Санитарно-ветеринарная экспертиза туш и органов животных, подвергшихся радиационному воздействию
Порядок ветеринарного осмотра, сортировки и убоя животных, подвергшихся воздействию радиационных факторов. Способы дезактивации продуктов животноводства. Методы определения содержания антибиотиков и пестицидов, содержащихся в органах и тканях животных.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | курсовая работа |
Язык | русский |
Дата добавления | 28.04.2009 |
Размер файла | 425,6 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
В лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы МГУПБ была изучена чувствительность различных штаммов микроорганизмов к концентрациям основных видов антибиотиков, применяемых для лечения и откорма скота и птицы. На основании этих данных разработана методика, позволяющая определять количество антибиотических препаратов в продуктах животного происхождения, в частность мясе.
Сущность метода заключается в том, что адсорбирующие бумажные диски, смоченные изучаемым экстрактом из мышечной ткани мяса, бульоном и растворами антибиотика разной концентрации размещают на поверхности твердой питательной среды, содержащей тест - культуру. Тест - культурой называют штамм микроорганизма, который не способен расти в среде, в которой количество антибиотика ничтожно малое.
Рост тест - культуры при термостатировании приводит к помутнению агара. Отсутствие зоны помутнения вокруг диска с изучаемым образцом (нет роста микроорганизмов) свидетельствует о наличии в изучаемом субстрате антибиотического вещества. Диаметр этой зоны сравнивают с диаметром зоны отсутствия роста микроорганизмов вокруг дисков, содержащих разные концентрации антибиотиков.
Для подобных исследований следует использовать готовые и сухие среды, дистиллированную воду. Среды, реактивы и физиологический раствор не должны содержать ингибиторов микроорганизмов.
В проводимых исследованиях были использованы мясо - пептонный агар (рН среды после стерилизации - 7,2-7,4) и среда, состоящая из агар - агара - 20г, бульона Хоттингера (130 - 140 мг% аминного азота) - 1000 мл, глюкозы - 0,1% в виде 40% - ного раствора. Компоненты растворяли в бульоне и смешивали. Среду стерилизовали при температуре 120*С в течение 15 мин, рН среды после стерилизации составляла 7,2 - 7,4.
Основные растворы антибиотиков готовили из очищенных стандартных образцов препаратов. Использовали антибиотики, выпускаемые Всероссийским государственным научным контрольным институтом.
Для обнаружения в мышечной ткани и бульоне тетрациклина и неомицина использовали штамм B. subtillis L2. Культуру M. luteus АТСС 9341 применяли для обнаружения левомицетина.
Для приготовления тест - системы вносили 1 мл суспензии тест - культуры в 10 мл расплавленной агаризированной среды, приготовленной на бульоне Хоттингера, перемешивали и переносили в чашку Петри, расположенную на строго горизонтальной поверхности. Во избежание скопления конденсата, чашки с застывшим агаром в перевернутом вверх дном виде подсушивали в термостате. При исследовании в тушки птиц вводили тетрациклин, левомицетин и неомицин согласно инструкции по применению этих препаратов. Образцы для исследований отбирали в день последнего введения препарата и через 7 сут после этого.
От каждой тушки птицы были взяты образцы мышечной ткани из бедра до и после варки (тушку разрубали вдоль позвоночного столба на две половины и варили при 100*С в течение 1 ч).
Образцы отбирали согласно методам взятия проб для микробиологических анализов (ГОСТ №26668 - 85), затем очищали от серозных оболочек, взвешивали, измельчали, добавляли физраствор в соотношении 1:1 и тщательно перемешивали.
Кроме того, исследовали содержание антибиотиков в бульоне, полученном после варки тушек.
Образцы мышечной ткани выдерживали в течение 2 часов при комнатной температуре для экстракции антибиотика, периодически перемешивая, затем переносили его в пробирки и центрифугировали (при 3000 об./мин) в течение 10 минут. Надосадочную жидкость проверяли на наличие антибиотика.
На чашку Петри, содержащую агаризированную питательную среду, приготовленную на бульоне Хоттингера и суспензию тест - культуры, размещали по трафарету бумажные диски, смоченные в надосадочной жидкости, полученной от проверяемого образца, и в растворах антибиотика с концентрацией от 0,001 мкг/мл до 10 мкг/мл. Чашки термостатировали при температуре 37*С в течение 3 - 5 ч. После инкубации чашки просматривали в проходящем свете с целью определения размеров зоны задержки роста тест - культуры вокруг бумажных дисков.
Концентрация антибиотика в исследуемом образце должна быть равна концентрации в растворе, у которого зона отсутствия роста тест - культуры будет равняться зоне вокруг исследуемого образца.
Для расчёта антибиотической активности брали средние значения диаметров зоны отсутствия роста микроорганизмов одного и того же разведения как для антибиотика, так и для испытуемого гомогената. Например, при концентрации тетрациклина в растворе 0,001 - 10 мкг/мл были получены следующие средние значения диаметров зон (в мм): для 0,001 - 1,5, для 0,01 - 3,5, для 0,1 - 7,5, для 1 - 14, для 10 - 22.
Используя полученное данные, вычертили контрольные кривые с помощью которых определяли содержание антибиотиков в испытываемом гомогенате мышечной ткани или бульоне (рис. 1).
Диаметр зоны отверстия роста тест-культуры и содержание антибиотиков в исследуемых образцах представлены в таблицах 2 и 3.
Таблица 2
Исследуемый продукт |
Содержание антибиотиков в тушке птицы в день последнего введения препаратов, мкг/мл |
Диаметр зоны отсутствия роста микроорганизмов под воздействием антибиотиков, мм |
|||||
тетрациклин |
левомицетин |
неомицин |
тетрациклин |
левомицетин |
неомицин |
||
Мышечная ткань: сырая после варки Бульон |
1,5 0,1 1,0 |
3,0 0,3 2,7 |
1,0 0,2 0,8 |
14,1 7,5 14,0 |
21,0 15,0 19,0 |
13,5 11,7 13,0 |
Таблица 3.
Исследуемый продукт |
Содержание антибиотиков в тушке птицы через 7 сут после последнего введения препаратов, мкг/мл |
Диаметр зоны отсутствия роста микроорганизмов под воздействием антибиотиков, мм |
|||||
тетрациклин |
левомицетин |
неомицин |
тетрациклин |
левомицетин |
неомицин |
||
Мышечная ткань: сырая после варки Бульон |
0,5 - 0,4 |
0,5 0,1 0,3 |
0,3 0,01 0,2 |
9,9 - 8,9 |
16,0 14,0 15,0 |
11,6 4,5 10,4 |
Опытом путём было установлено, что количество тетрациклина и неомицина в мышечной ткани бедра тушки птицы и в последний день введения препарата было второе выше, чем через 7 сут (содержание тетрациклина снизилось с 1,5 до 0,5 мкг/мл, а неомицина - с 1 до 0,3 мкг/мл). По истечению срока запрещения сдачи птиц на убой количество левомицетина уменьшилась в 6 раз (с 3 до 0,5 мкг/мл).
При варке тушек концентрация антибиотиков значительно уменьшилась. Так, содержание тетрациклина в мышечной ткани птицы, подвергшейся убою в последний день введения препарата, снизилось с 1,5 до 0,1 мкг/мл, т.е. на 93% (в бульон диффундировало 70% антибиотика, остальная часть - 23% была разрушена).
В мышечной ткани тушек птицы, подвергшейся убою через 7 сут после последнего введения антибиотиков, после варки тетрациклин не обнаружили. Причем 80% антибиотиков (0,4 мкг/мл) перешло в бульон, 20% антибиотиков было разрушено.
После варки содержание левомицетина снизилось соответственно на 90% и 80% в мясе птицы, подвергшейся убою в последний день введения препарата и через 7 сут; в бульон диффундировало соответственно 90% и 60% левомицетина.
Количество неомицина в мышечной ткани птицы, подвергшейся убою в последний день введения препарата, снизилось после варки соответственно на 80% и на 96%. В бульон перешло около 70% антибиотика. Часть была разрушена при варке (рис. 3 и 4).
Следовательно, предложенный метод определения содержания антибиотического препарата подтверждает, что с течением времени их количество в организма уменьшается, но семи суток, как принято, не достаточно для полного его выведения из мышечной ткани.
Варка при температуре 100*С в течение 1 часа позволяет снизить содержание антибиотика в мышечной ткани приблизительно на 70 - 80%. Большая часть препарата диффундирует в бульон, а около 10% при варке разрушается.
Таким образом, продукты убоя, содержащие повышенное количество антибиотика, могут быть использованы после варки при обычных параметрах обеззараживания и повторном контроле на содержание антибиотика в мышечной ткани.
Бульон содержит около 70% антибиотика от первоначального количества, потому на пищевые цели использоваться не может и должен быть утилизирован.
Предложенная методика по сравнению с общепринятой (МУ 3049-84) является более упрощенной. Она может быть использована в производственных условиях для определения остаточного содержания антибиотиков, например, в случаях при решении реализации мясного скота, подвергнутого вынужденному убою; при определении остаточных количеств антибиотиков-консервантов, применяемых против бактериальной порчи мяса во время его хранения и транспортировки; введение антибиотика в организм животного непосредственно перед убоем; а также во многих других случаях.
ПРИЛОЖЕНИЯ
ПРИЛОЖЕНИЕ № 1
Временные методические рекомендации по экспресс-методу прижизненного контроля радиоактивной загрязненности животных.
Экспресс-метод прижизненного контроля радиоактивной загрязненности мышечной ткани крупного рогатого скота с помощью дозиметрических приборов СРП-68-01, ДРГЗ-02, ДП-5 и др. основан на определении объемной радиоактивности тела животного. Метод может быть использован в условиях колхозов, совхозов, на скотоприемных пунктах, убойных площадках и мясокомбинатах.
Замеры радиоактивности производятся в области ягодичных мышц
и мышц плеча у верхнего края средней части плечевой кости. Для расчета берут среднюю величину по двум замерам в указанных областях, время определения радиоактивного загрязнения мышечной ткани одного животного около 1 минуты.
Правила техники безопасности и личной гигиены идентичны требованиям к работе в животноводстве.
Спецодежда: халат, чепчик, прорезиненный или из полиэтиленовой пленки фартук, сапоги, мягкие резиновые перчатки. На одну рабочую смену необходимо иметь около 100 шт. лоскутов из полиэтиленовой пленки размером 15х15 или 20х20 (см), 50 г этанола, 50г ваты, рабочий журнал для записей.
ПОРЯДОК РАБОТЫ
Для измерений используется СРП-68-01 с датчиком, оборудованным защитным экраном из свинца (защитным кожухом) с толщиной стенки 10-12 мм.
Вo избежание загрязнения на датчик прибора надеть полиэтиленовый пакет.
Проверить работу прибора и его чувствительность согласно описанию и прилагаемому эталону.
3. Определить гамма-фон на месте дозиметрии животных (скотный двор, убойный пункт, скотобаза мясокомбината и др.).
4. Установить датчик прибора на чистую поверхность кожи в области ягодичных мышц и провести замеры радиоактивной загрязненности (мкР/час). Затем выполнить замер в точке мышц плеча выше верхнего края середины плечевой кости. Определить среднюю мощность излучения по этим замерам и вычесть из него значение уровня "фона". Полученную разность умножить на коэффициент пересчета 4.4.
Результат получают в мКи/кг удельной активности мышечной ткани животного
Пример: Мощность дозы излучения от мышц ягодичной области составляет 29 мкР/час, от плечевых мышц 27 мкр/час, гамма-фон в помещении 19 мкР/час, коэффициент равен 4,4.
(29+27)/2 = 28; 28-19=9 (мкР/час)
9х4,4=39,6 мКи/кг =3,96 . 10 Ки/кг
Заключение: Удельная активность мяса при убое данного
животного составит 3,96.10 Ки/кг
Результаты и расчеты записываются в рабочий журнал.
ПРИЛОЖЕНИЕ № 2
Временные методические рекомендации по экспресс-методу контроля радиоактивной загрязненности туш, полутуш и отрубов мяса.
Экспресс-метод контроля радиоактивной загрязненности туш, полутуш отрубов говядины, свинины и баранины с помощью дозиметрических приборов СРП-68-01, ДП-5, ДРГЗ-02 и др. основан на определении объемной радиоактивности продукта.
Метод прост в исполнении, выполняется одним дозиметристом, в обычных условиях на конвейере разделочного цеха или камеры охлаждения мясокомбинатов, боен, лабораторий ветеринарно-санитарной экспертизы.
Замеры туш, полутуш производятся в ягодичной области, области бедренных мышц и мышц плеча. Масса отрубов для замеров должна быть не менее 10 кг.
Правила техники безопасности и личной гигиены обычные.
Спецодежда: халат, чепчик, прорезиненный или из полиэтиленовой пленки фартук, сапоги, мягкие резиновые или хлорвиниловые перчатки. Для работы нужно иметь на одну смену 20 шт. полиэтиленовых пакетов, 50 г этанола, 5Ог ваты, рабочий журнал.
1. Подготовка СРП-68-01 к работе
1.1 Настоящая методика предполагает проведение измерений мощности дозы прибором СРП-68-01, датчик которого закрыт специальным свинцовым цилиндрическим экраном.
1.2 Для предотвращения загрязнения датчик закрывается полиэтиленовым пакетом.
1.3 В остальном подготовка к работе прибора осуществляется в соответствии и инструкцией по эксплуатации, входящей в комплект поставки аппаратуры.
2. Порядок работы.
2.1 Включить и проверить работу прибора согласно инструкции по эксплуатации.
2.2 Определить уровень "фона" на месте измерения (помещение разделочного цеха, Холодильная камера и т.д.).
2.3 Установить торец датчика прибора на поверхность одной из указанных областей туши.
2.4 Произвести отсчет показаний по шкале стрелочного индикатора прибора в соответствии с положением переключателя диапазонов измерений (30,100,300,1t,3т) .
2.5 Расчет удельной активности провести по формуле:
А мКи/кг = К (Ри - Рф), где
Рф мкР/час - измеренный уровень «фона»
Ри мкР/час - мощность дозы, измеренная на туше,
К=4 - коэффициент пересчета мощности дозы в удельную активность.
2.6 Результаты измерений и расчетов записываются в рабочий журнал.
Пример: Мощность дозы излучения от мышц ягодичной группы (Ри)
составила 34мкр/час;
уровень "фона" в помещении (Рф) 15мкР/час
А = 4(34-15) = 76нКи/кг = 7,6*10 Ки/кг
Заключение: Удельная активность мяса составляет 7,6х10 Ки/кг
Периодический контроль измерений удельной активности с помощью СРП-68-01 производится на радиометрической установке ДП-100 методом "толстого слоя". Для этого с измеряемого объекта (туша, полутуша) отбирается 5-6 проб, удельная активность которых определяется на установке ДП-100 в соответствии с существующей методикой.
Мясо, прошедшее радиационный контроль экспресс-методом, при отправке на мясоперерабатывающие предприятия или другие адреса должно быть подвергнуто радиационному лабораторному контролю на установке ДП-100.
Подобные документы
Порядок ветеринарного осмотра, сортировка и убой животных, подвергшихся воздействию радиационных факторов. Способы дезактивации животных и продуктов животноводства. Ветеринарная санэкспертиза туш и органов животных, пораженных биологическими средствами.
курсовая работа [94,9 K], добавлен 01.05.2009Общий порядок после убойного ветеринарно-санитарного осмотра туш и внутренних органов животных. Сбор эндокринного сырья. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса и мясопродуктов животных больных и переболевших ящуром. Санитарная оценка продуктов убоя.
курсовая работа [27,2 K], добавлен 12.03.2015Содержание закона "Правила ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов". Ветеринарно-санитарные требования предубойного осмотра животных. Экспертиза мяса и мясопродуктов на колхозных рынках.
презентация [1,7 M], добавлен 01.03.2014Строение и основные функции лимфатических узлов, видовые и топографические различия их форм у различных животных. Порядок ветеринарно-санитарного осмотра продуктов убоя крупного рогатого скота. Осмотр туш и шкуры на финальной точке санэкспертизы.
контрольная работа [8,4 M], добавлен 29.04.2009Использование судебно–ветеринарной экспертизы при рассмотрении уголовных дел, связанных с нарушениями по вопросам содержания, убоя животных и производства продуктов животноводства. Определение характера повреждений животного. Фальсификация мясопродуктов.
контрольная работа [33,4 K], добавлен 23.11.2010Действие, распространение афлатоксинов, их краткая характеристика. Методы их определения в продуктах животноводства. Обнаружение афлатоксина В1 в продуктах убоя якутских лошадей (в мясе, печени, почках), анализ санитарно-микробиологических показателей.
дипломная работа [95,8 K], добавлен 21.06.2015Санитарно-гигиенические нормы скота, птицы, рыбы и сырых животных продуктов. Ветеринарно-санитарная экспертиза как наука, изучающая методы исследования и санитарной оценки продуктов животного происхождения. Методы проведения послеубойного ветосмотра туш.
курсовая работа [920,7 K], добавлен 07.09.2015Порядок ветеринарно-санитарной экспертизы внутренних органов животных. Методика послеубойного осмотра внутренних органов крупного и мелкого рогатого скота. Оценка продуктов убоя по результатам осмотра головы, внутренних органов и туши убитого животного.
реферат [29,4 K], добавлен 06.06.2013Пути поступления ядовитых веществ, их распределение, накопление и выведение из организма животных. Отдаленные последствия действия ядов. Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов убоя животных при отравлениях. Пробы мяса крупного рогатого скота.
лекция [18,8 K], добавлен 30.07.2013Сведения об убойных животных и их заготовках. Анализ методов определения убойных животных. Этапы ветеринарно-санитарной экспертизы при сибирской язве, лептоспирозе. Влияние транспортировки на убойных животных. Ветеринарно-санитарная экспертиза молока.
контрольная работа [57,2 K], добавлен 05.04.2010