Проведение анализа крови в гистологической лаборатории

Основные составляющие крови человека и их участие в процессах жизнедеятельности человеческого организма. Определение нормального анализа крови человека, отклонения показателей крови от нормы. Выявление и изучение основных болезней, связанных с кровью.

Рубрика Медицина
Вид отчет по практике
Язык русский
Дата добавления 22.11.2017
Размер файла 582,1 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

· Лучевая болезнь

с 1года до 2 лет

6,0 - 17,0

с 2 до 4 лет

5,5 - 15,5

с 4 до 6 лет

5,0 - 14,5

с 6 до 10 лет

4,5 - 13,5

с 10 до 16 лет

4,5 - 13,0

после 16 лет и взрослые

4,0 - 9,0

Нормы гематокрита у детей и взрослых

Возраст

Пол

Показатель

в %

Причины повышения

Причины понижения

до 2 недель

41 - 65

· Эритремия

· Сердечная или дыхательная недостаточность

· Обезвоживание в результате обильной рвоты, диареи, обширных ожогов, при диабете

· Анемия

· Почечная недостаточность

· Вторая половина беременности

с 2 до 4,3 недель

33 - 55

4,3 - 8,6 недель

28 - 42

С 8,6 недель до 4 месяцев

32 - 44

С 4 до 6 месяцев

31 - 41

С 6 до 9 месяцев

32 - 40

С 9 до 12 месяцев

33 - 41

с 1 года до 3 лет

32 - 40

С 3 до 6 лет

32 - 42

С 6 до 9 лет

33 - 41

С 9 до 12 лет

34 - 43

С 12 до 15 лет

Женщины

34 - 44

Мужчины

35 - 45

С 15 до 18 лет

Женщины

34 - 44

Мужчины

37 - 48

С 18 до 45 лет

Женщины

38 - 47

Мужчины

42 - 50

С 45 до 65 лет

Женщины

35 - 47

Мужчины

39 - 50

после 65 лет

Женщины

35 - 47

Мужчины

37 - 51

Норма нейтрофилов у детей и взрослых

Возраст

Сегментоядерные нейтрофилы, показатель в %

Палочкоядерные нейтрофилы, показатель в %

Причины повышения

Причины понижения

Новорожденные

47 - 70

3 - 12

· Инфекционные заболевания (ангина, синусит, кишечная инфекция, бронхит, пневмония)

· Инфекционные процессы - абсцесс, флегмона, гангрена, травматические повреждения мягких тканей, остеомиелит

· Воспалительные заболевания внутренних органов: панкреатит, перитонит, тиреоидит, артрит)

· Инфаркт (инфаркт сердца, почки, селезенки)

· Хронические нарушения обмена веществ: сахарный диабет, уремия, эклампсия

· Раковые опухоли

Применение иммуностимулирующих препаратов, прививки

· Инфекционные заболевания: брюшной тиф, бруцеллез, грипп, корь, ветряная оспа (ветрянка), вирусный гепатит, краснуха)

· Заболевания крови (апластическая анемия, острый лейкоз)

· Наследственная нейтропения

· Высокий уровень гормонов щитовидной железы Тиреотоксикоз

· Последствия химиотерапии

· Последствия радиотерапии

Применение антибактериальных, противовоспалительных, противовирусных препаратов

до 2-х недель

30 - 50

1 - 5

С 2 недель до 1 года

16 - 45

1 - 5

С 1 до 2 года

28 - 48

1 - 5

С 2 до 5 лет

32 - 55

1 - 5

С 6 до 7 лет

38 - 58

1 - 5

С 8 до 9 лет

41 - 60

1 - 5

С 9 до11 лет

43 - 60

1 - 5

С 12 до15 лет

45 - 60

1 - 5

С 16 лет и взрослые

50 - 70

1 - 3

Норма эозинофилов крови у детей и взрослых

Возраст

Показатель

в %

Причины повышения

Причины снижения

Новорожденные

1 - 6

· Аллергия (бронхиальная астма, пищевая аллергия, аллергия на пыльцу и прочие воздушные аллергены, атопический дерматит, аллергический ринит, лекарственная аллергия)

· Паразитарные заболевания - кишечные паразиты (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз, описторхоз, эхинококкоз)

· Инфекционные заболевания (скарлатина, туберкулез, мононуклеоз, венерические заболевания)

· Раковые опухоли

· Заболевания кроветворной системы (лейкозы, лимфома, лимфогранулематоз)

Ревматические заболевания (ревматоидный артрит, узелковый периартериит,склеродермия)

· Интоксикация тяжелыми металлами

· Гнойные процессы, сепсис

Начало воспалительного процесса

до 2-х недель

1 - 6

с 2 недель до 1 года

1 - 5

с 1 до 2 лет

1 - 7

с 2 до 5 лет

1 - 6

с 6 до 7 лет

1 - 5

с 8 до 9 лет

1 - 5

с 9 до 11 лет

1 - 5

с 12 до 15 лет

1 - 5

с 16 лет и взрослые

1 - 5

Нормы моноцитов крови у детей и взрослых

Возраст

Показатель

в %

Причины повышения мотоцитов (моноцитоз)

Причины снижения мотоцитов (моноцитопения)

Новорожденные

3 - 12

· Инфекции вызванные вирусами, грибками (кандидоз), паразитами и простейшими

· Восстановительный период после острого воспалительного процесса.

· Специфические заболевания: туберкулез, сифилис, бруцеллез, саркоидоз, неспецифический язвенный колит

· Ревматические заболевания - системная красная волчанка, ревматоидный артрит, узелковый периартериит, болезни кроветворной системы острый лейкоз, миеломнаяболезнь, лимфогранулематоз

отравление фосфором, тетрахлорэтаном.

· апластическая анемия

· волосатоклеточный лейкоз

· гнойные поражения (абсцессы, флегмоны, остеомиелит)

· роды

· после хирургической операции

прием стероидных препаратов (дексаметазон, преднизолон)

до 2 недель

5 - 15

С 2 недель до 1 года

4 - 10

С 1 год до 2 лет

3 - 10

С 2 до 5 лет

3 - 9

С 6 до 7 лет

3 - 9

С 8 до 9 лет

3 - 9

С 9 до 11 лет

3 - 9

С 12 до 15 лет

3 - 9

С 16 лет и взрослые

3 - 9

Нормы лимфоцитов у детей и взрослых

Возраст

Показатель

в %

Причины повышения лимфоцитов (лимфоцитоз)

Причины понижения лимфоцитов (лимфопения)

Новорожденные

15 - 35

· Вирусные инфекции: инфекционный мононуклеоз, вирусный гепатит, цитомегаловирусная инфекция, герпетическая инфекция, краснуха

· Токсоплазмоз

· ОРВИ

· Заболевания системы крови: острыйлимфолейкоз, хронический лимфолейкоз, лимфосаркома, болезнь тяжелых цепей - болезнь Франклина;

· Отравление тетрахлорэтаном, свинцом, мышьяком, дисульфидом углерода

· Применение препаратов: леводопа, фенитоин, вальпроевая кислота, наркотические обезболивающие

· Лейкоз

· Туберкулез

· Лимфогранулематоз

· Системная красная волчанка

· Апластическая анемия

· Почечная недостаточность

· Терминальная стадия онкологических заболеваний;

· СПИД

· Радиотерапия;

· Химиотерапия

· Применение глюкокортикоидов

до 2 недель

22 - 55

С 2 недель до 1 года

45 - 70

С 1 год до 2 лет

37 - 60

С 2 до 5 лет

33 - 55

С 6 до 7 лет

30 - 50

С 8 до 9 лет

30 - 50

С 9 до 11 лет

30 - 46

С 12 до 15 лет

30 - 45

С 16 лет и взрослые

20 - 40

Норма тромбоцитов крови

180 - 320x109 клеток/л

Причины повышения тромбоцитов

(тромбоцитоз, количество тромбоцитов более 320x109клеток/л)

Понижение уровня тромбоцитов

(тромбоцитопения - менее 180x109 клеток/л)

· удаление селезенки

· воспалительные процессы (обострение ревматизма, остеомиелит, туберкулез, абсцесс)

· разные виды анемий (после кровопотери, железодефицитная, гемолитическая)

· после хирургической операции

· рак различной локализации

· физическое переутомление

эритремия

· врожденные заболевания крови (гемофилии)

· идиопатическая аутоиммунная тромбоцитопеническая пурпура

· лекарственная тромбоцитопения

· системная красная волчанка

· инфекции (вирусные и бактериальные инфекции, риккетсиоз, малярия, токсоплазмоз)

· апластическая анемия

· пароксизмальная ночная гемоглобинурия

· синдром Evans (аутоиммунная гемолитическая анемия и тромбоцитопения)

· ДВС-синдром (диссеминированного внутрисосудистого свертывания)

· Переливание крови

· У детей, рожденных недоношенными

· при гемолитической болезни новорожденных

· сердечная недостаточность

тромбоз почечных вен

Норма базофилов крови

0-0,5%

Причины повышения базофилов крови

· хронический миелолейкоз

· снижение уровня гормонов щитовидной железы гипотиреоз

· ветряная оспа

· аллергия пищевая и лекарственная

· нефроз

· гемолитическая анемия

· состояние после удаления селезенки

· болезнь Ходжкина

· лечение гормональными язвенный колит

MCH, MCHC, MCV, цветовой показатель (ЦП)

Показатель

Расчетная формула

Норма

MCH-meancorpuscular hemoglobin. Данный индекс отражает абсолютное содержание гемоглобина в одном эритроците в пикограммах (пг).

МСН = гемоглобин (г/л)/количество эритроцитов = пг

24 - 33 пг.

Цветовой показатель (ЦП) - это классический метод для определения концентрации гемоглобина в эритроцитах. В настоящее время постепенно в анализах крови его заменять МСН индекс . Данные индексы отражают одно и то же, только выражены в разных единицах.

0,9-1,1

MCHC- meancorpuscular hemoglobin concentration.Этот индекс отражает степень насыщенности эритроцита гемоглобином и выражается в %. То есть по данному индексу можно сказать, сколько процентов составляет содержание гемоглобина в одном эритроците.

МСНС = (гемоглобин (г/л)/гематокрит(%))*10 = %

30 - 38%

MCV - meancorpuscular volume.Этот показатель отражает средний объём эритроцита, выраженный в микронах кубических (мкм3) или фемтолитрах (фл).

MCV = гематокрит (%)*10/количество эритроцитов(Т/л) = мкм3 (фл)

80-95 мкм3 (фл)

ВЫВОД

При микроскопировании образцов крови, выявлен нормальный состав крови. Аномалии (отклонения от нормы) не выявлены. Использование современных технологий и литературы, позволили сделать выводы о правильности проделанной работы и наблюдать отклонения от нормального состава крови при помощи вышеупомянутой литературы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

По окончанию пройденной практики в период с 15 мая по 8 июля

проведены наблюдения и сделаны выводы о выполнении поставленной цели и задач: поставленная цель выполнена, задачи реализованы в полной мере.

При расшифровке анализа крови человека необходимо максимально сосредоточится и обладать информацией касательно норм и отклонений, для заключений или выводов о состоянии организма человека.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абдулкадыров К. М. Гематология : новейший справ. : [соврем.клин. гематология. Методы диагностики и лечения заболеваний системы крови, Новейшие данные о кроветворении. Морфология и функции клеток крови и кост. мозга] / [КудратМугутдиновичАбдулкадыров и др.] ; под общ.ред. К. М. Абдулкадырова. - М. : Эксмо ; СПб. : Сова, 2004 (Н. Новгород :ГИПП Нижполиграф). - 927 с.

2. Беркоу Р.Руководство по медицине : Пер. с англ. / [Фирма "Мерк, Шарп и Доум" ; Х. С. Эйкискал и др.]; Гл. ред. Р. Беркоу. - М. : Мир, 1997.

3. Воробьев И.А. Руководство по гематологии [Текст] / [И.А. Воробьев, Е.С. Надеждина, И.Л. Чертков и др.] ; Под ред. А.И. Воробьева, Ю.И. Лорие. - Москва : Медицина, 1979. - 584 с.

4. Кирчук В. Ф. Физиология крови [Электронный ресурс] : учебное пособие / В. Ф. Киричук ; М-во образования Российской Федерации, М-во здравоохранения Российской Федерации, Учебно-методическое объед. по мед.и фармацевтическому образованию ВУЗов России, Гос. образовательное учреждение высш. проф. образования Саратовский гос. мед. ун-т им. В. И. Разумовского Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию. - Саратов : СГМУ Росздрава, 2009.

5. Козинец Г. И. Клетки крови и костного мозга : цветной атлас : учебное пособие для студентов медицинских вузов / [Г. И. Козинец и др.] ; под ред. Г. И. Козинца. - Москва : Мед.информ. агентство (МИА), 2004. - 202 с.

6. Леонова Е.В.Патофизиология системы крови [Текст] : учебное пособие для студентов высших учебных заведений по медицинским специальностям / Е. В. Леонова, А. В. Чантурия, Ф. И. Висмонт. - 2-е изд., испр. и доп. - Минск : Вышэйшая школа, 2013. - 143, [1] с.

7. Назаренко Г. И. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований / Г. И. Назаренко, А. А. Кишкун. - М. : Медицина, 2000. - 540, [1] с.

8. Энциклопедия Кругосвет[Электронный ресурс]: Универсальная научно-популярная онлайн-энциклопедия/ Цагарели М. Ю., Добровольский А. В. - электронные данные.

ПРИЛОЖЕНИЕ 1

ИНДИВИДУАЛЬНОЕ ЗАДАНИЕ К ТЕМАМ МОДУЛЯ

(выполняется в период производственной практики)

______________________________________________________

(фамилия, имя, отчество)

________________________________________________________

(направление, профиль)

_______________________________________________________

(кафедра)

_______________________________________________________

(фамилия, имя, отчество руководителя практики)

Сроки практики: с __________ по __________ 20 ____ года

п/п

Формируемая компетенция

Содержание задания

Форма контроля

Результат оценивания

1.

ПК-5

Инструктаж по технике безопасности при работе в гистологической лаборатории. Организация лабораторного места лаборанта-гистолога. Работа с документацией гистологической лаборатории.

Тестирование (ФОС), заполнение таблиц (ИЗ)

2.

ОК-7

ОПК-5

ОПК-6

ПК-1

ПК-2

ПК-3

ПК-4

Методы и техника микроскопии. Световая микроскопия. Принцип работы и использование светового микроскопа. Методы световой микроскопии. Витальное (прижизненное) изучение клеток. Изучение фиксированных клеток. Электронная микроскопия. Принципы работы электронного микроскопа. Подготовка материала для электронно-микроскопического исследования. Методика обработки материала для электронно-микроскопического исследования.

Заполнение таблиц (ИЗ), решение ситуационных задач (ФОС)

3.

ОК-7

ОПК-3

ОПК-5

ОПК-6

ПК-4

ПК-6

Правила и этапы приготовления препаратов для гистологического исследования. Взятие материала. Особенности технических приемов. Фиксация материала. Способы фиксации, общие правила фиксации, сущность процесса и важность этапа для дальнейшего исследования. Понятие об артефактах, возможные причины их возникновения и возможные действия по их устранению. Промывка и обезвоживание материала.

Заливка материала в застывающие среды. Микротом, его виды и устройство. Приготовление целлоидиновых и парафиновых срезов. Приготовление тотальных (пленчатых) препаратов.Красители, применяемые в гистологической практике. Классификация красителей. Группа основных или ядерных красителей, понятие «базофилии». Кислые красители - цитоплазматические, понятие «оксифилии». Нейтральные красители. Тинкториальные свойства гистологических структур. Прогрессивные и регрессивные способы окрашивания. Техника окрашивания и заключения срезов. Общие методы окрашивания (окрашивание гематоксилином и эозином, окрашивание железным гематоксилином по Гейденгайну).

Тестирование (ФОС), ответы на контрольные вопросы (ФОС), заполнение таблиц (ИЗ)

4.

ОК-7

ОПК-3

ОПК-5

ОПК-6

ПК-4

ПК-6

Некоторые специальные методы приготовления и окрашивания препаратов. Окрашивание соединительных тканей. Приготовление и окрашивание мазков крови. Выявление элементов нервной системы. Обработка и окрашивание костной ткани. Гистохимические методы. Прижизненное (витальное) окрашивание тканей. Обработка биопсийного материала.

Практические задания (ИЗ)

5.

ПК-7

Педагогическая деятельность. Подготовка и проведение занятия, внеклассного мероприятия.

Развернутый план-конспект и презентация практического занятия, сценарий внеклассного мероприятия и его презентация.

6.

ОПК-13

ПК-4

ПК-8

Подготовка отчетной документации по производственной практике.

Отчет о прохождении производственной практики

Ф.И.О. обучающегося ________________________________ (подпись)

Должность руководителя практики ____________________________

(Ф.И.О. руководителя практики, подпись)

1. Организация и оборудование гистологической лаборатории

1.1. Организация гистологической лаборатории (заполните таблицу)

№ п/п

Помещение

Функции помещения

1.

Комната для подготовки материала

Прием и вырезка биопсийного материала осуществляются в комнате, расположенной рядом со служебным входом. В комнате устанавливаются вытяжной шкаф, письменный стол (с бланками) для регистрации материала, в вытяжном шкафу -- доски (размером 40 х 20 см), на которых проводится вырезка, небольшой шкаф для посуды и инструмента, раковина-мойка. При возможности диктофонной записи у шкафа на уровне лица прозектора подвешивается микрофон. Если нет вытяжного шкафа, вырезка производится на столе. На столе устанавливают тиски, с помощью которых выпиливают кусочки кости.

2.

Рабочая комната лаборантов

В рабочей комнате лаборанта должны быть вытяжной шкаф, химический и физический столы, шкаф и сейф для хранения химических реактивов. Перечень необходимого оборудования лаборатории включает технические и аналитические весы, рН-метр, микротомы (санные, ротационные, замораживающие), криостат или криокит, водяную баню, столик для расплавления парафиновых срезов, комплекты автоматических пипеток, термостаты, холодильники, микроскопы, автоматы для проводки материала и др. В данном помещении производятся необходимые анализы.

3.

Моечная

Моечная - это комната предназначена для мытья посуды. Она оборудована раковинами, ванной. В местах установки раковин и других сантехнических приборов, следует предусматривать отделку стен глазурированной плиткой или другими влагостойкими материалами на высоту 1,6 м от пола и на ширину более 20 см оборудования и приборов с каждой стороны.

4.

Помещение дляразмещения оборудования и хранения экспериментальных образцов

Архивная комната оборудуется стеллажами с полками, имеющими обозначения по годам, номерам и характеру материала («биопсийный», «аутопсийный», «музейный» и др.). В шкафах хранят парафиновые блоки, гистологические препараты, всю документацию патологоанатомического отделения. Сырой материал и формалин хранят в подвале. Гистологические препараты, подлежащие временному хранению, после истечения положенного срока, смываются, предметные стекла используются вторично. В архивной комнате могут быть установлены с компьютерами. Работа с архивным материалом разрешается только в помещении архива, без выноса материалов за его пределы.

5.

Санитарные помещения

Необходимы для персонала и его комфортной работы. Сюда входят: душевые, гардеробные, умывальные, помещение для отдыха персонала и т.д.

1.2. Оборудование гистологической лаборатории (заполните таблицу)

№ п/п

Название

Описание, применение, использование

1.

Широкогорлые банки с притертыми пробками

Вместимость от 50 до 200 мл. Используют для составления гистологических батарей, предназначенных для подготовки кусочков тканей к заливке различными средами. Крупные банки применяют для фиксации и хранения кусочков тканей в фиксирующих жидкостях, обработки предметных стекол, приготовления нейтрального формалина и пр.

2.

Бюксы различных размеров

Небольшие круглые стеклянные стаканчики различного диаметра и высоты с шлифованными крышками -- наиболее распространенная посуда для обработки гистологических срезов и маленьких кусочков тканей.

3.

Биологические стаканчики с крышечками

Биологические стаканчики -- круглые, овальные или четырехугольные (как и высокие бюксы) -- применяют для проводки гистологических срезов, монтированных на предметных стеклах. Для придания стаканчикам большей устойчивости и обеспечения определенного порядка в расстановке их помещают в специальные стойки, изготовленные из дерева или пластмассы, по нескольку штук в ряд в зависимости от методики обработки.

4.

Колбы (плоскодонные)

Вместимостью от 50 мл до 2 л. Малые колбы применяют для приготовления и хранения растворов различных красителей, большие -- под дистиллированную воду и прочие жидкости, расходуемые в больших количествах.

5.

Чашки Петри

Чашки Петри -- плоские, широкие стеклянные чашки с крышками -- используют для вырезки биопсийного материала, в них можно окрашивать «свободно плавающие» срезы, ставить гистоэнзиматические реакции в термостате и т.д.

6.

Кюветы

Четырехугольные стеклянные чашки с крышками, имеющие на двух противоположных сторонах прорези, в которые вставляют предметные стекла. Применяют для одновременной окраски нескольких срезов, наклеенных на предметные стекла.

7.

Кристаллизаторы

Круглые глубокие чашки из толстого стекла (различной вместимости) -- применяют для массовой промывки наклеенных на стекла срезов, сливания отработанных жидкостей и других надобностей.

8.

Часовые стекла

(различного диаметра) применяют для обработки свободно плавающих срезов, нуждающихся в контроле под микроскопом (серебрение нервной ткани и др.).

9.

Мерные цилиндры

Используются для мерки, как правило, больших объемов жидкости. Представляют собой длинный сосуд с градуировкой.

10.

Пипетки

Используют для накалывания на срезы красителей и различных жидкостей, градуированные (вместимостью 0,1--100 мл) применяют для отмеривания малых количеств различных жидкостей при составлении растворов (особенно в гистохимической практике).

11.

Пинцеты

Используется вместе с иглой гистологической для правильного размещения тканевого объекта после проводки в парафине в процессе изготовления парафинового блока.

Так же для удерживания обезжиренных предметных стекол.

12.

Препаровальные иглы

Используется вместе с пинцетом для правильного размещения тканевого объекта после проводки в парафине в процессе изготовления парафинового блока.

13.

Стеклянные иглы

Стеклянные иглы необходимы при импрегнации серебром, когда металлические иглами пользоваться нельзя,

14.

Зажимы

Используют для извлечения предметных стекол из банок со спирт-эфиром, а также для захвата мелких лабораторных животных

15.

Ножницы

Острые, бывают остроконечные, с закругленными краями. Универсальный в использовании: отбор материала, отделение мелких кусков от более крупных и т.д.

16.

Скальпели

Необходимы для формирования тонких срезов. Используются для приготовления препаратов. Крайне острые, металлические, имеют рукоятку для удобной фиксации в руке.

17.

Шпатели (лопаточки)

Металлические или пластмассовые прямые и изогнутые лопаточки для переноса срезов и кусочков тканей, взятия различных сыпучих веществ

18.

Предметные стекла

Прямоугольные пластины размером 76 х 26 мм и толщиной 1--2 мм, предназначенные для размещения гистологических срезов в процессе приготовления постоянных препаратов.

19.

Покровные стекла

Представляют собой тонкие (0,15--0,2 мм толщины) пластинки различных размеров. Служат для покрытия обработанных срезов, расположенных на предметном стекле.

20.

Металлические ванночки, дно которых залито воском

21.

Микротом

Специальное механическое устройство, предназначенное для приготовления гистологических срезов определенной толщины.

22.

Световой микроскоп

Оптический прибор для получения увеличенных изображений объектов (или деталей их структуры). Применяется для более детального рассмотрения препаратов, тканей и их срезов.

23.

Термостат

Как правило применяется для культивирования, сохранения тех или иных материалов, нуждающихся в условиях постоянной температуры.

24.

Вытяжной шкаф

Необходим для приготовления реактивов, включающих в себя летучие соединеня.

2. Методы и техника микроскопии

2.1. Устройство микроскопа (заполните таблицу)

№ п/п

Части микроскопа

Описание, основная функция

Оптическая часть

1.

Объектив

Представляет собой сложную оптическую систему, образующую увеличенное изображение объекта. Объектив состоит из металлического цилиндра с вмонтированными в него линзами, число которых может быть различным. Увеличение объектива обозначено на нем цифрами.

2.

Окуляр

Состоит из 2-3 линз, вмонтированных в металлический цилиндр. Между линзами расположена постоянная диафрагма, определяющая границы поля зрения. Нижняя линза фокусирует изображение объекта, построенное объективом в плоскости диафрагмы, а верхняя служит непосредственно для наблюдения. Увеличение окуляров обозначено на них цифрами: х7, х10, х15.

3.

Осветительная часть

Состоит из зеркала или электроосветителя, конденсора с ирисовой диафрагмой и светофильтром, расположенных под предметным столиком. Они предназначены для освещения объекта пучком света. Электроосветитель устанавливается под конденсором в гнездо подставки.

4.

Конденсор

Состоит из 2-3 линз, вставленных в металлический цилиндр. При подъеме или опускании его с помощью специального винта соответственно конденсируется или рассеивается свет, падающий от зеркала на объект.

5.

Ирисовая диафрагма

Расположена между зеркалом и конденсором. Она служит для изменения диаметра светового потока, направляемого зеркалом через конденсор на объект, в соответствии с диаметром фронтальной линзы объектива и состоит из тонких металлических пластинок. С помощью рычажка их можно то соединить, полностью закрывая нижнюю линзу конденсора, то развести, увеличивая поток света.

Механическая часть

6.

Штатив

Конструктивный несущий узел светового микроскопа, служащий для установки тубуса, предметного столика, осветительной системы.

7.

Колонка с микро- и макровинтами

Колонка имеет форму дуги. К штативу примыкает коробка механизмов, система зубчатых колес для регуляции движения тубуса. Система приводится в действие вращением макрометрического и микрометрического винтов.

Макрометрический винт (кремальера, зубчатка, макровинт) служит для предварительной ориентировочной установки изображения рассматриваемого объекта на фокус.

Микрометрический винт (микровинт) используется для последующей, более четкой установки на фокус.

8.

Тубус

Это цилиндр, в который сверху вставляют окуляры. Тубус подвижно соединен с головкой тубусодержателя, фиксируется стопорным винтом в определенном положении. Ослабив стопорный винт, тубус можно снять.

2.2. Устройство санного микротома(заполните таблицу)

№ п/п

Части микротома

Описание, основная функция

1.

Станина

Представляет собой массивную устойчивую основу аппарата. В верхней части имеется паз для перемещения ножевых салазок, несущих ножедержатель. На боковой поверхности расположены наклонные направляющие для перемещения салазок с механизмом подъема.

2.

Микрометрический винт

Микрометрическая установка служит для автоматической подачи объекта к ножу с целью получения срезов необходимой толщины. Главной составной частью ее является микрометрический винт, т.е. винт с очень тонкой нарезкой.

3.

Объектные салазки с объектодержателем

Винтовой зажим, вмонтированный в шаровую оправу каретки подачи объектодержателя. Шарнирный механизм позволяет придавать блоку любое нужное положение. Фиксацию объектодержателя производят специальной рукояткой.

4.

Ножевые салазки с зажимом для ножа

Массивные устойчивые салазки, снабженные ручкой для передвижения и несущие на себе ножедержатель, который укрепляют на салазках специальной рукояткой, позволяющей менять горизонтальный угол расположения ножа. Сам же зажим снабжен подвижной цилиндрической втулкой, перемещение которой с помощью рычажка меняет угол наклона ножа.

5.

Микротомные ножи

Резку исследуемого объекта на микротоме производят с помощью специальных микротомных ножей.
Существует несколько разновидностей микротомных ножей. В основу их классификации положена форма лезвия. Режущий край микротомного ножа в отличие от обычной бритвы имеет так называемый фасеточный шлиф, т. е. угол сечения лезвия, образующийся в результате заточки лезвия под некоторым углом относительно его поверхности.

2.3. Методы микроскопии (заполните таблицу)

п/п

Виды микроскопии

Разновидности

Цели использования

1.

Световая микроскопия

Витальная (прижизненная) микроскопия

Показывает, что многие структуры живой клетки сравнительно мало изменяются при умелой фиксации и последующем окрашивании. Витальная микроскопия возможна и без окрашивания, если в обычный микроскоп ввести так называемый темнопольный конденсор. Он освещает объект так, что в глаз наблюдателя попадают только те лучи, которые рассеялись на частицах объекта и тем самым изменили направление своего распространения. Лучи, прошедшие через фон без рассеяния, в глаз не попадают. Поэтому частицы объекта светятся и ярко выделяются на темном фоне (темном поле). Частицы объекта хорошо видны, даже если их размеры меньше разрешаемого расстояния.

Темнопольная микроскопия

Обеспечивает наибольший возможный контраст изображения. успешно применялась для изучения спирохет, лептоспир и других слабо окрашиваемых микроорганизмов. При работе с гистологическими препаратами она неприменима.

Ультрамикроскопия

Мельчайшие изучаемые частицы освещаются мощным боковым пучком света и видны точками на черном фоне. Ультрамикроскопия позволяет подсчитывать частицы, оценивать их размеры и другие свойства. Применяется для изучения коллоидных растворов, аэрозолей, суспензий.

Ультрафиолетовая микроскопия

Основана на способности некоторых веществ избирательно поглощать ультрафиолетовые лучи с определенной длиной волны. Это позволяет наглядно демонстрировать и изучать, в том числе количественно, распределение веществ в живых клетках или фиксированных препаратах. В ультрафиолетовом микроскопе участок, содержащий нуклеиновую кислоту, выглядит значительно темнее.

Люминесцентная микроскопия

живой объект обрабатывают специальными красителями, которые, будучи освещены синим, фиолетовым или ультрафиолетовым светом, начинают светиться, излучая более длинные волны (зеленые, желтые). Цвет возбужденного вторичного свечения зависит от химических свойств объекта и введенного в него красителя.

Поляризационная микроскопия

Основана на изменении плоскости колебаний световой волны после прохождения через кристаллы. В практической медицине не применяется.

2.

Электронная микроскопия

Трансмиссионная и сканирующая электронная микроскопия

Это система визуализации изображения, которая теоретически обеспечивает очень высокое разрешение (0,1 нм). Основана на взаимодействии между электронами и компонентами тканей.

Тонкопленочный объект просвечивается пучком ускоренных электронов

Растровая (сканирующая) микроскопия.

Предназначен для получения изображения поверхности объекта с высоким (до 0,4 нанометра) пространственным разрешением, также информации о составе, строении и некоторых других свойствах приповерхностных слоёв. Основан на принципе взаимодействия электронного пучка с исследуемым объектом.Их главная функция -- получение увеличенного изображения исследуемого образца и/или изображений образца в различных регистрируемых сигналах. Сопоставление изображений, полученных в разных сигналах, позволяют делать вывод о морфологии и составе поверхности.

2.4. Определите суть следующих основных понятий

1. Разрешающая способность микроскопа - характеризует их способность давать раздельные изображения двух близко расположенных точек. Из-за дифракции света изображение точки представляет собой не строго точку, а кружок (светлое пятно, окруженное кольцами). Наименьшее угловое или линейное расстояние между двумя точками, при котором система дает их раздельное изображение, называется пределом разрешения и характеризует границы применимости геометрической оптики.

2. Увеличение микроскопа - определяется как произведение увеличения объектива на увеличение окуляра.

3. Правила и этапы приготовления препаратов для гистологического исследования

3.1.Определите суть следующих основных понятий

Биопсия

Метод исследования, при котором проводится прижизненный забор клеток или тканей (биоптата) из организма с диагностической или исследовательской целью. Биопсия является обязательным методом подтверждения диагноза при подозрении на наличие онкологических заболеваний.

Фиксация

Метод обработки ткани с целью закрепления ее прижизненной структуры.

Обезвоживание

Способ удаления воды из различных материалов с целью получения обезвоженного продукта.

Уплотнение или заливка

Процесс создания блока, достаточно твердого, чтобы быть пригодным для резки (микротомирования).

Микротомия

Подготовка гистологических срезов при помощи микротома для последующего микроскопического исследования.

Базофилия

Химическое сродство к основаниям, в том числе, к осномвным красителям. Базофилией в гистологии называют способность клеточных структур окрашиваться основными (щелочными) красителями (азуром, пиронином, гематоксилином и др.), обусловленная кислотными свойствами окрашивающихся компонентов клетки, главным образом нуклеиновых кислот (ДНК и РНК).

Оксифилия

Свойство цитоплазмы и других элементов клетки или волокнистых структур окрашиваться кислыми красителями (эозином, кислым фуксином и др.)

Гистохимия

Раздел гистологии, изучающий локализацию различных химических веществ и продуктов их метаболизма в тканях.

Авторадиография

Метод изучения распределения радиоактивных веществ в исследуемом объекте наложением на объект чувствительной к радиоактивным излучениям фотоэмульсии.

Иммуноцитохимия

Метод морфологической диагностики, в основе которого лежит визуализация и оценка с помощью микроскопа результатов реакции антиген-антитело непосредственно в гистологических срезах.

Световая микроскопия

Микроскопия, при которой увеличенное изображение получают с помощью оптического прибора (микроскопа), в структуру которого входят компоненты, использующие пучок света для создания видимого поля.

Электронная микроскопия

Совокупность методов исследования с помощью электронных микроскопов микроструктур тел, их локального состава и локализованных на поверхностях или в микрообъемах тел электрических и магнитных полей.

Сканирующая микроскопия

Метод анализа поверхностной структуры микрообъекта путем анализа отраженного «электронного изображения» (как правило, при специальном напылении и с применением метода замораживания-высушивания, что позволяет повышать электронную плотность объекта и предотвращать деформации клеточных и др. структур).

Морфометрия

Включает совокупность приемов и методов определения геометрических характеристик исследовательских объектов-гистологических препаратов (срезов, мазков, отпечатков и т.п.) и микрофотографий.

3.2. Отметьте в таблице название основных этапов изготовления гистологического препарата и укажите кратко сущность каждого из них

Этапы изготовления гистологического препарата

Сущность этапа

Взятие материала

Берут кусочки органов и тканей величиной не более 1 смі. Материал желательно получать как можно раньше после смерти людей (метод исследования материала трупа человека -- аутопсия).

С диагностической целью материал для гистологического исследования может забираться у людей прижизненно с помощью специальных инструментов или во время операций. Этот способ получения материала носит название биопсии.

Фиксация

Фиксация - метод обработки ткани с целью закрепления ее прижизненной структуры. Это достигается путем воздействия на ткань специальных растворов (фиксаторов). Наиболее существенным изменением, происходящим в тканях под воздействием фиксатора является процесс свертывания (коагуляции) белков. Количество фиксатора следует брать в 20-100 раз больше объема кусочка фиксируемого материала.

Помывка в воде

После фиксации материал промывают (чаще всего в течение нескольких часов в проточной воде) с тем, чтобы избавить его от избытка фиксатора и различных осадков фиксирующих жидкостей.

Изучить с помощью микроскопа такие фиксированные кусочки органов невозможно, т.к. они не прозрачны. Чтобы кусочек органа можно было микроскопировать, его надо разрезать на очень тонкие пластинки - срезы. Такие срезы получают с помощью микротомов. для того, чтобы резать на микротоме кусочек ткани, ее надо предварительно уплотнить. Это достигается путем пропитывания застывающими жидкостями - расплавленным парафином. Парафин в воде не растворяется, и поэтому промытый после фиксации кусочек ткани необходимо предварительно обезводить, и только затем пропитывать.

Обезвоживание

Обезвоживание ткани производятся постепенно (чтобы не произошло сморщивания) путем проведения ее через спирты возрастающей крепости: 50є, 60є, 70є, 80є, 90є, 96є, 100є. В каждом спирте кусочки находятся от нескольких часов до 1 суток в зависимости от величины кусочка.

Уплотнение (заливка)

При заливке кусочки предварительно пропитываются теми жидкостями, которые служат растворителями для парафина (ксилол или толуол). При заливке в парафин кусочки из абсолютного спирта переносятся в смесь абсолютного спирта с хлороформом или ксилолом, взятых поровну, затем чистый ксилол и, наконец, в расплавленный насыщенный раствор парафина в хлороформе, где они находятся в термостате при температуре 37є до 1 суток и более. Дальнейшая заливка проводится в термостате при температуре 54є -56є в трех порциях парафина.

Окончательная заливка проводится в парафин с добавлением воска, который наливают в специальные бумажные коробочки или стеклянные чашки, а затем эти коробочки или чашки после появления на поверхности парафина пленки, погружают в воду.

Происходит полное затвердение парафина. Кусочки с окружающим их парафином извлекают из коробочек и с помощью расплавленного парафина, наклеивают на деревянные кубики, получаются парафиновые блоки.

Уплотнения также можно добиться замораживанием кусочка органа (срочная биопсия).

Приготовление срезов

Срезы с блоков изготовляются на микротоме. Наиболее распространены микротомы санный и замораживающий. В специальных устройствах микротома зажимается парафиновый блок и микротомный нож.

Окрашивание

Перед окраской из парафиновых срезов обязательно удаляют парафин (растворением в ксилоле).

Окрашивание необходимо производить для того, чтобы отчетливо выявить под микроскопом тонкие структуры объекта.

По окрашиванию определенных гистологических структур различают краски ядерные (окрашивание ядра), цитоплазматические (окрашивающие цитоплазму), и специальные, окрашивающие избирательно определенные структуры.

Заключение среза

Окрашенные и промытые в воде срезы во избежание помутнения обезвоживают в спиртах (70є, 96є), просветляют в карбол-ксилоле, ксилоле, а затем на предметное стекло, где находится срез, помещают каплю бальзама и срез накрывают покровным стеклом. Бальзам представляет собой растворенную в ксилоле смолу одного из видов сосны, растущей в Канаде (канадский бальзам), смолу пихты (сибирский бальзам) или специальную синтетическую среду.

При исследовании биопсий с целью уточнения диагноза в гистологических лабораториях прибегают к ускоренной обработке материала. Кусочки тканей и органов при этом проходят те же этапы обработки, но за 5-7 дней. Иногда производится так называемая срочная биопсия, когда в течение 15-80 мин. материал фиксирует, получают срезы, окрашивают их и заключают. Быструю фиксацию производят в 10% формалине, подогреваемом пламенем горелки или с использованием СВЧ-печи. Уплотнения добиваются замораживанием (хлорэтилом, углекислотой или с помощью замораживающего микротома).

3.3. Основные гистологические красители и реакции (в столбце "результат" заполняется, в какой цвет окрашиваются красителями ядра, цитоплазма, включения, волокна и т.д.)

Реагент

Результат

Гематоксилин

Окрашивает базофильные клеточные структуры ярко-синим цветом. Базофильные структуры, как правило, это те, которые содержат нуклеиновые кислоты (ДНК и РНК): клеточное ядро, рибосомы и РНК-богатые участки цитоплазмы.

Эозин

Окрашивает эозинофильные структуры клетки красно-розовым цветом. Эозинофильные структуры содержат внутри- и внеклеточные белки, например, тельца Леви. Цитоплазма является эозинофильной средой. Эритроциты всегда прокрашиваются ярко-красным цветом.

Орсеин

Используется для выявления эластиновых волокон, особенно это актуально в патологической анатомии кровеносных сосудов. Эластические волокна соединительной ткани окрашиваются в тёмно-красный цвет; остальные структуры - в слабо-розовый цвет.

Серебрение

Солями серебра используют для выявления нервных клеток, нейроглиальных элементов, периферических нервных волокон и их окончаний, ретикулярной стромы органов, межклеточного вещества эпителия и гладкой мускулатуры, бледных трепонем и др. С целью улучшения качества препаратов срезы после серебра нередко тонируют солями золота, окрашивание в фиолетовый цвет.

Железный гематоксилин

Железный гематоксилин Вейгерта должен окрашивать ядра в черный цвет. Если они приобретают коричневый цвет, то это свидетельствует о порче красителя. Железный гематоксилин Гейденгайна

окрашивает в черный цвет не только ядра, но и митохондрии, темные диски скелетной и сердечной мышечной ткани и другие структуры.

Реактив Шиффа

Позволяет выделить гликоген и гликопротеины (лиловый цвет). Соединительная ткань, хрящ, костная ткань, железистые клетки и структуры ткани почек окрашиваются в лиловый цвет.

Ядро окрашивается в синий.

Романовский Гимза

Посредством данного метода окраске подлежат ацидофильные образования в разные оттенки красного цвета. Образования базофильного характера окрашиваются в цвет от пурпурного до синего.

3.4.Заполните таблицу, перечислив основные группы красителей, укажите название структур, воспринимающих краситель, и примеры красителей

Группы красителей

Название окрашиваемых структур

Пример красителя

Основные, или ядерные, красители

хроматин ядер, ядрышко

гематоксилин, тионин, кармин, метиловый зеленый

Кислотные красители

цитоплазматические структуры клеток, эритроциты

эозин, кислый фуксин, Конго красный (конгорот), эритрозин

Нейтральные красители

жиры и липоиды, ядра

судан III, судан IV, метиленовый синий

4. Некоторые специальные методы приготовления и окрашивания препаратов (методика исследования биоматериала)

4.1. Практические задания. Напишите, как готовятся растворы, методику проведения реакции и результат.

Вариант 6. Окрашивание липидов суданом III.

Является наиболее распространенным методом выявления жира.

Приготовление раствора красителя.

В 100 мл горячего 70% спирта засыпают 0,2--0,3 г порошка судана III, несколько раз взбалтывают и ставят в термостат (при58°С) на несколько часов, затем охлаждают и фильтруют.

Метод.

1. Замороженные срезы (из свежей или фиксированной в формалине ткани) на несколько минут переносят из воды в 50% спирт.

2. Помещают в спиртовой раствор красителя на 15--30 мин (бюксы следует закрывать, так как испарение спирта приводит к выпадению осадков красителя).

3. Быстро ополаскивают в 50% спирте.

4. Промывают в дистиллированной воде.

5. Подкрашивают ядра кислым гемалауном.

6. Промывают и заключают в желатин или глицерин-желатин (обезвоживание в спиртах

экстрагирует жиры).

Результат.

Жировые вещества интенсивно оран­жевого цвета, ядра --"синие. Препараты выцветают сравнительно скоро, поэтому откладывать исследование не рекомендуется.

Вариант 11. Методы исследования кожи и ее производных. Окраска азаном.

Окрашивание азаном по методу Гейденгайна - является модификацией метода Маллори, что позволяет получать более четкоеокрашивание соединительной ткани, чем основной метод. Данную методику хорошо использовать при окраске железистой и других тканей. Окраска срезов лучше удается после сулемовых фиксаторов (жидкость Ценкера и её модификация по Максимову), можно и после простой формалиновой фиксации материала.

Приготовление растворов:

1. Раствор азокармина - к 100мл дистиллированной воды добавляют 0,1 г азокармина. Затем в течение нескольких минут кипятят и после охлаждения профильтровывают. К фильтрату добавляют 1 мл ледяной уксусной кислоты.

2. Раствор анилинового синего и оранжевого G - к 100мл дистиллированной воды добавляют 0,5 г анилинового синего, 2,0 г оранжевого G. Смесь кипятят в течение 2-3 минут, охлаждают и профильтровывают. Перед употреблением раствор разводят в 2-3 раза дистиллированной водой.

3. Раствор анилинового спирта - в 100 мл 90% спирта растворяют 0,1 мл анилинового масла (практически удобнее 1,0 мл анилинового масла растворить в 1 л спирта).

4. Уксуснокислый спирт - к 100 мл 96% спирта добавляют 1 мл ледяной уксусной кислоты.

5. Раствор фосфорно-вольфрамовой кислоты - 5 мг химически чистого препарата растворяют в 100 мл дистиллированной воды.

Окрашивание срезов проводят следующим образом:

1. Срезы переносят в раствор азокармина и помешают на 1,5- 2 часа в термостат с температурой 56-60 градусов. Срезы для этого помешают в хорошо закрывающиеся биологические стаканчики (или бюксы) с притертой пробкой.

2. Далее стаканчик со срезами охлаждают при комнатной температуре в течение 10-15 минут.

3. Срезы извлекают из стаканчиков (или бюкса), ополаскивают в дистиллированной воде.

4. Срезы переносят в раствор анилинового спирта и выдерживают до тех пор, пока не будут четко выявлены ядра (контроль под микроскопом). Если не удается долго выявить ядра, можно добавить в раствор дистиллированной воды, что ускорит процесс дифференцировки;

5. После дифференцировки ядер быстро промыть в течение 1-2 минуты уксуснокислым спиртом.

6. Протрава срезов в растворе фосфорно-вольфрамовой кислоты в среднем в течении 1-3 часов в зависимости от выявления элементов соединительной ткани под контролем микроскопа.

7. Ополаскивание в дистиллированной воде и переносят в разведенный раствор анилинового синего и оранжевого G - в течение 2-3 часов, после чего быстро ополаскивают в дистиллированной воде и переносят в 96% спирт для дифференцировки.

Результаты: при правильной дифференцировке коллагеновые и ретикулиновые волокна окрашиваются в синий цвет при отсутствии общего голубого тона, ядра клеток - в красный цвет. Мышечная ткань - в различные оттенки красно-оранжевого цвета.

Вариант 21. Методы исследования соединительных тканей. Импрегнация ретикулярных волокон серебром по способу Фута.

Фиксация материала в 15--20%-ном растворе формалина. После фиксации промывание в проточной воде 24--48 часов, а затем несколько часов в дистиллированной. Срезы получают на замораживающем микротоме. Работать только с химичес­ки чистыми реактивами, посуда безукоризненно чистая, пере­носят срезы только стеклянными иголками.

Необходимые материалы

0,25%-ный водный раствор марганцевокислого калия.

5%-ный раствор щавелевой кислоты.

2%-ный раствор азотнокислого серебра.

Раствор аммиачного серебра: на каждые 5 мл 10%-ного раствора AgNO3 прибавляют 4--5 капель 40%-ного водного раствора (гидрата окиси аммония) NH4OH. Образуется осадок (темно-бурый) гидрата окиси серебра. Осадок растворяют 25%-ным нашатырным спиртом, добавляя его по каплям, хорошо взбалтывая. На 5 мл 10%-ного AgNO3 необходимо 15--25 капель 25%-ного NH4OH.

Гидрат окиси аммония.

5%-ный раствор формалина.

0,5--1%-ный раствор хлорного золота.

5%-ный водный раствор гипосульфита.

Дистиллированная вода.

Ход окраски

1.Замороженные срезы из дистиллированной воды переносят в 0,25%-ный водный раствор марганцевокислого калия на 5--10 мин.

2.Споласкивают в водопроводной воде.

3.Выдерживают в 5%-ном растворе щавелевой кислоты 15--30 мин (до побеления срезов).

4.Тщательно промывают (20--30 мин) в большом количестве дистиллированной воды.

5.Выдерживают в темноте 48 часов в 2%-ном растворе азотнокислого серебра (AgNO3).

6.Быстро (3--5 сек) споласкивают в дистиллированной воде.

7.Выдерживают 15--20 мин в свежеприготовленном и профильтрованном растворе аммиачного серебра.

8.Споласкивают в дистиллированной воде (5--15 сек, вре­мя выбирают эмпирическим путем).

9.Помещают в 5%-ный раствор формалина на 15--30 мин

10.Тщательно промывают в водопроводной воде.

11.Перекладывают в 0,5-- 1%-ный раствор хлорного золо­та (АиС13) на 5--10 мин.

12.Промывают в водопроводной воде (10--15 мин).

13.Обрабатывают в 5%-ном водном растворе гипосульфита 1--3 мин. Контролируют под микроскопом, споласкивая в воде.

14. Тщательно промывают в водопроводной воде -- от нескольких часов до суток.

Ядра клеток докрашивают квасцовым кармином или гематоксилином.

Проводят через спирт, карбол-ксилол и заключают в бальзам. Результаты окраски: ретикулярные волокна черные, коллагеновые волокна фиолетовые, коричневые или серовато-черные.

ПРИЛОЖЕНИЕ 2

Комплект тестовых заданий

по производственной (специализированной) практике по темам

модуля 1 - Цито- и гистологические методы исследования

Тестовые задания по технике безопасности при работе в гистологической лаборатории

Вопрос 6. Рабочая поверхность стола для лаборантов должна быть площадью не меньше:

- 100Ч30 см

- 50Ч50 см

- 120Ч60 см

- 200Ч100 см

- 140Ч80 см

Вопрос 11. В отделении следует провести ряд гистохимических исследований, а для фиксации кусочков ткани необходим нейтральный формалин, которого нет в отделении. Нейтрализация формалина производится с помощью добавления к нему:

- уксусной кислоты

- азотнокислого серебра

- углекислой магнезии

- медного купороса

- пикриновой кислоты

Вопрос 21. С какой целью под стеклом рабочего стола лаборанта должен находится белый лист бумаги размером 9Ч12 см:

- для создания соответствующего фона, облегчающего работу с окрашенными объектами

- для записи наиболее распространенных методик окраски

- для создания соответствующего фона, облегчающего работу с неокрашенными объектами

- для решения вопроса о качестве фиксации кусочка ткани

- для улучшения качества заливки кусочков ткани в парафин

Вопрос 31. При маркировке материала в растворе формалина, запись проводят с помощью:

- акварельных красок

- авторучки с красной пастой

- авторучки с синей пастой

- простого карандаша

- авторучки с черной пастой

Вопрос 41. Норма расхода спирта на один объект биопсии:

- 10 г

- 20 г

- 30 г

- 40 г

Тестовые задания по теме "Техника гистологического исследования"

1. Помещения для проведения гистологических исследований включают:

- комната для приёма и вырезки операционно-биопсийного материала;

- гистологическая лаборатория;

- фиксационная и моечная комнаты;

- комната для хранения гистологического архива.

2. Отметьте необходимые документы в патологоанатомическом отделении:

- протокол патологоанатомического вскрытия;

- бланки врачебного свидетельства о смерти;

- бланк-направление на гистологическое и цитологическое исследование;

- алфавитная книга операционного и биопсийного материала;

- журнал регистрации операционно-биопсийного материала.

3. Ответственность за правильность оформления врачебного свидетельства о смерти несёт:

- заведующий отделением;

- врач, подписавший свидетельство о смерти;

- лаборант, заполняющий свидетельство о смерти.

4. Сроки хранения влажного архива, блоков и стёкол в паталогоанатомическом отделении при часто встречающейся патологии:

- 1 год;

- 10 лет;

- пожизненно;

- 2 года;

- 6 месяцев.

10.При фиксации в кислом формалине в срезах может образоваться тёмно-коричневый пигмент в виде глыбок, который удаляют, помещая срезы в:

- 1-5% раствор аммиака;

- 70% спирт;

- 10% раствор лимонной кислоты.

11. Назовите фиксаторы, используемые для костной ткани:

- формалин;

- жидкость Карнуа;

- жидкость Буэна;

- жидкость Гелли (ценкер-формол);

- этиловый спирт.

12. Декальцинацию костного материала проводят в:

- азотной кислоте;

- трилоном Б;

- муравьиной кислоте;

- формалином;

- пикриновой кислоте.

13.Обезвоживание тканей возможно с помощью:

- этилового спирта восходящей концентрации;

- 99% изопропилового спирта;

- диоксана;

- глицерина.

20. Температура плавления твёрдого парафина:

- 38-46єС;

- 56-58єС;

- 52-56єС;

- 68-76єС.

21. Парафин растворяется в:

- спирте;

- хлороформе;

- ксилоле;

- соляной кислоте;

- серной кислоте.

22. Эластичность парафину придаёт:

- касторовое масло;

- воск;

- ксилол;

- дибутилфталат;

- вазелиновое масло.

23. Парафин и хлороформ для составления парафиновой каши берутся в соотношении:

- 1:3;

- 1:1;

- 1:10;

- 1:20;

- 1:4.

30. Срезы могут быть сморщенными, закручиваться из-за:

- недостаточного угла наклона ножа;

- загрязнения парафина;

- высокой температуры в помещении;

- низкой температуры в помещении;

- заливки материала в легкоплавкий парафин.

31.Если срезы сморщенные, закручиваются, нужно:

- увеличить угол наклона ножа;

- перед получением срезов поместить материал в холодильник;

- декальцинировать объект;

- перезалить в более тугоплавкий парафин;

- уменьшить угол наклона ножа.

31. Причина, прилипания среза к ножу:

- высокая температура в помещении;

- плохая пропитка материала;

- электризация.

33.Если срез прилипает к ножу, нужно:

- перед получением среза подышать на блок;

- перед получением среза поместить блок в холодильник;

- перезалить в более тугоплавкий парафин;

- сменить нож на хорошо заточенный.

40. Если при работе на замораживающем микротоме ткань крошится, нужно:

- ткань слегка подморозить;

- «подогреть» ткань пальцем;

- взять другой кусочек ткани из архива;

- поместить кусочек ткани в физиологический раствор.

41.Замороженные срезы хранят:

- в 5-12% формалине;

- в 70% спирте;

- в 96% спирте.

42. Критерий достаточной обработки срезов в ксилоле:

- потемнение кусочка;

- просветление кусочка;

- изменение цвета кусочка.

43.Назовите оптимальный угол наклона ножа в санном микротоме:

- 7-9 градусов;

- 13-15 градусов;

- 25-30 градусов.

65. Результат окраски гематоксилином-эозином:

- ядро красное, цитоплазма жёлтая;

- ядро синее, цитоплазма розовая;

- ядро и цитоплазма синие;

- ядро не окрашивается, цитоплазма голубая.

66. Методы определения полисахаридов:

- ШИК-реакция;

- окраска по Ван-Гизону;

- метод Беста;

- окраска гематоксилином и эозином;

- метод Шабадаша.

67.Метод выявления кислых глизаминогликанов:

- метод Хейла;

- метод Гриммелиуса;

- метод Оса;

- метод Фельгена;

- метод Браше.

68. Фуксиленом окрашиваются волокна:

- коллагеновые;

- ретикулярные;

- эластические.

69. Вещество, которое выявляется при помощи реакции Шабадаша:

- жиры;


Подобные документы

  • Изучение различий в составе периферической крови до и после физических нагрузок. Оценка влияния интенсивности нагрузки и стажа тренировок на показатели периферической крови и адаптивные резервы организма человека. Техника проведения общего анализа крови.

    курсовая работа [1,3 M], добавлен 23.09.2016

  • Функции крови: транспортная, защитная, регуляторная и модуляторная. Основные константы крови человека. Определение скорости оседания и осмотической резистентности эритроцитов. Роль составляющих плазмы. Функциональная система поддержания рН крови.

    презентация [320,3 K], добавлен 15.02.2014

  • Преимущества взятия крови с помощью закрытой вакуумной системы. Иглы, держатели и пробирки, применяемые при взятии крови. Основные этапы лабораторного анализа вне лаборатории и внутри лаборатории. Процедура взятия крови с помощью вакуумной системы.

    реферат [3,2 M], добавлен 04.05.2019

  • Использование крови с лечебными целями. Первое переливание крови от человека человеку. Показания к переливанию крови, ее компонентов. Типология групп крови. Диагностика ВИЧ-инфекции. Сравнение количества переливаний крови в г. Находка и других городах.

    курсовая работа [3,4 M], добавлен 26.10.2015

  • Проблема переливания крови от человека к человеку, агглютинация и свертываемость крови как препятствие к его применению. Серологический состав основных групп крови, особенности их совместимости. Понятие универсальных доноров и реципиентов, системы резус.

    реферат [45,2 K], добавлен 24.06.2011

  • Общие функции крови: транспортная, гомеостатическая и регуляторная. Общее количество крови по отношению к массе тела у новорожденных и взрослых людей. Понятие гематокрита; физико-химические свойства крови. Белковые фракции плазмы крови и их значение.

    презентация [3,6 M], добавлен 08.01.2014

  • Значение общего анализа крови в педиатрической практике, высокая изменчивость результатов как его важная особенность. Место болезней крови в общей структуре детской заболеваемости. Анатомо-физиологические особенности крови и органов кроветворения у детей.

    презентация [188,0 K], добавлен 21.12.2016

  • Изучение сущности и причин переливания крови - введения с лечебной целью в сосудистое русло больного (реципиента) крови другого человека (донора), а в некоторых случаях плацентарной крови. Физиологический анализ механизма действия переливания крови.

    реферат [21,5 K], добавлен 21.05.2010

  • Воздействие на морфологический состав крови с помощью переливания цельной крови, её компонентов, а также кровезаменителей. Проведение первого переливания крови от человека к человеку. Законы склеивания эритроцитов одного человека сывороткой другого.

    презентация [1,6 M], добавлен 27.11.2014

  • Рассмотрение изменений количества эритроцитов, тромбоцитов, скорости оседания крови при различных состояниях организма. Изучение изменений крови на примере острой пневмонии. Сравнительный анализ показателей заболеваемости болезнями органов дыхания детей.

    дипломная работа [144,5 K], добавлен 25.07.2015

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.