Размещено на http://www.allbest.ru/

Дипломная работа

Сравнительная эффективность антибиотиков при респираторном микоплазмозе цыплят



Введение

Во всём мире растёт спрос на высококачественную продукцию птицеводства. По мере роста населения и повышения его покупательской способности увеличивается потребность в яйце и мясе птицы.

Потребительский рынок сегодня диктует жёсткие условия, и поэтому продукция птицефабрик должна постоянно обеспечивать конкурентоспособность яиц, мяса и продуктов их переработки путём постоянного повышения качества.

Прогресс в отрасли птицеводства неразрывно связан с достижениями в биологической науке, составной частью которой является племенная работа с птицей. Высокая продуктивность линий и кроссов сельскохозяйственной птицы на рациональной организации селекционно-племенной работы.

В промышленном птицеводстве заболевания органов дыхания заразной и не заразной этиологии занимают второе место после вирусных заболеваний и являются основной причиной гибели молодняка птицы, нанося значительный экономический ущерб промышленному птицеводству.

Одной из распространенных инфекций в птицеводстве Республики является респираторный микоплазмоз. Он характеризуется дыхательными хрипами, кашлем и выделениями из носа, а у индеек часто синуситом. Клинические проявления болезни обычно развиваются постепенно, и болезнь принимает затяжной характер. Воспаление воздушного мешка приводит к серьезному аэросаккулиту, который является результатом развития инфекции, вызываемой М. gallisepticum, часто осложненной другими инфекциями органов дыхания и обычно Escherichia coli (ссылка).

Респираторный микоплазмоз у цыплят может приводить к существенным потерям качества тушек птиц после убоя. Большая часть потерь непосредственно или косвенно связана с развитием инфекции, вызываемой М. gallisepticum с осложняющими течение болезни факторами или без них. Экономические потери от ухудшения качества тушек, уменьшения кладки яиц и увеличения затрат на лечение -- факторы, которые делают это заболевание одним из самых дорогостоящих и мешающих развитию птицеводства. Программы предотвращения развития и контроля болезни, включающие вакцинацию, являются дополнительными затратами.

Перечисленные выше причины настоятельно указывают на необходимость проведения лечения, оздоровительных и профилактических мероприятий комплексно и широкомасштабно, воздействуя на всевозможные факторы эпизоотического процесса.

В связи с производственной необходимостью цель моих исследований заключалась в изучении эффективности лечебно-профилактических мероприятий при инфекционном бронхите кур.



Общая характеристика работы. Актуальность темы

С каждым годом интенсивность развития птицеводства в Республике Беларусь все более возрастает.

Имеются в республике не только крупные птицефабрики, которые занимаются производством мяса и пищевых яиц, инкубацией яйца и продажей суточного молодняка, но и частные фермерские хозяйства. В настоящее время, выращивание птицы, в большинстве случаев, ведется в условиях промышленных птицефабрик, что характеризуется концентрацией многотысячного поголовья на небольшой территории.

Это приводит к накоплению вредных газов и созданию искусственных экосистем, что ведет к нарушение нормальных симбиотических взаимоотношений между условно-патогенной микрофлорой и организмом птицы, и отрицательному их воздействию на органы дыхания птиц. В таких условиях возникает высокая вероятность возникновения респираторных заболеваний, вызванных условно патогенной микрофлорой.

Среди них ведущее место занимает респираторный микоплазмоз. Это заболевание регистрируется во многих птицеводческих хозяйствах республики Беларусь, где имеют место нарушения условий содержания и отклонения в параметрах микроклимата, которых, к сожалению, избежать невозможно. Поддерживающей основой стационарности данной инфекции служит широко распространенное носительство микоплазм среди взрослых, клинически здоровых птиц, которое весьма трудно диагностировать. А также достаточно высокая устойчивость возбудителя в окружающей среде.

Все это создает постоянную угрозу заражения молодняка и возникновению массовых вспышек респираторного микоплазмоза в птицеводческих хозяйствах.

Основной мерой борьбы с данным заболеванием в республике является проведение лечебно-профилактических обработок восприимчивого поголовья антибактериальными препаратами.

А так как в настоящее время существует огромный выбор лекарств, широко варьирующих как по цене, так и по лечебной эффективности, то становится очевидной проблема выбора наиболее экономически выгодного в использовании препарата. В связи с этим необходимо проводить исследования по уточнению причин возникновения респираторных заболеваний в птицеводческих хозяйствах, выделению возбудителей и изучению их чувствительности к различным антибиотикам с целью выбора наиболее эффективного.

Связь работы с научными программами, темами

Проведенная работа имеет непосредственную связь с тематикой научных исследований кафедры болезней мелких животных и птиц: «Иммуно- и морфогенез у мелких животных и птиц при заболеваниях и вакцинациях, и влияние на него иммуностимуляторов и лекарственных препаратов».

Цель и задачи исследования

Целью наших исследований явилась разработка эффективных мероприятий по профилактике и ликвидации респираторного микоплазмоза птиц в условиях РУСПП «Лидская птицефабрика».

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить эпизоотическую ситуацию на РУСПП «Лидская птицефабрика» по инфекционным болезням птиц.

2. Установить причины гибели цыплят на птицефабрики, и провести лабораторные исследования с целью постановки точного диагноза.

3. Определить наиболее эффективные препараты для лечения цыплят, больных респираторным микоплазмозом, и разработать схему лечебно-профилактических обработок.

4. Разработать план лечебно-профилактических мероприятий по ликвидации респираторного микоплазмоза цыплят на РУСПП «Лидская птицефабрика».

Методология и методы проведенного исследования

Чтобы решить поставленные задачи мы использовали комплекс диагностических исследований, которые включали в себя сбор анамнеза, изучение эпизоотической ситуации, клиническое исследование, патологоанатомическое вскрытие, бактериологическое исследование патматериала с выделением возбудителей, определением их видовой принадлежности, морфологических свойств и патогенности.

Для определения чувствительности выделенной микрофлоры к различным антимикробным препаратам мы использовали метод диффузии в агар с применением дисков, содержащих антибиотики.

После изучения чувствительности микрофлоры, мы определили наиболее эффективные препараты и использовали их для лечебно-профилактических обработок цыплят, неблагополучных групп, по различным схемам.

После установления наиболее эффективных схем лечения, мы провели расчет экономической эффективности в сравнительном аспекте данных схем. Также были разработаны мероприятия по профилактике и ликвидации респираторного микоплазмоза в условиях птицефабрики.

Научная новизна и значимость полученных результатов

Научная новизна полученных результатов исследований заключается в том, что впервые для лечения цыплят, больных респираторным микоплазмозом, была применена схема, включающая антибиотики нового поколения широкого спектра действия тилофарм и «Doxyviti», которые показали высокую терапевтическую и экономическую эффективность.

Практическая (экономическая) значимость полученных результатов

Проведенные исследования по изучению респираторного микоплазмоза у цыплят позволили установить наиболее эффективный препарат и, исходя из этого разработать план мероприятий, что позволило в кратчайшие сроки оздоровить данное хозяйство от этой болезни, сохранить поголовье, обеспечить высокие показатели среднесуточных привесов цыплят, снизить материальные затраты, исключить переход острого течения болезни в хроническое и бактерионосительство. А соблюдение мероприятий по профилактике будет способствовать не только предотвращению заболевания птицы, но и поможет значительно повысить продуктивность (эффективность использования питательных веществ корма) птицы при выращивании на мясо и для получения яиц. А это, в свою очередь, будет способствовать повышению рентабельности отрасли птицеводства.

Основная часть. Обзор литературы

Респираторный микоплазмоз - хроническая респираторная болезнь цыплят и индюшат, характеризующаяся дыхательными хрипами, кашлем и истечениями из носа, а у индеек часто синуситом.

Актуальность и распространение. Болезнь является важной проблемой для цыплят и индюшат не только в Республике Беларусь, но она широко распространена во всем мире. Инцидентность случаев заболевания этой болезнью значительно уменьшилась за последние 25 лет благодаря проведению обширных программ по ее контролю в промышленном птицеводстве. Имеются доказательство того, что возбудитель респираторного микоплазмоза постоянно циркулирует в небольших стаях домашней птицы, содержащихся на подворьях [15,С.16.]

Этиология. Классификация. М. gallisepticum - вид патогенный в пределах рода Mycoplasma семейства Мусоplasmataceae [43, С. 888].

Морфология и окрашивание. Микроорганизм хорошо окрашивается по Романовскому-Гимзе в фиолетовый цвет, также он является слабо грамотрицательным микроорганизмом. М. gallisepticum представляет собой полярное, нитевидной или колбовидной формы тело клетки, размером приблизительно 0,25-0,5 мкм. Эта полярность появляется до деления [40, С. 858] и объясняется присутствием хорошо сформированных терминальных органелл [38, С. 12]. Теоретически такие структуры обуславливают подвижность или взаимодействие патогена с хозяином и, в конечном счете, патогенность первых [30, С.119-125.]. Деление клетки проходит синхронно с репликацией ДНК [39, С. 884]. Tajima и соавторы [42, С.15] описали капсульный материал, связанный с клетками М. gallisepticum при их контакте с трахеальным эпителием цыпленка, по данным электронной микроскопии.

Культивирование. Потребности в питательных веществах для роста. М. gallisepticum требует довольно сложной среды, обычно обогащаемой 10-15 %-ной сывороткой, взятой от свиньи, птицы или лошади, и инактивированной под действием тепла. Несколько типов агаровых сред необходимы для поддержания роста птичьих микоплазм для окончательного выделения чистой культуры. Среды и методы для культивирования М. gallisepticum и продукции антигена достаточно хорошо освещены в литературе [4, 30, 33, 37]. Их рост оптимален при рН 7,8 и температуре 37-38°С. Колонии формируются на агаровой среде, содержащей обычные компоненты для микоплазм, но им требуется длительная инкубация (2-5 дней) в очень влажной атмосфере.

Evans R.D. и соавторы (1992) разработали среду, которая включает в себя все существенно необходимые компоненты, включая автолизат дрожжей и декстрозу [35]. После добавления сыворотки свиньи в количестве 10-15% среда удобна и очень эффективна для культивирования большинства микоплазм. Добавление красного фенола и декстрозы дает возможность обнаружить рост в пробирках, используемых при массовом культивировании, так же, как и добавление 0,0025%-ного 2,3,5-трифенила тетразолина хлорида в качестве индикатора [45, С. 125-133].

М. gallisepticum может также размножаться в развивающихся куриных эмбрионах.

Морфология колонии. М. gallisepticum можно вырастить на обогащенной сывороткой агаровой среде и инокулировать непосредственно или после пассажа культур из агара или бульона. Часто очень трудно получить рост колоний, непосредственно взятых от клинических экземпляров. Инокулированные агаровые пластинки должны быть культивированы при 37 °С в очень влажной атмосфере в течение 3-5 дней. Доказательство роста колонии будет лучше изучено при помощи микроскопа в отраженном под углом свете. Характерные колонии выглядят как крошечные, гладкие, круглые, прозрачные массы с плотной, приподнятой центральной областью. Они редко бывают больше чем 0,2-0,3 мм в диаметре и часто отмечаются на гребнях по штриховой линии, в то время как близко расположенные колонии легко сливаются. Выделенные в колониях разновидности представляют собой многочисленные виды микоплазм птиц, но виды микроорганизмов без конкретных признаков не могут быть определены по характеристикам колоний.

Биохимические свойства. Биохимические и связанные с ними биологические свойства М. gallisepticum описываются в работах многочисленных авторов. Она ферментирует глюкозу и мальтозу с образованием кислоты, но не газа. Этот микроорганизм не ферментирует лактозу, дульцитол или салицин. Сахароза ферментируется им редко, а результаты по галактозе, фруктозе, трехалозе и манниту переменные. Данный микроб не гидролизует аргинин и фосфатазу. Он переводит 2,3,5-трифенил тетразолин в другие формы (2,3,5-трифенил тетразолин становится красным) и неотетразолин (неотетразолин становится синим). М. gallisepticum вызывает полный гемолиз эритроцитов лошади в агаровой среде и агглютинирует с эритроцитами цыпленка и индюшонка.

Устойчивость к химическим и физическим воздействиям. Большинство традиционно используемых химических дезинфицирующих средств эффективны против М. gallisepticum. Инактивация возможна фенолом, формалином, 3-пропиолактоном и метиолатом. Устойчивость к пенициллину и к низкой концентрации (1:4000) ацетата калия сделала возможным употребление этих веществ как ценных добавок к культуральным средам для выращивания микоплазм в качестве ингибитов бактериального и грибкового загрязнения среды.

Микроорганизм жизнеспособен в фекалиях цыпленка в течение 1-3 дней при 20 °С, в марлевой ткани - в течение 3 дней при 20 °С или 1 дня при 37 °С, а в яичном желтке - в течение 18 недель при 37 °С или 6 недель при 20 °С [16, С. 30-31]. Суспензии на основе бульона инфекционной хориоаллантоисной оболочки потеряли свою инвазионную способность после 1 часа выдержки при 46 °С, после 20 минут пребывания при температуре 50 °С или через три недели - при 5 °С. Однако другие авторы [30, С. 119-125] обнаружили, что аллантоисная жидкость оставалась инфицированной после 4 дней пребывания в инкубаторе, в течение 6 дней при комнатной температуре и 32-60 дней - в холодильнике. М. gallisepticum был инактивирован у инфицированных эмбрионов, находящихся в яйцах, при нагревании до температуры 45,6 °С в течение 12-14 часов. Бульонные культуры оставались жизнеспособными через 2-4 года при 30 °С. Жизнеспособные М. gallisepticum были восстановлены из лио-филизированной бульонной культуры, хранившейся при 4 °С в течение 7 лет, и из лиофилизированных инфицированных носовых раковин цыпленка, хранившихся при 4 °С в течение 13-14 лет [36, С. 132].

Эпизоотологические данные. Респираторный микоплазмоз, вызываемый M. gallisepticum, возникает естественным путем у цыплят и индюшат; однако также был выделен в случаях естественного инфицирования у фазана (Phasianus colchicus), куропатки (Alectoris graeca), павлина (Pavo cristatus), белой перепелки (Colinus virginianus) и японской перепелки (Coturnix coturnix japonica). M. gallisepticum был выделен от золотого фазана (Chrysolophuspic-tus) в Австралии Tanner A.C. с соавторами [44, С. 515-522], а также от желтого амазонского попугая (Amazona ochro-cephala auropalliata) Forsyth, M.H. и соавторами [37]. О выделении M. gallisepticum от уток сообщается в Англии и в Югославии. Особенно восприимчивы цыплята от 3-недельного до 5-месячного возраста. Проявление болезни наблюдается и у взрослой птицы в период начала яйцекладки. [21 С. 31].

Источниками инфекциями являются больные и переболевшие птицы, выделяющие возбудитель во внешнюю среду со слизью из органов дыхания и реже с помётом и яйцом. Факторами передачи могут служить инфицированные возбудителем болезни корма, воздух, вода, предметы ухода. Наиболее частые пути заражения - аэрогенный и алиментарный. Кроме того, болезнь может передаваться через инфицированное яйцо, а также при использовании в корм отходов инкубации (скорлупа, погибшие эмбрионы).

Возможен занос возбудителя грызунами, дикими птицами, механически с одеждой обслуживающего персонала, транспортёрам, тарой.

В неблагополучных хозяйствах клинически здоровая птица является постоянным носителем возбудителя в верхних дыхательных путях. Возникновению заболевания способствуют низкая резистентность организма птицы в результате нарушения зоогигиенических норм содержания, длительная транспортировка, резкая смена рациона, поствакцинальные реакции, наличие смешанных заболеваний.

Эпизоотологической особенностью болезни является медленное распространение, контагиозность и повышенная смертность эмбрионов в последние дни инкубации (18-21-й день).

Респираторный микоплазмоз чаще протекает в ассоциации с колибактериозом, инфекционным ларинготрахеитом, инфекционным бронхитом, Ньюкаслской болезнью [13, С. 59-65; 2, С. 10; 22, C. 69-72.]. Выраженной сезонности нет, летальность среди цыплят достигает 25-47%, а среди взрослой птицы - 6-10%.

Патогенез. Возбудитель инфекции, попадая в органы дыхания, размножается в эпителиальных клетках верхних дыхательных путей и воздухоносных мешков. Затем проникает в кровь и гематогенным путем проникает в головной мозг, печень, селезенку, почки, вызывая там дистрофические и воспалительные процессы. Выделяющиеся в процессе размножения возбудителя вещества вызывают интоксикацию организма. Но наиболее часто поражаются верхние дыхательные пути.

В распространении M. gallisepticum в небольших скоплениях цыплят было выделено четыре стадии:

- стадия 1 - латентная стадия (12-21 день) перед образованием антител, была впервые обнаружена у инокулированных птиц;

- стадия 2 - (1-21 день), в течение которой инфекция постепенно проявляется у 5-10% птиц одной популяции;

- стадия 3 - (7-32 дня), в течение которой у 90-95% оставшейся части популяции птиц вырабатываются антитела;

- стадия 4 - терминальная (3-19 дней), в течение которой оставшиеся птицы стаи становятся положительными носителями [114]. При увеличении плотности популяции возрастает скорость, с которой происходит распространение респираторного микоплазмоза.

У эмбрионов и цыплят возбудитель репродуцируется в органах респираторного тракта, что выражается развитием воспаления в воздухоносных мешках и легких.

Наиболее часто возбудитель локализуется в следующих органах: трахее (62,5% случаев), головном мозгу (51%), печени (35%), почках (25%), легких и воздухоносных мешках (17%), селезенке (10,5%), яичнике и семенниках (5%).

Клинические признаки и течение. Ранние исследования показали, что инкубационный период занимает от 6 до 21 дня при экспериментальном заражении птиц. Синусит развивается у экспериментально инокулированных индюшат за 6-10 дней. В естественных условиях очень трудно определить точное время заражения. Как оказалось множество факторов влияют на начало и степень развития клинической инфекции, поэтому длительность инкубационного периода невозможно точно определить. У большинства цыплят и индюшат из разных групп клинические признаки инфекции развиваются в период начала яйценоскости, при низком уровне инфекции (вероятно, из-за передачи через яйца), ускоряющейся рядом стрессовых событий. Длительное течение инкубационного периода обычно наблюдается в потомстве инфицированных цыплят или индюшат, высиженных из яиц, опущенных в растворы антибиотиков. Роль других источников инфекции не всегда ясна и редко является несомненной. Многие выделенные M. gallisepticum представляют собой именно этот тип инфекции с отсроченным началом, где серологическое доказательство возможно между 26- и 38-недельным возрастом без проявления клинических признаков [17, С. 16].

Клинические признаки у кур. Наиболее характерные признаки естественного заражения - это трахеальные хрипы, катаральные выделения из носа и кашель. При этом снижается аппетит и птицы худеют. Затем появляется конъюнктивит, слизисто-гнойное истечение из носа, воспаление дыхательных путей, включая воздухоносные мешки, что проявляется одышкой, чиханием птицы, частым потряхиванием головой. Дыхание учащенное, затрудненное, с открытым клювом, появляется сухой кашель. Куры часто вытягивают шею, не реагируют на внешние раздражители. Температура тела повышается редко. В стаях несушек снижается количество отложенных яиц и держится на пониженном уровне [3, С. 17]. Однако в стаях возможно наличие серологического доказательства инфекции без очевидных клинических признаков, особенно если птицы столкнулись с инфекцией в достаточно молодом возрасте и частично восстановились. У самцов птиц часто признаки более явные, и болезнь более серьезна зимой. В стаях бройлеров большинство вспышек наблюдается между 4 и 8 неделями. При этом у цыплят отмечается больше признаков по сравнению со взрослыми птицами. Серьезные вспышки, наблюдаемые у бройлеров, часто происходят из-за развития осложнений.

Случаи развития кератоконъюнктивита, очевидно вызванного M. gallisepticum, были замечены среди бройлерных цыплят 30-дневного возраста [16, С. 30-31]. У цыплят отмечалось вздутие кожи на веках, увеличенное слезоотделение, скопление жидкости в конъюнктивальной полости и дыхательные хрипы. Конъюнктивит, развившийся у цыплят после инокулирования австралийских штаммов M. gallisepticum в конъюнктивальный мешок, сопровождался развитием инфекционного бронхита [142].

При бессимптомном течении у взрослой птицы может наблюдаться высокая смертность эмбрионов последних дней инкубации и суточных цыплят.

Патологоанатомические изменения

Макроскопические повреждения. Макроскопические повреждения включают катаральный или гнойно-катаральный экссудат в носовых и параназальных ходах, трахее, бронхах и воздушных мешках. Синусит наиболее очевиден у индюков, но также наблюдается у цыплят и других видов птиц. Воздушные мешки часто содержат казеозный экссудат, который может иметь вид «гранул» или лимфофолликулярный. Иногда наблюдается пневмония. В серьезных случаях развития типичной болезни воздушного мешка у цыплят имеется фибринозный перигепатит и перикардит наравне с массивным аэросаккулитом. О спровоцированном М. gallisepticum сальпингите у цыплят и индюшат сообщается в работе Avakian A.P. и соавторов [32, С. 701]. У кур-несушек коммерческого направления с признаками кератоконъюнктивита при инфицировании M. gallisepticum отмечается отек в подкожном слое лицевой части головы и на веках, сопровождаемый в некоторых случаях помутнением роговицы [21, С. 31].

Гистопатология. Микроскопическая патология у цыплят и индюшат изучалась Van Roekel и соавторами, а также у индюшат в работе Elfaki M.G. [34, С. 315]. Они обнаружили заметное утолщение слизистой оболочки пораженных тканей в результате ее инфильтрации мононуклеарными клетками и гиперплазии лимфоидных узелков. Очаговые области лимфоидной гиперплазии также были обнаружены в подслизистой оболочке. В легких в дополнение к пневматическим областям и изменениям в лимфоидных тканях были также найдены гранулематозные повреждения. Была проведена детальная экспертиза инфицированных воздушных мешков цыпленка путем световой микроскопии; гистоморфологическая оценка легких была проведена Ибрагимоввым А.А. (2005) [7, C. 23-26.].

Диагностика. Диагноз на респираторный микоплазмоз основывается на эпизоотологических данных, клиническом проявлении заболевания, патологоанатомических изменениях и бактериологическом исследовании павших или вынужденно убитых больных птенцов. При этом учитываются санитарно-зоогигиенические условия выращивания молодняка. Решающее значение для постановки диагноза на респираторный микоплазмоз имеет бактериологическое исследование патматериала, из которого выделяют «чистую» культуру M. gallisepticum путем посева на специальные питательные среды или заражения куриных эмбрионов [4, С. 10-12.].

Для выявления микоплазмоносительства в лабораторию посылают сыворотку крови, которую исследуют в реакции сывороточной агглютинации в чашке Петри (PCА) и реакции задержки гемагглютинации (РЗГА).

PCА с антигеном для выявления антител к M. gallisepticum является коммерчески доступным методом. Поскольку тест РСА занимает немного времени, относительно недорог и достаточно чувствителен -- его применяют в качестве пробы для выявления скрытой формы заболевания в контролируемых стаях птиц и серодиагностики.

ELISA использовался несколькими исследователями для создания метода, более чувствительного к наличию антител к MG или для проверки результатов РГА или РЗГА [33, С. 380-388; 36, С. 130-136; 41, С. 903-909.]. В промышленных масштабах реакция ELISA используется как начальная проба для выявления скрытой формы заболевания и серодиагностики. Усилия ученых направлены на повышение чувствительности ELISA к M. gallisepticum путем очищения определенных иммунодоминантных белков, используемых в качестве антигенов в реакции ELISA [30, С.119-125.]. Также методика ELISA использовалась для обнаружения антител к M. gallisepticum в дыхательных путях и образцах яичного желтка.

Микоплазмоз необходимо дифференцировать от колибактериоза, пастереллеза, гемофилеза, инфекционного бронхита, инфекционного ларинготрахеита, аспергиллеза и авитаминоза А, где определяющее значение отводится лабораторной диагностике.

Лечение. М. gallisepticum подвержен действию ряда антибиотиков, включающего стрептомицин, окситетрациклин, хлортетрациклин, эритромицин, магнамицин, спирамицин, тиомицин, линкомицин и спектомицин [10, C. 53-54; 29, С.12-13; 31, С.13-16]. Некоторые же выделенные М. gallisepticum оказались довольно стойкими к действию стрептомицина, эритромицина, спирамицина и тилозина.

Попытки лечения различными антибиотиками и химическими препаратами имели переменные результаты. Во многих случаях небольшой рост привеса или количества отложенных яиц при умеренном сокращении количества бракованных тушек оказались достаточными для того, чтобы покрыть затраты на лечение. Обычные методы лечения включают использование окситетрациклина или хлортетрациклина в дозе 200 г/тонну корма в течение нескольких дней. Тилозин вводится подкожно в дозировке 10-15 мг/кг массы тела или 1 г/л питьевой воды в течение 3-5 дней. Введение малых доз тилозина в корм курам-несушкам, зараженным М. gallisepticum, в комплексах, где содержатся птицы разного возраста, необходимо для снижения потерь яиц [14, C. 15-16.]. Тиамулин в комплексе с салиномицином оказались эффективными средствами лечения цыплят или индюшат. Комбинация линкомицина и спектомицина была эффективна для лечения экспериментально вызванного аэросаккулита у молодых цыплят [18, C. 12-13.]. Данофлоксацин, хинолон антимикробный эффективны у цыплят, экспериментально инфицированных [42, С. 11-18.].

Чтобы устранить передачу возбудителя респираторного микоплазмоза зародышам в высиженные яйца, подвергшиеся воздействию повышенных температур или давления, вводились антибиотики [6, 58, 68, 144]. Вообще эти методы иногда оказывались совершенно несостоятельными и не устраняли возможность передачи инфекции через яйца. Влияние на время высиживания птенцов не было благоприятным, а бактериальное обсеменение происходило независимо от времени. Однако из яиц, обработанных растворами антибиотиков, вылуплялись птенцы, свободные от инфекции М. gallisepticum, что обеспечивало получение ядра для создания больших стай чистого от М. gallisepticum инфекции потомства цыплят и племенных индюшат в США. Единственно надежным способом остается серологическое испытание и выбор отрицательно реагирующих племенных особей.

Иммунитет и специфическая профилактика. Переболевшие птицы не восприимчивы к повторному заражению. По мнению ряда авторов иммунитет нестерильный.

Инактивированные вакцины. В конце 1970 годов возник интерес к созданию вакцин против М. gallisepticum, поскольку стало очевидно, что в некоторых комплексах по выращиванию несушек разного возраста инфекция была энзоотической. Бактерины М. gallisepticum с масляно-эмульгированным адъювантом защищали молодых цыплят от интрасинусового пути попадания возбудителя и несушек коммерческого направления от М. gallisepticum, введенной аэрозольным путем, улучшая их продуктивность [11, C. 26-27.]. Но прививка этим бактерином вызвала снижение, но не устранение колонизации организма птицы М. gallisepticum после введения патологического возбудителя [9, C. 3-4]. Чтобы расширить поле деятельности инактивированных вакцин против респираторного микоплазмоза, были исследованы различные адъюванты и системы доставки антигенов, включая липосомы. Инактивированные вакцины против респираторного микоплазмоза были произведены промышленным способом.

Живые вакцины. Имеются многочисленные сообщения об использовании живой вакцины штамма F [11, C. 26-27.] в фабричных условиях при экстенсивном использовании разного возраста птиц на фермах по выращиванию несушек. У бройлеров прививка штаммом F обеспечила некоторую защиту от аэросаккулита после обработки птиц аэрозолью вирулентного штамма R [34, С. 311-317]. Был найден биологический механизм, лежащий в основе защиты против штамма F, который не включает конкуренцию за место адгезии возбудителя или блокаду предшествующей колонизации, но прививка штаммом F не предотвращала колонизацию организма птиц штаммом MG [41, С. 903-909.]. По сообщениям отдельных источников, живые вакцины MG, содержащие штамм 6/85 и ts-11, обладали низкой или не обладали вообще вирулентностью в отношении цыплят и индюшат [1, 56,162] и были произведены в фабричных условиях.

Профилактика и меры борьбы. Особое значение при профилактике необходимо уделять контролю за поступающей в хозяйство племенной продукцией. Завезенную птицу необходимо содержать изолировано, с соблюдением установленных сроков карантинирования.

Чтобы исключить скрытое носительство проводят исследование всех эмбрионов, павших в последние дни инкубации. Инкубацию яиц, поступающих из других хозяйств, производят отдельно, а выведенных цыплят выращивают изолировано от маточного стада до 6-месячного возраста.

Необходимым является соблюдение оптимальных показателей микроклимата и условий, повышающих уровень естественной резистентности птицы.

При установлении диагноза хозяйство объявляют неблагополучным и вводят ограничения по условиям которых запрещается:

- вывоз птицы и яиц для инкубации в благополучные хозяйства;

- реализация и использование птицы, а также эмбрионов для производства ветеринарных и медицинских препаратов.

Основными мерами борьбы являются:

- убой клинически больных микоплазмозом птиц. При поражении воздухоносных мешков тушки утилизируют, при отсутствии поражения утилизируют голову и внутренние органы, а тушки используют в пищу после проварки;

- оставшуюся клинически здоровую птицу неблагополучной группы после откорма также сдают на убой;

- комплектование стада осуществляют за счет завоза инкубационных яиц птицефабрик благополучных по инфекционным болезням, а также здоровой одновозрастной птицей, выращенной в изолированных условиях;

- помет сжигают или складируют для биотермического обеззараживания;

- текущая дезинфекция проводится каждые 5 дней, с использованием горячего 2% -го раствора натрия гидроокиси или 2%-го раствора формальдегида.

Хозяйство объявляют благополучным и снимают ограничения после прекращения заболевания и получения отрицательного результата бактериологического исследования павшей и убитой с диагностической целью птицы, а также эмбрионов, погибших в последние дни инкубации.

Состояние животноводства и анализ ветеринарного обслуживания на «Лидская птицефабрика»

Республиканское унитарное сельскохозяйственное производственное предприятие «Лидская птицефабрика» (далее - РУСПП «Лидская птицефабрика») является государственным сельскохозяйственным предприятием и находится в собственности Республики Беларусь.

Лидская птицефабрика является прямым преемником Лидской инкубаторно-птицеводческой станции, организованной 1 марта 1953 года. Как таковая Лидская птицефабрика была создана во исполнение постановления Совета Министров БССР от 1 марта 1962 года №101 и приказа Министерства сельского хозяйства БССР от 16 марта 1962 года № 134. Согласно приказа предприятия от 2 апреля 1962 года №1 станция стала именоваться Лидской птицефабрикой. В 2000 г. в целях приведения учредительных документов предприятия в соответствие с гражданским кодексом РБ на основании приказа Министерства сельского хозяйства и продовольствия от 21 декабря 2000 г. №488 государственное предприятие Лидская птицефабрика переименована в РУСПП «Лидская птицефабрика».

Целью деятельности предприятия является насыщение рынка Республики Беларусь качественной продукцией птицеводства, обеспечение эффективной работы предприятия, и на этой основе получения постоянного прироста прибыли. Основными направлениями деятельности предприятия являются: производство яиц; производство мяса домашней птицы; фирменная торговля. Птицефабрика имеет цикл производства, заключающийся в следующем. Лидская птицефабрика осуществляет инкубацию яиц и получение суточного молодняка, выращивание деловой молодки и производство яиц, мяса птицы и реализация их через торговую сеть (в том числе через сеть собственных фирменных магазинов).

Птицефабрика расположена в 5 км от города Лида. По состоянию на 01.01.2006 года основные здания и сооружения предприятия следующие:

- инкубатор;

- 12 птичников;

- кормоцех;

- лаборатория;

- яйцесклад;

- ремонтные мастерские и ремстройбригада;

- здание администрации;

- автопарк на 9 автомобилей: 6 грузовых и 3 легковых.

Таблица 2.2.1. Поголовье птицы на РУСПП «Лидская птицефабрика» 2003-2005 г.г.

Группы животных	Годы
	2003	2004	2005
Среднее поголовье птицы, тыс. голов	124875	80474	132300
Ремонтный молодняк 120-150 дн., тыс гол.	47022	55764	56691
ИТОГО	171897	136238	191991

По данным таблицы 2.2.1 можно заключить, что основную массу

птицы составляют куры-несушки, а доля ремонтного молодняка составляет 27,4 - 29,5%. Данные о продуктивности птицы приведены в таблице 2.2.2.

Таблица 2.2.2. Продуктивность птицы на ОАО РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г.г.

Показатели продуктивности	Годы
	2003	2004	2005
Продукция выращивания, т	135	168	108
Валовый привес, т	141	174	110
Среднесуточный привес, г	9,6	10,1	10,1
Реализация мяса, т	216	255	304



Анализируя таблицу можно заметить, что уровень реализации и потребность в мясе птицы на рынке возрастает с каждым годом, поэтому необходимо проводить мероприятия по повышению сохранности поголовья и интенсификации и оптимизации производства.

Технологический процесс состоит из следующих операций:

- инкубация завезенных яиц,

- посадка ремонтного молодняка в возрасте 50-145 дней,

- перевод в возрасте 150 дней в куры-несушки;

-эксплуатация кур-несушек в течение 12 месяцев (получение яйца);

- в 17-18 месяцев сдача на мясо.

Технология производства продуктов птицеводства на промышленной основе РУСПП «Лидская птицефабрика» включает: использование высокопродуктивной гибридной птицы кросс «Беларусь-9», применение сбалансированных кормов, рациональные способы содержания птицы в помещениях с регулируемым микроклиматом, температурным режимом, организацию труда, механизацию и автоматизацию производственных процессов, а также систему эффективных зоотехнических и ветеринарно-санитарных мероприятий, повышающих устойчивость птицы к инфекционным незаразным болезням в условиях интенсивной эксплуатации.

Таблица 2. 2.3. Производство яиц на РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г.г.

Показатели продуктивности	Годы
	2003	2004	2005
Среднегодовое поголовье кур, тыс.гол	135	168	108
Яйценоскость на 1 несушку, штук	264,5	270,1	300,6
Валовый сбор яиц, тыс.штук	32532	33951	36584
Реализация яиц, в том числе государству, тыс.штук	30722 13885	33117 18992	36099 13885
Уровень товарности, %	43,6	56	57,4



Ремонтный молодняк содержится наполно при искусственном освещении, с регулируемым по заданной программе световым режимом.

Плотность посадки в период выращивания на м?/гол составляет: в возрасте 0-3 недели - 85, в возрасте 3-10 недель - 50, в возрасте 10-17 недель - 30, а в период яйцекладки в обычной клетке - 22 головы, в улучшенной - 13.

При выращивании ремонтного молодняка применяется следующий световой и температурный режимы, данные приведены в таблице 2.2.4.

Таблица 2.2.4. Параметры светового режима, применяемые при выращивании кур-несушек на РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г.г.

Возраст	Интенсивность освещения
	Люкс	Ватт/м?
0-7 дней	мин. 20	мин. 4
7 дней - 4 недели	10	3
4-17 недель	6	2
старше 17 недель	10	3,2

Необходимо уделять особое внимание к освещению, как к продолжительности светового времени, интенсивности освещения, имеет существенное значение для достижения максимально высоких показателей.

Системой центрального отопления, брудерами и работой приточно-вытяжной вентиляции поддерживается необходимый микроклимат помещений.

Вентиляция птичника - приточно-вытяжная с механическим побуждением выполняется по схеме «сверху-вниз». В зимний период приточный воздух подогревается теплогенератором ТГ-180 (Венгрия) и подается в птичник вентиляционной системы. В переходный летний период года воздух в птичник поступает через вентиляционные шахты, установленные на кровле за счет разряжения, создаваемого автоматическими вытяжными системами «Климат-45 м-02».

В таблице 2.2.5 приведены параметры температурного режима для цыплят бройлеров.

Таблица 2.2.5. Температурный режим выращивания кур-несушек под брудером на РУСПП «Лидская птицефабрика за 2003-2005 г.г.

Возраст	Температура воздуха на уровне цыпленка, °С
Первые 5 часов	36
5 часов - 7 дней	34>31
2-я неделя	31>28
3-я неделя	28>26
4-я неделя	26>24
5-я неделя	24>22
6-я неделя	22>20

Кормление птицы осуществляется сухими полнопорционными комбикормами, которые доставляются из склада кормов загрузчиками ЗСК-10 и загружается в бункер БСК.

Из бункера корм подается на горизонтальный транспортер ТУУ-2А, оттуда поступает в кормораздатчики.

Перед скармливанием все комбикорма дорабатываются в кормоцехе согласно рационов кормления разрабатываемых лабораторией фабрики. Все кормосмеси проходят проверку в лаборатории и только после этого скармливаются птице. Для каждой возрастной группы кормосмеси готовятся индивидуально и в них вносятся различные необходимые добавки.

Для поддержания продуктивности птицы на высоком уровне и дальнейшего ее повышения необходимо обеспечить хорошие условия содержания и кормления. Данные о затратах кормов на производство продукции изложены в таблице 2.2.6.



Таблица 2.2.6 Затраты кормов на производство птицеводческой продукции на РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г.г.

Виды продукции	Ед. изм.	Годы
		2003	2004	2005
Расход корма на: содержание кур-несушек всего в т.ч. на 100 яиц	т кг	5612 172,5	5379 158	5597 153
Расход кормов на выращивание: Ремонтного молодняка 90-150 дней всего В т.ч. на 1 ц привеса	т кг	1295 921	1963 1129	1305 1187

На территории птицефабрики имеется вскрывочная, где ежедневно ветеринарные специалисты вскрывают павшую птицу с целью установления причин падежа, а в ветлаборатории для точной постановки диагноза проводят микробиологическое и вирусологическое исследование материала от павшей птицы.

Важное значение имеет организация и чёткое проведение ветеринарно-санитарных мероприятий, направленных на повышение резистентности птицы, охраны её от инфекционных и инвазионных болезней.

Большую работу по недопущению заболевания и падежа птицы проводит главный ветврач, он составляет план основных организационных, ветеринарно-профилактических и диагностических мероприятий, в котором перечисляются все мероприятия планируемые проводить в течение года.

Согласно этому плану врач проводит ежедневный клинический осмотр птицы, а также постоянно ведётся контроль за вакцинацией цыплят, дезинфекцией яиц в камере ОДК, дезинфекцией яиц в инкубаторных шкафах, обработкой суточного молодняка антибиотиками.

Для предупреждения ряда заболеваний в производственных цехах фабрики проводятся следующие плановые профилактические работы (таблица 2.2.7.).

Антибиотики применяются после определения чувствительности циркулирующей микрофлоры, по мере необходимости.

Между технологическими циклами выращивания кур проводится санация помещений.

В перерывах между выращиванием и содержанием кур-несушек проводится подготовка птичников к посадке следующей партии птицы. Для этого в следующей последовательности проводят мероприятия:

первоначальная дезинфекция по помёту 2%-ной кальцинированной содой;

демонтаж производственного оборудования и уборка помёта;

вторичная дезинфекция 2%-ной кальцинированной содой перед мойкой;

мойка помещения горячей водой;

влажная (профилактическая) дезинфекция всего помещения 2%-ной каустической содой;

побелка помещения, монтаж оборудования и укладка подстилки;

заключительная аэрозольная дезинфекция 40%-ным формалином.

Подготовка помещения в межтехнологическом перерыве проводится по схеме приведенной выше.

Таблица 2.2.7. Схема проводимых лечебно-профилактических мероприятий на РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г. г.

№ п/п	Возраст	Название мероприятия	Доза	Метод введения
1.	сут.	УФО на ленте	2 мин.	облучение инкубатор
2.	сут.	Вакцинация против болезни Марека Вакцинация против инфекционного бронхита кур	0,2 мл 1 доза/гол	в/м инкубатор интеракулярно интерназально
3.	1-3 сут.	Антибиотик Глюкоза Сода питьевая Аскорбиновая кислота	1,0 кг/т 3,0 кг/т 0,1 г/10л 0,05 кг/т	с кормом или выпойкой
4.	10 сут.	Вакцинация против ИББ	1 доза на голову	выпойка
5.	10-15 сут.	Применение кокцидиостатиков	согласно наставлению	с кормом
6.	14-15 сут.	Вакцинация против ИБК	1 доза на голову	выпойка
7.	20 сут.	Вакцинация против ИББ	1 доза на голову	выпойка
8.	21-23 сут.	Вакцинация против болезни Ньюкасла	1 доза на голову	выпойка
9.	35-40 сут.	Дезинфекция воздуха в присутствии птицы	согласно наставлению	аэрозольно
10.	50 сут.	Вакцинация против ИБК, НБ	1 доза на голову	выпойка
11.	60 сут.	Вакцинация против инфекционного энцефаломиелита	1 доза на голову	Выпойка
12.	100-120 дней.	Вакцинация против болезни Ньюкасла, ИБК	10 доз на голову	выпойка
13.	100-120 дней.	Вакцинация против ССЯ, НБ, ИБ	1 доза на голову	в/м

Проведение указанных мероприятий позволяет поддерживать сохранность птицы на высоком уровне; данные о ней приведены в таблице 2.2.8.

Таблица 2.2.8. Сохранность поголовья птицы на РУСПП «Лидская птицефабрика»

Показатели	Годы
	2003	2004	2005
Пало куры взрослые, тыс. голов;	150,0	110,1	100,3
Сохранность поголовья птицы, %	83,6	86,2	85,5

Исходя из данных таблицы 2.2.8. можно сказать, что сохранность поголовья птицы на РУСПП «Лидская птицефабрика» в течение ряда лет остаётся приблизительно на одном уровне, что свидетельствует о хорошей работе зооветспециалистов и обслуживающего персонала птицефабрики.

РУСПП «Лидская птицефабрика» считается одной из благополучных по ряду заболеваний в республике, хотя иногда, при патологоанатомическом исследовании отмечают патологические изменения, характерные для того или иного заболевания, но самих возбудителей данных болезней при лабораторных исследованиях не обнаружено.

При анализе данных годовых отчётов по отходу птицы установлены случаи заболевания следующими болезнями; данные приведены в таблице 2.2.9.

Таблица 2.2.9. Причины падежа птицы на РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г.г.

Болезни	Количество павшей птицы
	2003 г.	2004 г.	2005 г.
Пало птицы всего, тыс. голов	150,0	110,1	100,3
Пало от общего поголовья, %	16,4	13,8	14,5
Пало от заразных болезней, % от всей павшей птицы за год; Из них: -от колибактериоза -от микоплазмоза -от инф. бронхита	11,9 0,3 5,6 6,0	11,7 0,4 6,0 5,3	12,5 0,6 5,9 4,0
Пало от незаразных болезней, % от всей павшей за год птицы; Из них: -от болезней обмена веществ -от болезней органов пищеварения -от болезней органов дыхания -от других заболеваний	4,5 2,1 1,4 0,7 0,3	2,1 0,4 0,8 0,6 0,3	2,0 0,5 0,4 0,6 0,5

Как видно из таблицы 2.2.9., основными причинами падежа птицы являются незаразные заболевания, которые причиняют птицефабрике большой ущерб. Из заболеваний заразной этиологии наибольшее распространение имеют респираторные инфекции: микоплазмоз и инфекционный бронхит кур, которые приносят большой ущерб хозяйству.

Мероприятия по вакцинации цыплят, дезинфекции яиц в камере ОДК, дезинфекции яиц в инкубаторных шкафах, обработке суточного молодняка антибиотиками, проведению дезинфекций после смены поголовья птицы и при необходимости подтитровка антибиотиков требуют значительных материальных затрат. Их финансирование осуществляется за счёт средств птицефабрики. Расходы на ветеринарные мероприятия приведены в таблице 2.2.10.

Таблица 2.2.10. Финансовые расходы ветеринарной службы РУСПП «Лидская птицефабрика» за 2003-2005 г.г.

Показатель	Годы
	2003	2004	2005
Использовано всего средств, тыс. рублей	328262	453560	568048

Большая часть из этих средств идёт на приобретение вакцин и антибиотиков, которые очень дорогостоящие, но их применение оправдано, так как они позволяют избежать заболевания, которые могут принести огромный экономический ущерб в результате гибели значительного поголовья птицы и затрат на ликвидацию этих заболеваний. Остальные деньги идут на необходимые средства для профилактической, диагностической и лечебной работы.

Благодаря всему комплексу ветеринарно-санитарных, зоотехнических общехозяйственных мероприятий,имеет неплохие экономические показатели работы в нынешних экономических условиях хозяйствования.

Одним из показателей работы эффективного производства является производительность труда. Она показывает способность конкретного человека производить в единицу рабочего времени определённый объём работы. Данные о производительности труда на РУСПП «Лидская птицефабрика» приведены в таблице 2.2.11.



Таблица 2.2.11. Показатели производительности труда на РУСПП «Лидская птицефабрика»

Показатели	Годы
	2003	2004	2005
Численность работающих, чел. Из них численность с.-х. работников, чел.	176 58	254 126	240 130
Производительность труда, руб.	20573928	64224910	411925257
Производительность труда с.-х. работников, руб.	12897	40140	255719
Производство валовой продукции на 1 работника, тыс. руб.	28159	20649	23454

Анализируя данные таблицы 2.2.11. можно сказать, что производительность труда с.-х. работников значительно выше, чем у работников в целом по фабрике.

Экономическим показателем хозяйственной деятельности является рентабельность производства, которая показывает на сколько доход предприятия от реализации продукции превышает расходы, связанные с её производством. Динамика рентабельности изложена в таблице 2.2.12.

Таблица 2.2.12. Уровень рентабельности производства и реализации продукции птицеводства

Виды продукции	Годы
	2003	2004	2005
Уровень рентабельности, %	5,4	4,2	9,6
Выручка от реализации продукции и услуг, млн. руб.	3570	6068	6530
рибыль всего, млн. руб.	167	211	506

Из данных таблицы видно, что в целом хозяйство работает рентабельно, хотя производство некоторых видов продукции является убыточным, но имеется тенденция к повышению их рентабельности.

Анализируя отчётную документацию по птицеводству в хозяйстве и экономическую деятельность птицефабрики, можно сделать выводы:

1. РУСПП «Лидская птицефабрика» птицефабрика является благополучной по ряду инфекционных заболеваний.

2. Производство продукции на РУСПП «Лидская птицефабрика» является рентабельным.

Безопасность жизнедеятельности на РУСПП «Лидская птицефабрика»

Труд - это основной вид деятельности человека, поэтому вопросы безопасности человека на производстве приобретают особую остроту и актуальность.

На РУСПП «Лидская птицефабрика» состояние техники безопасности находится под контролем инженера по технике безопасности. На всех производственных участках соблюдается требования по технике безопасности: имеются ограждения опасных зон в птичниках, сетками огорожены лопасти вентиляторов. Все технологическое оборудование имеет защитные устройства, а электроприборы - заземление.

На птицефабрике имеется ряд лиц, несущих ответственность за состоянием охраны труда на птицефабрике в целом и на производственных участках. Это директор, отвечающий за состоянием охраны труда на производстве в целом, инженер по охране труда, главный и старший инженер, начальник цехов, на которых лежит ответственность за охрану труда на производственных участках. Ежегодно на охрану труда выделяется денежные средства, которые расходуются на приобретение плакатов, средств индивидуальной защиты, лечебно-профилактическое питание, аптечки первой медицинской помощи, спецобуви, спецодежды, противопожарного инвентаря.

Инженер по технике безопасности птицефабрике составляет комплексный план мероприятий по улучшению состояния охраны труда, техники безопасности на текущий год с учетом результатов работы в предшествующем году и выявленных недостатков. Указанный комплексный план согласовывается с председателем профкома и утверждается директором птицефабрики.

На РУСПП «Лидская птицефабрика» установлен односменный режим работы и ночные дежурства согласно графику. Длительность рабочего дня для работников составляет восемь часов с предоставлением двух выходных дней в неделю и ежегодных отпусков. Обязательно наличие обеденного перерыва, а также времени на отдых и личные надобности. В отношении труда женщин и подростков на птицефабрике соблюдаются требования трудового законодательства. Все начальники подразделений, участков ведут табель или журналы учета рабочего времени.

При приеме на работу, переводе из других отраслей хозяйствования в животноводческую отрасль, проводится вводный инструктаж инспектором по охране труда с отметкой в «Журнале регистрации инструктажей». Каждый работник ознакамливается с инструкцией по охране труда и директор птцефабрики не подписывает приказ о зачислении вновь прибывшего работника на работу до тех пор, пока последний не пройдет вводный инструктаж.

Данное мероприятие проводится в специально оборудованном кабинете охраны труда, расположенном в здании правления птицефабрики, где имеются необходимые плакаты и инструктажи.

Большое внимание уделяется и производственной санитарии. Все помещения оборудованы вентиляцией, хорошим электроосвещением, средствами пожаро- и грозозащиты. На птицефабрике должное внимание уделяется вопросам пожарной безопасности. Организована добровольная пожарная дружина, которая принимает участие в подготовке мероприятий по противопожарной безопасности и осуществляет контроль за ее выполнением. Для тушения пожара (в случае необходимости) в производственных зданиях имеется водопровод, а также первичные средства пожаротушения (огнетушители и др.). На случай возникновения пожара, на птицефабрике, разработан план эвакуации птицы и материальных ценностей.