Наркоз крупного рогатого скота. Виды и характеристика шовного материала. Пункция брюшной аорты по Магда и Воронину

Размещено на http://www.allbest.ru

Размещено на http://www.allbest.ru

Введение

Наркоз - искусственно вызванное обратимое состояние торможения центральной нервной системы, при котором возникает сон, потеря сознания и памяти (амнезия), расслабление скелетных мышц, снижение или отключение некоторых рефлексов, а также пропадает болевая чувствительность (наступает общее обезболивание). Состояние наркоза характеризуется обратимым угнетением ЦНС с выключением сознания, подавлением чувствительности (в первую очередь, болевой) и рефлекторных реакций, снижением тонуса скелетных мышц.

Шовный материал-материал, используемый для хирургических швов и лигирования сосудов. Различают рассасывающиеся и нерассасывающиеся Шовный материал. Рассасывающийся: кетгут, к нерассасывающийся -- шелк, хлопчатобумажные и льняные нити, нити синтетических тканей, конский волос, металлическая (нержавеющая) проволока; для соединения кожных ран используют также скобки хирургические. Шовный материал должен быть прочным, иметь гладкую поверхность, надежно стерилизоваться и хорошо завязываться в узел, обладать наименьшей гигроскопичностью.

Пункция брюшной аорты по Магда и Воронину.

Для выполнения аортопункции крупного рогатого скота используют длинные инъекционные иглы (берут иглу длиной 15-18 см, диаметром 2 мм с мандреном или иглу, сточенную до бокового отверстия под углом 45 градусов) и шприц Жанэ с поршнем и переходной резиновой трубкой, у мелких животных - обычный шприц с поршнем и переходной резиновой трубкой и инъекционные иглы№ 1290.

1. Наркоз КРС

При соблюдении определенных условий можно проводить общую анестезию животным практически любого возраста, даже со значительными нарушениями работы различных систем организма. Для проведения общей анестезии надо придерживаться следующих методов исследования, особенно у пожилых животных, а именно:

· Сбор анамнеза (т.е. истории жизни, истории болезни)

· Провести основные методы исследования (осмотр, пальпация, аускультация, термометрия)

· Проведение дополнительных методов исследования (для пожилых животных) таких, как рентгенография, биохимический и клинический анализ крови, УЗИ - сканирование внутренних органов. После проведенного исследования можно приступать к проведению первого этапа общей анестезии - премедикации. В состав премедикации должны входить вещества:

· холиноблокаторы (атропин) за 15 мин. до общей анестезии,

· противошоковые

· антигистаминные и антимикробные, дыхательные аналептики.

Для предварительной медикаментозной подготовки крупного рогатого скота к применению общего обезболивания или местного наркоза, а также для целей успокоения животного (премедикация) ври клинических исследованиях и некоторых оперативных вмешательствах применяют аминазин или литическую смесь, состоящую из аминазина, промедола и димедрола. Аминазин вводят внутримышечно или внутривенно в дозе 0,5 мг на 1 кг массы животного. В литической смеси к указанной дозе аминазина добавляют 0,2 мг промедола и 0,1 мг димедрола. Для быка массой 1000 кг эти ингредиенты растворяют в 30 - 50 мл 40%-ного раствора глюкозы (Магда И. И.). Действие этих препаратов наступает при внутривенном введении через 5 мин, а при внутримышечном - через 15 - 45 мин. Алкогольный наркоз. Животное выдерживают на голодной диете в течение 12 ч. Перед операцией ему вливают через, рот из резиновой бутылки 40%-ный спирт или водку в Дозе 2-3 мл на 1 кг массы животного. Наркоз можно вызвать и медленным внутривенным введением 30%-ного спирта на изотоническом растворе хлорида натрия в дозе 0,6-1 мл на 1 кг массы животного. Сон наступает быстро, бывает неглубоким и продолжается от 1 до 3 ч. Этот наркоз применяют только для оглушения коров и небольших бычков. Атропин-хлоралгидратный наркоз.

Общая анестезия, или наркоз, включает обязательное выключение и симптомов боли, поэтому очень часто рассматривается как обезболивание (анельгезия) всего организма посредством искусственного сна. Наркоз крупного рогатого скота. Перед наркозом животное выдерживают на голодной диете в течение 18--24 ч.

1.1 Алкогольный наркоз. Животному вливают в рот из резиновой бутылки разведенный спирт (40°) или обыкновенную водку в дозе 1--2 мл/кг. Быстрее действует внутривенное введение 30%-ного спирта-ректификата в дозе 0,5 мл/кг. В таких дозах алкоголь вызывает лишь оглушение животного, но не полный наркоз (для последнего необходима более высокая доза, опасная для жизни животного). Поэтому чаще применяют сочетанный алкогольный наркоз. После введения через рот или внутривенно алкоголя в указанных дозах производят местное проводниковое или инфильтрационное обезболивание оперируемой области. Атропин-хлоралгидратный наркоз по В. И. Клочкову. Под кожу животного вводят 1%-ный раствор сульфата атропина в дозе 5-- 10 мл в зависимости от возраста и массы животного. Через 5 мин впрыскивают в наружную яремную вену подогретый до температуры тела 15%-ный раствор хлоралгидрата, приготовленный на физиологическом растворе натрия хлорида, в дозе 1 мл/кг. Скорость введения раствора -- 50--75 мл в 1 мин.

1.2 Гедоналовый наркоз. Внутривенно вводят 0,75%-ный раствор гедонала (на физрастворе натрия хлорида) из расчета 0,2 г сухого гедонала на 1 кг массы животного. Вначале вводят 400--600 мл раствора, а затем по 30--50 мл каждые 15--30 мин.

1.3 Внутриперитонеальный наркоз по Волкову. 2%-ный раствор пентотала вводят внутриперитонеально в дозе 2 мл/кг. Место инъекции -- середина голодной ямки, справа или слева. Нейролептаналгезия по В. С. Портнову. Внутримышечно вводят смесь дроперидола с фентанилом в дозе 3 мл/10 кг.

1.4 Наркоз необходим для обеспечения возможности проведения ветврачом каких-либо манипуляций, сопровождающихся появлением или усилением уже существующей боли у пациента. Расслабление мышц, обеспечиваемое наркозом, требуется для предотвращения мышечного сопротивления при доступе к патологическому очагу (катетеризация, остеосинтез, интубация, зондирование и т.д.). Элементы наркотического воздействия нужны для прекращения нежелательных рефлексов (изнуряющая рвота, продолжительные судороги, самопогрызание и тому подобное). Часто нейротропные препараты используются для успокоения злых, пугливых, агрессивных или диких животных, к которым трудно применить надежную фиксацию в местных условиях. Грамотно проведенный наркоз способствует также более гладкому течению послеоперационного периода, поскольку предотвращает или снижает развитие стресс-реакции на оперативное воздействие, которая неминуемо привела бы к снижению резистентности организма, а следовательно - к ухудшению репаративных процессов после операции. Также наркоз необходим для предотвращения у животных-пациентов формирования отрицательной реакции на место лечения, обстановку и образ лечащего врача, как на факторы, сопутствующие боли (возникающей и усиливающейся, даже кратковременно, при диагностике патологического очага у животного и некоторых способах лечения).

1.5 Серьезным противопоказанием к применению наркоза являются некоторые состояния пациента: слабость пациента (общая физическая и отдельных физиологических процессов). Например, нарушения основных жизненно важных систем организма (сердечно-сосудистой и дыхательной) могут привести к их диiункции или полному прекращению функционирования во время наркоза, что вызовет сбой в ходе операции, потребует дополнительных усилий от хирурга (в том числе вызовет и у него стресс, что также неблагоприятно скажется на качестве его работы) и может привести к смерти пациента во время операции или после неё. К факторам, ослабляющим защитные силы организма, относят истощение (кахексию), анемию, старость, беременность, особенно на больших сроках, что также может привести к неблагоприятному исходу.

1.6 Примеры анестезии КРС.

Анестезия нервов брюшной стенки у коров (по Башкирову). Для блокады последнего (13-го) межреберного нерва иглу вводят по заднему краю указанного ребра, несколько выше уровня свободного конца поперечнореберного отростка 1-го поясничного позвонка. После прокола кожи иглу продвигают до упора в кость, а затем ее смещают с кости и продвигают глубже на 0,5 см и вводят 10 мл 3%-ного раствора новокаина. Извлекая иглу, дополнительно инъецируют внутримышечно и подкожно 10 мл указанного раствора.

Для блокады подвздошноподчревного нерва иглу вводят по переднему краю поперечнореберного отростка 2-го поясничного позвонка, отступя 4,5-5 см от его свободного конца, и продвигают ее до соприкосновения с костью. Затея конец иглы смещают с кости, направляют ее вглубь еще на 0,5-1 см и вводят 10 мл раствора анестетика. При извлечении иглы инъецируют дополнительно внутримышечно и подкожно 10 мл раствора новокаина.

Для блокады подвздошнопахового нерва иглу вводят по переднему краю поперечнореберного отростка 3-го поясничного позвонка, отступя 7-7,5 см от его свободного конца, до упора о костный край отростка. Затем смещают конец иглы с кости, продвигают ее на глубину 0,5-1 см и инъецируют 10 мл 3%-ного раствора новокаина. Извлекая иглу, дополнительно вводят внутримышечно и подкожно 10 мл упомянутого раствора.

Анестезия нервов пальца у крупного рогатого скота (по Шаброву). Анестезию делают с.целью операции на пальцах.

В четырех точках конечности вводят иглу на глубину 1,5-2 см (под фасцию) и инъецируют по 10 мл 3%-ного раствора новокаина. Первые две инъекции производят на ладонь ниже запястного (скакательного) сустава, по наружному и внутреннему краям сухожилий разгибателей пальца, а вторые - по тем же краям сухожилий сгибателей пальца.

2. Виды и характеристика шовного материала

Шовный материал - общее название различных материалов, которые используются для выполнения хирургических швов или перевязки сосудов. На различных этапах развития хирургии в качестве шовного материала использовали самые различные материалы, среди которых встречалось немало экзотических: конский волос, сухожильные нити крыс, кошек, кита, северного оленя, кенгуру, нити из аорты и твердой мозговой оболочки крупного рогатого скота, из нервов собаки и из человеческой пуповины, нити из хвостов крыс, кожи рыб и земноводных, ленточки из сосудов и фасций, волокна конопли, кокосового ореха, каучукового дерева. Применялась также в качестве шовного материала и рыболовная леска. Однако недостатки этих материалов (сложность получения, реакция тканей, возможность инфицирования нити, механические качества) препятствовали их широкому внедрению в хирургическую практику. Поиск новых материалов привел к созданию ряда перспективных направлений, работа по которым продолжается и до настоящего времени.

Основными являются следующие направления:

-- разработка синтетических рассасывающихся нереактогенных шовных материалов с точно известными сроками деструкции;

-- разработка нерассасывающихся шовных материалов с хорошими манипуляционными качествами и минимальным повреждающим действием на ткани;

-- разработка антибактериальных шовных материалов;

-- разработка шовных материалов, стимулирующих процессы репарации тканей.

2.1 требования к идеальному шовному материалу и включают в себя:

А) Оптимальные механические характеристики (определяющие способность материала надежно удерживать завязываемые узлы), такие как прочность, гибкость, коэффициент трения, упругость и эластичность (например, нить должна растягиваться в период послеоперационного отека сшитых тканей, что предотвращает ее прорезывание, но в то же время после уменьшения отека эластичность нити должна обеспечивать краям раны определенную компрессию).

Б) Универсальность, т. е. возможность применения при любых видах оперативных вмешательств.

В) Атравматичность, т. е. отсутствие распиливающего и рвущего эффекта при проведении нити через ткани.

Г) Отсутствие токсического, аллергизирующего, тератогенного, канцерогенного действия на организм.

Д) Отсутствие капиллярности и фитильности, т. е. способности впитывать в себя жидкость и пропускать ее между волокнами.

Е) Для рассасывающихся шовных материалов - способность после выполнения своей функции полностью рассасываться, не вызывая существенных изменений со стороны тканей; сроки ‹‹биодеградации›› шовного материала должны быть более длительными, чем время, необходимое для формирования полноценного рубца; продукты деструкции нитей должны включаться в метаболические процессы в организме, не оказывая отрицательного влияния на них; если этого не происходит, то остающиеся в организме продукты деструкции шовного материала не должны по количеству превышать физиологически допустимых норм.

Ж) Стерильность.

2.2 По строению различают следующие виды нитей:

А. Мононить (часто неправильно называется устаревшим термином "монофиламентная нить") представляет собой единое волокно с гладкой поверхностью

К этому виду нитей относятся такие широко используемые материалы, как пролен, ПДС, этилон, дермалон, максон, нейлон, суржилен, суржипро, мирален, дафилон, корален (флексамид), максилен, стальная проволока и др.

Б. Комплексная или полинить состоит из множества волокон (зачастую хирурги называют её полифиламентной, что не рекамендуется современными стандартами).

В зависимости от способа соединения этих волокон выделяются три вида комплексных нитей.

1. Крученая - волокна нити скручены по оси например, лен, крученый шелк, капрон.

2. Плетеная - волокна сплетены подобно канату (например, лавсан, этибонд, мерсилен, мерсилк, нуролон, дексон II и др.

3. Нить с покрытием - плетеная нить, пропитанная и (или) покрытая полимерными материалами например, викрил, полисорб, суржидак, тикрон, бралон, супрамид, фторекс, фторлин.

2.3 По способности к рассасыванию (биодеструкции) в тканях организма выделяются три вида шовных материалов:

А. Рассасывающиеся (абсорбирующиеся) - кетгут (простой, хромированный, с ускоренным сроком рассасывания), материалы на основе целлюлозы (окцелон, капелон, римин), на основе полиглекапрона 25 (монокрил), полидиоксанон (ПДС и ПДС II), полиуретан, сухожильные нити;

Б. Условно рассасывающиеся - шелк (обработанный силиконом и вощеный), полиамид (капрон);

В. Нерассасывающиеся - полиэфиры (мерсилен, этибонд, лавсан, суржидак, этифлекс, тикрон), полиолефины (пролен, суржипро, полипропилен, суржилен, полиэтилен), фторпропилены (фторэст, гортекс, фторлон, фторэкс, фторлин), металлическая проволока (стальная, нихромовая, платиновая), лен, хлопок, конский волос.

Шовный материал моют в горячей воде с мылом, наматывают на стеклянные катушки или предметные стёкла и обезжиривают 12 ч в эфире и 12 ч в спирте; кипятят 10 мин в растворе дихлорида ртути 1 : 1000, хранят в абсолютном спирте. Перед употреблением Ш. м. кипячение повторяют. Способ Садовского. После мытья в горячей воде с мылом Ш. м. наматывают на катушки, опускают на 15 мин в 0,5% ный раствор аммиака, а затем стерильным пинцетом переносят в 2% ный раствор формальдегида на 65° ном спирте, в котором хранят до употребления, но не менее 15 мин. Способ Тура. Ш. м. опускают на 24 ч в 1% ный раствор йода. Способ Губарева. Конский волос тщательно моют в горячей воде с мылом, обезжиривают в эфире 12 ч и в течение такого же срока в спирте, а затем 24 ч выдерживают в растворе дихлорида ртути 1 : 1000. Металлическую проволоку для швов и хирургические скобки стерилизуют кипячением вместе с инструментом.

3. Пункция брюшной аорты по Магда и Воронину

анестезия премедикация шовный аортопункция

Пункция брюшной аорты по И.И. Магда и И.И. Воронину. Техника выполнения.

Для выполнения аортопункции крупного рогатого скота используют длинные инъекционные иглы (берут иглу длиной 15-18 см, диаметром 2 мм с мандреном или иглу, сточенную до бокового отверстия под углом 45 градусов) и шприц Жанэ с поршнем и переходной резиновой трубкой, у мелких животных - обычный шприц с поршнем и переходной резиновой трубкой и инъекционные иглы№ 1290. Крупных животных фиксируют в стоячем положении в станке, голову удерживают у лошадей при помощи закрутки, у крупного рогатого скота - при помощи носовых щипцов. Мелких животных фиксируют в боковом положении. Аортопункцию производят при тщательном соблюдении правил асептики и антисептики. Точка введения иглы у лошадей, крупного рогатого скота и собак располагается с левой стороны в желобе, между верхним контуром под-вздошно-реберного мускула и нижним контуром длиннейшего мускула спины, впереди последнего ребра.

Схема пункции брюшной аорты по И.И. Магда и И.И. Воронину: а - положение иглы при упоре в тело позвонка; б - положение иглы при проколе брюшной аорты. Предварительно подкожную клетчатку и мышцы в месте введения иглы, особенно у неспокойных и злого нрава животных, инфильтрируют 0,25-0,5% раствором новокаина. После прокола кожи иглу вводят до упора в тело позвонка под углом 35 градусов к горизонтальной плоскости. Затем из канала иглы извлекают мандрен, а иглу оттягивают назад на 1-2см. После чего смещают ее с костного препятствия и, придав ей более вертикальное положение (под углом 45градусов к горизонтальной плоскости), углубляют на 1,5-2,5см до соприкосновения с аортой (определяют по ее пульсирующей ригидности). Для прокола аорты иглу проводят в указанном направлении еще на 0,1-1см (в момент прокола стенки аорты оператор ощущает эластическое препятствие), в результате прокола аорты появляется пульсирующая струя алой крови. После этого присоединяют шприц и медленно вводят раствор новокаина. По окончании введения раствора, в целях предупреждения образования парааортальнои гематомы, иглу извлекают в два этапа: сначала иглу медленно извлекают из просвета аорты (до момента прекращения выделения крови из канюли иглы), а затем, выждав 10-15 секунд, иглу извлекают полностью. М.В. Плахотин (1979) для предупреждения кровоизлияния из аорты рекомендует прокол аорты выполнять так: после оттягивания иглы от тела позвонка ей придают более вертикальное положение, а затем несколько отклоняют ее наружный край вперед. Прокол аорты в таком случае оказывается под углом, направленным спереди назад. Вследствие этого, по мере извлечения иглы из просвета аорты, ток крови прижимает нижнюю стенку раневого канала к верхней и тем самым предупреждает излияние крови через прокол половины вульвы книзу, спускающейся между бедрами и расширяющейся на задней поверхности вымени до основания сосков.

Размещено на Allbest.ru