Гормоны половых функций самок

Реакция Фридмана и Шнейдера. Объектом служат крольчихи массой 900-1200 г (достигшие половой зрелости), самки должны содержаться изолированно от самцов. 10 мл сыворотки крови исследуемой кобылы вводят в ушную вену крольчихи. Через 36-48 часов у крольчихи производят лапаротомию и осмотр яичников: при беременности кобылы в яичниках крольчихи образуются кровоизлияния на месте разорвавшихся фолликулов или обнаруживают фолликулы, полость которых заполнена кровью. После осмотра яичников рану брюшной стенки зашивают, через 2-3 недели эту же крольчиху можно использовать вторично (иногда одно животное удается использовать 5-6 раз), но при повторных инъекциях следует иметь в виду возможность анафилаксии. Диагностика жеребости по результатам биологических исследований отличается высокой точностью 95%, но эти методы применяются редко из-за сложности и дороговизны выполнения. ^[1]

4. Передовой опыт: диагностика стельности коров методом ИФА

Для улучшения воспроизводства молочного и мясного скота целесообразно как одну из действенных мер в борьбе с яловостью использовать в животноводческой практике метод ранней диагностики стельности и выявления субклинических форм нарушений репродуктивных функций у коров и телок.

С помощью метода иммуноферментного анализа (ИФА) по концентрации прогестерона в молоке или в сыворотке крови (у телок) с высокой степенью достоверности 97-100% определяется стельность спустя 19-21 сутки после осеменения, в то время как при традиционном ректальном исследовании это можно сделать только через 75-90 суток. В случае отрицательного результата на стельность через 10 суток проводят повторный анализ, чтобы выявить причину нарушения репродуктивной функции животного. В этом случае у ветеринарного специалиста есть два месяца для лечения (стимуляции) и плодотворного осеменения коровы в первые три месяца после отела, то есть возможность предотвратить яловость.

ИФА способствует раннему выявлению стельности или скрытых причин бесплодия, в том числе возможной гипофункции яичников, лютеиновой кисты, персистентного желтого тела, а следовательно, своевременному их устранению. ^[11]

Метод ИФА имеет ряд преимуществ: позволяет определять наличие или отсутствие полового цикла уже в первый месяц после отела, уточнять оптимальное время осеменения, особенно при слабом проявлении охоты; исключает аборты, возможные при ошибочном искусственном осеменении стельных коров с проявлениями ложной охоты, и стрессы, которые имеют место при ректальном методе диагностики. С помощью метода ИФА можно определять фазы половых циклов у коров-доноров и реципиентов при трансплантациях эмбрионов, диагностировать субклинические формы гипотиреоза, снижающего молочную продуктивность и репродуктивные функции животных.

Метод эстетичен, доступен в исполнении, его в состоянии освоить как ветврач, так и зоотехник, техник по искусственному осеменению и лаборант. Лабораторию по ранней диагностике стельности коров методом ИФА можно организовать непосредственно на животноводческом комплексе, на молокоперерабатывающем заводе, в племобъединении или ветбаклаборатории, то есть там, куда удобнее доставлять пробы молока или сыворотки крови. Отбор проб прост: в конце выдаивания сдоить 1-1,5 мл молока в приготовленную пробирку и сразу отправить на анализ или заморозить для последующего исследования. ^[11]

Нередко причиной неплодотворного осеменения коров может быть неудачный выбор оптимального времени введения семени. Используя метод ИФА, такой момент можно определить довольно точно по динамике концентрации прогестерона в молоке. Это повышает результативность искусственного осеменения животных.

Фирмой Cambridge Veterinary Sciences разработан и налажен промышленный выпуск надежного, полностью укомплектованного набора реагентов Ovucheck Cowside™, предназначенного для определения уровня прогестерона в коровьем молоке на месте отбора проб. В этом наборе используются микротитровальные полоски с предварительно адсорбированными в их лунках моноклональными антителами к прогестерону. Анализ выполняется менее чем за 45 мин. Потребителю необходимо только добавить определенное количество пробы или стандарта в соответствующее число используемых лунок. Затем в лунки с помощью капельницы добавляют конъюгат прогестерона с щелочной фосфатазой. Содержимое лунок осторожно перемешивают и инкубируют при комнатной температуре 15 мин. Затем реакционную смесь сливают, и в лунках остается только связанный с антителами меченый антиген. Далее во все лунки с пробой, стандартом и контрольным образцом добавляют раствор субстрата.

Набор оптимизирован таким образом, что он позволяет визуально различить концентрации прогестерона от 2 до 10 мг/мл. Интенсивно розовая окраска указывает на то, что животное находится в состоянии овуляции. Пробы с повышенным уровнем прогестерона дают легко различимую светло-розовую окраску.

Обычную методику типа ИФА можно оптимизировать, подобрав соответствующие стандарты, антитела, метку и субстрат, и таким образом создать набор, пригодный для надежного определения гормона в полевых условиях. Существует множество наборов, представляющих собой варианты Ovucheck Cowside; а соответствующие методики могут заметно различаться в деталях. Для количественного определения прогестерона в молоке предлагались, например, в качестве твердой фазы для иммобилизации антител полимерные палочки. Разрабатывается ряд методик типа ИФА для определения концентрации прогестерона в плазме, предназначенных для определения репродуктивного статуса крупного рогатого скота, лошадей и свиней. ^[11]

Сульфат эстрона представляет собой сульфопроизводное стероида; он секретируется в относительно большом количестве фетоплацентой. Концентрация этого соединения в крови или молоке коров и свиней является надежным показателем фертильности. Определение концентрации Oe₁-3-S дополняет результаты определения прогестерона у элитных животных. Разработано несколько методик ИФА для определения Oe_a-3-S в молоке и сыворотке коров. Так как молекулярная масса Oe₁-3-S невелика, его иммунохимическое определение возможно только с помощью конкурентных методов иммуноанализа. В настоящее время наборы для определения Oe₁-3-S промышленностью не производятся. ^[11]

Заключение

Эффективный контроль за состоянием репродуктивной системы каждой самки, недопущение погрешностей при осеменении - основные требования, предъявляемые к специалистам, занятым воспроизводством стада. Гормональные методы стимуляции и синхронизации охоты в руках ветеринарного работника - дополнительный инструмент, способствующий сокращению сервис-периода и улучшению показателей. В настоящее время использование гормонов с целью стимуляции воспроизводительных функций самок научно обосновано, подтверждено производственными опытами и успешно внедряется в животноводстве. Гормональная регуляция применяется для синхронизации охоты, течки и овуляции у самок, поскольку позволяет получать потомство без простоев, с помощью гормонов повышают многоплодность овец и свиней. Благодаря применению гормональных препаратов можно четко организовать цикл воспроизводства на крупных свинокомплексах: это включает синхронизацию опоросов, охоты и овуляции у свиноматок основного стада с обязательным искусственным осеменением; синхронизацию охоты у ремонтных свинок и раннюю диагностику супоросности. Наиболее рационально применять апробированные схемы с использованием различных препаратов: гонадотропинов (СЖК, КЖК, гравогормон, хориональный гонадотропин), нейротропных веществ (карбахолин, прозерин, фумарон), прогестагенов (прогестерон, мегестрол-ацетат, меленмегестрол), синтетического аналога гонадотропин-рилизинг гормона (сурфагон). Однако необходимо осознавать ответственность за такое вмешательство в организм животных: при неосторожном применении гонадотропинов образуются кисты, СЖК может вызвать анфилаксию и т.д.

Для улучшения воспроизводства молочного и мясного скота целесообразно внедрять в животноводческую практику метод ранней диагностики стельности и субклинических форм нарушений репродуктивных функций у коров и телок - метод ИФА в диагностике бесплодия (стельности).

Библиографический список

1. Баковецкая О. В. Методы определения оптимального времени осеменения коров. // «Зоотехния» №5 2006.

2. Васильева С.В., Конопатов Ю.В. Клиническая биохимия крупного рогатого скота. - Спб.: СПбГАВМ, 2009.

3. Гончаров В. Сервис период может стать короче. // «Животноводство России» №11 2004.

4. Заянчковский И.Ф. Профилактика и лечение акушерско-гинекологических заболеваний у коров. - Уфа: СХИ, 1982.

5. Леонов К. От гипофункции яичников до бесплодия - один шаг. // «Животноводство России» №12 2002.

6. Мамаев А., Самусенко Л. Коррекция половой функции коров. // «Животноводство России» спец.выпуск по молочному скотоводству 2010.

7. Прокофьев М. И. Регуляция размножения сельскохозяйственных животных. - Л.: Наука, 1983.

8. Чомаев А., Клинский Ю. Воспроизводством свиней можно управлять. // «Животноводство России» №5 2003.

9. Чомаев А., Клинский Ю., Соломахин А. Чем чреваты спайки яичников у коров. // «Животноводство России» №3 2009.

10. Чомаев А. От каждой коровы - по теленку в год. // «Животноводство России» №5 2007.

11. Шевелев Н., Матрешина Н., Краснов В. Метод ИФА в диагностике бесплодия. // «Животноводство России» №1 2008.

Размещено на Allbest.ru