске мазка. Гранулы круглой или расплывчатой формы, окрашены в темно- фиолетовый, темно-синий или черный цвет, они обычно разрушены с образованием вакуолей.

Эозинофилы круглой формы, величиной 10-25 мкм. Цитоплазма слабоголубая, содержит розово-красную или ярко-красную зернистость круглой или слегка овальной формы. Характер ядра зависит от степени зрелости клетки: у зрелых форм оно сегментированное, у молодых -- округлое; окрашено в фиолетовый цвет. У лошадей, крупного рогатого скота и свиней ядро чаще состоит из двух сегментов, а у овец, коз и собак -- из трех. Наиболее крупные гранулы у лошадей и собак. У кошек гранулы расположены в цитоплазме зозинофилов очень густо и нередко имеют палочковидную форму неодинаковой величины. При растворении гранул на месте их образуются вакуоли, в раздавленных клетках гранулы лежат свободно, «рассыпавшись».

Нейтрофилы имеют круглую форму, размером 10-15 мкм. По степени зрелости различают миелоциты, юные (метамиелоциты), палочкоядерные и сегментоядерные нейтрофилы.

Миелоциты (М) характеризуются неравномерно окрашенным в фиолетовый цвет круглым или овальным ядром, расположенным часто эксцентрически. Цитоплазма окрашена или в бледно-синеватый или розовый цвет, в ней содержится мелкая зернистость розового цвета. В крови здоровых животных не встречаются.

Юные нейтрофилы имеют бобовидные или колбасовидное ядро, неравномерно окрашенное в фиолетовый цвет (светлые участки перемежаются с темными) Цитоплазма розового цвета, иногда плохо прокрашенная, содержит мелкую, нежную зернистость розового цвета. У взрослых здоровых животных в периферической крови они, как правило, не обнаруживаются.

Палочкоядерные нейтрофилы относятся к зрелым формам и у здоровых животных постоянно встречаются в крови. Ядро вытянуто в виде палочки, которая может быть изогнута в виде подковы, дужки, латинской буквы S, на концах булавовидно вздуто, в отдельных местах наблюдаются перехваты, окрашивается неравномерно в темно-фиолетовый цвет. Цитоплазма розового цвета с мелкой розоватой зернистостью (часто плохо видна).

Сегментоядерные нейтрофилы отличаются от палочкоядерных лишь характером ядра, которое состоит из 2--5 сегментов, между которыми имеются перемычки; окрашивается в темно-фиолетовый цвет.

Лимфоциты по величине разделяют на малые (до 10 мкм), средние (10-- 14 мкм) и большие (15-25 мкм). Они имеют круглое ядро темно-фиолетового цвета. Цитоплазма слабо-голубого цвета, вокруг ядра имеет зону просветления (перинуклеарная зона); у малых лимфоцитов ее может быть очень мало («голоядерные» лимфоциты); иногда в цитоплазме содержатся азурофильные зерна ярко-красного цвета. У здоровых животных в переферической крови преобладают малые лимфоциты, а средние и большие составляют не более 5--6%; в отдельных случаях они могут даже отсутствовать.

Моноциты являются самыми крупными клетками периферической крови (15-25 мкм), округлой или нередко неправильной формы. Ядро разнообразной формы -- в виде подковы, бабочки, трилистника, бобовидное с выбухтовываниями, но может быть сильно лопастным и грубо сегментированным, неравномерно окрашивается в слабо-фиолетовый цвет с темно-фиолетовыми пятнами («пятнистое»). Цитоплазма серо-дымчатого, серо-синеватого, голубовато- серого цвета, со светло-фиолетовым оттенком, вблизи от ядра содержит мелкую пылевидную зернистость.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Форменные элементы крови: эритроциты, лейкоциты, гемоглобин, гематокрит. Методика подсчёта количества эритроцитов в единице объёма крови в камере Горяева, техника взятия крови. Функции: трофическая, экскреторная, респираторная, защитная, коррелятивная.

    практическая работа [57,7 K], добавлен 09.10.2009

  • Рекомендации к определению и выведению гемограммы у сельскохозяйственных и лабораторных животных при разных патологиях. Методика приготовления мазков крови для исследования. Специальные способы окраски и фиксации мазка. Техника реакции. Гранолуциты.

    методичка [10,5 M], добавлен 14.09.2008

  • Группы крови крупного рогатого скота как основа селекционного процесса. Тестирование типов крови и их использование для определения линий и пород. Использование иммуногенетического мониторинга и биотехнологии трансплантации эмбрионов в воспроизводстве.

    курсовая работа [47,8 K], добавлен 02.08.2010

  • Клиническое обследование коровы, состояние основных органов и систем. Анализ состояния зубов животного. Снижение количества эритроцитов и гемоглобина по результатам лабораторного исследования крови. Причины увеличения надвыменных лимфатических узлов.

    курсовая работа [22,9 K], добавлен 24.03.2013

  • Стресс-факторы и их влияние на физиологическое состояние и состав крови животных. Показатели осеменения коров. Повышение резистентности организма и биохимические показатели крови после лечения. Результаты экономической эффективности лечебных мероприятий.

    дипломная работа [82,0 K], добавлен 04.05.2009

  • Основные функции крови: трофическая (питательная), экскреторная (выделительная), респираторная (дыхательная), защитная терморегулирующая, коррелятивная. Плазма крови, белки плазмы, небелковые азотсодержащие соединения, безазотистые органические вещества.

    практическая работа [21,9 K], добавлен 09.10.2009

  • Система органов крово- и лимфообращения, или сосудистая система. Общая характеристика кровоснабжения отдельных органов. Составные компоненты крови и их основные функции. Лимфатическая система млекопитающих животных. Ход и строение лимфатических сосудов.

    реферат [454,6 K], добавлен 19.06.2014

  • Рассмотрение особенностей проведения плановых и вынужденных диагностических исследований животных в хозяйстве. Аллергические исследования и взятие крови у животных для серологической диагностики. Роль ветеринарной службы в борьбе с заразными болезнями.

    курсовая работа [44,5 K], добавлен 28.05.2015

  • Профилактика незаразных болезней. Экологические основы диспансеризации. Объем и сроки диспансерного обследования сельскохозяйственных животных. Анализ условий кормления и содержания животных. Лабораторный анализ крови, мочи, молока, рубцового содержимого.

    курсовая работа [26,4 K], добавлен 19.12.2015

  • Особенности исследований в области создания новых видов заменителей цельного молока. Анализ и оценка влияния выпаивания "соевого молока" телкам украинской красно-пестрой молочной породы на физиолого-биохимические показатели крови и приросты массы тела.

    реферат [62,1 K], добавлен 09.11.2010

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.