Сравнительное изучение эффективности различных способов лечения при кокцидиозах птиц в условиях Республики Дагестан

Размещено на http://www.allbest.ru/

Сравнительное изучение эффективности различных способов лечения при кокцидиозах птиц в условиях Республики Дагестан

Авторы:

Алиев А.А., Бакриева Р.М., Гаджимурадова З.Т.

Борьба с кокцидиозами в птицеводстве включает качественное выполнение ветеринарно-санитарных мероприятий по подготовке помещений к заселению птицей, проведение специфических мер против ооцист кокцидий и подавление развития паразитов в организме хозяина. Выполнение первых двух задач не решает полностью проблему кокцидиоза, но значительно отдаляет наступление критического уровня обсемененности подстилки, особенно при выращивании бройлеров. [1,2]

Наибольший успех достигнут в борьбе с эндогенными стадиями развития кокцидий. Однако в последнее время профилактика посредством кокцидиостатиков существенно затруднена, что связано в первую очередь с развитием резистентности у кокцидий к препаратам. К любому из них рано или поздно паразит адаптируется, и информация генетически передается последующим поколениям. Эта проблема актуальна для всех стран мира[3,7].

Чтобы избежать связанных с адаптацией потерь, во всем мире постоянно ведется мониторинг чувствительности к препаратам полевых культур. В США, по данным публикаций, адаптация кокцидий кур к препаратам такова: к монтебану - 80% изолятов, к сакоксу - 70, к цикостату - 66, к цигро - 62, к аватеку - 28, к никарбазину - 26 и к клопидоку (фармкокциду) - 24%.[3,5]

По данным ряда исследователей [8] более 16 культур кокцидий, выделенных в птицехозяйствах различных регионов России. Установили, что к клинакоксу и сакоксу адаптировались 60% изолятов, к ампролиуму и цигро - 50, к кокцидину - 40, к авиаксу - 30, к фармкокциду - 10%. И только к никарбазину все культуры были высокочувствительны, потому что этот препарат ранее в птицеводстве страны не применялся.

На сегодня нет методик, предупреждающих развитие устойчивости к кокцидиостатикам. Однако работа в этом направлении проводится, и не безуспешно. Предложены такие схемы, которые замедляют процесс адаптации, например путем чередования препаратов. Их замена основывается на известном или предполагаемом механизме действия.

Как указывают исследователи [8] для предотвращения кокцидиоза на большинстве птицеводческих предприятий, специализирующихся на выращивании бройлеров напольным методом, используют кокцидиостатики.

Однако постоянной защиты от кокцидиоза не обеспечивает ни один препарат, так как рано или поздно у паразита вырабатывается резистентность к любому кокцидиостатику.

Определить чувствительность кокцидий к препарату в условиях птицеводческого предприятия практически невозможно. Кокцидии, в отличии от бактерий и вирусов, не культивируются на питательных средах или в культуре клеток. Тест на чувствительность возможен только invitro и занимает несколько месяцев. Из-за сложности исполнения подобные исследования не получили широкого практического применения.

Единственная стратегия борьбы с кокцидиозом - составление правильной схемы ротации препаратов. В составлении противококцидийной программы есть четыре «золотых» правила:

1.Не использовать один препарат слишком долго;

2.Чередовать препараты разных классов (не использовать подряд кокцидиостатики одного класса;

3.Перед повторным использованием препарата сделать перерыв, достаточный для восстановления чувствительности препарата

4.Не реже одного раза в год применять химические кокцидиостатики для «химической чистки».

К сожалению, противококцидийной программе не всегда уделяется должное внимание. Останавливая выбор на препарате, который успешно «работает» на другом предприятии, но не учитывая перекрестную резистентность, ветеринарные специалисты рискуют производственными показателями [7]

В настоящее время кокцидиозом бройлеров борются в основном с помощью кокцидиостатиков. Препараты подразделяются на две группы: полученные путем химического синтеза и ионофорные антибиотики. Если химические средства по механизму действия на паразита имеют широкий диапазон различий, то у всех ионофорных антибиотиков он очень схож. Так, лазалоцид нарушает проницаемость клеточных мембран паразита для ионов К, Na, Mg, Ca, a семадурамицин, мадурамицин, монензин, наранзин, салиномицин - для К и Na. [8,9]

Профилактику кокцидиоза у бройлеров не принято проводить одним препаратом в течение длительного времени. Для этого разрабатывают определенные программы. При схеме ротации в течение 3-4 последовательных циклов выращивания применяют один препарат, затем переходят на другой и т.д. Желательно задействовать в программе до 4 препаратов. При их чередовании допускается химический кокцидиостатик менять на иной, с другим механизмом действия. Не рекомендуется лишь менять ионофор на ионофор.

При так называемой челночной программе в одном цикле выращивания бройлеров применяют 2 препарата: один - до 27-30-дневного возраста (обычно это химическое средство), другой - до завершения откорма (ионофорный антибиотик). В этой программе можно использовать 2 химических препарата, но только не 2 ионофора. Через полгода их следует заменить на другую пару.

Как отмечают авторы [5] сейчас практикам предложено 5 вакцин. В состав таких, как кокцивак, культура кокцидий ВНИВИП, иммукокс, входят возбудители кокцидиоза с естественной вирулентностью. Их применение сопровождается кратковременной дачей кокцидиостатика, чтобы предупредить заболевание кокцидиозом цыплят от реинвазии вакцинными штаммами на первом этапе иммунизации. Ливакокс и паракокс созданы из аттенуированных возбудителей, их применение не требует сопровождения кокцидиостатиком.

Из-за дороговизны вакцин, трудоемкости их применения сегодня в основном проводят вакцинацию ремонтного молодняка и кур-несушек.

Профилактика кокцидиозов у бройлеров живыми вакцинами, как уже отмечалось, не нашла широкого применения, но у нас в стране есть определенный положительный опыт использования культуры кокцидий ВНИВИП.

Совсем недавно появилась информация о профилактике кокцидиозов у бройлеров посредством вакцинации кур-матерей субъединичной вакциной Коксабик фирмы "Абик" (Израиль).

Профилактика кокцидиоза у ремонтного молодняка преследует две цели: не дать развиться заболеванию и в то же время создать у птицы антикокцидийный иммунитет. Для этого используют препараты, не препятствующие выработке защитных сил организма. Они подавляют кокцидии на более поздних стадиях эндогенного развития и даже дают возможность некоторым из них завершить эндогенный цикл и вновь инвазировать хозяина. К таким препаратам можно отнести ампролиум и его аналоги, зоален (кокцидин), никарбазин.

Их применяют в течение 12-16 недель - для достижения равномерного иммунитета у всего поголовья. Сейчас можно встретить информацию о том, что и некоторые ионофорные антибиотики не препятствуют выработке иммунитета. Это может быть в том случае, когда у местных кокцидий развилась частичная резистентность к данному препарату. Прежде чем использовать ионофорные антибиотики для профилактики кокцидиоза у кур-несушек и племенной птицы, необходимо убедиться, что на их фоне птица реинвазируется кокцидиями.

По данным [5] вакцинация в борьбе с кокцидиозами у ремонтного молодняка сегодня признана единственно правильным решением этой проблемы. В некоторых странах удельный вес этого метода достигает 90%.

Разработано четырехвидовая вакцина против кокцидиозов, вызываемых E. acervulina, E. maxima, E. necatrix, E. tenella (культура кокцидий 4), которая успешно апробируется в ряде хозяйств уже в течение года. Решается вопрос о ее применении методом выпаивания.

После вакцинирования иммунитет у птицы формируется не сразу, а только после двух-трехкратного естественного реинвазирования. Выделенные после вакцинации ооцисты кокцидий должны иметь возможность проспорулировать, прежде чем наступит реинвазия цыплят. Если в птичнике подстилка слишком сухая, то процесс споруляции может быть нарушен, что отрицательно скажется на формировании антикокцидийного иммунитета.

Будущее в борьбе с кокцидиозами, несомненно, за вакцинопрофилактикой. Поэтому ветврачам птицехозяйств уже сегодня необходимо по мере возможности отдавать предпочтение этому методу, несмотря на определенные трудности в его реализации.

В связи с вышеизложенным, перед нами была поставлена цель- разработать эффективные фармакологические препараты с разными механизмами действия для лечения и профилактики кокцидиозов цыплят-бройлеров и провести их сравнительное испытание в условиях птицеводческих хозяйств Республики Дагестан.

Материал и методы исследований. Для проведения опытов подбирали хозяйства неблагополучных по кокцидиозам птиц. Путем клинического осмотра поголовья птиц и на основании патологоанатомических вскрытий павшей птицы было подтверждено диагноз на кокцидиоз.

Материал (содержимое желудочно-кишечного тракта, в частности-слепых отростков, помет и подстилочный материал) для обнаружения ооцист кокцидий исследовали по стандартизированному Н.П. Орловым методу Дарлинга, фекалии - по методу нативного мазка с подкрашиванием метиленовой синью и флотационно-центрифужным методом по Никитину и Бреза. Наличие ооцист определяли под иммерсионной системой светового микроскопа.

Результаты исследований. Для решения поставленной задачи проводили два опыта в производственных условиях Красноармейской птицефабрики в 2012году. Для лечения цыплят бройлеров больных кокцидиозом применяли комбинированные схемы лечения эффективными препаратами. Первый опыт провели на 7000, а второй - на 6800 гол.цыплят бройлеров. С этой нами было сформировано две группы цыплят бройлеров больных кокцидиозом в возрасте 25 дней одна из них контрольная, а другая опытная в первом и во втором опытах соответственно по 3500 и 3400 голов в каждой.

Согласно схеме лечения таблица 1, I-контрольная группа цыплят бройлеров препаратов кокцидиовит и сульфадиметоксин не получала, II-опытная группа - кокцидиовит и сульфадиметоксин соответственно из расчета 1гр/кг и 0,1125г/кг корма в течение 10 дней.

Таблица 1. Схема проведения опыта первого опыта

птица лечение выращивание

В результате сочетанного применения коцидиовита и сульфадиметоксина в лечебных дозах в течение 10 дней больным цыплятам бройлерам сократился падеж от 120 в день до 21 головы в сутки, т.е. от 4,30 до 0,6%, в 7,2 раза. Через 10 дней падеж еще уменьшился и составлял он 10 голов в среднем в сутки. При вскрытии павших цыплят бройлеров нами не было обнаружено изменения во внутренних органах, особенно в слепых отростках кишечника характерные кокцидиозу. При исследовании мазков по методу Дарлингу в 200 пробах ооцист кокцидий нами не было обнаружено. Эффективность лечения достигала до 100 %. В контрольной группе цыплят бройлеров падеж увеличивался с 120 голов до 148 голов, т.е. от 3,42 до 4,30%. При исследовании мазков в 200 пробах у цыплят бройлеров контрольной группы в мазках от слепых отростков кишечника и в 20 пробах помета ооцист кокцидий было обнаружено соответственно в одном поле зрения 71,60±2,12 и 30,32±0,83 штук. При вскрытии павшей птицы от контрольной группы цыплят бройлеров была обнаружена поражение внутренних органов, присущая кокцидиозу (таблица 2).

Таблица 2. Эффективность сочетанного применения кокцидиовита и сульфадиметоксина при кокцидиозе цыплят бройлеров

Согласно схеме лечения (таблица 3), I-контрольная группа цыплят бройлеров препаратов неомицин и фуразолидон не получала, II-опытная группа - неомицин и фуразолидон соответственно из расчета 0,2гр/2л воды и 0,05г/кг корма в течение 5 дней.

Таблица 3. Схема проведения опыта второго опыта

В результаты применения неомицина и фуразолидона в лечебных дозах, таблица 5 в течение 5 дней больным цыплятам бройлерам произошло сокращения падежа от 138 до 45 головы в сутки, т.е. от 4,06 до 1,32% , в 3,0 раза, а после еще 10 дней, среднесуточный падеж составлял 28 голов (таблица 4).

При вскрытии павших цыплят бройлеров нами было обнаружено изменения во внутренних органах, особенно в слепых отростках кишечника характерные кокцидиозу, они были заполнены пенистой массой черно-бурого цвета, в слизистой были признаки геморрагического воспаления. При исследовании мазков по методу Дарлингу в 200 пробах у цыплят бройлеров опытной группы в мазках от слепых отростков кишечника и в 20 пробах помета ооцист кокцидий было обнаружено соответственно в одном поле зрения 3,20±2,36 и 4,33±1,22 штук. Эффективность лечения составляла 94,50 %. В контрольной группе падеж наоборот увеличивался и составлял от 112 до 138 голов, т.е. от 3,29 до 4,06%. Более 30% цыплят стояли с закрытыми глазами, вытянув голову, перья взъерошены, помет жидкий консистенции с красноватым оттенком, аппетит снижен, у некоторых вообще отсутствовал. Цыплята отставали в росте. При вскрытии павшей птицы была типичная картина характерная для кокцидиоза.

Таблица 4. Эффективность сочетанного применения неомицина и фуразолидона при кокцидиозе цыплят бройлеров

Выводы

1.Установлено, что сочетанное применение неомицина и фуразолидона в лечебных дозах в течение 5 дней больным цыплятам бройлерам сокращает падеж от 138 до 45 головы в сутки, т.е. от 4,06 до 1,32% , в 3,0 раза. Эффективность лечения составляет 94,50 %.

2.При сочетанном применении применения кокцидиовита и сульфадиметоксина в лечебных дозах в течение 10 дней больным цыплятам бройлерам сократился падеж от 120 до 21 головы в сутки, т.е. от 4,30 до 0,6%, в 7,2 раза. Эффективность лечения достигала до 100 %.

Таким образом, полученные данные показывают, что сочетанный способ применение коцидиовита и сульфадиметоксина для лечения цыплят бройлеров больных кокцидиозом в сравнительном аспекте с другим способом лечения - сочетание неомицина с фуразолидоном оказался более эффективным, что дает основание для широкого внедрения его в птицеводческую практику, как эффективного способа лечения и профилактики кокцидиоза птиц.

Список использованной литературы

1.Журавлева А.З. Сравнительная эффективность мадувита и цигро при кокцидиозе цыплят/А.З. Журавлева.//Ветеринария.-2012.-№10.-С.15-16

2.Краснобаев Ю.В., Худяков А.А. Победим кокцидий вместе/Ю.В. Краснобаев и др.// Ветеринария.-2011.-№11.-С.14-16.

3.Кокцидиозы у кур. Профилактика и лечение кокцидиоза.// Приусадебное хозяйство.-№1.-2007.

4.Мамедов И. Возрастная и сезонная динамика эймериозной инвазии у крупного рогатого скота нахичиванской автономной республики Азербайджана/B/Мамедов//Ветеринария.-2012.-№2.- С.36-40.

5.Мишин В. А., Разбицкий В. В., Диковская В.Н.- ВНИВИППо материалам журнала "АгроРынок.

6.ООО «ЗооВетГарант»

7.Орлов С.А. Профилактика кокцидиоза/С.А. Орлов//Российский ветеринарный журнал.-№4.-2013.-С.38-41.

8.Соколов В.Д., Рабинович М.И., Горшков и др. Фармакология. Под редакцией В.Д. Соколова,-2-е ., изд., испр. и доп.- М.: Колос, 2000.- 576 с.

9.Субботин В.М., Александров И. Д. Ветеринарная фармакология. - М.: КолоС, 2004.- 720с.

Размещено на Allbest.ru