Сравнительная эффективность антибиотиков при респираторном микоплазмозе цыплят

Ветеринарные работники, проводя вакцинации, дезинфекции, дезинсекции, соблюдают меры защиты от попадания вредных веществ от этого обслуживающий персонал. Спецодежда выдается всем работникам птицефабрики. Установлены нормы бесплатной выдачи спецодежды, согласно профессии и занимаемой должности, и определен срок носки спецодежды до ее списания.

Необходимые мероприятия по охране труда выполняются и ветеринарными специалистами. Наиболее травмаопасным участком работы является проведение массовых профилактических обработок, дезинфекции, перевод птицы в другие цеха, затарок на санитарный убой. Перед началом любых перечисленных мероприятий главный ветеринарный врач в обязательном порядке проводит инструктаж, обеспечивает спецодеждой и обувью, респираторами и противогазами, резиновыми перчатками.

Необходимые медикаменты, биопрепараты, инструментарий хранятся в ветаптеке, ведется учет их хранения использования ветеринарными специалистами.

Уделяется внимание на птицефабрике и вопросам гражданской обороны, в планах которой предусмотрена групповая защита птицы в существующих птицеводческих помещениях.

В целях дальнейшего улучшения состояния охраны труда

Предложения по улучшению состояния техники безопасности на РУСПП «Лидская птицефабрика» необходимо:

1. Ежемесячно и по мере возникновений заболеваний проводить лекции по профилактике инфекционных болезней, беседы по технике безопасности на рабочем месте

2. Составить инструкцию по охране труда при профилактике и ликвидации микоплазмоза и ознакомить с ней работников птицеводства.

Правила техники безопасности при лечении птицы изложены в инструкции, которая приведена в приложении.

Экологическое обоснование дипломной работы

Охрана окружающей среды - наиболее актуальная из социальных и экономических проблем на данном этапе существования человечества. Научно-технический прогресс и деятельность человека оказывают большое влияние на биосферу и породили проблему экологического кризиса в мировом масштабе.

Непоправимый ущерб природе нанесла авария на ЧАЭС. Радиоактивные осадки, отходы промышленности, удобрения и ядохимикаты изменяют состав воздуха, воды, почвы.

На планете исчезают многие виды животных, растений, истощаются залежи полезных ископаемых, вырубаются леса.

Атмосферу и воду загрязняют не только промышленные и бытовые отходы, выхлопные газы автомобилей, но и отходы сельскохозяйственного производства, ядохимикаты. Огромный вред наносит ветровая и водная эрозия почв в некоторых природно-географических зонах, сокращения площади лесов и т.д. Отсюда вытекает необходимость международного сотрудничества, и принятия радикальных всеобщих мер, направленных на повышение плодородия земли, рациональное использование богатств и предохранение окружающей среды от загрязнения.

Рациональное использование и охрана природных ресурсов - основной принцип организации охраны природы в Республике Беларусь.

Особая роль в охране природы отводится сельскохозяйственному производству, так как оно наиболее тесно, чем другие отрасли связано с проблемой охраны природы и рационального использования природных богатств.

Использование современных научных знаний позволит создать экологически безопасное ведение сельского хозяйства, снизит риск загрязнение окружающей среды и обеспечит населению республики качественным продовольствием. И особая ответственность в этом деле возлагается на специалистов сельского хозяйства, на их правильные решения в рациональном использовании земельных, лесных, водных угодий, размещении и эксплуатации животноводческих комплексов. Специалисты должны полагаться на полученные ими экологические и специальные знания в профессиональных вопросах.

РУСПП «Лидская птицефабрика» представляет собой комплекс взаимосвязанных подразделений с общим замкнутым производственным циклом. Природно-охранные мероприятия, проводимые на птицефабрике, направлены на предупреждение загрязнения окружающей среды от побочных продуктов производства.

Территория птицефабрики огорожена и по периметру ограждений обсажена высококоренными деревьями, кустарниками и газонами, выполняющими функцию биологических фильтров и ветрозащиты, а также создает культурный ландшафт местности.

На территории птицефабрики расположены мощные очистные сооружения, которые позволяют очищать все отобранные и загрязненные воды из птичников и ветеринарно-санитарных объектов от загрязнений и примесей. Первоначально сточные воды очищаются от механических примесей, далее происходит активное аэронирование воды, микробиологическое очищение, затем отстаивание и только после этого как они пройдут полную очистку, сточные воды спускаются в окружающую среду.

На данной птицефабрике используется клеточный и напольный способ содержания птицы. Клетки размещения птицы формируются из элементов каркаса поярусно. Сетчатый полик укладывается на систему опорных прутков, проходящих вдоль всей батареи на каждом из ярусов и имеет наклон 7,5 в сторону желоба яйцесбора.

Наполно содержится молодняк от момента вывода до 150 дней, а затем помещается в клетки.

Помет удаляется 2 раза в год, который направляет в пометный приямок. После заполнения приямка помет перекачивается насосом НЖН-200 в транспортное средство и складируется в пометные ямы для биотермического обеззараживания, а затем применяется для внесения в почву при выращивании сельскохозяйственной продукции.

При смене поголовья оборудование птичника подвергается мойке с помощью моечной установки ОМ-22613 и дезинфекции с помощью установки УДС. При мытье птичника сточная вода, по пометным каналам, направляется в навозный приямок.

Всех павших животных и птиц утилизируют в биотермической яме, огороженной забором. Мусор вывозят на свалку.

В цехах предусмотрена система вытяжной вентиляции, она используется ежедневно по мере надобности, вентиляция включается в ручную обслуживающим персоналом (птичницами). Благодаря этому в цехах всегда показатели микроклимата соответствуют зоогигиеническим нормативам. На фабрике проводятся мероприятия по очистке и предотвращению загрязнения атмосферного воздуха вблизи цехов. Цех приготовления кормосмесей снабжен специальной противопылевой защитой, препятствующий выносу наиболее легких частиц корма, образующихся при его приготовлении, смешивании и загрузке массы за пределы птицефабрики.

Освещение соответствует нормативным пределам. Регулярно проводится побелка помещений с дезинфекцией. Раздача кормов осуществляется с помощью кормораздатчика в специальные кормушки. Поение из чашечных поилок, вместе с водой задаются лекарственные вещества и вакцины. Кормушки чистят и дезинфицируют один раз в неделю. Поилки - перед каждой вакцинацией (во избежание секундарной микрофлоры). Вода для поения доставляется из артезианского источника.

Технологией производства предусмотрена защита птицы от заноса паразитарных и инфекционных заболеваний на территорию птицефабрики. Территорию птицефабрики постоянно содержат в чистоте. Обслуживающему персоналу разрешается вход на территорию птицефабрики только через ветеринарно-санитарный пропускник, а въезд транспорта - через постоянно действующее дезинфекционно-промывочное помещение. У входа в птичники, инкубаторий, убойные и кормовые цехи, склады и другие помещения для дезинфекции обуви устанавливают дезинфекционные кюветы во всю ширину похода длиной 1,5 м, которые регулярно заполняют дезинфицирующими растворами. Для обслуживания птиц выделяют постоянный персонал, прошедший медицинское обследование и соответствующую зооветподготовку. Для работников оборудованы раздевалки, душевые, выдается спецодежда и обувь. Ведется борьба с дикой птицей и грызунами, для чего готовятся различные примаки, остатки которых убираются и обезвреживаются.

Отопительно-вентиляционная система поддерживает в помещении температуру, влажность, газовый состав воздуха, воздухообмен в соответствии с возрастом птицы, применяются очистительные фильтры.

Исследование кормов, скармливаемых животным и птице, проводятся постоянно, качество их соответствует нормам и требованиям кормления. Рационы сбалансированы по основным питательным веществам. Экологического поста на птицефабрике нет. За вопросы экологии в хозяйстве отвечает глава хозяйства.

Наличие канализационной системы исключает загрязнение окружающей среды сточными водами; неорганизованные свалки мусора на территории хозяйства отсутствуют.

Корма, поступающие на птицефабрику, подвергаются микробиологическому обследованию. Для профилактики ряда заболеваний применяются различные ветеринарные препараты (антибиотики, кокцидиостатики, биопрепараты, нитрофураны, сульфаниламиды др.).

Для улучшения экологической ситуации на РУСПП «Лидская птицефабрика» предлагаем следующие мероприятия:

1. Провести озеленение территории птицефабрики.

2. Весь навоз перед вывозом на поля обеззараживать биотермическим

методом;

3. Ветслужбе птицефабрики разработать комплексный план

оздоровительных мер при заболеваниях птиц.

4. Усилить меры к недопущению заноса инфекции на птицефабрику:

а) Не допускать появление грызунов и других переносчиков инфекционных и инвазионных заболеваний птицы.

б) Планировать и проводить беседы среди работников птицефабрики и местного населения по экологическим вопросам.

Материал и методы исследований

Экспериментальная часть дипломной работы выполнена в условиях лаборатории и клиники, кафедры болезней мелких животных и птиц УО «Витебской ордена «Знак Почета» государственной академии ветеринарной медицины», а также на РУСПП «Лидская птицефабрика» Республики Беларусь в течение 2006 г.

Объектом исследований служили цыплята 27-45-ти дневного возраста.

Материалы исследования - трупы цыплят и патматериал (печень с желчным пузырём, селезёнка, лёгкие, воздухоносные мешки, почки, сердце, головной мозг, экссудат из подглазничных синусов) от павших и вынужденно убитых с диагностической целью цыплят, а также выделения из носовых отверстий от больных.

Все цыплята, павшие в период проведения опыта, из птичника №3 были вскрыты во вскрывочной на территории птицефабрики, для исследования и установления диагноза. Одновременно на птицефабрике проводились ежедневно клинические исследования и лечения больного молодняка в количестве 3100 голов. Было создано 3 опытных группы по 1000 цыплят в каждой и одна группа (100 голов) - контрольная. Для контрольного взвешивания в опытных группах было выделено и огорожено по 100 цыплят.

После проведения лечения были даны рекомендации по оздоровлению птицы на РУСПП «Лидская птицефабрика» от инфекционного микоплазмоза и по профилактике этого заболевания.

Исследования по изучению течения респираторного микоплазмоза и разработке мероприятий по борьбе с данным заболеванием были проведены по схеме:

1. Сбор анамнеза, который включал опрос управляющего и рабочего персонала, обслуживающего цыплят неблагополучного птичника.

2. Проведение комплекса диагностических исследований с целью установления диагноза, которые включали сбор анамнеза, клинические исследования птицы, патологоанотомическое вскрытие, бактериологическое исследование патматериала;

3. Определение чувствительности выделенной микрофлоры к различным антимикробным препаратам;

4. Лечение птиц с применением различных схем лечения;

5. Разработка мероприятий по профилактике и ликвидации респираторного микоплазмоза у цыплят в условиях РУСПП «Лидская птицефабрика».

Клиническое исследование птицы включало в себя общие методы (групповой и индивидуальный осмотр, пальпация) У заболевшей птицы изучали клинические признаки.

Для установления паталогоанатомического диагноза трупы 10 павших цыплят были исследованы во вскрывочной на территории птицефабрики.

Также, после применения препаратов, проводили вынужденный убой и патологоанатомическое исследование по 10 цыплят из птичников № 3 для установления эффективности обработок и влияния данных препаратов на различные органы и системы. Данные исследования проводили во вскрывочной на территории птицефабрики на специальных столах для вскрытия.

Трупы всех цыплят (943 головы), павших в период проведения опыта, (01.09.05 по 01.10.06) вскрывались ежедневно во вскрывочной птицефабрики для патологоанатомического подтверждения диагноза.

Вскрытие проводили следующим образом: осмотривали птицу, оперение, затем, предварительно смочив водой, удаляли перья с живота, груди и шеи, осмотривали кожу, клюв, глаза, клоаку, видимые слизистые оболочки; затем придавали трупу спинное положение и надрезали ноги по тазобедренным суставам, брюшную полость разрезали ножницами посередине от клоаки до острия грудной кости и вправо и влево до подреберья, удаляли грудную кость, перерезав с обеих сторон каракоидную кость и ключицу. При осмотре грудо-брюшной полости определяли состояние воздухоносных мешков, содержимое в грудо-брюшной полости, положение органов, состояние серозных оболочек; затем извлекали печень, потом желудки с селезенкой и кишечником, сердце, вылущивали скальпелем из межреберий легкие, удаляли почки и надпочечники. Ротовую полость, органы шеи, зоб, тимус вскрывали, не извлекая из трупа, для этого острую браншу ножниц вводили в ротовую полость и разрезали нижнюю челюсть у основания клюва, в результате открывалась для осмотра ротовая полость и глотка, затем разрезали пищевод, зоб, гортань и трахею, осматривали их слизистую оболочку и содержимое. Осматривали извлеченные органы: вначале железистый затем мышечный желудки разрезали вдоль, снимали кутикулу и только потом вскрывали кишечник, обращая внимание на лимфоидные фолликулы, осматривали клоаку и фабрициеву сумку. Кости и костный мозг исследовали на продольных распилах. Извлекали головной мозг распилив отрезанную от туловища голову по средней линии на две половины, из которых извлекали полушария мозга.

Все трупы с (характерными патологоанатомическими изменениями) направлялись в диагностическую лабораторию Лидской птицефабрики водонепроницаемой таре (полиэтиленовых пакетах) для установления возбудителя болезни и определения чувствительности выделенных возбудителей к антибиотикам.

В лаборатории материал исследовали в следующем порядке: проводили посевы на специальные питательные среды (рис.2.5.1., 2.5.2.), содержащие автолизат дрожжей, декстрозу и 10-15% лошадиной сыворотки. Для культивирования чашки Петри с посевами помещали в термостат при температуре 37-38 °С и влажности 80% на 2-5 суток (рис. 2.5.3.). Через 48 часов посевы просматривали с помощью лупы и под микроскопом на малом увеличении для определения характера роста. В дальнейшем исследовали культуры, полученные из колоний, выращенных из двух органов павшего животного. Из чашек Петри типичную колонию пересевали в пробирку с жидкой питательной средой. Через 48 ч выращивания в термостате из этой среды делали посев для определения ферментативных свойств.

Бакисследование проводили по следующей схеме:

Посмертная диагностика. Прижизненная диагностика.

Патологический материал. Выделения больных птиц.

Взвесь в физ.растворе NaCl 1:10-1:20

§ Микроскопия мазков из органов и крови, окрашенных по Романовскому-Гимзе.

§ Посевы на плотные и жидкие питательные среды.

§ Микроскопия культур.

§ Пересев в 2 пробирки

Посев для определения ферментативных свойств

1) глюкоза,

2) лактоза,

3) сахароза,

4) мальтоза,

5) дульцитол,

6) салицин,

7) аргинин,

8) реакция с тетразолином,

9) реакция с неотетразолином

Смыв культуры физраствором NaCl

Выделенную культуру ввели 3-м здоровым цыплятам

Бактериологическое исследование трупов павших цыплят

У выделенных культур изучали морфологические, тинкториальные и культурально-ферментативные свойства для определения их родовой принадлежности. Для изучения морфологических свойств микробов мазки окрашивали по Грамму, Романовскому-Гимзе и смотрели под световым микроскопом (объектив х 40 их 90, окуляр х 9). Ферментативные свойства изучали с помощью набора сред с глюкозой, лактозой, сахарозой, мальтозой, дульцитом и др.

Биологическую пробу ставили на 3-х здоровых неиммунных цыплятах 15-ти дневного возраста. Для этого готовили смесь суспензий суточных агаровых культур, выделенных из органов (печени, воздухоносных мешков, головного мозга), в дозе 1 млрд. микробных тел (концентрацию бактерий определяют по бактерийному стандарту мутности) и заражали цыплят внутрибрюшинно. Результат учитывали в течение 4-ех дней.

Определяли чувствительность микоплазм к антимикробным препаратам, которые убивают или задерживают рост колоний микроорганизмов в течение 16 - 18 ч. Для этой цели использовали метод диффузии в агар с применением дисков, содержащих антибиотики: исследуемые культуры, выращенные на специальных жидких питательных средах, в количестве 0,5 мл, наливали на пластинку агара в чашке и покачиванием равномерно распределяли ее по всей поверхности. Излишек жидкости удаляли пипеткой, чашки подсушивали при 37 °С в течение 30 мин, после чего диски, пропитанные антимикробными препаратами, раскладывали стерильным пинцетом на расстоянии 2 см от края чашки и слегка прижимали к агару. Испытывали следующие антибактериальные препараты: «Doxyviti», «Tiamutoxum», синтамицин, окситетрациклин, хлортетрациклин, ампициллин, эритромицин, цефалексин, тилофарм, цепромицин, энрофлоксацин. Чашки с дисками для лучшей диффузии препарата в агар выдерживали в течение двух часов при комнатной температуре, а затем помещали в термостат при температуре 37 °С вверх дном. Результаты учитывали через 48 ч. Определяли диаметр зон задержки роста микробов вокруг бумажных дисков. При диаметре этих зон 15 - 25 мм микробы следует считать чувствительными к препарату, при зонах менее 15 мм - малочувствительными. Отсутствие зон задержки роста указывает на то, что исследуемая культура нечувствительна к данному препарату.

После установления диагноза, в птичнике №3 было проведено контрольное взвешивание и условно определено 3 опытных группы цыплят и 1 контрольная:

группа - цыплята в количестве 1000 голов, в возрасте 27 дней, которым задавали в течение 5-х дней с питьевой водой препарат «Tiamutoxum» в дозе 480 г на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжили дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней.

группа - цыплята в количестве 1000 голов, в возрасте 27 дней, которым задавали в течение 5-х дней с питьевой водой препарат тилофарм в дозе 200 г на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжили дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней.

группа - цыплята в количестве 1000 голов, в возрасте 27 дней, которым задавали в течение 5-х дней с питьевой водой препарат «Doxyviti» в дозе 200 мл на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжили дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней.

группа (контрольная) - цыплята в количестве 100 голов, лечение которым не проводили.

Цыплят всех групп, в период проведения обработки и после нее, ежедневно подвергали групповому клиническому исследованию и взвешиванию контрольной группы (по 100 цыплят из каждого птичника).

После проведения изучения эффективности лечения птицы различными препаратами были даны рекомендации по оздоровлению РУСПП «Лидская птицефабрика» от респираторного микоплазмоза и по профилактике этого заболевания.

Результаты исследований

При проведении анализа данных эпизоотологического обследования РУСПП «Лидская птицефабрика» установлено, что на момент проведения опытов птицефабрика была неблагополучна по респираторному микоплазмозу, эшерихиозу и по инфекционному бронхиту.

В результате проведения комплекса диагностических исследований, которые включали сбор анамнеза, клиническое исследование птицы, патологоанатомическое вскрытие и бактериологическое исследование патологического материала были получены следующие данные.

По данным ветеринарной статистики РУСПП «Лидская птицефабрика» за последние 3 года установлено, что летальность среди цыплят составила 13,8-16,4% в год. При бакисследовании патматериала от павших цыплят в прошлые годы патогенные M. gallisepticum выделяли 5,6-6,0% случаев от всех случаев падежа. В августе-сентябре 2006 года наблюдалось увеличение падежа цыплят до 35-40% в возрасте 17-27 дней.

Этому способствовало использование на РУСПП «Лидская птицефабрика» яиц для инкубации из РУСПП «Щучинский племптицерепродуктор», ранее неблагополучного по микоплазмозу, поставляющего инкубационные яйца неполноценные по содержанию витаминов и некоторым другим биологическим показателям.

Начало проведения исследований по теме дипломной работы соответствует появлению вспышки респираторного микоплазмоза среди цыплят 22-27-ми дневного возраста.

У заболевших цыплят отмечали ухудшение аппетита, усиление жажды, угнетение, тусклое взъерошенное оперение, участки аптериозов на шее и спине, птицы скучивались, забивались в углы. Наиболее ярким признаком было воспаление дыхательных путей, включая воздухоносные мешки, что проявлялось одышкой, чиханием, частым потряхиванием головой. Дыхание у больных цыплят было учащенное, затрудненное, с открытым клювом, часто отмечался сухой кашель. Птицы во время вдоха вытягивали шею, реакция на внешние раздражители была ослаблена. У многих отмечался отек и гиперемия кожи на веках, увеличенное слезоотделение, скопление серозного и серозно-катарального экссудата в конъюнктивальной полости и подглазничных синусах, слизисто-гнойное истечение из носовых отверстий.

У некоторых цыплят регистрировали признаки кератоконъюнктивита, что характеризовалось светобоязнью, слезотечением, помутнением роговицы.

В первый день клинического проявления вспышки болезни (возраст цыплят - 22 дня) в птичнике № 3 пало 74 цыпленка, во второй день - 87, в последующие дни отход цыплят в неблагополучных птичниках увеличивался и максимально составил 113 голов на 5-й день вспышки.

Смерть, в большинстве случаев, наступала от сепсиса, интоксикации и удушья, а также у некоторых перед гибелью отмечались и нервные явления, судорожные припадки, сопровождающиеся подергиванием конечностей, круговыми движениями. Во время таких припадков некоторые цыплята погибали.

Всех павших цыплят вскрывали для изучения патологоанатомических изменений. А также отбирали патматериал (органы с выраженными патизменениями) для проведения бакисследования.

При вскрытии трупов павших и вынужденно убитых цыплят обнаруживали кератоконъюнктивит, сопровождаемый в некоторых случаях помутнением роговицы, серозные отёки подкожной клетчатки в области головы, анемичность клюва, гребешка, бородок и сережек, острый серозно-катаральный трахеит.

Во многих случаях отмечали катаральный или гнойно-катаральный экссудат в носовых и параназальных ходах, трахее, бронхах и воздушных мешках, серозный и катаральный синусит. Иногда наблюдали пневмонию и серозно-фибринозный плеврит. У некоторых цыплят регистрировали фибринозный перигепатит и перикардит одновременно с массивным аэросаккулитом и плевро-перитонитом.

Изменения со стороны печени - она увеличена в объеме, форма не изменена, края закруглены, капсула напряжена, на поверхности - фибринозный налет в виде пленок, края разрезанной капсулы не сходятся, консистенция дряблая, с поверхности разреза обильно стекает кровь, цвет паренхимы темно-коричневый с песочным оттенком, дольчатое строение слабо выражено - перигепатит, острая венозная гиперемия и зернистая дистрофия печени.

Для постановки окончательного диагноза патматериал (внутренние органы и трубчатая кость) был отправлен в диагностическую лабораторию птицефабрики для проведения бакисследования.

При проведении бактериологического анализа патматериала от павших птиц были выделены полиморфные микроорганизмы, размером 0,25-0,5 мкм. При окраске по Граму они окрашивались в бледно-розовый цвет, по Романовскому-Гимзе - в фиолетовый цвет.

Для проведения дальнейших исследований были проведены посевы из патматериала на специальные питательные среды, описанные в разделе «Материал и методы исследований». Чашки с посевами помещали в термостат при температуре 41°С (температура тела птицы) и влажности 85%.

Рост колоний регистрировали только на 3-й день. Они выглядели как крошечные, гладкие, круглые, прозрачные массы с плотной, приподнятой центральной областью. Диаметр отдельных колоний составлял 0,2-0,3 мм, при этом единичные колонии чаще отмечались на гребнях по штриховой линии, в то время как близко расположенные колонии легко сливались, образуя сплошные наложения.

Для более детального изучения колоний проводили их просмотр под микроскопом на малом увеличении (х16; х8) в отраженном под углом свете. При этом отмечали, что колонии имеют округлую форму и по внешнему виду напоминают яичницу-глазунью.

Из чашек Петри типичную колонию пересевали в пробирку с жидкой питательной средой. Через 48 ч выращивания в термостате из этой среды делали посев для определения ферментативных свойств.

Для определения патогенности ставили биопробу на здоровых неиммунных цыплятах 2-х недельного возраста.

Выявленные биохимические свойства и результаты реакций отображены в таблице 2.6.1.

Таблица 2.6.1. Дифференциация М. gallisepticum по биохимическим свойствам

ТЕСТЫ	М. gallisepticum
Подвижность	+
	кислота	газ
Глюкоза	+	-	Сорбит	-
Лактоза	-	-	Дульцит	-
Сахароза	+	-	Желатина	-
Мальтоза	+	-	Салицил	-
Манит	+	-	Мочевина	-
2,3,5-трифенил тетразолин	+ (красный)		Неотетразолин	+ (синий)

Как видно из таблицы бактерии М. gallisepticum ферментируют глюкозу, сахарозу (среда в пробирках стала красного цвета), маннит, мальтозу в отношении других углеводов и многоатомных спиртов ведут себя вариабельно. Не разжижают желатину, не расщепляют мочевину. Переводят 2,3,5-трифенил тетразолин в другие формы (2,3,5-трифенил тетразолин становится красным) и неотетразолин (неотетразолин становится синим).

Выделенные М. gallisepticum вызывает полный гемолиз эритроцитов лошади в агаровой среде и агглютинирует с эритроцитами цыпленка.

При постановке диагноза на респираторный микоплазмоз необходимо определить патогенность выделенных культур М. gallisepticum. Их патогенные свойства определяли на цыплятах 15-ти дневного возраста. Для этого приготовили смесь суспензий суточных агаровых культур, выделенных из двух внутренних органов, в дозе 1 млрд. микробных тел (концентрацию бактерий определили по бактерийному стандарту мутности) и заразили 3-х цыплят интраназально. Гибель цыплят произошла 2-ой день после заражения. Уже спустя 12 ч после заражения отмечалось резкое угнетение птицы конъюнктивит, а также признаки поражения органов дыхания и центральной нервной системы (судороги, параличи). При патологоанатомическом вскрытии павшего цыпленка отмечались изменения, характерные для респираторного микоплазмоза - кератоконъюнктивит и помутнение роговицы, анемичность клюва, гребешка, бородок и сережек серозные отёки подкожной клетчатки в области головы, острый серозно-катаральный синусит, ларингит, трахеит, серозно-фибринозный аэросаккулит и плевропневмония.

Таким образом, по результатам бактериологического исследования патматериала диагноз на респираторный микоплазмоз был подтвержден.

Определение чувствительности М. gallisepticum к лекарственным препаратам.

Для этой цели использовали метод диффузии в агар с применением дисков, содержащих антибиотики. Испытывали следующие антибактериальные препараты: хлортетрациклин, ампициллин, эритромицин, цефалексин, тилофарм, цепромицин, энрофлоксацин, «Tiamutoxum», «Doxyviti», синтамицин, окситетрациклин. Результаты учитывали через 24 ч. Определяли диаметр зон задержки роста микробов вокруг бумажных дисков. При диаметре этих зон 15 - 25 мм микробы следует считать чувствительными к препарату, при зонах менее 15 мм - малочувствительными. Отсутствие зон задержки роста указывает на то, что исследуемая культура нечувствительна к данному препарату.

По результатам определения чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам установлено, что высоким бактерицидным действием обладали следующие препараты: тилофарм (зона зедержки роста 27 мм), «Doxyviti» (зона зедержки роста 25 мм), «Tiamutoxum» (около 23 мм), синтамицин (16 мм), эритромицин и цепромицин (15 мм). Микроорганизмы обладали низкой чувствительностью к остальным препаратам (ампицилин и энрофлоксацин).

Зоны задержки роста колоний М. gallisepticum вокруг дисков с антимикробными препаратами представлены на рисунке.

На рисунках видно, что наибольшая задержка роста микоплазм наблюдается вокруг дисков с препаратами тилофарм, «Doxyviti», «Tiamutox», следовательно к этим препаратам выражена наибольшая чувствительность выделенных микроорганизмов.

После установления диагноза и выявления более эффективных препаратов тилофарм, «Doxyviti», «Tiamutox» на РУСПП «Лидская птицефабрика» было проведено лечение больного молодняка в количестве 3100 голов, содержащихся в птичнике №3. Для определения терапевтической эффективности выбранных препаратов и проведения опыта цыплята в возрасте 27 дней неблагополучного птичника были разделены на 4 группы: 3 опытные по 1000 голов в каждой, лечение которых проводилось по следующим схемам:

- 1 группа - задавали в течение 5-х дней с питьевой водой препарат «Tiamutoxum» в дозе 480 г на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжили дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней;

- 2 группа - задавали в течение 5-х дней с питьевой водой препарат тилофарм в дозе 200 г на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжили дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней;

- -3 группа - задавали в течение 5-х дней с питьевой водой препарат «Doxyviti» в дозе 200 г на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжили дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней;

и 4 группа (контрольная) - цыплята в количестве 100 голов, лечение которым не проводили.

Улучшение общего состояния цыплят 2-ой и 3-ей группы наблюдалось уже в первые сутки лечения. Появился аппетит, снизилась жажда, значительно уменьшились выделения из глаз и носовых отверстий. Дыхание стало менее затрудненным, птенцы перестали открывать клюв при вдохе. Цыплята стали более активны, перестали жаться друг к другу. Однако у них продолжали отмечать кашель и сохранились отечные явления в области подглазничных синусов. На второй день лечения аппетит нормализовался, прием воды умеренный, птица активна, перья и пух приобрели блеск, плотно прилегают к коже. Отмечались незначительные признаки поражения органов дыхания - скудные серозные истечения из носовых отверстий, учащенное дыхание, признаки конъюнктивита полностью пропали. На третий день состояние цыплят продолжало улучшаться, значительно уменьшились отечные явления в области головы.

На 4-й день лечения у цыплят 2-ой и 3-ей группы полностью исчезли клинические признаки заболевания, они активно принимали корм, умеренно употребляли воду, оперение значительно улучшилось, начали покрываться пухом участки аптериозов сами цыплята активны. Дыхание свободное, истечения из носовых отверстий и конъюнктивы отсутствуют. Гребешки и бородки стали более яркого цвета.

У цыплят 1-ой группы улучшение общего состояния также начало наблюдаться на следующий день после применения препарата, но выздоровление протекало медленнее: появился аппетит, но еще отмечалась сильная жажда. Птицы были несколько угнетены, неохотно вставали. Продолжали отмечаться одышка, учащенное дыхание, слизистые истечения из глаз и носа. Но интенсивность этих процессов была значительно ниже, чем до лечения. На второй день лечения птица перестала жаться друг к другу и забиваться в углы, у всех цыплят этой группы, уменьшилась жажда, цыплята стали более активными, аппетит улучшился, перьевой покров оставался без изменений. Уменьшилась одышка, птицы не открывали клюв при вдохе, выделения из глаз и носа стали не такими обильными. Снизились отеки в области головы. На третий день опыта аппетит еще более улучшился, жажда исчезла, птица активна, но менее, чем во 2-ой и 3-ей группах, перьевой и пуховой покров оставался без изменений (видны участки аптериозов на спине и шее). На четвертый день опыта цыплята охотно принимали корм, активны, перья и пух приобрели блеск, начали покрываться пухом участки аптериозов. На пятый-шестой день полностью исчезли клинические признаки заболевания, цыплята активно принимали корм, умеренно употребляли воду, оперение значительно улучшилось. Признаки поражения органов дыхания, глаз и отеки в области головы отсутствовали.

В контрольной группе состояние цыплят продолжало ухудшаться и, в течение 7 дней пало 11 цыплят из 100. У выживших цыплят клинические признаки приобрели характер подострого течения и на протяжении последующих 12 дней пало еще 26 цыплят. Таким образом, падеж в этой группе составил 37%. Оставшиеся цыплята были сданы на убой, но они имели значительно более низкую живую массу.

Одним из основных показателей эффективности использования лекарственного препарата в птицеводстве, помимо снижения летальности, является среднесуточный привес, получаемый у цыплят, обработанных препаратом.

Динамика средне суточных привесов цыплят в каждой группе представлена на рисунке 2.6.18. и в таблице 2.6.2. Для объективного сравнения с контролем данные по падежу птиц в контрольной группе мы рассчитали на 1000 голов, также, как и в опытных группах.

Таблица 2.6.2. Средние показатели живой массы цыплят в опытных группах

Возраст цыплят в группах (дни)	Средняя масса одного цыпленка, г
	1 группа («Tiamutoxum»)	2 группа (тилофарм)	3 группа («Doxyviti»)	4 группа (контроль)
27	1127,4	1112,2	1115,7	1123,20
28	1154,1	1158,7	1153,5	1129,70
29	1187,5	1204,3	1202,2	1157,10
30	1234,7	1251,0	1251,1	1171,50
31	1285,2	1296,5	1296,8	1209,30
32	1331,6	1340,8	1340,7	1227,50
33	1372,8	1438,2	1387,5	1253,20
34	1417,3	1534,8	1431,7	1291,00
35	1456,4	1695,7	1478,1	1315,10
36	1491,9	1754,3	1532,6	1339,70
37	1545,7	1818,7	1577,7	1357,20
38	1587,1	1873,6	1639,2	1381,90
39	1629,0	1937	1686,3	1408,40
40	1671,6	2000,4	1737,4	1426,60
41	1716,3	2052,8	1784,9	1444,00
42	1758,5	2100,3	1838,8	1461,70
43	1802,7	2152,1	1881,0	1478,20
44	1839,2	2201,3	1943,3	1500,30
45	1870,0	2265	2020,0	1530,00

По данным таблицы 2.6.2. можно определить средне суточный привес у цыплят всех групп за период откорма: в 1-й группе он составил 39,1 г, во 2-й - 60,7 г, в 3-й - 47,6 и в контроле -23,6 г.

Количество павших цыплят в каждой группе и динамика падежа по дням представлена на рисунке 2.6.19 и в таблице 2.6.3.



Таблица 2.6.3. Падеж цыплят в группах, неблагополучных по респираторному микоплазмозу, в начале опыта и в конце

Возраст цыплят в группах (дни)	Количество павших, гол.
	1 группа («Tiamutoxum»)	2 группа (тилофарм)	3 группа («Doxyviti»)	4 группа (контроль)
Кол-во цыплят в группе	1000	1000	1000	100х10
27	13	10	13	10
28	9	7	10	10
29	10	9	9	30
30	8	8	7	20
31	9	6	6	10
32	7	5	6	10
33	10	5	4	20
34	8	4	5	10
35	7	3	4	10
36	8	4	2	30
37	9	2	5	40
38	6	3	4	10
39	5	3	5	30
40	5	1	3	20
41	6	2	5	30
42	3	4	4	10
43	4	2	4	20
44	3	3	2	20
45	5	1	3	30
Всего	135	82	101	370

На основании данных таблицы 2.6.3. можно рассчитать летальность цыплят в каждой из групп. В 1-й группе она составила 13,5%, во 2-й - 8,2%, в 3-й - 10,1 и в контроле - 37%.

На основании полученных данных можно сделать заключение, что в результате проведенного лечения во 2-ой группе среднесуточный привес оказался гораздо выше и составил 60,7 г при сохранности 91,8%.

В 1-ой группе средне-суточный привес составил 39,4 г и сохранность 86,5%, в 3-ей группе средне-суточный привес составил 47,6 г при сохранности 89,9%. В то время, как в контроле эти показатели были, соответственно, 23,6 г и 63%. Улучшение общего состояния у цыплят всех опытных групп наблюдалось уже на следующий день лечения (появился и улучшился аппетит, уменьшилась жажда, цыплята стали более активны, снизилась интенсивность симптомов). Клинические признаки заболевания полностью исчезли на четвертый (2 и 3 группы) и пятый-шестой (1 группа) день применяемого лечения.

Совместно с главным ветеринарным врачом птицефабрики нами был разработан план мероприятий по оздоровлению РУСПП «Лидская птицефабрика» от респираторного микоплазмоза. После реализации всех требований, изложенных в данном плане, в хозяйстве значительно снизился отход молодняка, признаков клинического проявления респираторного микоплазмоза не отмечалось. На основании этого хозяйство можно считать оздоровленным.

Экономическая эффективность результатов исследований

Для успешного применения лекарственных препаратов в рамках мероприятий по профилактике и ликвидации инфекционных заболеваний необходимо помимо доказательства их терапевтической эффективности дать еще и экономическое обоснование выгодности использования этих препаратов.

Расчёт экономической эффективности препаратов тилофарм, «Doxyviti», «Tiamutoxum» провели по методике определения экономической эффективности, утверждённой Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства Республики Беларусь 10.05.2000 г. Для экономической оценки было использовано несколько критериев, которые указаны ниже, характеризующие, прежде всего, их фактическую экономическую эффективность. Все расчёты базировались на результатах экспериментальных исследований.

Ущерб от падежа птиц (У) определяли по формуле:

У = М х Ц

М - количество павшей птицы в соответствующей группе (гол.)

Ц - стоимость 1 птицы поступающей на убой.

1 группа «Tiamutoxum»

135х3500 = 472 500 руб.

2 группа «тилофарм»

82х3500=287 700 руб.

3 группа «Doxyviti»

101х3500=353 500 руб.

Ущерб от недополучения прироста (У) определяли по формуле:

У = Мз х (Вз - Вб)х ТхЦ

Мз - количество переболевшей птицы в соответствуещей группе.

Вз - средняя живая масса цыплят при сдаче на убой.

Вб - средняя живая масса цыплят в опытной группе.

Т - средняя продолжительность болезни.

Ц - стоимость 1 птицы поступающей на убой.

1 группа «Tiamutoxum»

У₄ =1 000 х (0,065 - 0,0391) х 8 х 3 500=725 200 руб.

2 группа «тилофарм»

У₅=1 000 х (0,065 - 0,0607) х 8 х 3 500=120 400 руб.

3 группа «Doxyviti»

У₆=1 000 х (0,065 - 0,0476) х 8 х 3 500=487 200 руб.

Исход из этого суммарный ущерб, к примеру в 1группе, составит:



У_1сум = У₁ + У₄

У_1сум= 472 500 + 725 200 = 1 197 700 руб.

У_2сум= 287 700 + 120 400 = 408 100 руб.

У_3сум= 353 500 + 487 200 = 840 700 руб.

Предотвращённый экономический ущерб (Пу) в результате проведенных оздоровительных мероприятий

Пу = М₁ х Кл х m x Цm - У_1сум

М₁ - количество птиц в группе;

Кл - коэффициент летальности;

m - средняя масса цыплят в группе при убое;

Цm - цена за 1 кг живой массы птицы, при сдаче на убой

Кл (коэффициент летальности) определяли на основании анализа падежа цыплят от респираторного микоплазмоза в контрольной группе

Кл = М₂ / М₁

М₁ - количество птиц в группе всего;

М₂ - количество павших птиц в группе

Кл = 37/100 = 0,37

1 группа «Tiamutoxum»

Пу₁ = 1 000 х 0,37 х 1,87 х 2 000 -1 197 700= 186 100 руб.

2 группа «тилофарм»

Пу₂ = 1 000 х 0,37 х 2,265 х 2 000 -408 100= 1 268 000 руб.

3 группа «Doxyviti»

Пу₃ = 1 000 х 0,37 х 2,020 х 2 000 - 840 700 = 654 100 руб.

Затраты на проведение ветеринарных мероприятий (Зв)

Зв = Мп х Ц

Мп - масса препарата, необходимая для обработки всех цыплят соответствующей группы на курс лечения;

Ц - стоимость 1 кг препарата

1 группа «Tiamutoxum»

Зв₁ = 2,0 х 36 500 = 73 000 руб.

2 группа «тилофарм»

Зв₂ = 0,8 х 107 800 = 86 240 руб.

3 группа «Doxyviti»

Зв₃ = 1 х 75 000= 75 000 руб.

Экономический эффект (Эв), получаемый в результате проведения оздоровительных мероприятий определяли:

Эв = Пу - Зв - У

1 группа «Tiamutoxum»

Эв₁ = 911 300 - 73 000 - 725 200= 113 100 руб.

2 группа «тилофарм»

Эв₂ = 1 388 400-86 240 - 120 400= 1 181 760 руб.

3 группа «Doxyviti»

Эв₃ =1 141 300-75 000 - 487 200= 579 100 руб.

Экономическая эффективность на 1 затрат (Эр)

Эр = Эв : Зв

1 группа «Tiamutoxum»

Эр₁ = 113 100 : 73 000 = 1,55 руб. окупаемости на 1 рубль затрат

2 группа «тилофарм»

Эр₂ = 1 181 760 : 86 240 = 13,71 руб. окупаемости на 1 рубль затрат

3 группа «Doxyviti»

Эр₃ = 579 100 : 75 000 = 7,72 руб. окупаемости на 1 рубль затрат

Из полученных данных становится очевидна более высокая экономическая эффективность при использовании препарата тилофарм, где окупаемость ветеринарных мероприятий составила 13,71 что выше, чем при использовании препарата «Doxyviti» и препарата «Tiamutoxum». Это подтверждает то, что препарат тилофарм способствует более высокой сохранности молодняка птиц и получению более высоких привесов цыплят.

Анализ полученных результатов

Анализируя полученные результаты и имеющиеся данные литературы можно сделать заключение, что среди микроорганизмов, населяющих органы дыхания здоровой птицы, имеются бактерии рода Mycoplasma, которые не оказывают какого либо отрицательного воздействия на организм. Но, при нарушении ветеринарно-санитарных норм содержания птиц, особенно состояния воздушной среды в птичниках, они начинают усиленно размножаться и проявлять свои патогенные свойства. При этом заболевание, вызванное этими микроорганизмами, при неправильном лечении может перейти в хроническую форму со стертыми клиническими признаками, и бактерионосительи могут стать источником возбудителя заболевания для других птиц, а также передавать возбудителя своему потомству. Это хорошо освещено в работах Татарчук О. П. (2005), Кливена С.Х. (2003), Зуева В.С. (2004), Avakian A.P. (1993).

Поэтому большое значение имеет своевременность и правильность постановки диагноза на респираторный микоплазмоз не только с целью успешного лечения, быстрейшей ликвидации болезни и сохранения поголовья, но и с целью исключения бактерионосительства переболевшей птицы.

Учитывая выше изложенные аспекты, возникла необходимость в изучении причин возникновения заболевания, течения, проявления респираторного микоплазмоза и разработки эффективного метода лечения заболевшей птицы.

В результате изучения эпизоотической ситуации на РУСПП «Лидская птицефабрика» и анализа анамнестических данных установлено, что хозяйство неблагополучно по следующим инфекционным заболеваниям: респираторному микоплазмозу, эшерихиозу, и по инфекционному бронхиту. Против всех указанных заболеваний на птицефабрике ведется активная профилактическая работа, включающая плановые вакцинации и обработки птиц химиотерапевтическими препаратами. В настоящее время эпизоотическая обстановка по данным заболеваниям достаточно стабильна и случаи летальных исходов от этих инфекций носят спорадический характер. Однако в сентябре - октябре 2006 года на птицефабрике зарегистрирована вспышка респираторного микоплазмоза, несмотря на обработку цыплят антибиотиками.

Диагноз был установлен на основании выделения возбудителя с учётом клинико-эпизоотологические данные и патологоанатомических изменений, которые при респираторном микоплазмозе являются достаточно характерными и хорошо описаны в литературе такими авторами, как Ибрагимов А.А. (2005), Nunoya T. T. (1995).

Этому способствовало использование на РУСПП «Лидская птицефабрика» яиц для инкубации из РУСПП «Щучинский племптицерепродуктор», ранее неблагополучного по микоплазмозу, поставляющего инкубационные яйца неполноценные по содержанию витаминов и другим биологическим показателям. В результате произошло снижение иммунитета, на фоне которого произошла активизация условно-патогенной микрофлоры, а в частности M. gallisepticum.

Заболевание цыплят, несмотря на обработку их антибиотиками, на наш взгляд, связано с привыканием данных микроорганизмов к препаратам, применяемым достаточно продолжительное время. Этот факт подтверждается данными Бессарабова Б.Ф. с соавт. (2001), Дорофеевой С.Г. (2005), Михайловой Г.Р. (2005) и другими исследователями.

Клинические признаки имели выраженный характер (угнетение, отказ от корма, жажда, плохое оперение, одышка, дыхание с открытым клювом, чихание, сухой кашель, отек и гиперемия кожи на веках, увеличенное слезоотделение, скопление серозного и серозно-катарального экссудата в конъюнктивальной полости и подглазничных синусах). Все это свидетельствует об остром течении заболевания. Массовость и быстрое распространение свидетельствуют об инфекционной природе возникшего заболевания. Это предположение полностью подтвердилось при бактериологическом исследовании патологического материала.

Успех в ликвидации возникшего заболевания в максимально кратчайшие сроки был обусловлен проведением своевременных исследований (патологоанатомического исследования и бактериологического анализа патологического материала) и постановкой точного диагноза, а также определением наиболее эффективных антибактериальных препаратов в отношении выделенных микроорганизмов.

При вскрытии у большинства павших цыплят отметили изменения, характерные для острого течения респираторного микоплазмоза (кератоконъюнктивит, отёки подкожной клетчатки в области головы, анемичность клюва, гребешка, бородок и сережек, острый серозно-катаральный трахеит, гнойно-катаральный бронхит и аэросаккулит, пневмония и серозно-фибринозный плеврит), у некоторых павших цыплят указанные изменения имели особенности подострого течения.

При проведении микробиологических исследований органов павших цыплят от клинически больных были выделены микроорганизмы, относящиеся к роду Mycoplasma, вид М. gallisepticum. Параллельно проводилось исследование на определение чувствительности выделенной микрофлоры к различным антибиотикам.

Самыми эффективным оказались тилофарм,»Doxyviti»,»Tiamutoxum».

Они были использованы для лечения птиц неблагополучной группы и определена их сравнительная терапевтическая и экономическая эффективность.

Действующим веществом препарата тилофарм является антибиотик тилозин тартрад, к которому М. gallisepticum высоко чувствительны по данным Башкирова О.Г. (1999), Борисенковой А.Н. с соавторами (2003), Татарчук О. П. (2005).

Учитывая данные по среднесуточным привесам, сохранности и массе цыплят в конце срока откорма при применении данных препаратов была разработана оптимальная комплексная схема лечения больных цыплят-бройлеров. О высокой эффективности выбранной схемы говорит быстрое выздоровление опытных цыплят, высокая сохранность и значительные привесы. При этом наиболее краткие сроки выздоровления (4 дня) были отмечены в группе №2 и 3, лечение в которых осуществляли препаратами тилофарм и «Doxyviti», а в группе, где использовался препарат «Tiamutoxum» выздоровление цыплят наступало в течение 5-6 дней. Полученные данные интерпретируются с данными Елисеевой Е.Н. с соавт. (2003), Косорукова В. (2004), Татарчук О. П. (2004, 2005), которые указывают на высокую терапевтическую активность антибиотиков тилозинового ряда при респираторном микоплазмозе.

Лишние дни болезни для птицеводства складываются в немалый экономический ущерб, включающий помимо дополнительного расхода лекарственного препарата и значительные потери привесов живой массы на откорме.

Анализируя полученные результаты по изучению особенности течения респираторного микоплазмоза в условиях РУСПП «Лидская птицефабрика», можно заключить, что данная инфекция имеет повсеместное распространение. Возникновение заболевания, вызванного данным микроорганизмом, и яркое клиническое проявление обусловлено снижением резистентности птицы, вызванное нарушением условий содержания. Возникнув, данная инфекция быстро распространяются по стаду, охватывая до 80% восприимчивого поголовья, при летальности до 40% (при отсутствии лечения). При проведении наших исследований в контрольной группе, где больной птице не оказывали лечения, летальность составила 37%. Это наносит значительный экономический ущерб. Для скорейшей ликвидации болезней необходимо оперативное проведение мероприятий, включающее групповое лечение клинически больных птиц и профилактическую обработку подозреваемых в заражении. Для разработки схемы лечения больных необходим комплексный подход, включающий применение наиболее эффективного антибактериального препарата (по результатам определения чувствительности в лабораторных условиях).

Для профилактики возникновения данных инфекций хозяйству предложен перечень мероприятий, направленных на организацию противоэпизоотической защиты, борьбу с резервуаром возбудителей и носителями, контроль качества кормов, балансирование рационов витаминно-минеральными добавками, создание оптимальных параметров микроклимата в помещениях для содержания птицы, плановое проведение дезинфекции, дезинсекции и дератизации, контролирование эпизоотической ситуации в соседних хозяйствах, изолированное выращивание разновозрастных групп, и карантинирование вновь прибывших.

Соблюдение указанных мероприятий будет способствовать не только профилактике заболевания птицы, но и поможет значительно повысить продуктивность (эффективность использования питательных веществ корма) птицы. А это, в свою очередь, будет способствовать повышению рентабельности РУСПП «Лидская птицефабрика» и развитию птицеводства в нашей республике.



Выводы

1. В результате изучения эпизоотической ситуации на РУСПП «Лидская птицефабрика» и анализа анамнестических данных установлено, что хозяйство неблагополучно по: респираторному микоплазмозу, эшерихиозу и по инфекционному бронхиту.

2. Были установлены причины массовой гибели цыплят по всей птицефабрике и в отдельных цехах. Этому способствовало использование на РУСПП «Лидская птицефабрика» яиц для инкубации из РУСПП «Щучинский племптицерепродуктор», ранее неблагополучного по микоплазмозу, поставляющего инкубационные яйца неполноценные по содержанию витаминов и другим биологическим показателям. Диагноз установлен на основании выделения возбудителя с учётом клинико-эпизоотологических данных и патологоанатомигических изменений.

3. Наиболее эффективные антибиотики при респираторном микоплазмозе цыплят: тилофарм, «Doxyviti» и «Tiamutoxum». По результатам производственных испытаний указанных препаратов было определено, что лучшим является тилофарм так как при его применении в неблагополучной по респираторному микоплазмозу группе цыплят снижается отход и повышаются среднесуточные привесы, что способствует получению цыплят большей живой массы в конце откорма.

4. Экономическая эффективность применения антибиотиков при респираторном микоплазмозе цыплят составила: препарата тилофарм - 13,71, «Doxyviti» - 7,72, «Tiamutoxum» -1,55 руб. на 1 затрат.

Предложения производству

Для лечения цыплят, больных респираторным микоплазмозом, применять препарат тилофарм. Антибактериальный спектр действия и положительные результаты, полученные при изучении терапевтической и экономической эффективности препарата тилофарм, позволяют рекомендовать его к использованию в комплексе мероприятий для лечебно-профилактических обработок при респираторном микоплазмозе птиц по следующей схеме: в течении 5 дней с питьевой водой препарат в дозе 200 г на 200 л воды, после 2-х дневного перерыва продолжить дачу препарата в той же дозе в течение еще 3-х дней.