Следовательно, в тимусе плодов под влиянием гуминовых соединений осуществляются такие структурные перестройки как: гипертрофия долек и соответственно паренхимы органа; увеличение площади коркового вещества с увеличением корково-мозгового индекса; гиперплазия сосудов в соединительной ткани и паренхиме; уменьшение количества бластных клеток и больших лимфоцитов на фоне увеличения дифференцированных форм лимфоцитов; гиперплазия тимических телец; увеличение числа органелл в клетках лимфоидного ряда.

Селезенки плодов вытянуто-овальной формы, с поверхности и на разрезе вишневого цвета, покрыты соединительнотканной капсулой. Масса органа достоверно увеличена по сравнению с контрольной группой (1 гр. - 4,00,13 мг, 2 гр. - 5,00,25 мг; р<0,01).

Капсула селезенки равномерно тонкая, с поверхности покрыта мезотелием, ядра которого ориентированы параллельно волокнистым структурам. Основной волокнистый компонент - ретикулиновые волокна - фрагментированы, расположены в один ряд между матриксом. От капсулы в паренхиму органа отходят соединительнотканные трабекулы.

В селезенках плодов второй группы не завершено формирование структур в органе, в частности - дифференцировка пульпы на красную и белую. Формируются сосуды венозного и артериального русла (трабекулярные, пульпарные, или центральные артерии и кисточковые, или фолликулярные артериолы). Артериальные капилляры находятся на стадии формирования, при этом часть их полнокровна, а часть - в спавшемся состоянии, поскольку не функционируют.

Количество клеток в пульпе селезенки незначительное, при этом они находятся на значительном расстоянии друг от друга. Сформированные лакуны частично выстланы эндотелием, а их просветы содержат эритроциты.

В субкапсулярных зонах наряду с увеличением количества клеточных элементов, происходит их разобщение за счет формирующихся капилляров. В этих же зонах уменьшается количество бластных форм и эпителиальных клеток на фоне увеличения количества зрелых лимфоцитов и клеток-предшественниц и промежуточных форм эритро- и гранулопоэза. На субклеточном уровне в клетках лимфоидного ряда отмечено большое количество митозов.

Несмотря на существенное увеличение количества мегакариоцитов и ядер в них структура последних остается стереотипной и напоминает клетки, встречающиеся в селезенках контрольной группы.

В центральных зонах селезенки формируются артериолы с наползающими друг на друга эндотелиоцитами и перицитами и капилляры-лакуны. Клеточный состав периваскулярных зон следующий: немногочисленные фолликулярные отростчатые клетки и макрофаги с эухроматичными ядрами. Клетки предшественники лимфоцитопоэза и зрелые лимфоциты формируют периваскулярно клеточные скопления.

Изучение процентного соотношения популяций различных клеток в селезенках плодов показало следующее: на фоне уменьшения удельной доли больших лимфоцитов наблюдается достоверное увеличение клеток эритроцитарного и гранулоцитарного рядов, плазматических клеток, макрофагов, бластов и митотически делящихся клеток (табл. 8).

Таким образом, в селезенке плодов под влиянием гуминовых соединений происходят структурные изменения с увеличением количества капилляров-лакун и сосудов артериального и венозного русла; клеток-предшественников и промежуточных форм гемопоэза (эритро- и гранулоцитопоэза), что свидетельствует о напряжении функции кроветворения в селезенке; удельной доли бластов и митотической активности клеток лимфоидного ряда, что свидетельствует о высоком уровне лимфоцитопоэза в органе и количества плазматических клеток.

Надпочечные железы у плодов округлой формы, с поверхности белесовато-серого цвета, эластичные по консистенции. Средняя масса левого и правого надпочечников плодов соответствует контрольным и составляет соответственно 2,27±0,10 мг и 2,18±0,09 мг.

На поверхности органа, в пределах капсулы, и субкапсулярно из спонгиоциов формируются дополнительные микродольки. Последние представлены очаговым скоплением пролиферирующих спонгиоцитов. Клетки содержат гиперхромные ядра округлой, вытянутой, неправильной формы, с инвагинатами кариолеммы. Объем цитоплазмы у клеток минимальный, поэтому ядра расположены максимально близко друг к другу.

Средняя толщина коркового слоя надпочечников достоверно меньше параметра контрольной группы (1 гр. - 62,70,02 мкм, 2 гр. - 60,10,03 мкм, p<0,01). Клубочковая зона равномерно тонкая на всем протяжении. Дифференцированные клетки этой зоны округлые и овальные, с такой же формой ядер, в которых субмембранно локализуется гетерохроматин, а в центре - эухроматин.

Подлежащая пучково-сетчатая зона состоит из стереотипных полигональных клеток, которые отличаются по структуре в поверхностных и глубоких слоях. Если поверхностные спонгиоциты пучкового слоя с компактными, гиперхромными ядрами и неравномерной по окраске цитоплазмой, то клетки глубоких слоев сетчатой зоны с компактными эухроматичными ядрами.

На фоне более зрелых с высокой функциональной активностью клеток клубочкового слоя увеличивается его васкуляризация, причем капилляры зачастую полнокровны. Средняя площадь капилляров превышает показатель группы контроля (1 гр. - 40,20,6 мкм2, 2 гр. - 43,40,7 мкм2, р<0,01). Электронномикроскопически клетки пучково-сетчатой зоны надпочечников плодов обладают округлым, центрально расположенным ядром, содержащим эухроматин. В цитоплазме содержатся многочисленные рибосомы, липидные капли и митохондрии. Клеточные мембраны спонгиоцитов образуют немногочисленные, но разнообразные по форме, инвагинаты.

Уменьшение толщины клубочковой и пучково-сетчатой зон сопровождается ускоренным формированием мозгового вещества, по сравнению с контрольной группой. Пролиферирующие хромаффинные клетки образуют клеточные скопления, количество которых по сравнению с контролем увеличено. Клеточные ассоциации отличаются разнообразием как по количеству клеток, так и по их локализации. Крупные скопления из 15-60 хромаффинных клеток расположены в центре органа и между спонгиоцитами глубоких слоев пучково-сетчатой зоны. Мелкие скопления, насчитывающие от 6 до 10 клеток, располагаются не только между клетками пучково-сетчатой, но и достигают границы с клубочковой зоной. Структура клеток в крупных клеточных скоплениях различна: часть клеток с дистрофическими и некротическими изменениями, другая часть - на разных стадиях митоза. Клетки, расположенные на периферии клеточных образований, с вакуолизированной цитоплазмой. Мелкие клеточные ассоциации содержат митотически делящиеся хромаффиноциты. Между группами клеток расположены полнокровные капилляры и венулы, средняя площадь которых превышает контрольные показатели (1 гр. - 54,42,7 мкм2, 2 гр. - 67,33,1 мкм2, р<0,01).

Таким образом, надпочечные железы плодов от самок, получавших гуминовые соединения, характеризуются следующими структурными перестройками: формированием дополнительных микродолек; завершенной дифференцировкой адренокортикоцитов в клубочковой и пучково-сетчатой зонах; повышением васкуляризации коркового и мозгового вещества с различной функциональной активностью капилляров; пролиферацией хромаффиноцитов и ускоренным формированием мозгового вещества; увеличением количества органелл в клетках коркового вещества.

1.6 Оценка плодовитости крыс, показателей эмбриотоксичности и тератогенной активности гуминовых соединений

Средняя плодовитость крыс в контрольной группе составила 9,20,66 особей на одну крысу, масса тела и длина крысят - соответственно 3,890,06 мг и 4,160,02 см. Показатель преимплантационной гибели составил 3,741,25%, постимплантационной гибели - 8,754,68%. Внешних пороков развития у плодов не выявлено.

В группе животных с применением гуминовых соединений средняя плодовитость крыс недостоверно выше контрольного уровня (1 группа - 9,20,66 у.е., 2 группа - 10,40,89 у.е.). Масса тела и длина крысят достоверно превышали показатели контрольной группы (соответственно 4,440,10 мг и 4,30,04 см; p<0,01). Преимплантационная и постимплантационная гибель достоверно не отличались от контрольных значений и составили соответственно 2,191,09% и 7,782,51%. Внешних пороков развития, стигм дисэмбриогенеза и пороков развития внутренних органов в ходе аутопсии у плодов также не выявлено.

1.7 Обобщение полученных результатов

Результаты комплексного морфологического исследования свидетельствуют о позитивном влиянии гуминовых соединений на маточно-плацентарное кровообращение в условиях созданной в эксперименте модели плацентарной недостаточности. Гуминовые соединения стимулируют формирование адаптивных процессов в плаценте, проявляющихся дилятацией и гиперемией сосудов материнского и плодового кровеносного русла. Итогом структурных перестроек является увеличение удельного объема материнских синусоидов в базальном и лабиринтном отделе последов на фоне снижения удельной доли фибриноида, очагов воспаления и зон ишемии в последе. За счет повышенного кровенаполнения сосудов закономерно увеличивается масса и объем последов. Кроме того, в плацентарном ложе гуминовые вещества вызывают новообразование сосудов с формированием коллатерального кровообращения и соответственно улучшением васкуляризации органа, обусловленной повышенным синтезом и выделением васкуло-эндотелиального фактора роста. Гуминовые соединения, по мнению авторов, способствуют уменьшению продукции фактора Виллебранда и тем самым нормализуют реологические свойства крови в условиях нарушений кровообращения в плаценте и плацентарном ложе. Увеличение интенсивности окрашивания на ДНК и РНК клеток трофобласта и амниотического эпителия, а также наличие в последнем крупных гранул PAS-положительного материала свидетельствуют о стимуляции обменных процессов в плаценте и активации параплацентарного обмена.

Таким образом, формирование под влиянием гуминовых соединений адаптивных процессов в последе позволяет говорить о достаточной компенсации созданной в эксперименте модели плацентарной недостаточности с положительным перинатальным исходом беременности. Соматометрические показатели плодов крыс не только не отставали от контрольных значений, но и достоверно превышали подобные показатели в группе без коррекции нарушений кровообращения.

Влияние гуминовых соединений на тимус плода вызывает ускорение его созревания с увеличением площади коркового вещества и корково-мозгового индекса, количества дифференцированных лимфоцитов и гиперплазией тимических телец. Структурные перестройки в селезенке и надпочечниках плодов также свидетельствуют об ускоренной дифференцировке структур и активизации функции кроветворения. Во всех изучаемых органах под влиянием препарата повышается васкуляризация стромы.

Заключение

Таким образом, в экспериментальном исследовании получены новые данные о механизмах биологической активности гуминовых соединений из торфа, реализующихся через васкуло-эндотелиальный фактор роста и фактор Виллебранда. Показано, что гуминовые вещества в условиях нарушенного маточно-плацентарного кровообращения в эксперименте стимулируют развитие адаптивных реакций в последе, ведущих к повышенному кровоснабжению органа, вызывают новообразование коллатеральных сосудов в плацентарном ложе, улучшают реологические свойства крови и профилактируют такие расстройства кровообращения как тромбозы, стазы и сладж эритроцитов в системах материнского и плодового кровотока, активизируют процессы транс- и параплацентарного обмена. Влияние гуминовых веществ на тимус, селезенку и надпочечники реализуется в ускоренной дифференцировке структур этих органов и активизации функции кроветворения.

Позитивное влияние гуминовых соединений на маточно-плацентарное кровообращение, иммунную систему, кроветворение, васкуляризацию органов и физическое развитие плодов позволяет рекомендовать препарат для экспериментальной профилактики и терапии плацентарной недостаточности, хронической внутриутробной гипоксии и гипотрофии плода.

Результаты эксперимента делают возможным не только дальнейшее экспериментальное исследование изучаемого препарата, но и проведение в перспективе клинических испытаний.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М.: Медицина, 1990. - 384 с.

2. Андикян В.М., Волощук И.Н., Ковганко П.А., Клементе Х.М. Морфофункциональные изменения плаценты после озонотерапии Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2000. - № 7. - С. 117-120.

3. Асымбекова Г.У. Хроническая плацентарная недостаточность: аспирин в профилактике и лечении. // Автореф. дис. … докт. мед. наук. - Москва. - 1996. - 35 с.

4. Бородин Ю.И., Склянов Ю.И., Склянова Н.А. Внеорганное лимфатическое русло матки и внезародышевые органы при гипотензивном синдроме беременных (экспериментально-морфофункциональный аспект) Акушерство и гинекология. - 1987. - №2. - С. 79-72.

5. Бычков В.И., Образцов Е.Е., Шамарин С.В. Диагностика и лечение хронической фетоплацентарной недостаточности //Акушерство и гинекология. - 1999. - № 6. - С. 3-6.

6. Воробьев А.А. Физиологические пути введения антигенов и других биологически активных веществ в организм //Иммунология. - 2002. - Т. 23. - № 3. - С. 138-142.

7. Гармашева Н.Л., Константинова Н.Н. Введение в перинатальную медицину. - М.: Медицина, 1978.

8. Демин В.В., Терентьев В.А., Завгородняя Ю.А. Вероятный механизм действия гуминовых веществ на живые клетки // В сб. Трудов II Международной конф. «Гуминовые вещества в биосфере». - Москва. - 2004. С. 37-40.

9. Жилякова Т.П., Панина О.П., Касимова Л.В. Использование гуминового препарата «Торфотон» в качестве адаптогенного и противоязвенного средства //В сб. Трудов II Международной конференции «Гуминовые вещества в биосфере». - Москва. - 2004. - С. 182-185.

10. Игнатко И.В. Актовегин в профилактике плацентарной недостаточности у беременных с артериальной гипертензией //Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. - 2003. - № 1. - С. 40-44.

11. Клименко П.А., Гришин В.Л., Позин В.М., Балюнис А.И. Моделирование недостаточности маточно-плацентарного кровообращения //Вопросы охраны материнства. - 1982. - № 7. - С. 64-68.

12. Корепанов А.М., Горбунов Ю.В., Старовойтова М.В., Баженов Е.Л. Некоторые клинико-морфологические аспекты первичного хронического дуоденита в процессе лечения СМТ-электрофорезом торфяной лечебной грязи санатория «Ува» (Удмуртская республика) //Морфологические ведомости. - 2005. - № 1-2. - С. 93-96.

13. Корнилова П.К. Патоморфология ворсин и плацентарного ложа матки при преждевременной отслойке нормально расположенной плаценты //Автореф. дис. … канд. мед. наук. - Москва. - 2003. - 25 с.

14. Косьянова З.Ф., Орлов Д.С., Аммосова Я.М. Гуминовые кислоты пелоидов // Медицинская химия. - 2002. - № 4. - С. 77-79.

15. Левитский Е.Ф., Кузьменко Д.И., Сидоренко Г.Н., Лаптев Б.И., Джураева Е.И. Эффект объединенного действия применения сапропели и постоянного магнитного поля на динамику восстановления поврежденной паренхимы печени (экспериментальное исследование) //Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. - 1998. - № 2. - С. 35-36.

16. Макаров О.В., Николаев Н.Н., Попова Л.В. Применение озонотерапии в комплексе профилактики и лечения плацентарной недостаточности Акушерство и гинекология. - 2002. - №2. - С. 48-52.

17. Мамедалиева Н.М. Ранняя диагностика, прогнозирование и профилактика плацентарной недостаточности у беременных с привычным невынашиванием в анамнезе //Автореф. дис. … д-ра мед. наук. - Москва. - 1993.

18. Милованов А.П. Патология системы мать-плацента-плод: Руководство для врачей. М.: Медицина, 1999. - 447 с.

19. Милованов А.П., Корнилова Н.К., Фадеев А.С., Федорова М.В. Патоморфология матки при преждевременной отслойке нормально расположенной плаценты //Архив патологии. - 2006. - Т. 68. - № 1. - С. 25-27.

20. Милованов А.П., Сидельникова В.М., Кирющенков П.А., Ходжаева З.С., Куземин А.А. Морфометрия ворсин плаценты как критерий эффективности использования курантила на ранних сроках беременности при аутоиммунном невынашивании //Вестник российской ассоциации акушеров-гинекологов. - 2000. - № 4. - С. 21-24.

21. Милованов А.П., Фокин Е.И., Рогова Е.В. Основные патогенетические механизмы хронической плацентарной недостаточности //Архив патологии. - 1996. -Т.57. - № 4. - С.11-16.

22. Мурашко Л.Е., Бадоева Ф.С., Асымбекова Г.У., Павлович С.В. Перинатальные исходы при хронической плацентарной недостаточности // Акушерство и гинекология. - 1996. - № 4. - С. 43-45.

23. Орджоникидзе Н.В. Хроническая плацентарная недостаточность и немедикаментозные методы ее коррекции // Дисс. на соиск. ... д.м.н. - Московская медицинская академия, 1994. - 348 с.

24. Орлов Д.С., Демин В.В., Завгородняя Ю.А. Влияние молекулярных параметров гуминовых кислот на их физиологическую активность //Доклады Академии Наук. - 1997. - Т. 354. - № 6. - С. 843-845.

25. Павлович С.В. Значение n-3 полиненасыщенных жирных кислот в профилактике плацентарной недостаточности у беременных высокого риска Автореф. дис. … канд. мед. наук. - Москва. - 1997. - 23 с.

26. Попов В.А., Щепеткин В.А. Морфофункциональные особенности плаценты при экспериментальной адаптации к гипоксии и острой кислородной недостаточности //Акушерство и гинекология. - 1985. - № 12. - С.24-26.

27. Пронина Т.А. Клинико-экспериментальное обоснование гепарин-электрофореза синусоидальными токами в комплексной терапии хронической плацентарной недостаточности //Автореф. дис. … канд. мед. наук. Москва. - 2000. - 23 с.

28. Радзинский В.Е. Фармакотерапия плацентарной недостаточности Клиническая фармакология. - 1998. - № 3. - С. 91-96.

29. Радзинский В.Е., Милованов А. П., Оpазмуpадов А. А., Хубецова М. Т., Пpозоpов В. В., Коpнилова Н. К. Особенности плаценты и плацентаpного ложа матки при преждевременной отслойке нормально расположенной плаценты //Акушерство и гинекология. - 2003. - № 3. - С. 21-26.

30. Радзинский В.Е., Ордиянц И.М. Плацентарная недостаточность при гестозе //Акушерство и гинекология. - 1999. - № 1. - С. 11-16.

31. Савельева Г.М., Федорова М.В., Клименко П.А., Сичинава Л.Г. Плацентарная недостаточность. М.: Медицина, 1991. - 271 с.

32. Савченков Ю.И., Лобынцев К.С. Очерки физиологии и морфологии функциональной системы мать-плод. М.: Медицина, 1980. - 254 с.

33. Саркисов Д.С., Перов Ю.Л. Микроскопическая техника: Руководство. М.: Медицина, 1996. - 544 с.

34. Севастьянова Н.В. Антимутагенный эффект гумизола в культурах крови на Т-лимфоцитах, подвергнутых обработке циклофосфаном //Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. - 1998. - № 4. С. 46-47.

35. Серов В.Н., Стрижаков А.Н., Маркин С.А. Руководство по практическому акушерству. М.: Медицина, 1997. - 223 с.

36. Сухих Г.Т., Ванько Л.В., Кулаков В.И. Иммунитет и генитальный герпес. Н. Новгород: Изд-во НГМА, 1997. - 224 с.

37. Уразаев Д.Н., Щедрин Е.Л., Селиванова А.С. Некоторые клеточные мишени действия гумината // Медицинская химия. - 2000. - № 4. - С. 111-114.

38. Федорова М.В, Калашникова Е.П. Плацента и ее роль при беременности. М.: Медицина, 1986. - 256 с.

39. Филиппов О.С., Карнаухова Е.В. Применение электромагнитного излучения миллиметрового диапазона при лечении хронической фетоплацентарной недостаточности. // Акушерство и гинекология. - 2003. - № 3. - С. 56-58.

40. Banaczkiewicz W., Drobnic M. The influence of natural peat and isolated humic acid solution on sertain induces of metabolism and acid-base equilibrium in experimental animals // Rocz. Panstw. Zake. Hig. - 1996. - Vol. 45. - № 4. - P. 353-360.

41. Bay Z., Zeman K., Sulonska Z., Majewska E., Pokoca L., Kosur E., Kantorski J., Fornalzyk E., Banasic M., Tchorzewski H. Effect of Tolpa Peat Preparation on some immune parameters in healthy volunters // Acta Pol. Pharm. - 1995. - Vol. 50. - № 6. - P. 481-489.

42. Bernacchi F., Ponzanelli I., Minunni M., Falezza A., Loprieno N., Barale R. Cytogenic effect of natural humic acid in vivo // Muthagenesis. - 1996. - Vol. 11. - № 5. - P. 467-469.

43. Brzozowski T., Dembinski A., Konturek S. Influence of Tolpa Peat Preparation on gastroprotection and on gastric and duodenal ulcers // Acta Pol. Pharm. - 1995. - Vol. 51. - № 1. - P. 103-107.

44. Buczko W., Malinowska B., Betrascek M.N., Pawlak D., Chabielska E. Influence of Tolpa Peat Preparation on haemostasis in rats //Acta Pol. Pharm. - 1995. - Vol. 50. - № 6. - P. 507-511.

45. Glunn A.Y. Humic acids reduce absorption of cadmium in intestine of the rats Toxicol. - 1996. - Vol. 70. - № 1. - P. 28-33.

46. Inglot A.D., Zielinska-JencZuylic J., Piasecki E. Tolpa Peat Preparation induces interferon and tumor necrosis factor production in human peripheral blood leucocytes // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz.). - 1999. - Vol. 41. - № 1. - P. 73-80.

47. Inglot A.D., Sobiech K.A. Development and disappearance of tolerance to induction of interferon and tumor necrosis factor response in athletes treated with natural immunostimulant // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz.). - 1999. - Vol. 47. № 4. - P. 237-244.

48. Jancowski A., Nienartowicz B., Polanska B., Lewandowicz-Uszynska A. A randomised, double-blind stude on the efficacy of Tolpa Torf Preparation in the tretment of recurrent respiratory tract infections // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz.). - 1996. - Vol. 41. - № 1. - P. 95-97.

49. Juszkiewicz T., Minta M., Wlodarczyc B., Bilnacki B., Zmudzki J. Stadies on the embryotoxic and teratogenic effects of Tolpa Peat Preparation // Acta Pol. Pharm. - 1997. - Vol. 50. - № 4-5. - P. 383-388.

50. Kawalska M., Denus A., Bialek J. Influence of Tolpa Peat Preparation on the phagocytic activity and bactericidal properties of granulocytes in healthy volunters Acta Pol. Pharm. - 1996. - Vol. 50. - № 4-5. - P. 393-395.

51. Koziorowska J., Anuszewska E. Evaluation of potential carcinogenic properties of Tolpa Peat Preparation // Acta Pol. Pharm. - 1996. - Vol. 51. - № 1. - P. 101-102.

52. Landgraf M.D., Javaroni Rd., Resende M.O. Characterization of humic substances by capillary electrophoresis // J. Capillar. Electrophor. - 1998. - Vol. 5. № 5-6. - P. 193-199.

53. Madey J.A., Obminska-Domoradska B., Carbulinski T. The influence of long-term administration of Tolpa Peat Preparation on immune reactivity in mice. II. The effect of intermittent of Tolpa Peat Preparation administration on the morphological picture of lymphatic organs // Acta Pol. Pharm. - 1995. - Vol. 50. - № 4-5. - P. 405-408.

54. Malendowicz L.K. Arginine-vasopressin and corticotropin-releasing hormone are sequentially involved in the endothelin-1-induced acute stimulation of rat pituitary-adrenocortical axis // J. Steroid Biochem. - 1998. - Vol. 66. - № 1-2. - P. 45-49.

55. Maslinski C., Fogel W.A., Andjewski W. The influence of Tolpa Peat Preparation on rat liver regeneration // Acta Pol. Pharm. - 1995. - Vol. 50. - № 4-5. P. 413-416.

56. Maslinski C., Wyczolkowska J., Cruwaj M., Michon T. Investigation on allergogenic properties of Tolpa Peat Preparation on rat liver regeneration //Acta Pol. Pharm. - 1993. - Vol. 50. - № 6. - P. 469-474.

57. Piotrowska D., Dlugosz A., Witkiewisz K., Pajak J. The research on antioxidative properties of Tolpa Peat Preparation and its fractions // Acta Pol. Pharm. - 2000. - № 57. - P. 127-129.

58. Sauvant M.P., Pepin D., Guillot J. Effects of humic substances and phenolic compounds on the in vitro toxicity of aluminium // Ecotoxicol Environ Saf. - 1999. - V. 44. - P. 47-55.

59. Woyton J., Gabrys M., Bielanow T., Zimmer M., Sokalski J., Geneja R., Zborowski M. A comparison of efficacy of Tolpa Peat Preparation in the treatment of cervicitis with or without surgery // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz.). - 1995. - Vol. 41. - № 1. - P. 99-103.

60. Wu W.Z., Xu Y., Schramm K., Kettrup A. Effect of natural dissolved humic material on bioavailability and acute toxicity of fenpropathrin to the grass carp, Stenopharyngodon idellus // Ecotoxicol Environ Saf . - 1999. - V.42 (3). - P. 203-206.

ПРИЛОЖЕНИЕ

Таблица 1. Органометрические параметры последов крыс

	1 группа, n=30	2 группа, n=30	3 группа, n=38
Масса плаценты, мг	530,09±12,033	476,85±11,465**	510,55±10,715^
Объем плаценты, мм3	0,79±0,019	0,72±0,015**	0,82±0,016^^^
Площадь материнской поверхности, мм2	160,74±4,758	148,08±2,791*	144,94±3,573**
Длина пуповины, мм	25,43±0,583	22,28±0,724***	27,08±0,739^^^

Достоверность различий между группами 1-2 и 1-3:

* - p<0,05; ** - p<0,01; *** - p<0,001

Достоверность различий между группами 2-3:

^ - p<0,05; ^^ - p<0,01; ^^^ - p<0,001

Таблица 2. Площадь материнских синусов и плодовых капилляров лабиринтного отдела плаценты

	1 группа, n=30	2 группа, n=30	3 группа, n=38
Материнские синусы, мкм2	Центр	859,70±45,562	1136,91±38,81***	1274,25±23,447*** ^^
	Край	1839,19±82,179	1153,19±42,238***	1622,01±56,483* ^^^
Плодовые капилляры, мкм2	Центр	90,14±3,396	70,87±2,01***	101,68±3,363* ^^^
	Край	110,67±4,851	87,78±2,359***	100,22±2,680^^^

Достоверность различий между группами 1-2 и 1-3:

* - p<0,05; ** - p<0,01; *** - p<0,001

Достоверность различий между группами 2-3:

^ - p<0,05; ^^ - p<0,01; ^^^ - p<0,001

Таблица 3. Удельный объем структурных компонентов плаценты

	1 группа, n=30	2 группа, n=30	3 группа, n=38
Хориальная пластинка	Центр	1,87±0,116	1,77±0,086	1,73±0,069
	Край	1,79±0,089	1,85±0,118	1,9±0,121
Ветвистый хорион	Центр	2,65±0,143	2,84±0,185	2,79±0,115
	Край	-	-	-
Материнские лакуны	Центр	28,84±0,272	24,63±0,151***	31,19±0,299*** ^^^
	Край	33,85±0,359	27,99±0,275***	31,77±0,179*** ^^^
Плодовые капилляры	Центр	17,80±0,219	12,69±0,076***	15,91±0,118*** ^^^
	Край	18,33±0,108	16,58±0,138***	17,64±0,295* ^^
Трофобласт	Центр	19,13±0,209	16,41±0,117***	13,51±0,153*** ^^^
	Край	14,65±0,254	14,16±0,158	13,89±0,162 *
Базофильные клетки	Центр	15,70±0,257	14,48±0,061***	12,53±0,146*** ^^^
	Край	16,35±0,242	13,08±0,986***	13,75±0,137*** ^^^
Гликогеновые клетки лабиринта	Центр	0,98±0,117	1,07±0,097	0,93±0,062
	Край	1,36±0,159	1,4±0,129	1,83±0,103* ^^
Гликогеновые клетки	Центр	2,35±0,094	1,29±0,078***	2,93±0,128*** ^^^
Базального отдела	Край	2,71±0,171	2,36±0,133	2,99±0,125^^^
Фибриноид	Центр	1,81±0,115	12,87±0,124***	4,12±0,072*** ^^^
	Край	3,23±0,261	10,35±0,161***	5,02±0,209*** ^^^
Патологические очаги	Центр	-	5,37±0,099***	2,67±0,133*** ^^^
	Край	-	5,53±0,296***	2,29±0,171*** ^^^
Материнские сосудыбазального отдела	Центр	9,10±0,095	7,06±0,091***	11,65±0,133*** ^^^
	Край	7,82±0,350	6,70±0,090**	8,9±0,197** ^^^

Достоверность различий между группами 1-2 и 1-3: * - p<0,05;** - p<0,01; *** - p<0,001

Достоверность различий между группами 2-3: ^ - p<0,05; ^^ - p<0,01; ^^^ - p<0,001

Таблица 4

Средний гистохимический коэффициент фактора Виллебранда

Средний гистохимический коэффициент	1 группа	2 группа	3 группа
плацента	2,56±0,015	2,64±0,014 *	2,58±0,015 ^
плацентарное ложе	2,36±0,015	2,4±0,014	2,38±0,016

* - достоверность различий между группами 1-2 и 1-3 (p<0,05)

^ - достоверность различий между группами 2-3 (p<0,05)

Таблица 5. Средний гистохимический коэффициент васкуло-эндотелиального фактора роста

Средний гистохимический коэффициент	1 группа	2 группа	3 группа
плацента	2,51±0,015	2,43±0,014 *	2,63±0,013 *^
плацентарное ложе	2,54±0,016	2,38±0,015 *	2,79±0,014 *^

* - достоверность различий между группами 1-2 и 1-3 (p<0,05)

^ - достоверность различий между группами 2-3 (p<0,05)

Таблица 6. Соматометрические параметры плодов крыс

	1 группа, n=30	2 группа, n=30	3 группа, n=38
Масса плода, г	3,79±0,074	3,08±0,129***	3,96±0,085^^^
Длина плода, мм	42,87±0,29	39,43±0,802***	44,79±0,562** ^^^
Длина хвоста, мм	14,97±0,114	14,10±0,185***	15,92±0,299** ^^^

* - достоверность различий между группами 1-2 и 1-3 (p<0,05)

^ - достоверность различий между группами 2-3 (p<0,05)

Таблица 7. Удельный объем клеток в тимусе плодов крыс

Клетки (%)	1 группа, n=30	2 группа, n=30
	Корковое вещество	Мозговое вещество	Корковое вещество	Мозговое вещество
Большие лимфоциты	14,70,7	5,50,4	9,90,5 ***	3,10,4 ***
Средние лимфоциты	21,90,7	20,70,6	27,10,6 ***	24,90,6 ***
Малые лимфоциты	35,70,8	42,30,9	40,6±0,9 ***	47,80,9 ***
Бластные формы	6,00,5	4,10,5	7,80,3 ***	2,90,2 **
Митотически делящиеся	2,30,5	0,50,2	3,00,5	0,80,3
Ретикулоэпителиоциты	16,10,7	24,30,8	9,00,8 ***	18,30,8 ***
Макрофаги	0,60,3	0,40,5	0,50,2	0,30,1
Деструктивно измененные	2,70,5	2,20,4	2,10,5	1,90,4

Таблица 8. Удельная доля клеток в пульпе селезенки плодов крыс

Клетки (%)	Группы животных
	1 группа, n=30	2 группа, n=30
Малые лимфоциты	22,60,7	21,00,8
Средние лимфоциты	18,50,5	17,70,7
Большие лимфоциты	15,90,4	5,80,4 ***
Зрелые и незрелые плазматические клетки	7,60,2	11,70,4 **
Клетки эритроцитарного ряда	6,90,2	8,10,3 **
Клетки гранулоцитарного ряда	11,70,4	15,00,5 ***
Макрофаги	7,80,3	9,30,4 **
Бласты	7,50,4	9,00,5 *
Митотически делящиеся	1,50,2	2,40,3 *

Достоверность различий между группами: * - p<0,05 ** - p<0,01 *** - p<0,001

Размещено на Allbest.ru