Контроль качества лекарственных форм асептическоо производства

Характеристика лекарственных форм асептического изготовления. Организация асептических условий изготовления стерильных лекарственных форм для инъекций в условиях промышленного производства. Требования к контролю качества фармацевтического препарата.

Рубрика Медицина
Вид курсовая работа
Язык русский
Дата добавления 03.01.2016
Размер файла 729,5 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

2) Мойка: контроль качества мойки ампул проводится просмотром ампул, наполненных профильтрованной дистиллированной водой.

3) В конце стадии подготовки ампул к наполнению осуществляется контроль качества ампул (оценка качества ампульного стекла описана выше).

III) Контрольные мероприятия на завершающей стадии - ампулирование:

1) Стадия наполнения ампул растворами: определение норм наполнения. Фактический объем наполнения сосудов должен быть больше номинального, чтобы обеспечить нужную дозу при наполнении шприца. ГФ ХI издания устанавливает нормы налива и количества сосудов для контроля. В сосудах вместимостью до 50 мл наполнение проверяют калиброванным шприцем, в сосудах вместимостью 50 мл и более - калиброванным цилиндром при температуре 20±2°С.

2) Стадия запайки: определение герметичности. Контроль качества укупорки (запайки) проходят все сосуды. Для определения герметичности сосудов используют 3 метода:

· суть первого метода состоит в том, что кассеты с ампулами помещают в вакуум-камеру капиллярами вниз. В капилляре создают разрежение, при этом из негерметичных ампул раствор выливается. Такие ампулы отбраковываются.

· Герметичность ампул можно проверить с помощью окрашенного раствора метиленового синего (0,0005%). Если инъекционный раствор подвергают тепловой стерилизации, то горячие ампулы помещают в ванну с окрашенным растворов. При резком остывании в ампулах создается разрежение и окрашенная жидкость проникает во внутрь негерметичных ампул, которые отбраковываются. Если же инъекционный раствор не подвергают тепловому воздействию, то в аппарате с ампулами погруженными в окрашенный раствор создают давление 100±20 кПа, затем его снимают. Ампулы и флаконы с подкрашенным раствором отбраковывают.

· для определения герметичности ампул с масляными растворами используют воду или водный раствор мыла. При попадании такого раствора внутрь ампулы происходит изменение прозрачности и цвета масляного раствора за счет образования эмульсии и продуктов реакции омыления.

· третий метод основан на визуальном наблюдении за свечением газовой среды внутри ампулы под действием высокочастотного электрического поля 20-50 мГц. В зависимости от величины остаточного давления внутри ампулы наблюдается разный цвет свечения. Определение проводят при 20°С и диапазоне измерений от 10 до 100 кПа.

Контроль качества запайки или укупорки проходят 100% сосудов и для определения герметичности используют 3 метода:

· вакуумирование;

· с помощью растворов индикаторов (для водных растворов) и воды или мыльного раствора (для масляных растворов);

· по свечению газовой среды внутри сосуда под действием высокочастотного электрического поля.

3) Стадия стерилизации: определение стерильности растворов проводится путем посева и инкубации на специальных тест-средах образцов каждой серии продукции. При обнаружении роста микроорганизмов хотя бы в одной пробирке испытание повторяют на таком же количестве сосудов. И только при отсутствии роста при повторном посеве серия считается стерильной. Определению стерильности подвергают ампулы или флаконы каждой серии, одновременно подвергавшиеся стерилизации в одном стерилизующем аппарате.

Метод мембранного фильтрования при определении стерильности рекомендован при выраженном антимикробном действии лекарственного вещества и испытании растворов в больших объемах (более 100 мл). Отбирается 30 ампул, их делят на 3 группы по 10 штук, 20 используют для испытания на стерильность, 10 - для контроля полноты отмывания мембраны от лекарственного вещества. Для фильтрования применяют установку с мембраной диаметром 47 мм и размером пор 0,45±0,02 мкм. Фильтры стерилизуют при температуре 121±1°С 20 мин. Если испытывают порошок, его растворяют в воде для инъекций, фильтруют через стерильную мембрану, которую промывают от раствора 3-5 порциями растворителя по 100 мл, разрезают стерильными ножницами на 2 части, одну из них помещают в колбу с тиогликолевой средой, вторую - в среду Сабуро, 7 дней инкубируют при ежедневном просмотре. Все операции проводят в асептических условиях. При отсутствии роста на двух средах делают заключение о стерильности серии.

Определение пирогенности растворов проводят биологическим методом согласно ГФ ХI издания. За рубежом широко применяют лимулус-тест (лим-тест), основанный на образовании геля при взаимодействии бактериальных пирогенов с лизатом амебоцитов крови крабов Limulus polyphemus. В России разработан аналогичный метод, основанный на способности грамотрицательных микроорганизмов (основные продуценты пирогенных веществ) образовывать гель в 3% растворе калия гидроксида.

4) Стадия контроля после стерилизации:

1. Контроль на механические включения. Проводят путем просмотра сосудов на черном и белом фоне при освещении 60 Вт. На черном фоне проверяются прозрачность и наличие механических включений - стеклянная пыль, волокна фильтрующих материалов, не растворенные частицы лекарственного вещества и т.д.; на белом - цветность раствора, отсутствие механических включений черного цвета и целостность стеклянного изделия. Метод имеет недостатки: субъективизм контролируемого - острота зрения, опыт работы, усталость контролера и т.д. Допустимая ошибка метода составляет 30%.

Для более объективной оценки качества раствора по этому параметру были разработаны другие методы:

· визуально-оптические, основанные на использовании проекторов, увеличительных линз, поляризационного света и т.д.;

· оптические, с автоматической регистрацией фотоэлементами поглощения или рассеивания проходящего света;

· мембрано-микроскопические;

· проточные методы. (рис. 7, Приложение)

2. Количественное содержание лекарственных веществ, входящих в состав инъекционных растворов, определяют согласно указаниям ФС или другой нормативно-технической документации. Определение количественного состава проводится на каждой серии раствора. [11]

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Необходимость асептического изготовления лекарственных форм связана со следующими обстоятельствами:

· способом введения инъекционных лекарственных форм: нарушение защитных барьеров организма (кожа, слизистые оболочки), нанесение асептических лекарственных форм на поверхности или в полости организма, не содержащие микроорганизмов, или на слизистую оболочку глаза, характеризуемую повышенной чувствительностью к микроорганизмам;

· низкой сопротивляемостью организма детей до 1 года к инфицированию;

· разрушением действующих веществ (антибиотики) ферментами микроорганизмов, попавших в лекарственные формы, и, следовательно, потерей эффективности лекарственных препаратов.

Эти обстоятельства устанавливают достаточно жесткие формы контроля на стадиях производства данных лекарственных форм.

Кроме того, специфическая упаковка для инъекционных лекарственных форм (ампулы) по составу представляет собой ампульное стекло, на которое может различным образом влиять на содержимое ампулы. В связи с этим необходимо устанавливать на стадии изготовления ампул такую важную характеристику как химическая стойкость.

Стадии стерилизации инъекционных лекарственных форм и собственно изготовление ампул подразумевают проверку таких характеристик как: термическая стойкость, легкоплавкость и др.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. ГОСТ Р 17651-72. Тара стеклянная для лекарственных средств. Метод определения светозащитных свойств. - введ. 01.07.73. - М: Стандартинформ, 2006 - 2с.

2. ГОСТ Р 52249-2009. Правила производства и контроля качества лекарственных средств. - утв. и введ. в действие приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 20 мая 2009 г. N 159-ст. - М.

3. Гаврилов А.С., Фармацевтическая технология. Изготовление лекарственных препаратов. - М: ГЕОТАР-Медиа, 2010. - 624 с.

4. Георгиевский В. П., Конев Ф. А. Технология и стандартизация лекарств. Харьков, 1996. - 784 с.

5. Иванова Л.А. Технология лекарственных форм. Т.2. - М.: Медицина, 1991. - 544 с.Муравьев И.А. Технология лекарств. 3-е год: в 2-х т. М.: Медицина, 1980.

6. Марченко С. И. Конспект лекций . Технология фармацевтических препаратов. - Одесса, 2002. - 72 с.

7. Меньшутина Н.В. Технологии и оборудование для производства инъекционных лекарственных препаратов // Фармацевтические технологии и упаковка. - 2014. - № 6. - с. 78-79.

8. Муравьев И.А. Технология лекарств. 3-е год: в 2-х т. М.: Медицина, 1980.

9. Розенцвейг П.Э., Сандер Ю.К. Технология лекарств и галеновых препаратов. - М: Медицина, 1967. - 771 с.

10. Хоружая Т.Г., Чучалин В.С. Учебно-методическоепособие. Стерильные и асептически изготовленные лекарственные средства промышленного производства. - Томск: Изд-воСибГМУ, 2005. - 136 с.

ПРИЛОЖЕНИЕ

Аппаратура при производстве инъекционных лекарственных средств

Рис. 1. Схема установки для калибровки дротов по наружному диаметру (объяснения в тексте)

Рис. 2. Принцип работы полуавтомата для выделки ампул: 1 - верхний патрон; 2 - горелка; 3 - ограничительный упор; 4 - нижний патрон; 5 - ролик; 6 - копир; 7 - горелка с острым пламенем; 8 - стеклянная трубка; 9 - готовая ампула

Рис. 3. Автомат Резепина для отрезки капилляров (объяснения в тексте)

Рис. 4. Устройство печи с газовыми горелками для отжига ампул: 1 - корпус; 2 - камера нагрева; 3 - камера выдержки; 4 - камера охлаждения; 5 - стол загрузки; 6 - стол выгрузки; 7 - газовые горелки; 8 - конвейер; 9 - кассета с ампулами

Рис. 5. Схема вакуум-аппарата для мойки ампул (объяснения в тексте)

Рис. 6. Схема полуавтомата для мойки ампул с программой управления во времени (объяснения в тексте)

Рис. 7. Устройство установки для объективного контроля чистоты раствора в ампулах (схема)

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.