Проблемные вопросы устойчивости возбудителей инфекционных заболеваний к хлоргексидина биглюконату (обзор)

Формулируются проблемы профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, взаимосвязанные с различиями в резистентности патогенов к антисептикам. Освещаются генетические механизмы формирования резистентности у различных видов штаммов.

Рубрика Медицина
Вид статья
Язык русский
Дата добавления 19.09.2021
Размер файла 19,8 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Проблемные вопросы устойчивости возбудителей инфекционных заболеваний к хлоргексидина биглюконату (обзор)

Морозова Н.С.1,

Ридный С.В.1,

Головчак Г.С.1,

Коробкова И.В.1,

Лях С.И.2,

Попов А.А.1

1Харьковская медицинская академия последипломного образования 2Харьковский национальный медицинский университет

PROBLEMS OF INFECTIOUS DISEASES PATHOGENS STABILITY TO CHLORHEXIDINE DIGLUCONATE (REVIEW)

Morozova N.S.1, Readney S.V.1, Golovchak G.S.1, Korobkova I.V.1,

Lyakh S.I.2, PopovA.A.1

Kharkiv Medical Academy of Postgraduate Education 2Kharkiv National Medical University

Summary/Резюме

Actual problems of the prevention of healthcare associated infections (HAI) are formulated, interrelated with differences in the resistance of pathogens to antiseptics. The genetic mechanisms of the formation of resistance in various species, strains of HAI pathogens to the chlorhexidine digluconate (CGD) widely used in medical facilities, the nature of cross-resistance to CGD and antibiotics are highlighted. Issues of sound approaches to monitoring the resistance of pathogens to CGD are discussed.

Key words: pathogen resistance, chlorhexidine bigluconate

ПРОБЛЕМНІ ПИТАННЯ СТІЙКОСТІ ЗБУДНИКІВ ІНФЕКЦІЙНИХ ЗАХВОРЮВАНЬ ДО ХЛОРГЕКСИДИНУ БІГЛЮКОНАТУ (ОГЛЯД)

Морозова Н.С.1, Рідний С.В.1, Головчак Г.С.1, Коробкова І.В.1,

Лях С.І.2, Попов 0.0.1

Харківська медична академія післядипломної освіти 2Харківський національний медичний університет

Формулюються актуальні проблеми профілактики інфекцій, пов'язаних з наданням медичної допомоги (ІПМД), взаємопов'язані з відмінностями в резистентності патогенів до антисептиків. Висвітлюються генетичні механізми формування резистентності у різних видів, штамів збудників ІПМД до широко застосовуваного в умовах лікувальних установ хлоргексидину біглюконату (ХГБ), природи перехресної резистентності до ХГБ та антибіотиків. Обговорюються питання обґрунтованих підходів до моніторингу резистентності патогенів до ХГБ.

Ключові слова: резистентність патогенів, хлоргексидину біглюконат

Аннотация

Формулируются актуальные проблемы профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП), взаимосвязанные с различиями в резистентности патогенов к антисептикам. Освещаются генетические механизмы формирования резистентности у различных видов, штаммов возбудителей ИСМП к широко применяемому в условиях лечебных учреждений хлоргексидина биглюконату, природы перекрестной резистентности к ХГБ и антибиотикам. Обсуждаются вопросы обоснованных подходов к мониторингу резистентности патогенов к ХГБ.

Ключевые слова: резистентность патогенов, хлоргексидина биглюконат

Устойчивость возбудителей инфекционных заболеваний к антибактериальным препаратам является одной из глобальных проблем современной медицины. Отмечается широкое распространение патогенов устойчивых к различным противомикробным средствам (антибиотикам, дезинфектантам, антисептикам).

В этом аспекте в последнее время особое внимание привлекает антисептик хлоргексидина биглюконат (ХГБ), который широко используется в медицинской практике для гигиенической обработки рук, в качестве антисептического полоскания полости рта в стоматологии и у пациентов, находящихся на ИВЛ с целью профилактики ИВЛ пневмоний [1].

Спиртовые растворы ХГБ широко используются для обработки мест проколов центральных венозных катетеров с целью предотвращения катетер ассоциированных инфекций кровотока [2,3].

Во многих странах 4 % ХГБ используется в составе жидкого мыла для гигиенической обработки рук [4].

Однако, начиная с 1973 года появились первые сообщения об устойчивости клинических изолятов, таких как P aeruginosa, Klebsiella и другим к ХГБ [5]. Имеются сообщения о ряде вспышек, связанных с контаминированными растворами ХГБ [6].

Особого внимания заслуживает информация о большей устойчивости МRSA к ХГБ по сравнению с MSSA Уже в 1996 году было описано увеличение среднего значения минимальной ингибирующей концентрации (ЫИК) препарата в 5-10 раз для MRSA по сравнению с МИК для MSSA [7]. Эти данные были подтверждены и другими исследователями [8, 9]. После 20 лет применения жидкого мыла с 4 % ХГБ на Тайване было отмечено, что доля изолятов MRSA со значением MИК e" 4 мг/л увеличилась с 1,7 % в 1990 году до 50 % в 1995 году, 40 % в 2000 году и 46,7 % в 2005 году [10].

В том же аспекте важным представляется информация о генетических механизмах формирования устойчивости к ХГБ. Установлено, что патогены человека имеют механизмы, обеспечивающие им устойчивость практически ко всем доступным препаратам. Действие дезинфицирующих препаратов и антисептиков может блокироваться различными процессами: ферментативной инактивацией препарата, образованием альтернативных метаболических путей, снижением проницаемости внешних структур микробной клетки, изменением мишени действия препарата, формированием различных альтернативных форм микробных сообществ. Любой из этих механизмов устойчивости детерминируется генами, во многих случаях локализованных на коньюгативных R-плазмидах, реже - трансдуцирующих бактериофагах, способных как к внутривидовому, так и межвидовому обмену среди циркулирующих в лечебном учреждении штаммов.

Из различных механизмов устойчивости к ХГБ уделяется внимание гену qacA/B. Было описано, что штаммы MRSA несущие ген qacA/B характеризуются высоким уровнем устойчивости к ХГБ, в частности, МИК 256 мг/л в присутствии 3 % бычьего сывороточного альбумина [11]. Присутствие в MRSA гена qacA/B чаще всего ассоциировались с инвазивными инфекциями кровотока [12].

Снижение чувствительности MRSA к ХГБ отмечено также в присутствии генов qacE, qacED. Одним из механизмов устойчивости к ХГБ являются эффлюксные насосы (efbiux pump), которые могут выбрасывать из бактериальной клетки различные группы антибиотиков и дезинфицирующих препаратов, в том числе и ХГБ. По данным ряда авторов ген smvA является геном efbiux pump и при его наличии в микробной клетке устойчивость к ХГБ повышается в 10-27 раз [13].

Другими механизмами резистентности являются инактивация активного ингредиента или изменение структуры клеточной стенки [14]. Показано, что наружная мембрана может выступать в качестве барьера у P. aeruginosa для предотвращения попадания хлоргексидина в клетку [15]. Устойчивость к ХГ у P stuartii и S. marcescens, вероятно, опосредуется внутренней мембраной [16, 17]. штамм инфекция антисептик

Исследования устойчивости к противомикробным препаратам показали, что гены устойчивости могут перемещаться из хромосом в плазмиды, а также агрегировать на плазмидах [18]. Некоторые гены устойчивости могут передаваться между бактериальными плазмидами.

В настоящее время описаны вспышки различных инфекций, обусловленные использованием контаминированных растворов ХГБ. Большинство из них были вызваны грамотрицательными бактериями [19]. В некоторых сообщениях указывалось о микробном загрязнении жидкого мыла и водных растворов, содержащих 2 % ХГБ.

Отмечено, что в контаминированном S. marcescens 2 % водном растворе ХГБ патоген сохранялся жизнеспособным в течение 27 месяцев [20]. В процессе изучения 28 образцов раствора ХГБ выявлено 3 контаминированных A baumannii, а 5 - P аeruginosa

Последнее время широко обсуждается перекрестная резистентность к антибиотикам и ХГБ. Хотя мнения разноречивы, но анализ 701 штамма грамотрицательных бактерий показал, что существует положительная корреляция между устойчивостью к антибиотикам и к хлоргексидину и гексахлорофену [21]. У 49 штаммов A. baumannii обнаружена устойчивость к ХГ и карбапенему, тетрациклину и ципрофлоксацину [22].

В 2014 году у K. pneumoniae был обнаружен эффлюксный насос множественной устойчивости, который может одновременно удалять различные антибиотики и биоцидные агенты из бактериальной клетки. [23].

Перекрестная резистентность также была описана у грамположительных микроорганизмов. Так из жидкого мыла с 2 % ХГБ выделен S. epidermidis устойчивый к оксациллину [24]. Анализ 1632 клинических изолятов S. aureus человека из разных географических регионов показал, что устойчивость к ХГБ была связана с множественной лекарственной устойчивостью [25].

Приведенные данные свидетельствуют о возможном формировании резистентности у госпитальных штаммов к ХГБ, которая может сочетаться с резистентностью к антибиотикам в случае совпадения генетических механизмов. Поэтому можно полагать, что принципиальным решением повышения эффективности профилактических мероприятий является постоянный мониторинг резистентности патогенов к антибактериальным препаратам, в частности к антисептикам.

Литература/ References

1. Zhang TT, Tang SS, Fu LJ. The effectiveness of different concentrations of chlorhexidine for prevention of ventilator- associated pneumonia: a meta-analysis. J Clin Nurs 2014; 23: 1461-1475.

2. O'Grady NP, Alexander M, Burns LA, et al. Guidelines for the prevention of intravascular catheter-related infections. Am J Infect Control 2011; 39 (Suppl 1): S1- S34.

3. Mimoz O, Lucet JC, Kerforne T, et al. Skin antisepsis with chlorhexidine-alcohol versus povidone iodine-alcohol, with and without skin scrubbing, for prevention of intravascular-catheterrelated infection (CLEAN): an open-label, multicentre, randomised, controlled, two-by-two factorial trial. Lancet 2015; 386: 20692077.

4. Pittet D, Hugonnet S, Harbarth S, et al. Effectiveness of a hospital-wide programme to improve compliance with hand hygiene. Lancet 2000; 356: 13071312.

5. Farrand RJ, Williams A Evaluation of singleuse packs of hospital disinfectants. Lancet 1973; 1: 591-593

6. Weber DJ, Rutala WA Sickbert-Bennett EE. Outbreaks associated with contaminated antiseptics and disinfectants. Antimicrobial Agents Chemother 2007; 51: 4217-4224

7. Irizarry L, Merlin T, Rupp J, Grifbith J (1996) Reduced susceptibility of methicillin- resistant Staphylococcus aureus to cetylpyridinium chloride and chlorhexidine. Chemotherapy 42 (4): 248-252.

8. Akinkunmi EO, Lamikanra A (2012) Susceptibility of community associated methicillin resistant Staphylococcus aureus isolated from faeces to antiseptics. J Infect Develop Countries 6 (4): 317-323.

9. Hasanvand A, Ghafourian S, Taherikalani M, Jalilian FA, Sadeghifard N, Pakzad I (2015) Antiseptic resistance in methicillin sensitive and methicillin resistant Staphylococcus aureus isolates from some major hospitals, Iran. Recent Patents Anti-infective Drug Discov 10 (2): 105-112.

10. Wang JT, Sheng WH, Wang JL, Chen D, Chen ML, Chen YC, Chang SC (2008) Longitudinal analysis of chlorhexidine susceptibilities of nosocomial methicillin- resistant Staphylococcus aureus isolates at a teaching hospital in Taiwan. J Antimicrob Chemother 62 (3): 514-517.

11. Liu Q, Zhao H, Han L, Shu W, Wu Q, Ni Y (2015) Frequency of biocide-resistant genes and susceptibility to chlorhexidine in high-level mupirocin-resistant, methicill in-resistant Staphylococcus aureus (MuH MRSA). Diagn Microbiol Infect Dis 82 (4): 278-283.

12. McNeil JC, Kok EY Vallejo JG, Campbell JR, Hulten KG, Mason EO, Kaplan SL (2016) Clinical and Molecular features of decreased chlorhexidine susceptibility among nosocomial Staphylococcus aureus isolates at texas children's hospital. Antimicrob Agents Chemother 60 (2): 1121-1128.

13. Fang CT, Chen HC, Chuang YP, Chang SC, Wang JT (2002) Cloning of a cation efbiux pump gene associated with chlorhexidine resistance in Klebsiella pneumoniae. Antimicrob Agents Chemother 46 (6): 2024-2028.

14. Kaulfers P-M. Epidemiologie und Ursachen mikrobieller Biozidresistenzen. Zentralblatt for Hygiene und Umweltmedizin 1995; 197: 252-259.

15. Guerin-Mechin L, Leveau JY, Dubois- Brissonnet F (2004) Resistance of spheroplasts and whole cells of Pseudomonas aeruginosa to bactericidal activity of various biocides: evidence of the membrane implication. Microbiol Res 159 (1): 51-57.

16. Ismaeel N, Furr JR, Russell AD (1986) Sensitivity and resistance of some strains of Providencia stuartii to antiseptics, disinfectants and preservatives. Microbios Letter 33: 59-64.

17. Lannigan R, Bryan LE (1985) Decreased susceptibility of Serratia marcescens to

chlorhexidine related to the inner membrane. J Antimicrob Chemother 15 (5): 559-565.

18. Barlow M (2009) What antimicrobial resistance has taught us about horizontal gene transfer. Meth Mol Biol (Clifton, NJ) 532: 397-411.

19. Block C, Furman M (2002) Association between intensity of chlorhexidine use and microorganisms of reduced susceptibility in a hospital environment. J Hosp Infect 51: 201- 206.

20. Marrie TJ, Costerton JW (1981) Prolonged survival of Serratia marcescens in chlorhexidine. Appl Environ Microbiol 42 (6): 1093-1102.

21. Maris P Rйsistance aux antiseptiques et aux antibiotiques de 700 souches bac^riennes a Gram nйgatif. Annales de Recherches Vйtйrinaires, INRA Editions, 1991, 22 (1), pp.11-23.

22. Fernandez-Cuenca F, Tomas M, Caballero- Moyano FJ, Bou G, Martinez-Martinez L, Vila J, Pachon J, Cisneros JM, Rodriguez-

Bano J, Pascual A (2015) Reduced susceptibility to biocides in Acinetobacter baumannii: association with resistance to antimicrobials, epidemiological behaviour, biological cost and effect on the expression of genes encoding porins and efbiux pumps. J Antimicrob Chemother 70 (12): 3222-3229.

23. Srinivasan VB, Singh BB, Priyadarshi N, Chauhan NK, Rajamohan G (2014) Role of novel multidrug efbiux pump involved in drug resistance in Klebsiella pneumoniae. PLoS ONE 9 (5): e96288.

24. Cook HA, Cimiotti JP, Della-Latta P, Saiman L, Larson EL (2007) Antimicrobial resistance patterns of colonizing bora on nurses' hands in the neonatal intensive care unit. Am J Infect Control 35 (4): 231236.

25. Coelho JR, Carrico JA, Knight D, Martinez Впервые Mofjssey k fOggonb MRo ?F202§s-. at РекоШЙДОЙаrThe rfeseufam&geg&euUearning pegam&tj№dol®<meiertm ncayspeQn'thiptikaand biocide susceptibility in Staphylococcus aureus. PLoS ONE 8 (2): e55582.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.