Ветеринарная санитария

При инфекционном ринотрахеите крупного рогатого скота парные шкуры дезинфицируют в тузлуке (25% - ном) с добавлением 1 % соляной кислоты при жидкостном коэффициенте 1:4 в течение 24 ч с последующей нейтрализацией.

При плевропневмонии крупного рогатого скота шкуры изолируют и высушивают.

При листериозе шкуры крупного рогатого скота и свиней дезинфицируют в тузлуке с добавлением 0,3 % кремнефтористого натрия, 0,05 % медного купороса или 0,5 % алюмокалиевых квасцов в течение 20 ч при температуре

18-20 °С и жидкостном коэффициенте 1:4 с последующей выдержкой в штабеле не менее 24 ч.

При бруцеллезе парные и охлажденные шкуры свиней и крупного рогатого скота дезинфицируют и консервируют в тузлуке с добавлением 0,3 % кремнефтористого натрия и 0,05 % медного купороса в течение 20 ч.

При туберкулёзе шкуры выпускают без ограничений.

При туляремии шкуры грызунов дезинфицируют в изолированном помещении хлорпикрином в течение 2 мес.

При микроспории, трихофитии парные шкуры дезинфицируют раствором, состоящим из 25 % поваренной соли и 1 % кремнефтористого натрия и 0,7 % серной кислоты, в течение 48 ч при жидкостном коэффициенте 1:5. По окончании дезинфекции шкуры нейтрализуют в обычном порядке.

Дезинфекция мехового сырья

При листериозе парные овчины дезинфицируют и одновременно консервируют в растворе с содержанием 0,1 % кремне фтористого натрия, 2 % алюмокалиевых квасцов, 0,05 % уксуснокислой меди, 0,05 % двухромовокислого калия, 26 % поваренной соли при жидкостном коэффициенте 1:5 в течение 20 ч с последующей выдержкой не менее 24 ч. Шкуры кроликов при листериозе дезинфицируют и одновременно консервируют в растворе, состоящем из 0,3 % сульфанола, 2 % алюмокалиевых квасцов, 0,2 % кремнефтористого натрия и 26 % поваренной соли, при жидкостном коэффициенте 1:5, экспозиции 20 ч с последующей выдержкой 24 ч.

При болезни Ауески овчины и шкуры кроликов обеззараживают и одновременно консервируют сухим посолом: смесью, состоящей из алюмокалиевых квасцов - 5 %, хлористого аммония - 5% и поваренной соли - 90 %, при расходе смеси для шкуры кролика 75-100 %, овчины- 50 % к массе сырья. Уложенные в штабель овчины выдерживают 4 сут, а шкурки кроликов - 2 сут.

Овчины можно дезинфицировать и в растворе, содержащем 5 % алюмокалиевых квасцов и 20 % соли, при жидкостном коэффициенте 1:5 в течение 48 ч, а кроличьи шкурки - соответственно 4,5 и 18 % и 1:10 в течение 24 ч.

При бешенстве пaрные шкуры, полученные от бродячих собак в пунктах, неблагополучных по бешенству, обеззараживают высушиванием в специальной сушилке в течение 6 сут. или обрабатывают 10% - ным раствором поваренной соли и 1,5% - ным раствором алюмокалиевых квасцов в течение 12 ч и затем высушивают.

Шерсть, полученную от клинически здоровых животных неблагополучных по бешенству группы, вывозят из хозяйства в таре из плотной ткани только на перерабатывающие предприятия с указанием в ветеринарном свидетельстве о том, что она подлежит дезинфекции в соответствии с действующей "Инструкцией по дезинфекции сырья животного происхождения и предприятий по его заготовке, хранению и переработке".

Способы дезинфекции кожевенно-мехового сырья при основных инфекционных болезнях, представлены в таблице 14.

Таблица 14. Способы дезинфекции кожмехсырья при основных инфекционных болезнях

Название болезни	Состав дезраствора	Температура, ос	Жидк. коэф.	Экспозиция, часов
1 .Сибирская язва	Пикель: а)НСl-	30-35		1: 10	40-48
(сырье,	2,5%, NaC1-
подозреваемое в	1 0%;6)H2S04-0,7%,
заражении)	Na2SiF6-1%, NaC1-
	10%.
2. Ящур	а)Посолочная	не менее 10	На 100 кг	10-12 суток
	смесь: NaC1- 100ч.,			сырья 40 кг
	Na2SiF6-7ч.			смеси
	Предварительно
	шкуры орошают
	насыщенным
	раствором
	Nа2SiF6(10ч/л)
	б)Тузлук дез: NaC1	15-20 .		1:4	24
	25-26%
	(насыщ.раствор) +
	сода
	кальцинированная
	5%
	или биосульфат	-		-	6
	натрия 0,5%
	или NaOH 0,1%				24
	или NaOH 0,2%				12
	или укс. кислота				24
	0,08%
3. Рожа свиней,	Тузлук дез. NaC1-	15-20		1 :4	48
инфекционная	26%, НС 1-1 %
анемия лошадей
4. Чума, оспа	Тузлук дез. NaC1-	-		-	24
инфлюэнца	26%, сода
свиней.	кальцинированная -
	5%
5. Болезнь Ауески свиней	Тузлук дез. NaC1 -				48
	26%, HCl-1 %
6. Болезнь Ауески	а). Посолочная	не менее 10	на 100 кг сы-	4сут.
овец	смесь: NaCl- 90,		рья 50 кг сме-
	алюминиевые		си
	квасцы - 5%
	б). Дезраствор:
	алюминиевые
	квасцы -50 г, NaCl-
	260 г., воды -lл.
7. Болезнь Ауески	а). Сухой посол	не менее 10	1:1	Зсут.
кроликов	(см. п. 6).
	б). Дезраствор:	16-18	1 :5	24
	алюминиевые
	квасцы -45 г NaCl-
	80г, воды -lл
8. Инфекционный	Известковое	15	1 :4	12
Грипп, инфлюэнца	молоко:
лошадей	свежегашеная
	известь 1 кг, воды
	20л
9. Туберкулез	Шкуры	выпускают без ограничений
10. Бруцеллез КРС	Тузлук дез.: NaCl-	16-23	1 :4	20 затем в
(дезинфекция +	26%,Na2SiF6-0,3%,			штабель
консервирование)	Cu2SO4-0,05% (или
	алюминиевые
	квасцы 0,5%)
11.Бруцеллез МРС	Мехсырье	16-20	1 :5	20-22 далее
(дезинфекция +					сушка
консервирование)
	дезраствор: алюми-
	ниевые квасцы-2%,
	Na2SiF6-0,1%, ук-
	суснокислая медь
	0,05%КЗСг2O7-
	0,05% NaCl 10%.
	При последующем
	хранении овчин в
	сыром виде NaCl-
	26%
	шкуры овец и коз 1	не менее 10	1 :4	6 далее засолка
	% раствор
	хлорамина D в
	тузлуке или воде
12.дерматомикозы	Дез. тузлук:
	Na2SiF6-1%, H2SO4-
	0,7%, NaCl-25%
13.Шкуры с трупов	Профилакт. дез.:	16-18	1:4	24
животных, павших	дезраствор:
от незаразных	Na2SiF6-I%, H2SO4-
заболеваний	0,7%,NaCI-I0%
14. Шкуры от бродячих собак в пунктах, неблагополучных по бешенству	Профилакт.дез.: посол.смесь: NaCl-92,5%, алюминиевые квасцы -7,5%	Не менее 10 18-20	На 1 кг сырья 350 г смеси	3 суток
	б) дезраствор: NaCl-10% алюминиевые квасцы-1,5%	18-20	1:4	12
	в)спец.сушилки в токе воздуха	30		6 суток

Дезинфекция шерсти, пуха и пера

Сырье (шерсть, щетину, волос, козий пух), подозреваемое в заражении вирусами оспы, ящура и другими, а также неспорообразующими микробами, вызывающими острые инфекционные болезни, перед обеззараживанием рыхло упаковывают в мешки (тюки) по 20 - 30 и 50 кг и размещают в паровой дезинфекционной камере из расчета 50 кг на 1 м3 объема камеры таким образом, чтобы мешки не соприкасались между собой. При таком расположении пар беспрепятственно и в одинаковой степени будет проникать в глубь содержимого каждого тюка.

После того как сырье, подлежащее обеззараживанию, будет правильно размещено, дезинфекционную камеру обогревают до температуры 70 - 80°С и только после этого приступают к дезинфекции. Дезинфекцию проводят текучим паром при температуре 109 -111°С в течение 30 минут. Отсчет экспозиции начинают после того, как температура внутри запакованного сырья достигнет 105°С.

По такому же режиму текучим паром обеззараживают сырье, полученное в пунктах, неблагополучных по туляремии, или его выдерживают в изолированном помещении не менее 4 месяцев - срок, обеспечивающий естественную гибель возбудителя заболевания.

Доступ к такому сырью грызунов должен быть исключен.

Дезинфекция шерсти при бруцеллезе и чесотке в камере. Шерсть, полученную от животных, больных бруцеллезом или чесоткой, а также щетину, волос и козий пух из неблагополучных по бруцеллезу хозяйств обеззараживают текучим паром и промыванием в горячей воде. Текучим паром шерсь дезинфицируют в камерах Крупина при температуре 109 - 111 °С в течение 30 минут.

Для дезинфекции рыхло упаковывают в каждый мешок не более 50 кг шерсти и загружают из расчета 50 кг на 1 м3 камеры.

Этот метод надежно обеззараживает шерсть и дает возможность сортировать ее после обработки. Обеспечить массовую обработку шерсти паром не удается.

Дезинфекция шерсти при бруцеллезе и ящуре бромистым метилом. Дезинфекцию шерсти бромистым метилом независимо от вида ее упаковки (кипы или в мешках) осуществляют в стационарных газокамерах или под покрытием из полиамидной пленки.

При использовании вакуумной газокамеры шерсть дезинфицируют запрессованной в кипы, загружая их из расчета 150 кг на 1 м3 камеры. В камере шерсть укладывают на решетки в несколько ярусов, оставляя свободное пространство не менее 30 см между верхним ярусом кип и потолком камеры.

По окончании загрузки камеру закрывают, создают в ней вакуум до 40 - 60 мм остаточного давления и из баллона вводят бромистый метил из расчета 300 г на 1 м3 камеры.

Потребное количество бромистого метила, концентрация которого в кипах должна быть не менее 200 г/м 3 , вводят из баллона, установленного на десятичных весах вне камеры. Уменьшение веса баллона является показателем количества газа, введенного в камеру.

Конец подачи бромистого метила в камеру считают началом экспозиции, которая для полного обеззараживания шерсти при температуре не ниже 20°С длится не менее 12 часов.

Полнота дезинфекции шерсти достигается равномерным распределением в ней газа, для чего в течение первых 30 минут газопуска используют принудительную циркуляцию газовоздушной смеси. Концентрацию газа, взятого из четырех кип, определяют по методике ЦНИЛГ. При неравномерном распределении газа в кипах вентилятор дополнительно включают на 20-30 минут.

По окончании дезинфекции камеру проветривают путем четырехкратного создания в ней вакуума глубиной до 40 мм остаточного давления.

По окончании дегазации в камере путем пуска воздуха создают нормальное атмосферное давление и лишь после этого ее открывают.

Кипы шерсти для окончательного удаления из них остатков газа укладывают на двое суток на открытой площадке, затем из них берут пробы газа и по результатам его обнаружения судят о полноте дегазации.

Дезинфекция шерсти под полиамидной пленкой. Полиамидную пленку марки ТК-4, используемую для дезинфекции шерсти, склеивают, выкраивая из нее размер покрытия в зависимости от предполагаемого количества и объема укладываемых кип, подлежащих одновременной дезинфекции. Покрытию из пленки придают форму параллелепипеда, что наиболее удобно для покрытия штабеля кип шерсти.

Дезинфекцию проводят на специально отведенной площадке на земле или под навесом при температуре окружающего воздуха не ниже 12°С.

В зависимости от упаковки шерсть отдельно дезинфицируют или в кипах, или затюкованную в мягкую тару. Кипы укладывают рядами с промежутками в 30 см, а упакованную в мешки - произвольно.

Подготовленный штабель шерсти покрывают пленкой, под которую предварительно монтируют шланги: сверху один для подачи бромистого метила и у основания шесть шлангов для забора проб газовоздушной смеси с целью определения концентрации газа в глубине обрабатываемого объекта.

Стенки покрытия опускают в ровик, выкопанный вокруг штабеля, а концы плотно прикрывают землей.

Для равномерного распределения под пленкой газ вводят или с помощью гребенчатого устройства, или через трубку-крестовину, от которой отходят в разных направлениях шланги необходимой длины. Вследствие того, что бромистый метил тяжелее воздуха, его вводят сверху, для чего концы шлангов крепят или на верхней части кип, или на каркасе покрытия.

Дезинфекцию шерсти проводят при температуре 14-22°С. Доза бромистого метила, вводимого в камеру, может быть различной. Уменьшение дозы бромистого метила влечет за собой увеличение времени, необходимого для полного обеззараживания объекта, и уменьшение концентрации свободного газа в глубине кипы.

После дезинфекции пленку разрезают вдоль шва с трех сторон верхней стенки, шланги удаляют, а боковые стенки после 5-часовой дегазации свертывают в рулон или складывают конвертом. Покрытие при бережном хранении используют 3 раза. Кипы шерсти или шерсть, заложенную в мешки, в течение 5 дней дегазируют путем проветривания, после чего из глубины кип берут пробы на предмет обнаружения остаточных количеств газа. При отсутствии в них свободного бромистого метила дегазацию считают законченной, но наличие бромистого метила вызывает необходимость дальнейшей дегазации. Дегазации путем проветривания подвергают также мешкотару и другой материал.

Дезинфекция шерсти гамма-лучами. Многие отечественные и зарубежные исследователи доказали возможность обеззараживания сырья животного происхождения гамма-лучами. Так, английский ученый Хорне обрабатывал различными дозами гамма-лучей образцы шерсти, инфицированные Вас. anthracis, и установил, что доза 2,0 мрад достаточно безопасна в фабричном производстве, в частности для инактивации Вас. anthracis в кипах овечьей шерсти. Опыты были выполнены, чтобы выяснить вопрос о том, приемлема ли гамма-радиация для стерилизации импортной шерсти в Великобритании. В настоящее время в Англии узаконен метод обработки шерсти формальдегидом.

Основное преимущество радиационного метода обеззараживанияотносительная простота: требуемая доза излучения достигается подбором продолжительности облучения объектов в таре независимо от их плотности. При этом не только гибнут все микроорганизмы, но и исключается опасность заражения окружающей среды и заболевания людей. Предотвращается ущерб от необратимых процессов повреждения сырья в результате дезинфекции текучим паром или химическими средствами. К тому же два последних способа сопряжены с контролем за временем про ведения дезинфекции, температурой, давлением, вакуумом, концентрацией дезинфицирующего агента, упаковкой и влажностью сырья, что осложняет работу.

Пух и перо дезинфицируют при листериозе 2%-ным раствором формальдегида с добавлением 0,2 % сульфанола и 0,2 % кальцинированной соды в течение 1,5 ч при жидкостном коэффициенте 1 :30; при болезни Марека 3% - ным раствором формальдегида при температуре 45-50 ос в течение 2 ч при жидкостном коэффициенте 1: 15; при туберкулезе 2ч; при оспе, гриппе, инфекционном ларинготрахеите, колибактериозе в течение 30 мин после дезинфекции сырье отжимают от влаги и высушивают; при ньюкаслской болезни пух, перо сжигают или упаковывают в мешки и обеззараживают горячим паром в камерах в течение 45 мин при давлении 5 Па.

Дезинфекция шерсти, щетины, волоса, пера и пуха (волосовидного сырья) при сибирской язве, ящуре, оспе, туляремии, бруцеллёзе, чесотке, ящуре, чуме птиц.

Для обеззараживания волосовидного сырья применяются следующие способы:

а) Текучий пар в камерах под давлением (автоклавы и другие камеры 0,5 атм., t?пара 111-112°С, т.е. стерилизация; 1 час 45 минут - 1 час;

б) Метод горячей мойки шерсти при температуре воды 55 ос, с последующей сушкой при температуре +75-80 ос с выдержкой 30 мин.

в) Горячий воздух в сушилках при 85-90 оС, с выдержкой 20 мин.

г) Горячая вода 90-95 оС путём подогрева её пропусканием текучего пара, с выдержкой 20 мин.

д) Пароформалиновой смесью в специальных камерах (15-20 мин.)

е) Вымачиванием в растворах формальдегида (1 час 30 мин.; 4 часа - туляремия)

ж) В растворах хлорсодержащих препаратов (в частности - гипохлорида натрия)

з) Газами: бромистым метилом, (БМ) и смесью окиси этилена и бромметила (ОКЭБМ) под полиамидной плёнкой или в газокамерах.

Дезинфекция шерсти, щетины, волоса, пера, пуха представлены в таблице 21.



Таблица 15. Дезинфекция шерсти, щетины, волоса, пера, пуха

Название болезни	Текучим паром 50 кг/мЗ камеры	Формальдегидом при рыхлой упаковке
	Мешки, кг	Температура °С, 0,5 атм	Экспозиция	Концентрация раствора	Темпера-тура, °С	Экспозиция
Сибирская язва (подозрение в заражени)	50, 30, 20	111-112	1 ч. 45 мин I ч. 20 мин 1 ч. 10 мин	2,5	18-20	10ч.
Ящур, оспа, туляремия и др. неспорообра-зующие инфекции	50 20 50	111 109 110	30 мин 30 мин 30 мин	Туляремия с выдержкой 4 часа
	или горячая мойка при 50°С и сушка при 75-80°С
Бруцеллез
Чесотка		110	30 мин
Ящур (неблагополучные и подозреваемые в заражении)				2,5 2,5	18-20 38-40	3 часа 1 час
Чума птиц (больные и подозреваемые в заражении)	60 кг/мЗ	Сжигают 111	45 мин'	1+0,2% Na2CO3	48-50	1 ч. 30 мин перо-пух 30 мин пух
Профилактическая дезинфекция все сырье на санитарно-гигиенические цели	60 кг/мЗ	111	45 мин

Дезинфекция кости

Кости, получаемые с пищевых предприятий, боен, мясокомбинатов, колбасных заводов и т.п., считают благополучными в ветеринарно-санитарном отношении и направляют для переработки без каких-либо ограничений.

Кости, рога, копыта неизвестного происхождения, собранные на полях, на свалках и других местах, предварительно дезинфицируют.

Вся кость, рога и копыта полевые (т.е. неизвестного происхождения) перед отгрузкой подлежат обязательной профилактической дезинфекции.

Дезинфекция должна проводиться только влажным - ванным способом, путём погружения в дезинфекционный раствор с соблюдением санитарного режима (наличие "грязного" и "чистого" отделений).

Дезинфекция проводится в одном из следующих растворов:

а) раствор хлорной извести с содержанием 5% акт. хлора при экспозиции 6 ч.

б) 2,5% раствор формальдегида - б ч

в) 3% раствор формальдегида -4ч

г) 4% раствор формальдегида -2ч

ЖК 1:4 при этом сырье должно быть полностью погружено в

дезинфекционный раствор

Температура раствора не менее 15°С, после дезинфекции

кость просушивают.

Раствор активного хлора годен для однократного

применения. После соответствующей экспозиции раствор хлорной извести спускают в канализацию, растворы формальдегида можно использовать

повторно при добавлении недостающего количества АДВ.

Дезинфекция соли

На складах кожевенного сырья при сортировке шкур освобождается много соли, в следствие чего на территории накапливаются значительные ее количества. Сюда же попадает и соль со шкур, давших при исследовании положительную реакцию преципитации на сибирскую язву.

Использовать такую соль для технических целей и увозить ее с территории склада можно только после дезинфекции.

Надежное обеззараживание может быть достигнуто только после применения высокой температуры. Для этих целей на кожсырьевом заводе применяют установку, которая представляет собой металлическую вращающуюся печь длиной 9 м, расположенную на зубчатом валу. Внутри по длине печи имеются ребристые выступы. Печь установлена на высоте 3-4 м. Более высокая сторона печи соединена с бункером, куда по транспортеру вверх подается подлежащая обеззараживанию соль.

Бункер загружают грязной солью. В топке разжигают угли или дрова. Пламя из топки через нижний конец печи устремляется навстречу движущейся соли. Температура в нижнем конце печи равна 800єС, а в верхнем 400єС. Все органические примеси (деревянные бирки, кусочки веревки и т.п.) сгорают, всякая микрофлора гибнет.

Обеззараженную воль используют для технических целей в химическом производстве.

Дезинфекция помещений для переработки сырья животного происхождения

Цехи кожевенно-сырьевых заводов

Определенных указаний в отношении дезинфекции цехов и аппаратуры кожевенных заводов нет. И. А. Егоров, проводивший опыты дезинфекции зараженной возбудителем сибирской язвы аппаратуры на кожевенных заводах, установил, что концентрация и вирулентность спор бацилл сибирской язвы в жидкостях, остающихся после переработки кожевенного сырья, различны. Поэтому нельзя подходить шаблонно к дезинфекции всех цехов кожевенного завода.

При выборе дезинфицирующего средства автор исходил из свойств среды дезинфицируемого объекта. Так, для дезинфекции отмочных чанов (жидкость с рН 8,11) использовали раствор хлорной извести; для зольных чанов (жидкость с рН от 10,15 до 11) хлорную известь или едкий натр; для пикельных барабанов (жидкость с рН 3,98) - раствор технической соляной кислоты; для дубильных и красильных барабанов (жидкость с рН 5,2-8,4) растворы технической соляной кислоты или каустической соды.

Перед дезинфекцией чаны, барабаны и другие приспособления очищали снаружи и изнутри и орошали подогретыми 2%-ным раствором каустической соды, или 2%-ным раствором - технической соляной кислоты, или 4%-ным раствором хлорной извести.

В отмочном цехе искусственно нанесенные на аппаратуру и инвентарь (чаны, решетки, козелки, настилы и т. п.) споры возбудителя сибирской язвы погибали после применения взвеси хлорной извести, содержащей 5 % активного хлора, при экспозиции не менее 1 часа.

В зольном цехе наилучший эффект был достигнут после применения 1%-ного раствора едкого натра при часовом воздействии, а в пикельном дубильном цехах - 10-15%-ных растворов технической соляной кислоты в течение 1 часа.

Для дезинфекции дубильных и красильных барабанов применяют 10%-ный раствор едкого натра при экспозиции не менее 1 часа. Но при дезинфекции естественно зараженных объектов концентрация указанных растворов, должна быть снижена, так как при искусственном нанесении культуры степень заражения их в описываемых опытах была чрезвычайно велика.

Цехи шерстеперерабатывающих предприятий

Обеззараживание оборудования, в частности кардочесальных машин, довольно затруднительно.

Кардочесальная лента машины (длинный войлочный ремень с вмонтированными в него стальными тонкими иглами) в результате постоянного соприкосновения с шерстью покрывается жиропотом, который предохраняет микроорганизмы от воздействия химических дезинфицирующих средств. Применение для дезинфекции таких средств, как едкие щелочи, приводит к разрушению войлочной основы ленты, а препараты хлора вызывают ржавчину стальных игл.

Наиболее пригодными для обеззараживания машин оказались формалино- скипидарная или формалино-керосиновая эмульсии. Такие составные части, как скипидар и керосин, очищают кардочесальную ленту от масла и жиропота и тем самым дают возможность формалину непосредственно воздействовать на микробы. Препарат СК-9 введен для придания стойкости эмульсии, для ее стабилизации.

В помещении дезинфекцию можно проводить при температуре не ниже 100оС, причем чем выше температура в помещении, тем меньше формальдегида можно брать для приготовления эмульсии. Так, при температуре 10-20 оС используют эмульсию, содержащую 4 % формальдегида, тогда как при температуре выше 20 оС концентрацию формальдегида можно уменьшить до 3 %.

Перед дезинфекцией эмульсию подогревают до 50 оС, что значительно усиливает ее спороцидные свойства. Во время работы эмульсию следует периодически взбалтывать.

Дезинфекцию машин осуществляют по общему принципу, т. е. предварительно их орошают эмульсией из гидропульта, после чего очищают от грязи, пыли и масла и только тогда приступают к собственно дезинфекции.

Съемные валики, обтянутые кардочесальной лентой, снимают и дезинфицируют над железным корытом, чтобы сохранить дезинфицирующую жидкость для последующего обеззараживания других частей машины. При этой операции кардочесальная лента обычно погружена в эмульсию, и при вращении валика вся ее поверхность медленно передвигается через дезинфицирующую жидкость.

Концы валика смачивают эмульсией при помощи малярной кисти. Неснимаемые части машины и кардочесальной ленты орошают эмульсией. В закрытые винтовые поверхности эмульсию вводят лейкой-масленкой. Все эти части, особенно кардочесальную ленту и кожаные ремни, дезинфицируют только формалино-скипидарной эмульсией.

Остальные части машины, не покрытые кардочесальной лентой, а также пеньковые ремни и металлические щетки обеззараживают или формалино-скипидарной, или формалино-керосиновой эмульсией.

Через 40 минут после дезинфекции валики и все другие части очищают над корытом от загрязнений, затем ставят на свое место, пускают машину и включают вентиль, чтобы удалить с кардоленты и из помещения остатки дезинфицирующей жидкости.

После высушивания машину смазывают машинным маслом.

Камеры для обеззараживания кожсырья

Следует различать дезинфекцию загрузочного и разгрузочного отделений камеры.

Разгрузочное отделение камеры дезинфицируют с профилактической целью 1-2 раза в неделю (при постоянной работе), используя для этого раствор хлорной извести, содержащий 2-4% активного хлора, или 5-10%-ный раствор едкого натра.

В загрузочное отделение камеры вносят такое количество сырья, которое необходимо для трех полных загрузок камеры. После обработки такого количества сырья это отделение камеры орошают дезинфицирующей жидкостью, очищают от загрязнений и обеззараживаю раствором, содержащим 4-5% активного хлора. Верхние части внутренних поверхностей чанов дезинфицируют обмыванием пикелем.

Заводы по производству мясокостной муки

Заводы имеют своей задачей переработку в мясокостную муку трупов животных, боенских конфискатов, отходов кожевенно-сырьевой промышленности, непищевых отходов рыбной промышленности.

Корпус завода и двор делят на две строго изолированные зоны - неблагополучную и благополучную в ветеринарно-санитарном отношении. Между зонами высокая глухая стена с расположенными в ней санпропускниками и дезинфекционным пунктом. В неблагополучную зону двора завозят сырье и в помещении с этой стороны разделывают трупы, снимают шкуры, загружают сырье в горловину котла, а шкуры - в дезинфекционную камеру. На выезде из этой зоны в благополучную в дезинфекционном пункте дезинфицируют автотранспорт.

В благополучной части корпуса завода размещено технологическое оборудование для переработки сырья, выгрузки шкур из дезинфекционной камеры. На благополучной территории размещены хозяйственные склады, котельная, гараж и др.

Территорию неблагополучной зоны покрывают твердым покрытием, что позволяет постоянно поддерживать чистоту и систематически осуществлять дезинфекцию. Кроме двора, дезинфекции подвергают также производственные и бытовые помещения, оборудование в них и инвентарь, специальную и санитарную одежду, спецавтотранспорт, доставляющий сырье на завод, а также шкуры, снятые с трупов.

Помещение неблагополучной части завода ежедневно после работы вначале также освобождают от сырья, которое уносят в холодильную камеру, затем промывают пол и стены из шланга горячей водой и дезинфицируют. В качестве дезинфицирующих средств используют взвесь хлорной извести с содержанием в ней 3 % активного хлора, 4 %-ный горячий раствор едкого натра или 2 %-ный раствор формальдегида.

В неблагополучном помещении ежедневно также дезинфицируют тележки, ковши, чаны, лебедки и другое оборудование. Предварительно горячей водой и раствором кальцинированной соды их освобождают от крови, слизи и особенно жира и лишь потом применяют вышеупомянутые растворы.

Этими же средствами дезинфицируют территорию неблагополучной зоны, осуществляя эту меру не реже двух раз в 10 дней. При доставке на завод сибиреязвенного трупа дезинфекции подвергают всю территорию неблагополучной зоны помещения, автомашину и все то, с чем соприкасался труп. Дезинфекцию трехкратно с интервалами 1 час осуществляют раствором хлорной извести, содержащим 5% активного хлора, или 4%-ным раствором формальдегида, 10%-ным раствором однохлористого йода, или 10%-ным раствором едкого натра температуры 80-90 оС.

Профилактическую дезинфекцию помещений и территорий благополучного сектора проводят 1 раз в 30 дней, используя для этого вышеуказанные растворы в концентрациях, пригодных для уничтожения неспорообразующей микрофлоры.

Дезинфекция тары

Всю тару, используемую для сырья животного происхождения, очищают и дезинфицируют. Мягкую тару, веревки и другие предметы, подозреваемые в заражении возбудителем сибирской язвы, обеззараживают кипячением в 1- 2%-ном растворе кальцинированной соды в течение 1 ч 30 мин с момента закипания, а при дрyгиx инфекционных болезнях, вызываемых неспорообразующей микрофлорой, - в течение 30 мин.

Деревянную и железную тару обрабатывaют трехкратно с интepвалом 1 ч одним из следующих растворов: взвесью хлорной извести с содержанием 5 % активного хлора; горячим 10% - ным раствором гидpoксида нaтpия; 4%- ным раствором формальдегида с экспозицией 3 ч после последнего нaнeceния. После дезинфекции тару хорошо промывaют горячей водой. Норма расхода дезинфицирующих веществ 1 л на 1 мІ обрабатываемой поверхности.

Обеззараживание спецодежды, обуви, предметов ухода за животными

Регуляция дезинфекции и стирка одежды имеет не только гигиеническое, но и противоэпизоотическое значение. В ветеринарной практике зарегистрировано немало случаев заноса на одежде обслуживающего персонала в животноводческие хозяйства возбудителей инфекционных болезней.

Стирку и профилактическую дезинфекцию спецодежды работников, занятых на обслуживании животных и приготовлении кормов, проводят по установленному в хозяйстве графику, но не реже одного раза в неделю, а также каждый раз при переводе работника на обслуживание новой группы животных даже в пределах одного цеха (участка, бригады).

Спецодежду работников санитарно-убойного пункта и подменных рабочих стирают и дезинфицируют ежедневно или в дни, соответственно графику подмены.

Профилактическая дезинфекция спецодежды и обуви на сырьевых предприятиях должна проводиться не реже 1 раза в декаду, а спецодежда заготовителей - каждый раз перед выездом в новое хозяйство. Вынужденную дезинфекцию проводят по указанию ветслужбы. Спецодежда работников, занятых на обслуживании животных, больных подозрительных по заболеванию инфекционными болезнями, не опасными для человека, подлежит стирке и дезинфекции по мере загрязнения, но не реже двух раз в неделю, а при зооантропонозах или проведении диагностических исследований больных животных - ежедневно.

Перед отправкой спецодежды для обеззараживания полиэтиленовые мешки или бачки, в которые она сложена, орошают снаружи дезинфицирующим раствором, рекомендованным при данной болезни.

В помещениях для содержания животных, больных или подозрительных по заболеванию опасными инфекционными болезнями, должны быть постоянно запасные комплекты спецодежды для обслуживающего персонала и ветеринарных специалистов.

В каждом помещении, где содержатся больные или подозрительные по заболеванию опасными инфекционными болезнями животные, должны быть бачки, ванночки или иные емкости с дезинфицирующим раствором и щетки (ерши) для очистки и обработки перчаток, фартуков, обуви и спецодежды обслуживающего персонала.

Выход за пределы эпизоотического очага в грязной спецодежде, обуви, а также вынос их за пределы помещений без защитной упаковки не допускается.

Обувь дезинфицируют каждый раз при входе в производственные помещения и выходе из них. Для дезинфекции обуви у входа в помещение для животных и каждую изолированную их часть, кормоприготовительные, склады кормов, санитарно-убойный пункт и другие сооружения, расположенные на территории производственной зоны, устанавливают дезковрики, заполненные опилками, поролоном или другим пористым эластичным материалом, или дезванночки. Дезковрики периодически обильно пропитывают дезинфицирующим раствором, соответствующим по активности вида возбудителя, а в дезванночки наливают раствор на глубину 10 см.

Спецодежду дезинфицируют парами или аэрозолями формальдегида, методом замачивания в дезинфицирующих растворах, кипячением или текучим паром.

Спецодежду обеззараживают парами формальдегида в огневой паровоздушной пароформалиновой камере (ОППК), как предусмотрено действующей инструкцией по дезинфекции спецодежды и других предметов в огневой паровоздушной пароформалиновой камере.

Обеззараживанию в ОППК подлежат изделия из меха, кожи, резины, хлопчатобумажных тканей, брезента, войлока, металлов, дерева.

Меховые и кожаные изделия во избежание их порчи перед обеззараживанием в ОППК предварительно высушивают.

При отсутствии ОППК спецодежду дезинфицируют также аэрозольным методом (в очаге ящура). для этого ее свободно развешивают в небольшом герметично закрывающемся помещении, в которое при помощи аэрозольного генератора вводят аэрозоль формалина, содержащего не менее 37% формальдегида (30 мл на 1 м3 помещения), температура при этом должна быть не ниже 15 ?С. Экспозиция 3 ч. с момента окончания генерирования аэрозоля.

Методом замачивания в дезинфицирующих растворах обеззараживают

вещи и изделия из резины, войлока, хлопчатобумажных тканей, брезента, металлов, дерева, а также не портящихся под действие дезинфицирующих растворов полимерных материалов и тканей из синтетического волокна.

Для обеззараживания спецодежды и других изделий методом замачивания применяют дезинфицирующие растворы, указанные в таблице 16.

Табл. 16. Режимы дезинфекции спецодежды, мягкой тары и предметов ухода за животными

Микроорганизмы	Обеззараживаемые материалы	Дезинфицирующее средство	Концентрация раствора	Экспози- ция обез- заражива- ния, ч.
Неспорообразующие микробы и вирусы	Изделия из х.-б. и прорезиненных тканей, войлока, брезента, резины, металлов, синтетических волокон, полимерных материалов Изделия из кожи	Хлорамин Хлорамин Лизол Формальдегид Хлорамин Формальдегид	1 3 3 2 5 4	5 2 2 2 2 2
Микобактерии	то же Изделия из кожи	Формальдегид Щелочной раствор формальдегида Формальдегид Хлорамин	4 3% формальдегида и 3% натра едкого 4 5	2 2 2 4
Дерматофиты	Изделия из х.-б. и прорезиненных тканей, войлока, брезента, резины, металлов, синтетических волокон, полимерных материалов	Щелочной раствор формальдегида	2% формальдегида и 1% натра едкого	2
Спорообразую-щие микробы	Изделия из х.-б. и прорезиненных тканей, войлока, брезента, резины, металлов Изделия из кожи	Активированный раствор хлорамина Формальдегид То же Хлорамин	1% хлорамина + 1% сернокислого или хлористого аммония 4 4 5	2 4 4 4

Изделия из х.-б. тканей, войлока, брезента, дерева и металлов дезинфицируют также путем кипячения в 1%-ном растворе кальцинированной соды в течение 30 мин. при обсеменении неспорообразующими микроорганизмами и вирусами и 90 мин. - для уничтожения споровой микрофлоры.

Термостойкие изделия обеззараживают текущим паром в автоклаве при давлении 1 кгс/см2 (120±2 єС) в течение 30 мин. для уничтожения неспорообразующих микроорганизмов и вирусов и при давлении 2 кгс/см2 (132±2 єС) в течение 90 мин. при обсеменении споровой микрофлорой.

Спецодежду и другие изделия из ткани и волокон, загрязненные кровью или выделениями животных, перед кипячением или автоклавированием замачивают в холодной воде с добавлением 2% кальцинированной соды; экспозиция 2 ч.

Контроль качества дезинфекции спецодежды

Качество дезинфекции спецодежды, мешкотары и прочих изделий из тканевых материалов, подвергаемых обеззараживанию в камерах, методом замачивания в дезинфицирующем растворе, кипячением или по режимам одновременной стирки и дезинфекции, контролируют по выделению тест-культур микроорганизмов из тест-объектов, закладываемых в подлежащий обеззараживанию материал.

При контроле качества дезинфекции в очагах бактериальных (кроме туберкулеза) и вирусных инфекций в качестве тест-культуры используют музейные штаммы кишечной палочки, в очагах туберкулеза и малоизученных вирусных инфекций - золотистого стафилококка, в очагах споровых инфекций - Bac.Cereus.

В качестве тест-объектов используют кусочки батистовой ткани, импрегнированные соответствующей тест-культурой.

Тест-объекты (по 2 шт.) закладывают в стерильные мешочки размером 5 х 8 см, изготовленные в виде конверта из той же ткани, что и подлежащие обеззараживанию изделия. Мешочки с вложенными в них тест-объектами помещают в карман спецодежды или пришивают нитка ми к подлежащим обеззараживанию изделиям.

При дезинфекции (методом замачивания в дезинфицирующих растворах или кипячением) изделия с заложенными в них тест-объектами размещают послойно в низу, в середине и в верхней части емкости, а при обеззараживании в камере - в разных местах ее.

По истечении экспозиции дезинфекции или цикла стирка - отполаскивание - отжим при использовании метода одновременного обеззараживания и стирки мешочки с тест-объектами помещают в стерильные чашки Петри и доставляют в лабораторию для исследования.

В лаборатории после извлечения из мешочка каждый тест-объект промывают 5 мин в растворе соответствующего нейтрализатора и стерильной водопроводной воде (или дважды в воде, если нейтрализатор неизвестен), и помещают в пробирку с соответствующей питательной средой. Если дезинфекцию проводили методом кипячения без добавления кальцинированной соды, дополнительного промывания тест-объектов не требуется.

При контроле качества дезинфекции по выделению кишечной палочки посев проводят в модифицированную среду Хейфеца или КОДА, для выделения стафилококка - в солевой МПБ, для выделения Bac.Cereus - в МПБ.

Качество дезинфекции признают удовлетворительным при отсутствии роста тест-культуры во всех пробах.

Контроль качества дезинфекции объектов животноводства

Контроль качества проводят в три этапа:

Контроль подготовки объектов к дезинфекции (проверяют степень очистки поверхностей, их увлажненность, защиту электрооборудования и приборов, герметизацию помещений) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за ее проведение;

Контроль за соблюдением установленных режимов дезинфекции (выбор препарата и метода дезинфекции, концентрация, температура раствора, равномерность увлажнения поверхностей дезинфицирующим раствором, соблюдение параметров производительности используемых машин и аппаратов, качество распыления раствора) проводит ветеринарный специалист, ответственный за это мероприятие;

Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляет специалист ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.

Бактериологический контроль качества дезинфекции должен быть неожиданным, без предварительного уведомления работников, ответственных за проведение дезинфекции и исполнителей этих работ о месте и времени сбора проб для исследования.

При бактериологическом контроле качества дезинфекции устанавливают наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов - бактерий группы кишечной палочки (Escherichia, Citobacter, Enterobacter), стафилококков (aureus epidermatis Saprophities), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacilеs.

По устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам кишечная палочка не уступает многим патогенным неспорообразующим и некокковым микроорганизмам или превосходит их. Установлено, что если при дезинфекции будет уничтожена кишечная палочка, будут уничтожены и возбудители таких болезней, как бруцеллез, сальмонеллез, колибактериоз, рожа и др.

По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях, заключительной дезинфекции при туберкулезе, сапе, туляремии, орнитозе, стрептококкозе, некробактериозе, бешенстве, чуме всех видов животных и др.

Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют по выделению стафилококков и микобактерий; при сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях - по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.

После проведения дезинфекции и последующей экспозиции с участков, подвергаемых контролю, отбирают пробы стерильными ватно-марлевыми тампонами, смоченными в стерильном нейтрализующем растворе или воде.

Участки площадью 10 см2 тщательно протирают до полного снятия с поверхности всех имеющихся на ней загрязнений, после чего тампоны помещают в пробирку с нейтрализующей жидкостью. Плотные загрязнения (корочки) снимают с помощью стерильного скальпеля и переносят в эту же пробирку.

Нейтрализует хлорсодержащие дезинфицирующие средства раствор гипосульфита; щелочные растворы - раствор уксусной кислоты; формалин - раствор аммиака (нашатырный спирт); кислоты, перекись водорода и ее производных - раствор бикарбоната натрия.

Нейтрализующие растворы готовят в концентрации в 10 раз меньше, чем концентрация дезинфицирующего средства.

При использовании для дезинфекции щелочного раствора формальдегида участки сначала увлажняют раствором аммиака, затем - раствором уксусной кислоты.

При дезинфекции препаратами, для которых нет нейтрализаторов, применяют стерильную водопроводную воду.

Смывы должны быть доставлены в лабораторию в течение 3-6 ч с момента взятия, отпечатки - не позднее 2 ч.

Пробы, каждую в отдельности, отмывают в той же пробирке путем нескольких погружений и отжатий тампона. Последний удаляют, а жидкость центрифугируют 20-30 мин при 2000-3500 об/мин. Затем надосадочную жидкость слиавют, в пробирку наливают такое же количество стерильной воды, содержимое смешивают и снова центрифугируют. Надосадочную жидкость сливают, а из центрифугата делают посевы. Для индикации кишечной палочки 0,5 см3 центрифугата высевают в пробирки с модифицированной средой Хейфеца или Кода. Посевы выдерживают 12-18 ч в термостате при 38С. Изменение сиренево-красного цвета среды в зеленый или салатовый с помутнением их и образованием газа свидетельствует о росте кишечной палочки.

Другие изменения цвета (желтоватый, розовый, сероватый), наблюдаемые при росте микроорганизмов других видов, не учитываются.

В сомнительных случаях делают подтверждающий посев с жидких сред на агар Эндо. Посевы инкубируют 12-16 ч при 38С.

Для индикации стафилококков 0,5 см3центрифугата высевают в 5 см3 МПБ с 6,5% хлористого натрия. Через 24 ч инкубирования посевов при 38С делают пересевы бактериологической петлей на 8,5%-ный солевой мясопептонный агар. Посевы выдерживают в термостате 24-48 ч при 37-38С. Из выросших культур для подтверждения роста стафилококков готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют.

Для индикации спорообразующих анаэробов пробы отмывают в той же пробирке, прогревают 30 мин на водяной бане при 65С, затем центрифугируют 20-30 мин при 3000-3500 об/мин. После этого надосадочную жидкость сливают, в пробирку наливают такое же количество стерильной воды, содержимое смешивают и снова центрифугируют. Из центрифугата каждой пробы делают посевы в одну пробирку с МПБ и на две чашки и МПА.

Для контроля качества дезинфекции при сибирской язве МПА может быть заменен дифференциально-диагностической средой. Посевы инкубируют 24-28ч в термостате при 37С.

При росте на МПА подсчитывают колонии и изучают морфологию их при малом увеличении микроскопа. При подозрении на выделение возбудителя сибирской язвы идентификацию такой культуры проводят в порядке, предусмотренном методическими указаниями.

Под действием паров аммиака происходит порозовение колоний микроорганизмов, обладающих фосфатазной активностью. Bac. Anthracis фосфатазной активностью не обладают, и ее колонии остаются бесцветными.

При отсутствии роста или характерных колоний на плотных питательных средах и наличии роста в МПБ делают дробные посевы из МПБ на плотную питательную среду.

При просмотре посевов учитывают общее число проб, в которых обнаружен рост санитарно-показательных микроорганизмов, а при споровой инфекции - и колонии непатогенных спорообразующих аэробов рода Bacillus.

Метод ускоренного контроля качества дезинфекции

Для исследования используют предметные стекла размером 2,5Ч7,5 см. В стерильном боксе на подготовленные предметные стекла наносят тонкий слой расплавленной элективной питательной среды. Для выделения группы кишечной палочки используют агар Эндо, для стафилококков - 8,5%-ный солевой мясопептонный агар (рН 7,2-7,4).

Застывшую на стекле массу подсушивают при комнатной температуре до появления вокруг нее сухой полосы шириной 0,5-1 мм, после чего стекла помещают в пластмассовые ванны. Ванны предварительно увлажняют путем нанесения на дно 1 мл стерильной воды.

На месте дезинфекции в животноводческих помещениях пробы берут с поверхностей 10-20 различных участков: пола, стен, кормушек, перегородок и т.д.

Через 2-3 часа после проведения профилактической дезинфекции или по истечении определенной экспозиции при текущей дезинфекции контролируемые участки смачивают нейтрализующим раствором и стерильной водой.

Предметные стекла извлекают из ванн, не касаясь участка с застывшей питательной средой, и накладывают на исследуемый объект таким образом, чтобы питательная среда соприкасалась с его поверхностью. Через 2 мин пробы-отпечатки отделяют от контролируемого объекта и помещают в прежние ванны. Ванны с пробами-отпечатками доставляют в лабораторию и помещают в термостат при 37С на 16-18 ч.

После инкубирования пробы просматривают невооруженным глазом на наличие роста.

При отсутствии макроколоний и изменения среды пробы дальнейшим исследованиям не подвергают. В сомнительных случаях, когда отсутствует рост макроколоний, но изменены цвет или прозрачность среды, пробы-отпечатки высушивают на воздухе до полного подсыхания среды, фиксируют над пламенем горелки, окрашивают по Муромцеву и микроскопируют с целью обнаружения микроколоний.

Качество профилактической дезинфекции помещений для молодняка и птицы признают удовлетворительным при отсутствии роста санитарно-показательных микроорганизмов в 90% исследованных проб.

При профилактической дезинфекции помещений для содержания взрослого поголовья и текущей дезинфекции частично освобожденных от животных или неизолированных помещений допускается выделение санитарно-показательных микроорганизмов в 20% исследованных проб.

Качество заключительной дезинфекции при ее контроле по выделению бактерий группы кишечной палочки, стафилококков, грибов и микобактерий признают удовлетворительным при отсутствии выделения названных культур во всех исследованных пробах.

При споровых инфекциях качество дезинфекции признают удовлетворительным при отсутствии роста спорообразующих аэробов рода Bacillus.

При прямом посеве на МПА допускают рост единичных (не более трех в смыве) колоний непатогенных спорообразующих аэробов рода Bacillus.

Контроль качества профилактической аэрозольной дезинфекции, проводимой формалином, основан на окрашивании индикаторной среды под воздействием газовой и капельной фаз аэрозоля формальдегида. Индикатором служит среда Эндо, которая под воздействием формальдегида в процессе аэрозольной дезинфекции приобретает резко очерченное красное окрашивание.

Перед проведением дезинфекции индикаторные пробирки размещают на полу, стенах, потолках, предварительно снимая с них колпачки. Оценку качества дезинфекции проводят непосредственно после окончания экспозиции 12 или 24 ч. Линейкой с миллиметровой шкалой измеряют длину окрашенного столбика индикаторной среды, начиная с обреза пробирки. Дезинфекцию считают удовлетворительной, если глубина окрашивания среды после экспозиции 12 ч составляет не менее 18 мм, а после экспозиции 24-30 мм.

3.5 Контрольные вопросы и задания

1. Что понимают под дезинфекцией в широком смысле слова?

2. На какое звено эпизоотической цепи направлена дезинфекция?

3. Перечислите основные задачи, виды и методы дезинфекции?

4. Сущность и средства физического метода дезинфекции.

5. Преимущества и недостатки химического метода дезинфекции.

6. Каковы формы применения химических дезинфицирующих средств?

7. На какие группы делятся химические дезинфицирующие средства? Механизм действия на микробную клетку щелочей, кислот, хлорсодержащих препаратов, фенолов, солей тяжелых металлов и формалина.

8. Какие требования предъявляются к химическим дезинфицирующим средствам?

9. Чем определяется выбор дезинфектантов?

10. Сущность и средства биологической дезинфекции.

11. Какие условия требуются для проведения аэрозольной дезинфекции помещений?

12. Какие средства используют для дезинфекции помещений в присутствии животных?

13. Как осуществляют контроль качества дезинфекции?

14. Дезинфекция бактерицидными пенами.

15. Какие вы знаете пенообразующие дезинфицирующие средства?

16. Дезинфекция электрохимически активными растворами хлорида натрия.

16. Методика определения активного хлора в хлорной извести.

17. Методика определения хлора в растворе хлорной извести.

18. Определение процентного содержания формальдегида в формалине.

19. Методика определения концентрации едкого натра в растворе.

20. Методика расчета количества дезинфицирующих средств для приготовления растворов.

21. Задача 1: Рассчитать необходимое количество хлорной извести и воды для дезинфекции помещения, площадь которого равна 1000 м2 (для дезинфекции при сибирской язве).

22. Задача 2: Рассчитать необходимое количество формалина, едкого натра и воды для приготовления 1000 л щелочного раствора формальдегида для дезинфекции при туберкулезе.

23. Составить акт о проведенной дезинфекции.

24. Как провести уборку трупов?

25. Укажите способы обеззараживания трупов.

26. Как уничтожить труп животного, павшего от сибирской язвы?

27. Перечислите способы обезвреживания навоза.

28. Как обеззараживают навоз при споровых и неспоровых инфекционных болезнях?

29. Контроль качества обеззараживания навоза.

30. На чем основано биотермическое обезвреживание навоза?

31. Как проводят обеззараживание почвы?

32. Обеззараживание спецодежды, обуви, предметов ухода за животными.

33. Как проводят дезинфекцию автомобильного транспорта после перевозки животных, кормов, больных животных, навоза?

34. Какие вы знаете пенообразующие дезинфицирующие средства?

35. Назовите основные аппараты и машины для влажной, аэрозольной и пенной дезинфекции.

36. Назовите ветеринарно-санитарные объекты местного и общехозяйственного назначения.

37. Какие Вы знаете ветеринарно-санитарные объекты на предприятиях крупного рогатого скота и свиноводческого хозяйства?

38. Назовите состав производственных помещений ветсанпропускника, ветеринарного пункта, убойно-санитарного пункта.

39. Какие Вы знаете ветеринарные учреждения и их функции?

40. Перечислите объекты дезинфекции в кролиководстве.

41. Как производятся профилактическая и текущая дезинфекции объектов кролиководства?

42. Перечислите объекты дезинфекции в хозяйствах (питомниках, предприятиях) при инфекционных болезнях собак и пушных зверей.

43. В чем заключается профилактическая дезинфекция в питомниках собак и звероводческих хозяйствах?

44. Какие дезинфицирующие средства применяют для вынужденной дезинфекции в звероводческих хозяйствах?

45. Какие применяют дезинфицирующие средства для профилактической дезинфекции кормокухонь в звероводческих хозяйствах?

46. Как проводится текущая дезинфекция в питомниках собак?

47. Как производится обеззараживание спецодежды?

48. Какие бактерицидные пены применяют для дезинфекции помещений и клеток для содержания собак, и пушных зверей?

49. Как провести обеззараживание жилого помещения после гибели собаки от чумы?

50. В чём заключаются особенности распространения инфекционных болезней пчёл по сравнению с животными?

51. Назовите объекты дезинфекции в пчеловодстве.

52. Как производится профилактическая дезинфекция в пчеловодстве?

53. Какие дезинфицирующие средства применяют для дезинфекции в пчеловодстве?

54. Какие проводятся ветеринарно-санитарные мероприятия при появлении инфекционных болезней на пасеке?

55. Как проводится вынужденная дезинфекция при отдельных болезнях пчёл?

56. Какие дезинфицирующие средства применяются при вынужденной дезинфекции в пчеловодстве?

57. Как проводится заключительная дезинфекция поверхностного слоя почвы при мешотчатом расплоде и вирусном параличе пчёл?

58. Опишите режим дезинфекции при Американском и Европейском гнильцах пчёл.

59. Какие дезинфеканты применяют при мешотчатом расплоде и вирусном параличе пчёл?

60. Как проводят дезинфекцию при гафниозе, эшерихиозе и сальмонеллёзе пчёл?

61. Как проводят дезинфекцию при аспергиллёзе пчёл?

62. Какие используют средства для дезинфекции объектов рыбоводных хозяйств?